Name: A geração de linhas de células humanas estáveis com tetraciclina induzível (Tet-on) ou shRNA Expression cDNA (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-03-05T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 51 s
Description: Aprenda a gerar linhagens celulares humanas estáveis com expressão induzível de cDNA ou shRNA usando sistemas Tet-on. Este método permite controle reversível da expressão gênica em células difíceis de transfectar.

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Agradecemos a todos os membros de nosso laboratório para discussões úteis. Agradecemos Joanna Lisztwan e Christina Gewinner para a leitura crítica do manuscrito. Este trabalho foi financiado pela concessão BBSRC BB/I021248/1 e do Wellcome Trust concessão 090090/Z/09/ZAH é um Wellcome Research Trust companheiro de Desenvolvimento de Carreira no Câncer UCL Institute.

1. Clonagem de pcDNA6_TetR_IRES_blast <ol><li> Como ilustrado na Figura 3, realizar uma digestão parcial do plasmídeo pcDNA6/TR (V1025-20, Invitrogen) com as enzimas de restrição Xba I e Nco I para remover o gene TetR e o promotor da resistência blasticidina (BlastR) gene. Isolar o fragmento de 4,6 kb do vetor. </li><li> Para remover a sequência de poliadenilação do gene TetR, introduzir por PCR um local Xhol imediatamente a seguir ao codão de paragem do ADNc de TetR enquanto conservam o local Xbal na extremidade 5 &#39;do ADNc. Subclonar o fragmento resultante no pMigR1 17, usando as enzimas de restrição Xba I e Xho I para gerar o plasmídeo pMigR1_TetR. </li><li> Digerir o vector pMigR1_TetR com as enzimas de restrição Xba I e Nco I para libertar o fragmento TetR_IRES. Isolar o fragmento de 1,25 kb inserção. </li><li> Ligar o 4,6 kb pcDNA6/TR e os fragmentos de 1,25 kb TetR_IRES. Transform o produto de ligação em E. coli competentes e identificar a construção pcDNA6_TetR_IRES_blast desejado utilizando técnicas padrão de biologia molecular. </li></ol> 2. A geração de linhas celulares que expressem estavelmente TetR <ol><li> No dia 1, Semente 1x10 6 células por 10 cm de placa de cultura de tecido usando o seu meio de crescimento normal (por exemplo, DMEM suplementado com FCS a 10%). Semente de duas placas, uma para a transfecção com pcDNA6_TetR_IRES_blast, eo outro como controlo negativo para a selecção blasticidina. Certifique-se de utilizar o menor possível, e a passagem do meio de crescimento recomendado. </li><li> No dia 2, transfectar uma placa com 2 ug de pcDNA6_TetR_IRES_blast usando Fugene 6 (E2691, Promega), seguindo as instruções do fabricante. Não transfectar a segunda placa. </li><li> No dia 3, adicionar meio de crescimento normal contendo 5 blasticidina ug / ml de ambas as placas. Por favor, note que a concentração seleção ideal pode variar de uma linha determinada célula e força need a ser determinado de antemão. </li><li> No dia 4, dividir as células em 1/5, 1/25, 1/50 e 1/100 usando placas de 10 cm e o meio de crescimento normal contendo 5 mg / ml de blasticidina. Certifique-se de rotular adequadamente placas contendo células não transfectadas ou transfectadas. Preparar duas placas por diluição. </li><li> Verificar as células diária, assegurando que todas as células não transfectadas nas placas tenham morrido na primeira semana. Alterar meios de selecção a cada 2-3 dias. </li><li> Após 1-2 semanas, as colónias resistentes blasticidina devem começar a aparecer. Seleccionar placas contendo 5-50 colónias para garantir que as colónias individuais podem ser colhidos. </li><li> Quando as colónias atingiram um diâmetro de aproximadamente 5 mm (ou maior), o isolado de pelo menos 12 clones independentes utilizando cilindros de clonagem para escolher colónias únicas. Transferir cada clone a um poço separado de uma placa de cultura de tecidos de 24 cavidades. Quando confluentes, dividir as células de cada poço para um único poço de uma placa de cultura de tecidos de 6 poços. </li><li> Continue a cl culturaos de meios de selecção. Quando confluentes, células divididas de cada poço em dois poços individuais de uma placa de cultura de 6 poços tecido. </li><li> Para cada clone a ser testado, congelar um poço de células confluentes de células e colheita no outro poço de teste subsequente por immunoblotting. </li><li> Detectar TetR por Western blotting usando o anticorpo anti-rato monoclonal TET02 (MoBiTec GmbH). Recorde incluir um lisado da linha celular parental, como um controlo negativo. </li><li> Selecione três clones com a mais alta expressão TetR e expandir cada cultura clonal. Congele as existências de cada clone promissor o mais rapidamente