Name: Accelerated Diabetes Tipo 1 Indução em Ratos por transferência adotiva de diabetogênicos TCD4 + (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-05-06T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 27 s
Description: Aprenda a induzir diabetes tipo 1 em camundongos por transferência adotiva de células T CD4+ diabetogênicas. Este método rápido e reprodutível permite estudar a patogênese da doença e testar intervenções terapêuticas em apenas duas semanas.

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Agradecemos drs. Robert Bonneau e Neil Christensen pelos comentários úteis. Este trabalho foi apoiado pela Pennsylvania State University College of Medicine fundos.

1. Isolamento de células T de baço e linfonodos de BDC2.5 Mice <ol><li> Use 6 semanas de idade pré-diabéticos do sexo feminino BDC2.5 ratos como doadores de células T CD4 + diabetogênicos. Os ratos devem estar livre de diabetes, conforme determinado por medição de glucose na urina (ver abaixo). </li><li> Eutanásia cada rato usando asfixia CO 2 e remover o baço, axilar e braquial gânglios linfáticos sob condições estéreis. Para remover o baço, mergulhe a pele com álcool 70%, em seguida, cortar e retirar a pele. O baço será visível como um órgão de vermelho escuro sobre o lado esquerdo do rato. Adicione uma incisão de 1 cm no peritoneu utilizando as pequenas tesouras e agarrar suavemente o baço, no centro, com um par de pequenas pinças. Aparar cuidadosamente o tecido conjuntivo e gordura em anexo, tanto quanto possível, e remover o baço. </li><li> Recolha as baço e linfonodos em 10 ml de Meio Dulbecco&#39;s-Modified Eagle (DMEM), em um tubo cônico de 15 ml no gelo. </li><li> Prepara-se uma suspensão de células individuais utilizando the final de um estéril 10 ml êmbolo da seringa para pressionar suavemente os órgãos linfóides através de 70 filtros de celulares mM (um baço por peneira e 4-6 linfonodos por filtro) no mesmo tubo de 50 ml. </li></ol> Durante o processo, lavar cada filtro com um ml de DMEM várias vezes para maximizar a recuperação de células a partir do filtro. <ol start="5"><li> Transferir as células recolhidas a partir do tubo cónico de 50 ml para um tubo cónico de 15 ml e centrifugar a 300-400 x g durante 7 minutos à TA. </li><li> Para lisar as células vermelhas do sangue, descartar o sobrenadante, re-suspender as células em 5 ml de tampão de amónio-cloreto e potássio (ACK) (pH 7,2), e incubar a suspensão de célula ACK à TA durante 5 min. </li><li> Adicionar 10 ml de DMEM para a suspensão de célula ACK e centrifugar o tubo como acima. Lava-se a pelete celular uma vez com 10 ml de DMEM. </li></ol> 2. Separação de células de fluorescência-activated de diabetogênicos TCD4 + de BDC2.5 Mice <ol><li> Re-suspender as células em 5 ml FACS scontendo tampão e contar o número de células viáveis ​​(por microscopia de contraste de fase e um hemocitómetro) por exclusão do corante azul de tripano. </li><li> Usando tampão FACS, ajustar o volume da suspensão de células a 5 x 10 7 células / ml. Remover ~ 1 x 10 6 células por controle coloração (1 não mancha, três manchas individuais). Stain a amostra para CD4 transgénicos não activadas + células T com anti-CD4 (APC), anti-TCR Vβ4 (FITC) e (PE), os anticorpos monoclonais anti-CD62L (Acm) em um tubo de 15 ml. Realização da coloração celular, utilizando as concentrações de mAb sugeridas pelo fabricante durante 20-30 minutos a 4 ° C no escuro. </li><li> Lava-se a amostra e controles de manchas individuais com tampão FACS em&gt; 3x o volume da reacção de coloração. Centrifuga-se o tubo a 300-400 x g, remover o sobrenadante, e re-suspender as células em tampão de SCAF (1-2 x 10 7 células / ml de amostra de triagem e 300 ul para os controlos mancha individual) e armazenar em gelo até que o próximo passo. </li><li> Passar a amostra de células através de uma célula de 35 mMtubo de tampa de filtro para remover aglomerados de células. Classificar as amostras de CD4 + TCR Vβ4 + CD62L + células em um classificador de células com um operador treinado. Recolher as células classificadas em 3 ml de DMEM em um tubo de 15 ml. Permitir 2,5-3 horas, incluindo a configuração, para classificar 8 1,5 x 10 células (com o número aproximado de células obtidos a partir de três ratinhos dadores) a uma taxa de tipo de 2 x 10 4 eventos totais / seg. Esperar ~ 2,5 x 10 6 CD4 transgênicos não ativados + células T por rato após separação de células. </li><li> Registe o número absoluto de células classificadas no final do tipo e centrifugar para durante 7 minutos a 300-400 x g. Descartar o sobrenadante e ressuspender as células (2 x 10 6 células / ml) em fosfato estéril-salino tamponado (PBS) (Mg 2 + / Ca2 + livre) para a transferência adoptiva de células T. </li></ol> 3. Transferência adotiva de diabetogênicos TCD4 + de BDC2.5 Mice <ol><li> Usando uma seringa de 1 ml e uma agulha de calibre 18-1 ½, gentilmente re-suspender as células CD4 FACS-purificadas +Células T e carregar a seringa de 1 ml. Em preparação para a injeção, substitua o 18-1 ½ agulha de calibre com uma agulha de calibre 27 ½. </li><li> Expor 6-8 semanas de idade, do sexo feminino ratos destinatário NOD.SCID a uma lâmpada de aquecimento até que exibem comportamento de limpeza. </li><li> Conter em ratinhos receptores limitador e limpar a sua cauda com etanol a 70% (v / v) para desinfectar o local da injecção. </li><li> Injectar 1-2 x 10 6 células / murganho FACS classificados (em até 500 ul de PBS) em qualquer uma das veias laterais da cauda. </li></ol> Não force o êmbolo. Se a agulha está localizado apropriadamente na veia, a injecção terá lugar com quase nenhuma resistência. 4. Monitoramento Mice destinatário para hiperglicemia e DM1 <ol><li> Começando cinco dias após a transferência de células T, ratinhos receptores NOD.SCID são monitorados diariamente para glucose na urina elevada usando tiras reagentes (Bayer Diastix) de acordo com as instruções do fabricante. Ratos com duas urin consecutivoleituras electrónicos glicose&gt; 250 mg / dl são considerados diabéticos. </li></ol>

