Name: O inseto Galleria mellonella Como um modelo de infecção poderosa para investigar Patogênese Bacteriana (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-12-11T13:00:00.000+00:00
Duration: 13 min
Description: Aprenda a infectar larvas de Galleria mellonella com bactérias patogênicas para estudar fatores de virulência. Este modelo alternativo evita questões éticas de mamíferos e possui sistema imune inato complexo.

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Gostaríamos de agradecer Elisabeth Guillemet, Christophe Buisson e Ludovic Bridoux para assistência técnica excelente. Temos uma grande dívida para Sylvie Salamitou e Fedhila Sinda para a configuração inicial do sistema.

1. A criação de insetos O ciclo completo de ovo a larva de último estádio dura cerca de 5 semanas a 25 ° C. Uma ou duas semanas adicionais são necessários para obter as borboletas adultas. <ol><li> Coloque pelo menos 100 pupas ou recém-fundidas adulto G. borboletas mellonella em 5 litros de gaiola de arame. Borboletas masculinos avaliar 10 a 15 mm. A mariposa adulta masculina é bege com luz fraca e marcas escuras. Medida borboletas fêmeas em torno de 20 mm. As fêmeas são mais escuras do que os homens com uma cor marrom / cinza. </li><li> Suspender dois maços de quatro camadas de papel na gaiola para postura de ovos. Após 2 dias, a fêmea adulta põe ovos no limite entre os papéis. </li><li> Duas vezes por semana, coloque os pacotes de ovo de papel em novas caixas de criação de plástico com grades para circulação de ar, contendo pólen e cera de abelha. Os ovos eclodem em cerca de 3 dias e pequenas larvas começam a se desenvolver através da alimentação em cera e pólen. Alternativamente, as larvas podem ser colocados em uma dieta artificial consisting de uma mistura de 500 g de mel líquido, 400 g de glicerina, 100 g de levedura de cerveja seca, 250 g de farinha de trigo, 200 g de leite em pó desnatado e 400 g polenta. Para proporcionar proporção adequada de alimento por larva, regularmente separar as larvas em caixas novas e reconstituir o alimento a cada dois dias. </li><li> As larvas são criados durante as seis fases de larva estádio. Cada estádio é caracterizado por o deslizamento da cápsula da cabeça de larvas. Quando as larvas atingem o último estágio antes pupação, eles param de alimentação e começar a construir um casulo de seda luz. </li><li> Em seus casulos protetores, as larvas vai descansar e se transformam em pupas. Worms cera permanecem na fase de pupa de uma a duas semanas para emergir em traças adultas. As mariposas adultas não beber nem comer. O acasalamento ocorre e ciclo dos vermes de cera &quot;a vida começa de novo. </li><li> Para padronizar o ensaio de patologia, tomar a larvas durante o último estágio larval. Durante esta fase, eles param de alimentação, mudar-se para a tampa da caixa de criação e começar a produzir seda. Este stage dura cerca de 5 dias. </li></ol> 2. Seleção de inseto para a Infecção <ol><li> Selecione larvas no último instar, que são 2-3 cm de comprimento e 180-250 mg de peso, 24 horas antes de infecções e colocá-los em uma caixa vazia para privá-los. </li><li> Remover o casulo de seda em torno da nascente larvas. </li></ol> 3. Preparação bacteriana <ol><li> Preparar suspensões bacterianas de Bacillus para se obter concentrações finais que variam de 10 4 unidades formadoras de colónias (ufc) / ml a 10 8 ufc / ml para injecção intra haemocoelic e de 3x10 6 ufc / ml para 1x10 8 ufc / ml para ingestão (a cfu obter um LD 50 depende das espécies de bactérias). No nosso caso, B. cereus é cultivada em meio Luria-Bertani broth (LB, 10 g / l de triptona, 5 g de extracto de levedura / l, 10 g / l NaCl) a 37 ° C, sob agitação, até à entrada em fase estacionária, que corresponde ao curvamento do crescimento curva. Medir o OD 600 nm (entre 1 e 2 para a B. cereus) e utilizá-la para determinar a concentração de bactérias, utilizando uma curva de titulação anteriormente feita. Colheita bactérias por centrifugação a 5000 xg durante 10 min à temperatura ambiente e ressuspender em tampão fosfato salino (PBS: 1M KH 2 PO 4, 1 M K 2 HPO 4, NaCl 5 M, pH 7,2). Cada larva receberá 10 ul de suspensão bacteriana na concentração desejada. </li><li> Em alternativa, a suspensão de esporos, podem ser preparados por infecção. Obter esporos por cultura das bactérias na esporulação meio HCT (5 g / L de triptona, 2 g / L de hidrolisado de caseína, 12,5 mM de K 2 HPO 4, 12,5 mM de MgSO4, 0,05 mM MnSO4, 1,2 mM de ZnSO 4, 1,2 mM Fe 2 (SO 4) 3, 0,5% de H 2 SO 4, 25 mM de CaCl 2) 20 a 30 ° C durante 3 dias. Esporos de colheita