possível. Finalmente, examinar os parâmetros biológicos moleculares e celulares de interesse, comparando as linhas celulares parentais com os clones que expressam TetR. Selecione o &#39;melhor&#39; clone com a mais alta expressão TetR que não apresentar quaisquer alterações nos parâmetros moleculares e celulares biológicos de interesse. </li></ol> 3. Teste piloto do PTER e PT-Rex DEST30 Vetores Expresseing shRNA ou cDNAs, Respectivamente <ol><li> Gerar pter plasmídeo com as inserções de Lentivirus como descrito 12. Construir pT-Rex DEST30 vector (12301-016, Invitrogen) contendo o ADNc de interesse, utilizando tecnologia de Gateway (Invitrogen). No caso de expressão de cDNA, a adição de uma etiqueta com o cDNA será posteriormente facilitar a detecção da proteína expressa de forma exógena. </li><li> Transitoriamente transfectar a linha celular parental de destino com DEST30 plasmídeos PTER ou pT-Rex (expressando tanto shRNAs ou cDNAs de interesse) utilizando o reagente de transfecção de escolha. Para os testes de plasmídeos de expressão de shRNA, garantir eficiências de transfecção elevadas podem ser alcançadas. </li><li> Colheita de células transfectadas e processo para imunotransf erência utilizando os anticorpos adequados, esperando detectar uma diminuição ou a superexpressão do seu gene de interesse. </li></ol> 4. A geração de linhagens de células estáveis ​​com tetraciclina induzível (Tet-on) Expressão de shRNAs ou ADNc utilizando PTER ou pT-Rex DEST30 Vetores </p&gt; <ol><li> No dia 1, sementes de 1x10 6 células do &#39;melhor&#39; TetR expressando clone por 10 cm de placa usando o seu meio de crescimento padrão enriquecida com soro certificada Tetraciclina-livre (por exemplo FBS da Invitrogen; 16000-014). Placa de uma semente para a transfecção com PTER (ou pT-Rex DEST30), e uma placa como controlo negativo para a selecção duplo. Certifique-se de usar o menor possível passagem. </li><li> No dia 2, transfectar uma placa com 2 ug de PTER (ou pT-Rex DEST30), utilizando Fugene 6. Não transfectar a segunda placa. </li><li> No dia 3, adicionar meio de crescimento normal contendo 5 ug / ml de blasticidina e 500 ug / ml de zeocina (ou 1 mg / ml de G418). </li><li> No dia 4, dividir as células em 1/5, 1/25, 1/50 e 1/100 usando placas de 10 cm e o meio de crescimento normal contendo 5 ug / ml de blasticidina e 500 ug / ml de zeocina (ou 1 mg / ml G418). Preparar duas placas por diluição. </li><li> Verificar as células diária, certificando-se que, dentro da primeira semana todas as células não transfectadas nas placas morreram.Alterar o padrão de meio de crescimento contendo blasticidina e zeocina (ou G418) a cada 3-4 dias. </li><li> Depois de 2-3 semanas, blasticidina / zeocina (ou blasticidin/G418) double colônias resistentes devem começar a aparecer. Selecione placas contendo entre 5 a 50 colônias de escolher colónias isoladas. </li><li> Quando as colónias atingiram um diâmetro de aproximadamente 5 mm (ou maior), usar cilindros de clonagem para escolher colónias únicas. Isolar, pelo menos, 24 clones individuais. Transferir cada clone a um poço separado de uma placa de cultura de tecidos de 24 cavidades. </li><li> Clones de cultivo em meio de manutenção contendo concentrações de blasticidina (5 ug / ml) e zeocina (250 ug / mL) [ou G418 (0,5 mg / ml)]. Quando confluentes, dividir as células de cada poço para um único poço de uma placa de cultura de tecidos de 6 poços. </li><li> Para cada clone a ser testado, dividida uma confluente poço de uma placa de 6 poços em três poços individuais de uma placa de 6 poços. Quando confluentes, congelar as células a partir de um poço. Usar os restantes dois poços para testar a tetraciclinae induzível expressão. Adicionar tetraciclina a uma concentração de 1 ug / ml a uma cavidade, deixando a tetraciclina segundo poço livre. </li><li> Após 24-96 horas de incubação com células de tetraciclina, a colheita e processamento de imunotransf erência utilizando anticorpos adequados. Tempos mais curtos de incubação de tetraciclina são recomendadas na triagem para a indução de expressão de ADNc, enquanto que os tratamentos mais longos de tetraciclina será necessário determinar shRNA mediada por depleção de proteínas endógenas. </li><li> Seleccionar, pelo menos, dois clones com o esgotamento desejado / superexpressão e expandir cada cultura. Congele as existências de cada clone promissor o mais rapidamente possível. Quando crescer Tet-em clones para experimentos certifique-se sempre de usar meios suplementados com tetraciclina livre de soro e os antibióticos de seleção respectivas concentrações em manutenção. </li></ol>

