Name: Purificação e Agregação do Domínio proteína precursora de amilóide intracelular (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-08-28T12:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 8 s
Description: Aprenda a purificar o domínio intracelular da proteína precursora de amilóide (AICD) e caracterizar sua agregação térmica por microscopia de força atômica. Este protocolo permite obter AICD altamente puro para análises bioquímicas.

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Os autores gostariam de agradecer ao Dr. Hui Zheng (Baylor College of Medicine) para a APP cDNA. Este trabalho foi financiado pelo NIH R21AG031948 (DB, JMB), F30AG030878 (ESS), R01DK073394 (AFO), o John Sealy Memorial Fund Endowment for Biomedical Research (AFO), e Jean C. e D. William Willis Neuroscience Research Endowment (ESS). JMB é um estudioso do Programa de Pesquisa Translacional Scholar e membro da Universidade do Texas Medical Sucursal Claude E. Pimenta antiga americanos Independência Centro (apoiado pelo NIH UL1RR029876 e P30-AG-024832, respectivamente).

<html> 1. Expressão de domínio recombinante APP intracelular (AICD) <ol><li> E. Transformação coli BL21 com AICD humana (resíduos 649-695 de APP, isoforma neuronal de numeração) clonado no vector pGEX-4T-1 (GE Healthcare). Este vector expressará AICD como a porção C-terminal de uma proteína de fusão de glutationa-S-transferase (GST). Este vector também codifica uma sequência de clivagem pela trombina para facilitar a remoção da porção GST. Detalhes da clonagem AICD em pGEX-4T-1 pode ser encontrada na nossa publicação anterior 4. </li><li> A partir de uma colónia isolada, inocular 10 ml de caldo de LB com ampicilina (100 jig / ml) e incubar durante a noite a 37 ° C com agitação vigorosa. </li><li> Na manhã seguinte, inocular 400 ml de LB / ampicilina, num balão de um litro com 5 ml da cultura durante a noite. </li><li> Incubar a 37 ° C com agitação vigorosa até a densidade óptica a 600 nm ter atingido 0,4 e 0,6. Isto normalmente levar de 2 a 2,5 horas. </li></ol>&gt; content &quot;Neste ponto, pode ser desejável para remover uma pequena amostra (~ pi 10) para seguir a purificação por SDS-PAGE (ver Figura 1A, B). Cada passo de purificação subsequente deve ter também uma pequena alíquota removida para análise por SDS-PAGE. <ol start="5"><li> Induzem a expressão de GST-AICD pela adição de 0,4 mM de isopropil-beta-D-tiogalactopiranósido (IPTG). Incubar a 37 ° C com agitação vigorosa durante 5 horas. </li><li> Centrifugar as células a 6.000 xg durante 15 min a 4 ° C. O pelete de células pode ser armazenada a -80 ° C durante vários meses, neste ponto do procedimento. </li></ol> 2. Purificação de GST-AICD <ol><li> Preparar 50 ml de tampão de lise como se segue: 1 mM de ditiotreitol, 1 mM de ácido etilenodiaminotetracético (EDTA), 0,1% de Triton-X100, fluoreto de fenilmetilsulfonilo 1 mM (PMSF), cocktail inibidor de protease completo (Roche Applied Science), e solução salina tamponada com fosfato. Relaxar no gelo. </li><li> Descongelar pelete bacteriana (se previamente congelado) emgelo. </li></ol> Neste ponto, é importante que todos os passos são realizados a 4 ° C para limitar a proteólise. Todos os tubos, tampões, e outros reagentes devem ser pré-arrefecida. Se usar uma imprensa francesa ou emulsificante para lise, estes devem ser pré-refrigerados também. <ol start="3"><li> Completamente ressuspender o sedimento bacteriano em 20 ml de tampão de lise. Uma combinação de centrifugação e a trituração com 10 ml de pipeta em gelo assegurará completa ressuspensão do sedimento. </li><li> Passar as células ressuspensas bacterianas através de um emulsionante (por exemplo, Avestin EmulsiFlex-C3) ou célula de pressão Francesa, pré-refrigerada a 4 ° C a 30000 psi. Passar o lisado por o emulsionante uma segunda vez. Recolher o lisado para um tubo de ml pré-refrigerada 50. </li></ol> A principal vantagem destes dois instrumentos é que eles minimizar o aquecimento da amostra. A técnica normalmente usada de sonicação produz calor significativo na ponta da sonda de ultra-sons epode resultar em agregação de proteínas recombinantes. <ol start="5"><li> Centrifuga-se o lisado a 15.000 xg durante 30 min. Separa-se e manter-se o sobrenadante para um tubo de ml pré-refrigerada 50. </li><li> Adicionar 500 ul de uma suspensão a 50% de esférulas de glutationa-agarose (Sigma-Aldrich). Rodar durante 30 min a 4 ° C. Enquanto a amostra está a rodar, fazer de tampão de eluição fresco: 