<ol><li>Makino, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Breeding+of+a+non-obese%2C+diabetic+strain+of+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Jikken+Dobutsu%22%5BJournal%5D)">Breeding of a non-obese, diabetic strain of mice.</a> Jikken Dobutsu. 29, 1-13 (1980).</li>
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<li>Delovitch, T. L., Singh, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+nonobese+diabetic+mouse+as+a+model+of+autoimmune+diabetes%3A+immune+dysregulation+gets+the+NOD%5BTitle%5D)+AND+%22Immunity%22%5BJournal%5D)">The nonobese diabetic mouse as a model of autoimmune diabetes: immune dysregulation gets the NOD.</a> Immunity. 7, 727-738 (1997).</li>
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</ol>

Todos os animais foram alojados na Penn State College of livre de patógenos instalação específica Medicine (SPF), de acordo com as diretrizes da Penn State Institutional Animal Care e do Comitê Use. Os autores declaram que não têm interesses financeiros concorrentes.

DM1 pode ser induzida em ratinhos receptores em diferentes eficiências de transferência adoptiva de células do baço inteiro ou subconjuntos de células T a partir de ratinhos NOD diabéticos ou ratinhos transgénicos para TCRs derivados de clones de células T diabetogênicas. Nós relatamos aqui um método reprodutível para induzir DM1 em camundongos receptores dentro de duas semanas a 100% de incidência, transferindo FACS-purificadas CD62L + BDC2.5 CD4 + células T transgênicos em camundongos NOD.SCID. <p class="jove_cont...