<ol><li>Postle, K., Nguyen, T. T., Bertrand, K. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nucleotide+sequence+of+the+repressor+gene+of+the+TN10+tetracycline+resistance+determinant%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">Nucleotide sequence of the repressor gene of the TN10 tetracycline resistance determinant.</a> Nucleic Acids Res. 12, 4849-4863 (1984).</li>
<li>Gossen, M., Bujard, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tight+control+of+gene+expression+in+mammalian+cells+by+tetracycline-responsive+promoters%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Tight control of gene expression in mammalian cells by tetracycline-responsive promoters.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 89, 5547-5551 (1992).</li>
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<li>Hergovich, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+MST1+and+hMOB1+tumor+suppressors+control+human+centrosome+duplication+by+regulating+NDR+kinase+phosphorylation%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Biol%22%5BJournal%5D)">The MST1 and hMOB1 tumor suppressors control human centrosome duplication by regulating NDR kinase phosphorylation.</a> Curr. Biol. 19, 1692-1702 (2009).</li>
<li>Hergovich, A., Lamla, S., Nigg, E. A., Hemmings, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Centrosome-associated+NDR+kinase+regulates+centrosome+duplication%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cell%22%5BJournal%5D)">Centrosome-associated NDR kinase regulates centrosome duplication.</a> Mol. Cell. 25, 625-634 (2007).</li>
<li>Kohler, R. S., Schmitz, D., Cornils, H., Hemmings, B. A., Hergovich, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+NDR%2FLATS+interactions+with+the+human+MOB+family+reveal+a+negative+role+for+human+MOB2+in+the+regulation+of+human+NDR+kinases%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Differential NDR/LATS interactions with the human MOB family reveal a negative role for human MOB2 in the regulation of human NDR kinases.</a> Mol. Cell Biol. 30, 4507-4520 (2010).</li>
<li>Vichalkovski, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NDR+kinase+is+activated+by+RASSF1A%2FMST1+in+response+to+Fas+receptor+stimulation+and+promotes+apoptosis%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Biol%22%5BJournal%5D)">NDR kinase is activated by RASSF1A/MST1 in response to Fas receptor stimulation and promotes apoptosis.</a> Curr. Biol. 18, 1889-1895 (2008).</li>
<li>Pear, W. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+and+rapid+induction+of+a+chronic+myelogenous+leukemia-like+myeloproliferative+disease+in+mice+receiving+P210+bcr%2Fabl-transduced+bone+marrow%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Efficient and rapid induction of a chronic myelogenous leukemia-like myeloproliferative disease in mice receiving P210 bcr/abl-transduced bone marrow.</a> Blood. 92, 3780-3792 (1998).</li>
</ol>

Não há conflitos de interesse declarados.

