9 de janeiro de 2013
Descrevemos métodos para live-célula vídeo de microscopia Candida albicans A fagocitose por macrófagos. Esses métodos permitem estágio específico de análise, migração de macrófagos, imersão, o reconhecimento e a maturação do fagossoma e revelar novos aspectos da fagocitose.
O objetivo geral deste procedimento é realizar um experimento de microscopia de vídeo de células vivas para estudar a fagocitose do patógeno fúngico humano candida albicans. Isso é realizado pela primeira cultura em candida albicans durante a noite, para que eles entrem em sua fase estacionária. O próximo passo é colocar os macrófagos J 7 74 em placas de imagem com fundo de vidro de 35 milímetros e cultivá-los durante a noite.
No dia seguinte, candida albicans são coradas com Zi sensível ao pH e as organelas ácidas dos macrófagos são coradas usando liso tracker red. A etapa final é fazer um vídeo do ensaio de fagocitose onde os macrófagos J 7 7 4 são cultivados com a candida albicans. Em última análise, o vídeo resultante pode mostrar a análise do estágio do Pacífico do reconhecimento da migração de macrófagos, engolfamento e maturação da zona FGA.
A principal vantagem dessa técnica sobre os métodos existentes, como a imunocitoquímica, é que a microscopia de vídeo ao vivo pode ser usada para quebrar as diferenças observadas em estágios individuais, como migração, engolfamento e maturação do fagossomo, que podem ser afetados. Diferencialmente, embora este método possa fornecer informações sobre a fagocitose do Canadá Acan. Também pode ser aplicado a outros sistemas, como outros patógenos, fagócitos, incluindo células dendríticas e neutrófilos.
Esta cultura requer preparação avançada de placas SC menos ágar U. Eles podem ser armazenados refrigerados, comece com a colocação do sorotipo candida albican, uma cepa CI quatro mais CLP 10 de estoques de glicerol armazenados a menos 80 graus Celsius em uma placa de ágar SC U. Incube a placa a 30 graus Celsius até que as colônias se formem, normalmente 48 horas.
Neste ponto, a placa pode ser armazenada a quatro graus Celsius até que esteja pronta para uso. Agora escolha uma única colônia e cultive-a em cinco mililitros, SCU ou médio durante a noite a 30 graus Celsius em um balancim ajustado a 200 RPM. Isso gerará candida albicans em fase estacionária.
Adicione 10 microlitros de candida albicans durante a cultura noturna a 990 microlitros de PBS em pH 7,4 e realize uma contagem de células usando um hemocitômetro para visualizar a candida albicans durante os ensaios de fagocitose corram 100 milhões de candida usando Zi por 10 minutos em temperatura ambiente no escuro. Em seguida, remova o fitzy não ligado lavando a candida albicans três vezes em PBS para lavar a centrífuga a 3000 vezes G por cinco minutos. Remova o estabilizante e suspenda novamente o pellet em um mililitro de PBS Reese.
Suspender o glóbulo final em PBS a uma concentração de 1 milhão de células por microlitro. Para este protocolo, preparamos uma cultura de macrófagos J 7 7 4 0,1 em frascos quadrados de cultura de tecidos de 75 centímetros em DMEM suplementado a 37 graus Celsius com 5% de dióxido de carbono do frasco. Descarte os macrófagos e transfira-os para um tubo Falcon Centrif de 50 mililitros.
Use os macrófagos a 600 vezes G por cinco minutos para obter um palato celular. Remova o supinato e ressuspenda o pellet em 10 mililitros de DM dmm suplementado antes da guerra. Agora conte as células usando um hemocitômetro e coloque 1 milhão de células em uma placa de imagem à base de vidro de 35 milímetros com dois mililitros de meio DMM suplementado.