50 mM de Tris 7,8, 0,1% de Triton X100, 0,5 mM de ditiotreitol, 10 mM de glutationa reduzida. </li></ol> O único passo do protocolo, que é realizado à temperatura ambiente é o passo de eluição. Assim, o tampão de eluição é mantida à temperatura ambiente. Tampão de eluição deve ser preparada. <ol start="7"><li> Verter o lisado e lama numa coluna de cromatografia de 5 descartável &quot;poliestireno com grosseiras (90-130 mm) (filtros Evergreen Scientific). Lava-se a coluna 5 vezes com 3 ml de solução salina tamponada com fosfato. </li><li> Tapar a parte inferior da coluna e adicionar 500 ul de tampão de eluição de temperatura ambiente. Tapar o topo dacoluna e girar durante 5 min à temperatura ambiente. Recolher o eluato num refrigerados tubo de microcentrífuga de 1,5 ml. Repita a eluição mais duas vezes (1,5 ml eluato total). </li><li> Dialisar o eluato num molecular da membrana de diálise de corte de peso 10000 (por exemplo, Thermo Scientific Slide-A-Lyzer de diálise cassetes) em 4 litros de solução salina tamponada com fosfato durante a noite a 4 ° C. Dializar contra um adicional de 4 litros de tampão fosfato salino a 4 ° C durante 1 hora no dia seguinte. </li><li> Remover a proteína a partir da cassete de diálise e realizar um ensaio de quantificação de proteína para determinar o rendimento de GST-AICD. Uma purificação típica de 400 ml de cultura irá resultar em rendimentos de&gt; 20 mg de proteína purificada em concentrações de 10-20 mg / ml. Alíquota da proteína em alíquotas de 200 ul e congelar a -80 ° C. </li></ol> 3. A clivagem de trombina de GST-AICD e Purificação de AICD <ol><li> Ul descongelamento 200 das purificada GST-AICD e adicionar 20 ul de uma Thromb U / ulpol Incubar durante a noite a 37 ° C. </li></ol> A qualidade e pureza da trombina varia consideravelmente entre os fabricantes, e pode ser uma importante fonte de contaminação. Usamos trombina da GE Healthcare (ver tabela de reagentes). Após incubação durante a noite,&gt; 95% da proteína de fusão deve ser clivado (Figura 1B). <ol start="2"><li> Após a clivagem com trombina durante a noite, é provável que uma fracção da AICD libertada foi submetido a agregação e a solução pode parecer turva. Limpar o material agregado por centrifugação a 20.000 xg durante 30 min a 4 ° C. Remover o sobrenadante para um tubo de microcentrífuga de pré-arrefecida. </li><li> Adicionar 50 ul de 50% de esférulas de glutationa-agarose a suspensão aquosa e 50 ul de 50% de p-aminobenzamidina-agarose suspensão para remover GST e da trombina, respectivamente. Incubar com rotação durante 5 minutos à temperatura ambiente. </li><li> Centrifugar brevemente para sedimentar as esferas de agarose, e remover o sobrenadante para um novo tubo. Extrair tele GST mais quatro vezes com glutationa-agarose. A única extracção com p-aminobenzamidina-agarose é suficiente para remover o U 20 da trombina. </li><li> Executar um ensaio de quantificação de proteínas em 5 ul da AICD purificada. Os rendimentos típicos a partir de uma cultura de 400 ml são 50-100 ug, a uma concentração de 0,2 a 0,5 mg / ml. Rendimentos mais altos são possíveis por meio de clivagem de volumes maiores de GST-AICD. </li></ol> Purificada AICD deve ser preparado para a caracterização bioquímica / biofísica. Material não utilizado deve ser descartado. Também é possível concentrar a AICD por liofilização da amostra e ressuspensão em um pequeno volume de tampão 6. Se detectar AICD requer blotting (tal como após uma armadilha de filtro ou de ensaio dot blot), a recuperação do antigénio da membrana deve ser realizada como descrito por Pimplikar Suryanarayana e 12. 4. Agregação AICD de Microscopia de Força Atômica (AFM) <ol><li> Diluir preparado de fresco AICD em phosphate solução salina tamponada a uma concentração de 0,1 mg / ml num volume final de 15 ul. Neste ponto, vários compostos e / ou proteínas podem ser adicionados, para determinar se eles inibem a agregação AICD. Por exemplo, demonstramos que as concentrações equimolares de ubiquilin-1 prevenir a agregação de AICD neste ensaio 4. </li></ol> Também é possível acrescentar um maior volume de reacção para experiências bioquímicas, tais como ensaios de armadilha de filtragem e de espalhamento de luz 4. Tivemos sucesso realizando ensaios de armadilha de filtro em misturas reaccionais tão grande como 400 ul com AICD diluído para concentrações tão baixas como 1 uM. <ol start="2"><li> Induzir a agregação térmica por incubação das amostras a 43 ° C com agitação a 800 rpm