Cremos que os sistemas de Tet-on facilitar grandemente a análise da função dos genes, em particular em sistemas de células que são difíceis de manipular e / ou quando o gene manipulado é essencial para a sobrevivência da célula. Além disso, a capacidade de controlar a expressão de genes específicos por altamente Tet-em sistemas oferece a oportunidade de estudar funções de genes em estágios diferentes (por exemplo, durante a progressão do ciclo celular ou processos bem definidos de diferenciação). O método aqui apresenta...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome do reagente </td><td> Companhia </td><td> Número de catálogo </td><td> Comentários (opcional) </td></tr><tr><td> Soro fetal bovino (FBS) </td><td> Invitrogen </td><td> 16000-044 </td><td> Testado Tet-livre </td></tr><tr><td> Blasticidina </td><td> Invivogen </td><td> formiga-bl-1 </td><td></td></tr><tr><td> Zeocina </td><td> Invivogen </td><td> ant-zn-5 </td><td></td></tr><tr><td> G418 </td><td> PAA laboratórios </td><td> P31-011 </td><td> 100 mg / ml em meios </td></tr><tr><td> anti-TET02 </td><td> MoBiTec GmbH </td><td> TET02 </td><td> Use a 1/1000 a 1/2000 para WB </td></tr><tr><td> pcDNA6/TR </td><td> Invitrogen </td><td> V1025-20 </td><td></td></tr><tr><td> pT-Rex DEST30 </td><td> Invitrogen </td><td> 12301-016 </td><td></td&gt; </tr><tr><td> Tetraciclina </td><td> Sigma </td><td> 87128 </td><td> 2 mg / ml em etanol </td></tr><tr><td> Doxiciclina </td><td> Sigma </td><td> D9891 </td><td> 2 mg / ml em água </td></tr><tr><td> Cilindros de clonagem </td><td> Bellco Glass Inc. </td><td> 2090-00808 </td><td> reutilizável </td></tr></tbody></table>

a geração de linhas de células humanas estáveis ​​com tetraciclina induzível (tet-on) ou shrna expression cdna

Generation of Stable Human Cell Lines with Tetracycline-inducible (Tet-on) shRNA or cDNA Expression

Uma abordagem importante no campo da biologia celular de mamífero é a manipulação da expressão de genes de interesse em linhas de células seleccionadas, com o objectivo de revelar uma ou várias das funções do gene (s), utilizando sobreexpressão transiente / estável ou knockdown do gene de interesse. Infelizmente, para investigações biológicas de células diferentes esta abordagem não é apropriada quando as manipulações de resultado da expressão do gene em células de crescimento / proliferação defeitos ou diferenciação celular indesejada. Por isso, os investigadores têm adaptado a proteína do repressor de tetraciclina (TetR), a partir da E. coli de resistência à tetraciclina do operão 1, para gerar muito eficientes e apertado sistemas reguladores para expressar cDNAs em células de mamíferos 2,3. Em suma, TetR foi modificado para a iniciação ou bloco (1) de transcrição ligando-se ao operador de Tet-(TO) na região promotora com a adição de tetraciclina (Tet-off denominado sistema) ou (2) se ligam ao A em tele ausência de tetraciclina (Tet-on denominado sistema) (Figura 1). Dado o inconveniente de que o sistema Tet-off é necessária a presença contínua de tetraciclina (que tem uma semi-vida de cerca de 24 h em meio de cultura de tecido de células) o Tet-on sistema tem sido mais extensivamente optimizada, resultando no desenvolvimento de muito apertado e sistemas de vectores para a expressão de cDNA eficientes como usado aqui. Pouco tempo após o estabelecimento de interferência de RNA (RNAi) para knockdown do gene em células de mamíferos, quatro vectores que expressam hairpin RNAs curto (shRNAs) foram descritas em que a função muito semelhante ao siRNAs 5-11. No entanto, estas abordagens shRNA mediadas knockdown têm a mesma limitação quanto knockout estratégias convencionais, uma vez que a depleção estável não é exequível quando genes alvos são essenciais para a sobrevivência celular. Para superar essa limitação, van Wetering de et al. 12 modificou a expressão shRNA vetor pSUPER 5 </sup&gt;, inserindo um TO na região do promotor, o que lhes permitiu gerar linhas celulares estáveis ​​com tetraciclina induzível por depleção dos seus genes-alvo de interesse. Aqui, nós descrevemos um método para gerar eficientemente estável humano Tet-on linhas celulares que conduzem fiável ou sobre-expressão induzível ou depleção do gene de interesse. Usando este método, têm gerado com êxito Tet-em linhas de células que facilitou significativamente a análise da cascata de MST / hMOB / NDR centrossoma em 13,14 e 15,16 sinalização da apoptose. Neste relatório, descreve-nossos vectores de escolha, para além de descrever as duas etapas consecutivas de manipulação que são necessários para gerar de forma eficiente humano-Tet em linhas de células (Figura 2). Além disso, além de traçar um protocolo para a geração de Tet-humana em linhas de células, vamos discutir os aspectos críticos sobre os procedimentos técnicos e caracterização de Tet-nas células.