O ratinho NOD espontaneamente desenvolve a diabetes auto-imune e tem sido amplamente utilizada como um modelo animal para 1,2 T1D humano. Patogénese de DM1 em ratinhos NOD é caracterizada pela infiltração de, com início às 3-4 semanas de idade, dos ilhéus pancreáticos de Langerhans por macrófagos e células dendríticas, seguido de células T e B. Esta fase de não-destrutiva peri-insulite leva à destruição lenta e progressiva das células β pancreáticas produtoras de insulina, o que resulta em diabetes evidente por 4-6 meses de idade 3. A transferência de esplenócitos de 4,5, 6,7 ou CD4 + CD8 + 8,9 As células T de ratinhos NOD diabéticos têm mostrado mediar a diabetes em ratinhos NOD imunocomprometidos, indicando que as células T reactivas ilhotas desempenham um papel central na patogénese DM1. Dependendo das condições experimentais, desenvolveram diabetes em ratinhos receptores, lentamente, ao longo de várias semanas nestes estudos. Da mesma forma, vários clones de células T, derivadas por demorado e dispendiosocultura de células T diabetogênicas, têm sido relatados para mediar a diabetes várias semanas após a transferência para ratinhos receptores 7,10. Com a disponibilidade de ratinhos transgénicos que expressam TCR derivados de CD4 ou clones de células T CD8 + restritas diabetogênicas T, vários laboratórios têm subsequentemente demonstrado que as células T do baço de tais ratinhos eram capazes de transferir a diabetes aos receptores 11-13. Especificamente, os ratinhos NOD são BDC2.5 transgénico para a BDC2.5 TCR, que é específico para a cromogranina A, uma proteína em células beta pancreáticas 14-16. Transferência de in vitro ativado ou células do baço inteiro ou fracionado não-ativado a partir abertamente diabéticos ou pré-diabéticos BDC2.5 ratos transferidos diabetes em camundongos NOD neonatais ou imunodeficientes em diferentes eficiências 11,17-19. Nós descrevemos um método simples que utiliza transgênicos CD4 + purificadas células T de pré-diabéticos BDC2.5 ratos para induzir DM1 em camundongos receptores de alta eficiência e Consistency. Grandes números de células T naive, ilhotas CD4 + específicas para o antigénio são isolados a partir destes ratos por separação de células activadas por fluorescência (FACS) para CD4 + CD62L + células T que expressam a cadeia a de TCR Vβ4 transgénica. Células purificadas transgênicos T são então transferidos sem ativação em camundongos NOD.SCID, que carecem funcionais T e células B e são insulitis e diabetes livre de 20. Os ratinhos receptores são monitorados para elevadas concentrações de glucose na urina, indicando DM1, que se desenvolve rapidamente dentro de duas semanas após a transferência de células T. Em contraste com outros métodos que transferir células T com especificidades diabetogênicas heterogéneos, o nosso protocolo utiliza células T que expressam quase exclusivamente o diabetogénico BDC2.5 TCR FACS classificados CD4 +. Devido à sua homogeneidade, apenas um pequeno número de células T transferidas (~ 1x10 6 células / rato) são necessários para o desenvolvimento rápido T1D dentro de 2 semanas a 100% de incidência. Outra vantagem é que o nosso protocolo irradiation de ratos destinatário não é necessário, pois é para alguns outros métodos. Uma limitação potencial deste método é que ela não permite a investigação sobre a contribuição de ambas as células T CD8 em diabetes subconjuntos CD4 e CD8 das células T ou especificamente. O protocolo descrito irá ser útil para estudar o desenvolvimento rápido DM1, mediada por CD4 naive, monoespecíficos + células T, bem como estratégias terapêuticas para intervir na direcção das células Th específicas do antigénio da ilhota para o órgão alvo.