num Thermomixer de Eppendorf durante 48 horas. Esta temperatura foi escolhida com base em ensaios que examinam a chaperones agregação térmica do modelo da citrato sintase chaperone substrato 4,13. </li></ol><p class="jove_content"&gt; Agregação térmica é um método vulgarmente utilizado para induzir a transição estrutural da proteína nativa a partir de uma estrutura para um não-nativo (que é geralmente folha beta rico), que resulta na formação de agregados intermoleculares. Agregação térmica também é utilizado para examinar a função de chaperonas moleculares, os quais protegem os segmentos hidrofóbicos de formar inadequado interacções intermoleculares (e, assim, retardar ou evitar a agregação térmica). <ol start="3"><li> Dilui-se a amostra 20 vezes em água desionizada e ul ponto 2 sobre mica clivada de fresco. Seca-se a amostra num exsicador durante a noite. Será necessário determinar empiricamente a diluição óptima para a imagiologia, e, portanto, várias diluições que variam de 10 - e 100 vezes seria prudente. </li><li> Visualize a AICD agregado utilizando a operação AFM em modo de tocar 14. As vigas são utilizados ouro revestidas com nitreto de micro alavancas afiados (MSNL, Bruker), com um raio da ponta nominal de 2 nm. Típico tocando durante amplitudesção de imagem são 10-20 nm, a frequência de ressonância das consolas (30-50 kHz). </li></ol> Nós descobrimos que a qualidade da imagem e do contraste de agregados de proteínas diferentes dependia da força aplicada e da duração da experiência. Para minimizar a perturbação da amostra pela ponta, é mantida a força aplicada relativamente baixo, mantendo uma relação de set-point acima de 95% e limitando o varrimento de cada uma das amostras de 5-10 min. Processamento de imagem foi realizada com WSxM software (Nanotec). Processamento de imagem padrão consiste em avião subtração e achatamento. Nossos laboratórios utilizam uma &quot;casa-construída&quot; AFM 15, interligados a um sistema de digitalização sonda comercial controle microscópio (Nanotec). 5. Resultados representativos A expressão e um enriquecimento relativo de GST-AICD é mostrado na Figura 1A. Após a lise, a maior parte da proteína de fusão está presente na fracção solúvel e, portanto, a extracção a partir de inclusiem órgãos não é necessária. O material eluído da coluna de agarose de glutationa é&gt; 95% puro. Na preparação mostrado na Figura 1, a concentração de proteína eluída da coluna foi de 14,5 mg / ml, e o rendimento foi de 22 mg (a partir de uma cultura inicial de 400 ml). A clivagem de 200 ul da preparação, durante a noite, com 20 U de trombina resultou em quase 100% de clivagem da proteína de fusão (Figura 1B). A quantidade de trombina utilizada é suficientemente baixo para não ser detectáveis ​​por coloração com azul de Coomassie (ver &quot;Clivadas&quot; pista Figura 1B). A remoção da trombina e GST resultou em alguma perda de material, no entanto, foi&gt; 90% puro com um rendimento nesta preparação de 70 ug de AICD, a uma concentração de 0,35 mg / ml. Figura 1C mostra o diagrama de fluxo para a agregação de AICD e subsequente análise. Agregados AICD fotografada por AFM são tipicamente esferoidais / amorfa, e variam em tamanho de 50 a 100 nm (Figura 1D, F). Agregadomaterial não é detectável, quando uma quantidade equimolar da chaperona ubiquilin-1 é adicionado à reacção de agregação (Figura 1E) 4. <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/4204/4204fig1.jpg" /> Figura 1. Purificação e agregação de AICD. A) Coloração com azul de Coomassie de amostras recolhidas em cada passo do processo de purificação. Para as amostras não induzidas e induzidas, 20 uL de bactérias totais foram corridas no gel. Para a fracção sobrenadante, 5 ul de lisado (a partir de um volume total de 20 ml), foram executados no gel. Para a fracção de sedimento, o sedimento foi ressuspenso em 20 ml de tampão de lise, e 5 ul deste material foram sonicadas num sonicador de banho de água durante 30 min a 4 ° C antes do carregamento para o gel. Para o fluxo contínuo, 5 pi foram corridos no gel. As quantidades de líquido eluído carregadas no gel são indicadas. B) de Coomassie azul do gel corado não clivada e clivada GST-AICD (2 ul) e 1 e 5 m &amp;u; l purificada AICD. C) Fluxograma de purificação AICD, agregação e análise. D, E) representativas de imagem AFM termicamente agregada AICD na ausência (D) e na presença (E) da chaperona molecular ubiquilin-1. F) Histograma da distribuição de tamanho de agregados AICD.