Um exemplo para a caracterização inicial de EPR-1 linhas celulares que expressem estavelmente TetR é mostrado na Figura 4. Note-se que todos os clones de EPR-1 expressar níveis variáveis ​​de TetR (comparar pistas 2 e 5), enquanto que a linha celular parental (que serve como controlo negativo) não exprime a proteína exógena TetR (Figura 4, pista 1). Esta variação na expressão entre TetR EPR-1-Tet em clones de células é esperado, uma vez que a expressão de plasmídeos expressando a TetR é...

Uma maneira rápida e simples para gerar linhas de células humanas com sobre-expressão de cDNA induzido e reversível ou shRNA mediada knock-down do gene de interesse. Este método permite aos investigadores linhas celulares de modo fiável e altamente reprodutível manipular que são difíceis de alterar pelos métodos de transfecção transiente ou convencionais knockdown / knockout estratégias.

A geração de linhas de células humanas estáveis ​​com tetraciclina induzível (Tet-on) ou shRNA Expression cDNA

A major approach in  the field of mammalian cell biology is the manipulation of the expression of  genes of interest in selected cell lines, with the aim ...

O objetivo geral deste procedimento é gerar linhagens celulares humanas estáveis com expressão induzível por tetraciclina de S-H-R-N-A ou CDNA. Primeiro, transfete as células-alvo com o plasmídeo de expressão tatar e selecione pela resistência ao blaster side. Em seguida, escolha colônias individuais e teste as células que expressam de forma estável a proteína repessora Tet.Em seguida, transfete o melhor clone expressor de teta com plasmídeos projetados para modular a expressão do gene alvo sob controle do elemento de resposta Tet na cultura. As células transfectadas sob seleção dupla devem então ter colônias isoladas escolhidas e triadas para os clones Teton desejados por meio de western blotting. Em última análise, os clones Teton resultantes podem ser utilizados para examinar o impacto de alvos específicos sobre parâmetros biológicos selecionados.Quem demonstrará o procedimento será um pós-doc no laboratório. Marty Gomez Martinez Gere um vetor que direcione a expressão do Repressor Tet e do gene de resistência à Blain a partir do mesmo promotor CMV em duas placas de cultura de tecidos de 10 centímetros semeadas com uma concentração de células de um por seis em meio de crescimento padrão, uma placa para transfeção com um plasmídeo de expressão de tatar e a outra como controle negativo para seleção com Blain. No dia seguinte, transfete uma placa com dois microgramas do plasmídeo de expressão de TTA utilizando o FU gene seis.Após seguir as instruções do fabricante, incubar a cultura durante a noite ao lado de ambas as placas. Após 24 horas, adicionar o meio de crescimento padrão contendo a concentração ideal de blastina para a linhagem celular experimental utilizada, colher as células e rotular placas de 10 centímetros para diluição seriada e prosseguir para o plaqueamento de duplicatas de diluição seriada utilizando meio de crescimento padrão contendo cinco microgramas por mililitro de blaster. Certifique-se de rotular adequadamente as placas contendo as células não ressecionadas ou as células transfectadas. Monitorar as células, observando especificamente que todas as células nas placas não ressecionadas morreram durante a primeira semana.Altere o meio de seleção a cada dois ou três dias após uma a duas semanas, quando aparecerem as colônias resistentes ao blaster soin. Selecione placas que contenham entre cinco e 50 colônias para garantir que colônias individuais possam ser isoladas quando atingirem um diâmetro de aproximadamente cinco milímetros. Isole pelo menos 12 clones independentes utilizando cilindros de clonagem para coletar colônias individuais.Transfira cada clone para um poço separado de uma placa de 24 poços para cultivar as células até a confluência. Recolha e transfira as células de cada colônia para poços individuais de uma placa de cultura de tecidos de seis poços. Continue a cultivar os clones em meio seletivo quando as culturas estiverem confluentes.Divida as células de cada poço em dois poços individuais de uma placa de cultura de tecidos de seis poços. Para cada clone a ser testado, congele um poço de células confluente. Recolha as células do segundo poço. Para avaliação da expressão da proteína tatar.Realize um western blot nas linhagens usando um lisado da linhagem celular parental como controle negativo para detectar a proteína tatar. Utilize o anticorpo monoclonal