<table><tbody><tr><td>Camundongos transgênicos BDC 2.5 TCR NOD (NOD. Cg-Tg(Tcr&alpha; BDC 2.5, Tcr&#946; BDC 2.5)</td> <td>JAX</td><td>004460</td><td></td></tr><tr><td>NOD. Camundongos SCID (NOD. CB17-Prkdcscid/J)</td><td>JAX</td><td>001303</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM)</td><td>Themo Scientific</td><td>SH30022.01</td><td></td></tr><tr><td>Bayer Diastix</td><td>Fisher Scientific</td><td>AM2803</td><td></td></tr><tr><td>Tubos cônicos de 15 ml</td><td>Falcon</td><td>352095</td><td></td></tr><tr><td>Tubos cônicos de 50 ml</td><td>Falcon</td><td>352070</td><td></td></tr><tr><td>Pinças cirúrgicas estéreis Tesouras</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>pequenas estéreis Tesouras</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td>grandes estéreis</td></tr><tr><td>70 &mu; filtros de células m</td><td>Fisher Scientific</td><td>22363548</td><td></td></tr><tr><td>35 &mu; tubos de tampa de filtro de células m</td><td>BD Biosciences</td><td>352235</td><td></td></tr><tr><td>tampão</td><td></td><td></td> de cloreto de amônio-potássio (ACK) <td>0,15 M NH4Cl, 1 mM KHCO3, 0,1 mM Na2EDTA, pH 7,2 em dH2O</td></tr><tr><td>BD FACSFlowTM fluido de bainha</td><td>BD Biosciences</td><td>342003</td><td></td></tr><tr><td>tampão</td><td></td><td></td> <td>de coloração FACSPBS, 0,2 mM EDTA, 0,5% BSA/FCS, esterilizado com filtro</td></tr><tr><td>Microscópio</td><td></td><td></td><td></td>de contraste de fase</tr><tr><td>Azul</td><td></td><td></td><td></td>de tripano</tr><tr><td>Hemocitômetro</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Anti-CD4 (APC) mAb</td><td>Biolegend</td><td>1005616</td><td>clone RM4-5</td></tr><tr><td>Anti-TCR V&#946; 4 (FITC) mAb</td><td>BD Biosciences</td><td>553365</td><td>clone KT4</td></tr><tr><td>Anti-CD62L (PE) mAb</td><td>BD Biosciences</td><td>553151</td><td>clone MEL-14</td></tr><tr><td>Classificador de células</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td>e.g. BD FACSAria III</td></tr><tr><td>Lâmpada</td><td></td><td></td><td></td>de calor</tr><tr><td>Limitador</td><td></td><td></td><td></td></tr> de <tr><td>rato Seringas de 1 ml</td><td>Becton Dickinson</td><td>309602</td><td></td></tr><tr><td>18-1&frac12; agulhas de calibre (estéreis)</td><td>Becton Dickinson</td><td>305196</td><td></td></tr><tr><td>27&frac12; agulhas de calibre (estéreis)</td><td>Becton Dickinson</td><td>305109</td><td></td></tr></tbody></table>

accelerated diabetes tipo 1 indução em ratos por transferência adotiva de diabetogênicos tcd4 +

Accelerated Type 1 Diabetes Induction in Mice by Adoptive Transfer of Diabetogenic CD4+ T Cells

O diabético (NOD) do mouse não obesos espontaneamente desenvolve diabetes auto-imune após 12 semanas de idade e é o modelo animal mais estudada do ser humano diabetes tipo 1 (DM1). Estudos de transferência de células em ratinhos receptores irradiados têm demonstrado que as células T são fundamentais na patogénese T1D neste modelo. Descrevemos aqui um método simples para rapidamente induzir T1D por transferência adoptiva de purificada, as células T a partir de ratinhos NOD pré-diabéticos transgénicas para o receptor de células T específico de ilhota (TCR) BDC2.5 em ratinhos receptores NOD.SCID CD4 + primárias. As principais vantagens desta técnica são que o isolamento e transferência adoptiva de células T diabetogênicas pode ser concluída no mesmo dia, a irradiação dos destinatários não é necessária, e uma elevada incidência de DM1 é induzida dentro de 2 semanas após a transferência de células T. Assim, os estudos de patogénese e intervenções terapêuticas DM1 pode prosseguir a uma velocidade mais rápida do que com os métodos que se baseiam em populações heterogéneas de células T ou clonesderivados de ratinhos NOD diabéticos.

Os nossos resultados mostram o isolamento de células que expressam transgénicos BDC2.5 CD62L, o qual é crítico para as células T para a casa de órgãos linfóides secundários, tais como os nódulos linfáticos pancreáticas. Os resultados demonstram ainda a capacidade potente desta população de células T monoespecífico para transferir rápida e eficientemente a T1D ratinhos receptores NOD.SCID. Isolamento de células T CD4 + células T diabetogênicas BDC2.5 de ratinhos é mostrado na Figura 2...

Nós proporcionar um método reprodutível para induzir diabetes do tipo 1 (DM1) em ratinhos dentro de duas semanas pela transferência adoptiva de células T primárias de ilhéus, CD4 + específicas para o antigénio.

Accelerated Diabetes Tipo 1 Indução em Ratos por transferência adotiva de diabetogênicos TCD4 +

The nonobese diabetic (NOD) mouse spontaneously develops autoimmune diabetes after 12 weeks of age and is the most extensively studied animal model of ...