<ol><li>De Strooper, B., Vassar, R., Golde, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+secretases%3A+enzymes+with+therapeutic+potential+in+Alzheimer+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+reviews.+Neurology%22%5BJournal%5D)">The secretases: enzymes with therapeutic potential in Alzheimer disease.</a> Nature reviews. Neurology. 6, 99-107 (2010).</li>
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</ol>

Não há conflitos de interesse declarados.

Neste protocolo temos delineado um procedimento para obter AICD altamente puro para análises estruturais, biofísicos e bioquímicos. Este procedimento não requer equipamento sofisticado cromatografia e é, portanto, acessível para a maioria dos laboratórios. Outros grupos têm purificada AICD 5-7,16, incluindo GST-AICD 17-19, para as análises bioquímicas / estrutural. Desvantagens aos protocolos anteriores incluem fraca solubilidade do AICD 16, menos do que ideal pureza 17, e o r...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome do reagente </td><td> Companhia </td><td> Número de catálogo </td><td> Comentários </td></tr><tr><td> pGEX-4T-1 </td><td> GE Healthcare </td><td> 28-9545-49 </td><td></td></tr><tr><td> Trombina </td><td> GE Healthcare </td><td> 27-0846-01 </td><td></td></tr><tr><td> Ampicilina </td><td> Fisher Scientific </td><td> BP1760 </td><td></td></tr><tr><td> Bradford reagente de ensaio de proteínas </td><td> Bio-Rad </td><td> 500-0002 </td><td></td></tr><tr><td> Coomassie azul </td><td> Bio-Rad </td><td> 161-0786 </td><td></td></tr><tr><td> IPTG (isopropil-beta-D tiogalactopiranósido) </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> I6758 </td><td></td></tr><tr><td> Glutationa-agarose </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> G4510 </td><td></td></tr><tr&gt; <td> p-aminobenzamidina-agarose </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> A7155 </td><td></td></tr><tr><td> Cocktail inibidor de protease completo </td><td> Roche </td><td> 11836170001 </td><td></td></tr><tr><td> Slide-A-Lyzer cassetes de diálise </td><td> Thermo Scientific </td><td> 66380 </td><td></td></tr><tr><td> Colunas de cromatografia </td><td> Scientific Evergreen </td><td> 208-3367-050 </td><td></td></tr><tr><td> Emulsificante </td><td> Avestin, Inc </td><td> EmulsiFlex-C3 </td><td> Altamente recomendado </td></tr><tr><td> Eppendorf Thermomixer </td><td> Eppendorf </td><td> 022670107 </td><td></td></tr><tr><td> Discos de mica </td><td> Ted Pella </td><td> 50-12 </td><td></td></tr><tr><td> Cantilevers de AFM </td><td> Bruker </td><td> MSNL-10 </td><td></td></tr><tr><td> WSxM software </td><td> Nanotec </td><td> N / A </td><td> Free Download </td></tr></tbody></table>

purificação e agregação do domínio proteína precursora de amilóide intracelular

Purification and Aggregation of the Amyloid Precursor Protein Intracellular Domain