de camundongo anti Tet zero dois. Prossiga com a expansão das três linhagens com maior expressão de testar.Congele estoques gratuitos de cada clone promissor o mais rápido possível. Agora, as células clonais estão prontas para a análise dos parâmetros moleculares e celulares de interesse. Comparando as linhagens celulares parentais com os clones expressantes de tatar, selecione o melhor clone com a mais alta expressão de tatar que não apresente quaisquer alterações nos parâmetros moleculares e biológicos celulares de interesse.Gere plasmídeos PTER com inserções de HRNA de interesse. Construa também um vetor PT REX desk 30 contendo o cDNA de interesse utilizando a tecnologia Gateway. Transfete temporariamente a linhagem celular alvo parental com plasmídeos PTER ou P T-Rex S 30.Utilizando os reagentes de transfeção de escolha. Em seguida, colete as células transfectadas e avalie a expressão do gene alvo por imunoflorescência. No dia um, semeie duas placas do melhor clone que expressa tetraciclina usando meio de crescimento padrão suplementado com soro livre de tetraciclina certificado, em cultura durante a noite.No dia seguinte, transfectar apenas uma placa com dois microgramas do plasmídeo de expressão A-S-H-R-N-A ou CDNA utilizando FU gene seis. No terceiro dia, adicionar meio de crescimento padrão contendo cinco microgramas por mililitro de blastina e 500 microgramas por mililitro de eosina, ou blastina e G quatro 18. Em seguida, no quarto dia, dividir as células para criar placas duplicadas de diluições usando meio de crescimento padrão para seleção dupla.Verifique as células diariamente quanto à resposta de morte celular ao tratamento com antibiótico e reponha o meio a cada três a quatro dias. Após duas a três semanas, quando colônias resistentes duplas em zeína ou resistentes duplas em G-418 começarem a aparecer.Selecione as placas contendo de cinco a 50 colônias para escolher colônias isoladas e cultivá-las até que as colônias atinjam um diâmetro de aproximadamente cinco milímetros ou maior. Com cilindros de clonagem, escolha e transfira colônias isoladas para poços separados de uma placa de cultura tecidual de 24 poços. Incube os clones em meio contendo concentrações de manutenção de cinco microgramas por mililitro de blaster, soin e 50 microgramas por mililitro.Eosina ou blaster soin e G quatro 18. Quando confluentes, dividir as células de cada poço em um único poço de uma placa de cultura de tecidos de seis poços. Quando confluentes, dividir as células em três poços de uma placa de seis poços para cultivo até 100% de confluência.Congele as células de um poço para testar a expressão induzível, adicione um micrograma por mililitro de tetraciclina a um poço, deixando o segundo poço de células sem tetraciclina. Incube na ausência de tetraciclina por 24 a 96 horas, utilizando os tempos mais curtos para triagem da indução da expressão de CD NA e tempos mais longos para determinar o esgotamento mediado por S-H-R-N-A de proteínas endógenas. Em seguida, recolha as células e processe para imunoblotagem utilizando os anticorpos apropriados.Selecione pelo menos dois clones com o esgotamento ou superexpressão desejados e amplie cada cultura. Lembre-se de congelar estoques de cada clone promissor o mais rápido possível. Esta caracterização inicial de uma linhagem de células epiteliais retinianas humanas para expressão estável de tatar mostra que todos os clones RPE um expressam níveis variáveis de tatar.Conforme esperado, a linhagem celular parental RPE um não expressa a proteína tatar exógena. A variação na expressão de Tet R entre os clones celulares RPE um Teton reflete os sítios de integração do plasmídeo. Este experimento caracteriza clones celulares estáveis RPE um Teton que expressam RNAs direcionados contra a quinase MST três; três clones celulares foram escolhidos para análise adicional.Após assistir a este vídeo, você terá uma boa compreensão de como gerar linhagens celulares humanas estáveis com a expressão não regulada do seu RNA ou CDNA de interesse para pesquisa.

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Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Contribuição do factor de remodelação da cromatina ACF para E4orf4 morte celular induzida foi medida. O protocolo inclui a selecção de clones de células na qual o tratamento doxiciclina induz knockdown condicional do subunidades ACF Acf1 e SNF2h, e utilização do ensaio para medir DAPI E4orf4 morte celular induzida em linhas celulares indutíveis.