por centrifugação (10.000 xg, 15 min), e lavar duas vezes em água destilada estéril. Ressuspender o pel esporosdeixar em água destilada estéril e calor durante 15 min a 78 ° C para remover o restante bactérias vegetativas. Numerar a suspensão através do plaqueamento de diluições em série em placas de agar LB. Cada larva receberá 10 ul de suspensão de esporos para a concentração desejada. </li></ol> 4. Cry Preparação Toxina <ol><li> Preparar a toxina do B. Cry1C thuringiensis 407 transformado com o plasmídeo pHTF31C 21 transportando o gene que codifica Cry1C. Cultura da estirpe em meio HCT 100 ml a 30 ° C durante 72 horas com antibiótico (eritromicina 10mg/ml) para permitir a esporulação total, a produção de toxina de cristal e da libertação no sobrenadante da cultura. </li><li> Purifica-se cristais a partir do sobrenadante em um gradiente de sacarose de 72% -79%. Primeiro adicione 17 ml de sacarose de 79% em um tubo de 40 ml. Cuidadosamente camada de 17 ml de 72% de sacarose em cima de sacarose a 79%. Finalmente, a camada de 5-6 ml da cultura concentrada 10X esporulado e fechar o tubo. Centrifugar o tubo durante 14 horas a 20,000 xg, 4 ° C, para separar os cristais a partir dos esporos. Recolher os cristais na interface do gradiente. Ressuspender o sedimento em 25 ml de cristais de água fria estéril para lavá-la. Centrifugar a 8.000 xg durante 20 min. Este passo é repetido três vezes para remover todos sacarose aderindo aos cristais. Ressuspender os cristais em 5 ml de água estéril e observar ao microscópio para avaliação da pureza. </li><li> Avaliar a concentração de proteína toxina pelo clássico coloração Bradford em solução de cristal presolubilized em 50 mM NaOH. Cristais de toxina podem ser armazenadas a -20 ° C até à sua utilização. </li></ol> 5. Injector Preparação <ol><li> Para controlar o volume de injecção de precisão, utilizar uma bomba de seringa automatizada (por exemplo KD Scientific KDS 100) com uma velocidade de instalação para 1 ^ l / s (Figura 1A). </li><li> Encher uma seringa hipodérmica uma com 300 ml de água ou ul da solução bacteriana (uma seringa por condição) para a infecção de larvas de 20-25. Remover cuidadosamente as bolhas por tapping a seringa, em seguida, juntar uma agulha 0,45 x 12 mm para a seringa. </li><li> Colocar a seringa no injector. </li><li> Realizar uma injecção de 10 ul em branco em um tubo vazio para controlar o volume injectado. </li></ol> 6. Injeção Intrahaemocoelic inseto <ol><li> Coloque o inseto manualmente entre o polegar eo indicador. Em seguida, inserir a agulha fixada no injector na pele larva (cutícula) (Figura 1C). </li><li> Mantenha o inseto no local, enquanto injetar a solução de 10 ul bacteriana (bactérias ou esporos vegetativo). </li><li> Remova cuidadosamente o inseto da agulha. </li><li> Coloque o insecto infectado em um prato de Petri pequenas (5 cm de diâmetro), 5 larvas por placa. </li><li> Infectar pelo menos 20 larvas para cada condição experimental. </li><li> Colocar as placas a 37 ° C numa incubadora durante 48 horas. </li></ol> 7. Alimentação Força inseto (Ingestão) <ol><li> Num tubo Eppendorf 2 ml, misturar 0,2 ug / &amp; mu, l de toxina Cry1C quer com suspensão de esporos ou células vegetativas para obter concentrações finais que variam de 4 a 3x10 1x10 7 por 10 ul. </li><li> Encher uma seringa de 1 ml com uma 30G, 25 mm, com agulha hipodérmica de 300 ul da solução de toxina bacteriana, Cry1C na infecção de larvas de 20-25. Remover as bolhas a partir da seringa. </li><li> Coloque o insecto manualmente, de modo que a sua boca entra na agulha fixa no injector (Figura 1D), e da força de alimentá-la com 10 ul da solução bacteriana usando a bomba de seringa automatizada. </li><li> Infectar pelo menos 20 larvas para cada condição experimental. </li><li> Coloque o inseto infectado em um pequeno 5 centímetros de Petri (5 larvas por prato). Colocar as placas a 37 ° C numa incubadora durante 48 horas. </li></ol> 8. Mortalidade dos insetos gravação <ol><li> Depois de experiências de alimentação forçada ou injecção, manter as larvas na placa de Petri, sem comida, a 25 ° C ou 37 ° C. Verifique larval mortality regularmente ao longo de um período de 48 h. Larvas mortas são inertes e, geralmente, ficam pretas (Figura 1B). </li><li> Os dados de mortalidade pode ser analisado utilizando o programa de log-probit 14. Este programa testa a linearidade das curvas de mortalidade de dose e fornece doses letais (LD 50). Alternativamente, outros programas, tais como o Prism (Graph Pad), análise de sobrevivência ou dados de mortalidade pode ser usado. </li></ol>