Incube o prato durante a noite a 37 graus Celsius e com 5% de dióxido de carbono no dia seguinte. Antes da imagem, substitua o meio DMM suplementado por dois mililitros de meio independente de dióxido de carbono pré-aquecido contendo um micromolar de Liso tracker red DND 99 e os mesmos suplementos do dmm. A configuração do microscópio precisa incluir um estágio invertido e uma câmara ambiental aquecida a 37 graus Celsius e filtros de emissão de excitação para as manchas escolhidas sendo fitzy e trixy.
Neste exemplo, um núcleo de visão delta de precisão aplicada é utilizado. Primeiro ligue o aquecedor do microscópio para que a câmara de controle esteja quente a 37 graus Celsius. Em seguida, ligue o microscópio e o computador e carregue o software de imagem, monte a placa de imagem no microscópio stage e ajuste o foco para encontrar os macrófagos J 7 74 0,1.
Otimize a aparência das imagens trixi e DIC ajustando a porcentagem de luz transmitida e os tempos de exposição. Remova a placa de imagem e adicione 3 milhões de candida albicans manchadas à placa. Registre o tempo e devolva o prato ao palco, otimize a aparência das imagens fitzy, se necessário, e configure os pontos de interesse no software de imagem, se necessário.
Agora comece a imagem quando todos os pontos estiverem em foco e os canais estiverem otimizados. Capture imagens fitzy, trixi e DIC a cada minuto durante seis horas. Esta é a etapa mais crítica do procedimento.
É necessário levar tempo para configurar o microscópio corretamente. Se os filmes estiverem sub ou superexpostos ou se estiverem fora de foco, eles ficarão inutilizáveis e o experimento precisará ser repetido. Este vídeo representativo mostra a captação de candida albicans pela linha celular de macrófagos murinos J 7 74 0,1.
Durante um experimento de microscopia de vídeo de células vivas de seis horas, a candida albicans em verde foi corada usando o corante sensível ao pH fitsi, que foi extinto durante a acidificação do fagossomo de macrófagos. Confirmando assim quando a cândida foi internalizada, os compartimentos ácidos dos macrófagos foram corados com um corante fluorescente vermelho. Observe a variação no número de macrófagos J 7 74 0,1 individuais ingeridos neste experimento, 82% dos macrófagos J 7 74 0,1 engolfaram pelo menos uma célula de candida albican dentro das seis horas.
O número médio de candida albicans absorvidos por macrófago foi de 3,4, mas, curiosamente, os macrófagos podem ingerir até 16 células fúngicas. Os dados permitem a observação de macrófagos e candida albicans antes e durante o reconhecimento e absorção. Candida albicans hyer pode continuar a crescer dentro do macrófago, o que pode resultar em lise de macrófagos.
Depois de assistir a este vídeo, você deve ter uma boa compreensão de como realizar experimentos de microscopia de vídeo de células vivas usando candida albicans na linha celular semelhante a um micrófago J 7 7 4 0.1. Você deve ser capaz de configurar culturas noturnas de ambos os tipos de células e realizar um ensaio de fagocitose, o que permitirá a análise específica do estágio de reconhecimento e engolfamento da migração e também da maturação do fagossomo.
Este artigo descreve métodos para microscopia de vídeo de células vivas para estudar a fagocitose de Candida albicans por macrófagos. As técnicas permitem a análise específica de estágios da migração, reconhecimento, engolição e maturação do fagossoma dos macrófagos.
Live-cell video microscopy enables stage-specific analysis of phagocytosis, providing dynamic insights into host-pathogen interactions critical for target validation in anti-infective discovery. By resolving migration, engulfment, and phagosome maturation as distinct, quantifiable events, the method supports mechanistic de-risking of immunomodulatory candidates and enhances predictive confidence in early-stage immunomodulator screening. This approach addresses a key gap in static assays that fail to capture temporal dynamics of immune cell function, thereby improving translational relevance in antifungal and immunomodulator development pipelines.
The method integrates into the discovery continuum from target hit validation through lead optimization, providing mechanistic resolution that bridges phenotypic screening and preclinical efficacy assessment.