Proteína precursora amilóide (APP) é uma proteína transmembranar de tipo I associado à patogénese da doença de Alzheimer (AD). APP é caracterizada por um grande domínio extracelular e um domínio citosólico curto denominado o domínio intracelular de APP (AICD). Durante a maturação através da via secretora, APP pode ser clivada por proteases denominadas α, β e γ-secretases 1. A clivagem proteolítica da APP sequencial com β e γ-secretases conduz à produção de um péptido pequeno proteolítico, denominado de Ap, que é amiloidogénica e o constituinte principal das placas senis. A AICD também é libertada a partir da membrana, após o processamento secretase, e por meio de interacções com Fe65 e Tip60, pode translocar para o núcleo para participar na regulação da transcrição de genes alvo múltiplas 2,3. Interacções proteína-proteína envolvendo a AICD podem afectar o tráfico, o processamento e as funções celulares de holo-APP e seus C-terminfragmentos al. Mostrámos recentemente que AICD pode agregar in vitro, e este processo é inibido pelo ubiquilin-1-AD implicado chaperone molecular 4. Consistente com estes resultados, a AICD expôs domínios hidrofóbicos e está intrinsecamente desordenados in vitro 5,6, no entanto, obtém estrutura secundária estável quando ligado ao Fe65 7. Propusemos que ubiquilin-1 impede inadequado interacções inter-e intramolecular da AICD, prevenindo a agregação in vitro e em células intactas 4. Enquanto a maioria dos estudos focado o papel de APP na patogénese de AD, o papel da AICD neste processo não são claras. Expressão da AICD foi mostrado para induzir a apoptose 8, para modular as vias de sinalização 9, e para regular a sinalização de cálcio 10. A sobre-expressão da AICD e Fe65 num modelo de ratinho transgénico induz patologia de Alzheimer, como 11, e recentemente AICD foi detectado no braem lisados ​​por western blotting quando usando técnicas de recuperação de antigénios apropriados 12. Para facilitar os estudos estruturais, bioquímicas e biofísicas da AICD, desenvolvemos um procedimento para a produção de quantidades grandes de forma recombinante altamente pura proteína AICD. Iremos descrever um método para a indução in vitro da agregação térmica da AICD e análise por microscopia de força atómica. Os métodos descritos são úteis para a caracterização bioquímica, biofísica e estrutural da AICD e os efeitos das chaperones moleculares na agregação AICD.

Um método para a purificação em larga escala do domínio intracelular de APP (AICD) é descrita. Nós também descrevem metodologia de indução<em&gt; In vitro</em&gt; Agregação AICD e visualização por microscopia de força atômica. Os métodos descritos são úteis para a caracterização bioquímica / estrutural da AICD e os efeitos das chaperones moleculares sobre a sua agregação.

Purificação e Agregação do Domínio proteína precursora de amilóide intracelular

A proteína precursora amiloide (APP) é uma proteína transmembrana do tipo I associada à patogênese da doença de Alzheimer (DA). A APP é caracterizada por...

O objetivo deste procedimento é purificar o domínio intracelular da proteína precursora de amiloide, também conhecido como A ICD, e apresentar um protocolo para agregação térmica e caracterização do A ICD por microscopia de força atômica. Isso é realizado primeiramente pela expressão de uma fusão A GST do A ICD em bactérias. Em seguida, a proteína G-S-T-A-I-C-D é purificada, clivada com trombina para separar a GST do A ICD, e a GST é removida.Em seguida, induz-se a agregação térmica do A ICD. Por fim, os agregados de A ICD são visualizados utilizando microscopia de força atômica. Em última instância, podem ser obtidos resultados que demonstram que o A ICD pode ser purificado até a homogeneidade em quantidade suficiente para análises bioquímicas e biofísicas.A principal vantagem desta técnica em relação aos métodos existentes, que exigem etapas complexas de cromatografia, é que uma ICD altamente pura e solúvel pode ser isolada em bancada utilizando reagentes e equipamentos padrão. Uma ICD produzida por este protocolo é adequada para caracterização bioquímica e biofísica adicional.Quem demonstrará o procedimento será Amina ti. O Dr. Andres Oberer, ex-pós-doutorando do meu laboratório

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SDD-AGE é uma técnica útil para a detecção e caracterização de amilóide como polímeros nas células. Aqui nós demonstramos uma adaptação que torna esta técnica passível de aplicações em larga escala.