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</ol>

Não há conflitos de interesse declarados.

O uso de insetos e principalmente o estágio larval, como modelos de infecção por vários patógenos, está se tornando freqüente. Um modelo de escolha para alguns aspectos é Drosophila (o modelo mosca), utilizado como adultos e 1,2 estágio larval. O inseto lepidóptero G. mellonella também tem sido principalmente utilizado para o ensaio de virulência bacteriana por injecção. A vantagem de tolerar temperaturas mais elevadas (acima de 37 ° C) do que a Drosophila (máximo 25 ° C), é importa...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome do reagente </td><td> Companhia </td><td> Número de catálogo </td><td> Comentários (opcional) </td></tr><tr><td> Cera e pólen </td><td> La Ruche Roanaise </td><td> 303000 </td><td> Qualquer produtor de mel </td></tr><tr><td> Bomba de seringa automatizada </td><td> KD Scientific </td><td> KDS 100 </td><td></td></tr><tr><td> Seringa de 1 ml </td><td> Terumo </td><td> BS 01T </td><td></td></tr><tr><td> Agulha 0,45 x 12 mm </td><td> Terumo </td><td> NN 2613R </td><td></td></tr><tr><td> Petri 5 centímetros </td><td> VWR </td><td> 89000-300 </td><td></td></tr><tr><td> 30G agulha, hipodérmica 25 milímetros </td><td> Burkard Mfg Co. Ltd. </td><td> PDE0005 </td><td></td></tr></tbody></table>

o inseto<em&gt; galleria mellonella</em&gt; como um modelo de infecção poderosa para investigar patogênese bacteriana

The Insect Galleria mellonella as a Powerful Infection Model to Investigate Bacterial Pathogenesis