Preparação de linhagens de células para Knockdown condicional da expressão gênica e mensuração dos efeitos Knockdown em E4orf4 morte celular induzida por

Este vídeo demonstra o sistema de expressão gênica da tetraciclina, ou Tet-On, em um modelo de camundongo. Na presença de doxiciclina, um derivado da tetraciclina, o sistema Tet-On que consiste na proteína transativadora reversa controlada por tetraciclina é ativado e expressa o gene de interesse.

Expressão gênica baseada em sistema regulável por tet-on induzível in vivo: um sistema de expressão gênica induzido por tetraciclina para ativação da transcrição do gene alvo em modelo de camundongo

Este vídeo descreve o método de regulação da expressão gênica em células cultivadas por transfecção com um plasmídeo contendo um gene de interesse e um plasmídeo regulador. A expressão deste plasmídeo pode ser controlada pela tetraciclina ou seus análogos sintéticos, tornando este sistema um modelo útil para estudar a expressão gênica regulável.

Sistema Regulado Tet-Off Induzível: Um Método In Vitro para Modular a Expressão Gênica em Células Cultivadas Usando o Sistema Tetraciclina-Off

Aqui, nós utilizamos a transdução retroviral e transfecção concatemeric para criar uma linha celular que possa expressar os componentes de um vector lentiviral (LV) na ausência de tetraciclina. Este LV codifica GFP e é pseudotipado com glicoproteína, SVGmu, que é específico para um receptor em células dendríticas.

Uma linha de células Tetraciclina-regulado Produz Vetores Lentivirus alta titulação que visam especificamente as células dendríticas

Descreve-se aqui um novo método para gerar receptores de células T específicas para o antigénio (TCR) por emparelhamento a TCRα ou TCRβ de um TCR existente, possuindo a especificidade do antigénio de interesse, com hemichain complementar do repertório do receptor de células T periféricas. Os TCRs gerados de novo manter-antigénio com especificidade uma afinidade variável.

Gerando<em&gt; De Novo</em&gt; Antígeno-específica T Humano receptores celulares por Transdução retroviral de Centric Hemichain

Estudar canais iônicos através de um sistema heterólogo expressar tornou-se uma técnica nuclear em pesquisa biomédica. Neste texto, apresentamos um método eficiente tempo para conseguir uma expressão de canal iónico com força controlada através da realização de transfecção transiente, sob o controlo de um promotor indutível.

Controlável Expressão Ion Canal através de transfecção transiente Induzível

Este protocolo serve como um esquema para a criação de um sistema funcional de Tet-ON em linhas de células de câncer e sua utilização posterior, em especial para estudar o papel das proteínas derivado de células de tumor no recrutamento de monócitos/macrófagos para o microambiente do tumor.

Knockdown condicional de expressão gênica em linhas de células de câncer para estudar o recrutamento de monócitos/macrófagos para o microambiente do Tumor

Aqui nós apresentamos um protocolo para desenvolver um sistema inducible negativo dominante, em que qualquer proteína pode ser condicionalmente inativada pela superexpressão reversivelmente uma versão mutante dominante negativo dele.

Inibição de proteína inducible e reversível dominante-negativo (DN)

Aqui, apresentamos uma ferramenta que pode ser usada para estudar a modulação pós-transcricional de uma transcrição em células epiteliais alveolares primárias usando um sistema de expressão indutível acoplado a uma técnica de eletroporação de pipeta.

Sistema de expressão plasmídeamente controlado transcricionalmente para investigação da estabilidade das transcrições de mRNA em células epiteliais alveolares primárias

Neste protocolo, apresentamos um projeto experimental utilizando um sistema de knockdown condicional e um ensaio de formação de esfera adaptada para estudar o efeito da clusterina na haste dos GCSCs derivados do paciente. O protocolo pode ser facilmente adaptado para estudar tanto a função in vitro quanto in vivo de genes associados à haste em diferentes tipos de CSCs.

Ensaio de formação de esferas condicionais combinadas e ensaio de formação de esfera adaptada para estudar um gene associado à haste de células-tronco de câncer gástrico derivados do paciente

Aprenda a gerar linhagens celulares humanas estáveis com expressão induzível de cDNA ou shRNA usando sistemas Tet-on. Este método permite controle reversível da expressão gênica em células difíceis de transfectar.

A geração de linhas de células humanas estáveis ​​com tetraciclina induzível (Tet-on) ou shRNA Expression cDNA

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