Triagem para Agregação de amilóide por Semi-desnaturação Eletroforese Gel Detergente-Agarose

Aqui, nós descrevemos um protocolo para a purificação de altamente ativa Hsp104, a AAA hexamérica + proteína de levedura, que acopla a hidrólise de ATP a desagregação de proteína. Este esquema explora uma construção His6 marcadas para a purificação de...

Purificação da Hsp104, um Disaggregase Protein

As proteínas podem adotar uma estrutura nativa ou se dobrar em amilóide insolúvel. As condições que favorecem a via de desdobramento levam à formação de diferentes tipos de fibrilas amilóides. Os métodos descritos aqui permitem a rápida conversão de proteínas nativas em amilóide in vitro.

Geração rápida de amilóide a partir de proteínas nativas in vitro

Embora o transporte de proteínas de superfície celular está relativamente facilmente estudado, visualizando o tráfico de proteínas intracelulares é muito mais difícil. Aqui, usamos construções que incorporam GFP fotoactivável e demonstrar um método para seguir com precisão a proteína precursora de amilóide do aparelho de Golgi para compartimentos a jusante e siga a sua depuração.

Imaging o tráfego intracelular de APP com GFP fotoactivável

Um método cromatográfico de duas etapas é descrito para a purificação da proteína Shadoo recombinante expressa como corpos de inclusão em Escherichia coli, bem como um protocolo para fibrilar Shadoo purificado em estruturas amilóides.

Purificação e redobramento de amilóide fibrilas de (seu)<sub&gt; 6</sub&gt; tagged proteína recombinante Shadoo Expresso como Corpos de Inclusão em<em&gt; E. coli</em

Aqui, relatamos um protocolo de purificação por HPLC personalizado que produz peptídeos beta-amilóide 42 (Aβ42) e beta-amilóide 40 (Aβ40) de alta pureza, capazes de formação de oligômeros. A beta-amiloide é um peptídeo hidrofóbico altamente propenso a agregação implicado na doença de Alzheimer. A natureza amiloidogênica do peptídeo torna sua purificação um desafio.

A purificação Protocolo Tailored HPLC que os rendimentos de alta pureza beta-amilóide 42 e beta-amilóide 40 Peptides, capaz de Formação Oligï¿½ero

Aqui usamos a eletroforese em gel de agarose semi desnaturação bidimensional para confirmar a presença de amiloide-como fibras de tamanho heterogêneo e excluir a possibilidade de que a heterogeneidade de tamanho é devido à dissociação das fibras de amiloides durante o gel processo em execução.

Utilização de eletroforese em Gel de Agarose detergente semi desnaturação Dimensional dois para confirmar a heterogeneidade de tamanho das fibras de amiloides ou Amyloid-como

Este protocolo descreve como preparar oligómeros Aβ de um peptídeo sintético em vitro e para avaliar a quantidade relativa de oligómero Aβ por um ponto de análise a mancha.

A11-positivo β-amiloide Oligomer preparação e avaliação utilizando Dot mancha análise

Fornecido aqui é um protocolo para investigar as interações entre a forma nativa, prefibrillar, e fibrilas amiloides maduras de diferentes peptídeos e proteínas com mitocôndrias isoladas de diferentes tecidos e várias áreas do cérebro.

Interações com e permeabilização de membrana de mitocôndrias cerebrais por fibrilas amiloides

Este método de purificação bioquímica com análise proteômica baseada em espectrometria de massa facilita a caracterização robusta de núcleos fibril amiloides, o que pode acelerar a identificação de alvos para prevenir a doença de Alzheimer.

Purificação Bioquímica e Caracterização Proteômica de Núcleos de Fibril Amiloides do Cérebro

Aprenda a purificar o domínio intracelular da proteína precursora de amilóide (AICD) e caracterizar sua agregação térmica por microscopia de força atômica. Este protocolo permite obter AICD altamente puro para análises bioquímicas.

Purificação e Agregação do Domínio proteína precursora de amilóide intracelular

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