O estudo da virulência bacteriana requer frequentemente um modelo animal adequado. Modelos de mamíferos de infecção são caros e pode levantar questões éticas. O uso de insetos como modelos de infecção proporciona uma alternativa valiosa. Comparado com outros hospedeiros não vertebrados modelo tais como nemátodos, insectos têm um sistema relativamente avançado de defesas antimicrobianas e são por isso mais susceptíveis de produzir a informação relevante para o processo de infecção de mamíferos. Como mamíferos, insetos possuem um sistema complexo imune inata 1. As células na hemolinfa são capazes de encapsular ou fagocitando invasores microbianos, e as respostas humorais incluem a produção induzida de lisozima e pequenos péptidos antibacterianos 2,3. Além disso, as analogias são encontrados entre as células epiteliais do intestino médio de insectos e larvas de células intestinais de sistemas digestivo de mamíferos. Por fim, vários componentes básicos essenciais para o processo de infecção bacteriana, como a adesão celular, a resistência àpéptidos antimicrobianos, a degradação do tecido e de adaptação ao stress oxidativo são susceptíveis de ser importante, em ambos os insectos e mamíferos 1. Assim, os insectos são ferramentas polivalentes para a identificação e caracterização de factores de virulência microbianas envolvidas em infecções de mamíferos. As larvas de traça da cera maior Galleria mellonella foram mostrados para fornecer uma visão útil para a patogénese de uma grande variedade de infecções microbianas, incluindo fungos de mamíferos (Fusarium oxysporum, Aspergillus fumigatus, Candida albicans) e os agentes patogénicos bacterianos, tais como Staphylococcus aureus, Proteus vulgaris , Serratia marcescens Pseudomonas aeruginosa, Listeria monocytogenes ou Enterococcus faecalis 4-7. Independentemente das espécies bacterianas, os resultados obtidos com Galleria larvas infectadas por injecção directa através da cutícula consistentemente correlacionados com aqueles de simiLar estudos de mamíferos: estirpes de bactérias que são atenuadas em modelos de mamíferos demonstram menor virulência em Galleria, e as tensões que causam graves infecções humanas são também altamente virulenta no modelo Galleria 8-11. A infecção oral de Galleria é muito menos utilizada e adicional de compostos, como as toxinas específicas, são necessárias para atingir a mortalidade. Larvas de G. mellonella apresentam várias vantagens técnicas: são relativamente grandes (larvas de último estádio antes pupação são cerca de 2 cm de comprimento e de peso mg 250), permitindo assim a injecção de doses definidas de bactérias, podem ser criados em várias temperaturas (20 ° estudos C a 30 ° C) e a infecção pode ser realizada entre 15 ° C e acima de 37 ° C 12,13, permitindo experiências que simulam um ambiente de mamíferos. Além disso, a criação de insetos é fácil e relativamente barato. Infecção das larvas permite monitorar a virulência bacteriana por vários meios, including cálculo de LD 50 14, a medida de sobrevivência bacteriana 15,16 e exame do processo de infecção 17. Aqui, descrevemos a criação dos insetos, abrangendo todas as fases de vida de G. mellonella. Nós fornecemos um protocolo detalhado de infecção por duas vias de inoculação: haemocoelic oral e intra. O modelo bacteriano utilizado no presente protocolo é uma Bacillus cereus, de agentes patogénicos Gram-positivos implicada na gastrointestinal, bem como em outros locais ou sistémicas graves infecções oportunistas 18,19.

Injecção intra haemocoelic de bactérias em G. mellonella foi provado muito útil para a identificação de factores de virulência muitas tratam de danos nos tecidos e a resistência a factores imunes inatas de vários agentes patogénicos humanos. Como exemplo, a figura 2A representa a mortalidade de insectos após a injecção de várias doses de B. cereus (bactérias de tipo selvagem e estirpes mutantes) 22. Figura 2B representa a sobrevivência após a infecção bacter...

Oral e intra infecção haemocolic de larvas de traça da cera<em&gt; Galleria mellonella</em&gt; É descrito. Este insecto pode ser utilizada para estudar factores de virulência de entomopatogênico bem como mamíferos bactérias oportunistas. Criação dos insetos, os métodos de infecção e exemplos de<em&gt; In vivo</em&gt; Análise são descritos.

O inseto<em&gt; Galleria mellonella</em&gt; Como um modelo de infecção poderosa para investigar Patogênese Bacteriana

O estudo da virulência bacteriana frequentemente requer um modelo animal adequado. Modelos mamíferos de infecção são dispendiosos e podem suscitar questões éticas. O uso de ...

O objetivo geral deste procedimento é infectar as larvas de insetos Galleria mellonella com bactérias patogênicas. Para isso, as larvas de insetos são levadas ao estágio de crescimento apropriado e uma solução bacteriana é preparada. Em seguida, a larva é infectada com as bactérias por meio de injeção intra-hemocélica ou alimentação forçada. A mortalidade larval é então monitorada ao longo de um período de 48 horas.A análise dos dados resultantes descreve a virulência bacteriana em um modelo de infecção com insetos. Os insetos apresentam a vantagem de possuir um sistema avançado de defesas antimicrobianas e, em particular, um sistema imunológico inato complexo, evitando assim os custos e questões éticas que podem surgir ao se utilizarem modelos de mamíferos. Os insetos oferecem um excelente modelo alternativo para infecções em mamíferos.Trabalhamos com as larvas da traça-da-cera, G me, que são relativamente grandes e podem ser utilizadas em estudos de infecção realizados entre 15 e acima de 37 graus. Para simular um ambiente de mamífero, Carina NI demonstrará o procedimento de criação e Elizabeth GME e Christophe Beon demonstrarão os protocolos de infecção. Todo o ciclo, do ovo à l

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Imunologia e Infecção

Este vídeo demonstra um método para estabelecer um modelo de infecção por Mycobacterium bovis nas larvas da mariposa-da-cera, Galleria mellonella. Uma cepa bioluminescente de Mycobacterium bovis BCG é injetada na hemolinfa da larva para estabelecer a infecção, e a bioluminescência é medida em intervalos predefinidos para estudar o progresso da infecção.

Uma técnica para estabelecer um modelo de infecção bacteriana em larvas de insetos

A larva da cera traça Galleria mellonella foi recentemente estabelecido como um modelo in vivo para estudar a infecção Legionella pneumophila. Aqui, nós demonstramos técnicas fundamentais para caracterizar a patogênese da Legionella nas larvas, incluindo a inoculação, a medida da virulência bacteriana e replicação, bem como extração e análise de hemócitos infectados.

Utilização de<em&gt; Galleria mellonella</em&gt; Como um organismo modelo para estudar<em&gt; Legionella pneumophila</em&gt; Infecção

Galleria mellonella serve como um modelo de invertebrados para candidíase disseminada. Aqui, detalhamos a infecção do protocolo e fornecer dados de apoio para a eficácia do modelo.

O modelo de infecção Waxworm Galleria mellonella para candidíase disseminada

Aqui, nós fornecemos um protocolo detalhado para um modelo de administração oral usando Galleria mellonella larvas e como caracterizar induzido inatas respostas imunes. Usando este protocolo, será capazes de usar a alimentação forçada método mellonella g. pesquisadores sem experiência prática.

Um modelo de administração Oral Galleria mellonella para respostas imunes Study Commensal-Induced inata

A Galleria mellonella foi recentemente estabelecida como um modelo de infecção reprodutível, barato e eticamente aceitável para o complexo Mycobacterium tuberculosis . Aqui nós descrevemos e demonstramos as etapas tomadas para estabelecer a infecção bem sucedida de G. mellonella com o Lux bioluminescente do Mycobacterium bovis BCG .

Uso do invertebrado Galleria mellonella como modelo de infecção para estudo do complexo Mycobacterium tuberculosis

Este estudo apresenta uma estrutura padronizada para otimizar os modelos de infecção por G. mellonella para uso na avaliação antimicrobiana pré-clínica. A aplicação de um modelo de G. mellonella como parte de um pipeline de desenvolvimento antimicrobiano pré-clínico pode diminuir o número de compostos ineficazes que progridem para ensaios clínicos.

Galleria mellonella como modelo de triagem antimicrobiana

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In vitro a formação de biofilme em um slide Câmara de 8 poços

Métodos de imagem de bioluminescência de infecções bacterianas em animais vivos são descritos. Patógenos são modificados para expressar luciferase permitindo que imagens de corpo inteiro óptico de infecções em animais vivos. Modelos animais podem ser infectados com patógenos luciferase expressar eo curso resultante de doença visualizadas em tempo real pela imagem de bioluminescência.

Usando a luciferase Infecções bacterianas Imagem em camundongos

Durante o processo de infecção, um passo fundamental é a adesão de patógenos com células do hospedeiro. Na maioria dos casos esta etapa de adesão ocorre na presença de estresse mecânico gerado pelo fluxo de líquido. Descrevemos uma técnica que apresenta tensão de cisalhamento como um parâmetro importante no estudo da adesão bacteriana.

Apresentando tensão de cisalhamento em o Estudo da adesão bacteriana

Aprenda a infectar larvas de Galleria mellonella com bactérias patogênicas para estudar fatores de virulência. Este modelo alternativo evita questões éticas de mamíferos e possui sistema imune inato complexo.

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