O objetivo geral deste procedimento é induzir rapidamente diabetes tipo 1 em camundongos por meio da transferência de células T diabetogênicas de camundongos transgênicos para camundongos que carecem de células T e B endógenas. Comece colhendo os baços e linfonodos dos camundongos doadores e purificando as células T positivas para CD4. Em seguida, transfira adotivamente as células T doadoras purificadas para camundongos receptores imunodeficientes.Em seguida, monitore os camundongos receptores quanto ao desenvolvimento de diabetes tipo 1. Em última análise, este protocolo pode ser utilizado para estudar a patogênese do diabetes e para investigar intervenções terapêuticas em comparação com outros métodos. A principal vantagem desta técnica de transferência de células T CD4 positivas BDC 2.5 para receptores não irradiados é o rápido e reprodutível desenvolvimento de diabetes tipo 1.Para doadores das células T positivas para CD4 diabetogênicas, utilize camundongos fêmeas pré-diabéticos de seis semanas de idade da linhagem BDC 2.5, previamente determinados como livres de diabetes por meio da medição da glicose na urina. Para remover o baço e os linfonodos, umedeça o pêlo com etanol a 70%, corte a pele e puxe-a para trás até expor os músculos dos membros anteriores. Próximo à base dos membros anteriores, devem ser visíveis dois linfonodos de cada lado. Segure cuidadosamente cada linfonodo com pinças pequenas e remova-o cortando o tecido conjuntivo.A seguir, faça um corte de um centímetro no peritônio utilizando a tesoura pequena. Agora, segure suavemente o baço no centro. Remova cuidadosamente o tecido conjuntivo e a gordura adjunta.Em seguida, remova o baço, o tecido adiposo, os baços e os nódulos linfáticos em 10 mililitros de DMEM sobre gelo. Com a extremidade do êmbolo de uma seringa estéril de 10 mililitros, pressione suavemente os órgãos linfoides através de um filtro celular de 70 micrômetros. Para obter uma suspensão de células simples.Lave cada peneira com um mililitro de DMEM várias vezes para maximizar a recuperação de células. Em seguida, transfira as células coletadas para um tubo cônico de 15 mililitros e centrifugue a 400 Gs por sete minutos. À temperatura ambiente, re suspenda o pellet celular em três mililitros de tampão CK.Agora, incube cada amostra à temperatura ambiente durante cinco minutos. Para lisar as hemácias, adicione 12 mililitros de DMEM e pelote as células por centrifugação. Lave o pellet celular uma vez com 10 mililitros de DMEM.Em seguida, suspendemos as células em cinco mililitros de tampão para coloração de fatores, e utilizamos um microscópio de contraste de fase e um hemocitômetro para contar o número de células viáveis. Remova agora cerca de um vezes 10 à sexta potência de células por controle de coloração. Também coramos as células com anticorpos monoclonais de camundongo para separar linfócitos T positivos para o CD4 transgênico não ativados.Incube todas essas amostras a quatro graus Celsius, no escuro, por 30 minutos. Agora, lave as células com três vezes o volume de coloração de tampão fax e re-suspenda as células em tampão fax, de um a dois vezes 10 à sétima células por mililitro para a amostra de separação e 300 microlitros para os controles de coloração simples. Em seguida, passe a amostra celular através de um tubo com tampa dotada de peneira celular de 35 micrômetros.Para remover agregados celulares, processe as amostras em um citômetro de células com um operador treinado. Permita cerca de três horas, incluindo o tempo de configuração, para classificar cerca de 1,5 vezes 10 à oitava de linfócitos T positivos para CD4 transgênicos naïve. Pode-se esperar cerca de 2,5 vezes 10 à sexta células por camundongo, e a taxa de classificação será de aproximadamente duas vezes 10 à quarta eventos por segundo em um equipamento como o BD Fox Aria. Colete as células classificadas em três mililitros de DMEM.Registre o número absoluto de células classificadas e as centrifugue por sete minutos. A 400 Gs, suspendemos os pellets celulares em solução salina tamponada com fosfato estéril para a transferência adotiva de linfócitos T. Utilizando uma seringa de um mililitro com agulha de calibre 18, ressuspenda suavemente as células T positivas para CD4 purificadas por fax.Carregue a seringa de um mililitro e, em preparação para a injeção, acople uma agulha de calibre 27 e meia ao êmbolo. Imobilize os camundongos receptores e limpe a cauda deles com etanol 70% para desinfetar o local da injeção. Em seguida, injete uma vez 10⁶ células T CD4 positivas purificadas por camundongo em uma das veias laterais da cauda.Ao realizar suas injeções na veia caudal, certifique-se de não forçar o êmbolo. Se a agulha estiver realmente dentro da veia, sua injeção deverá ocorrer com quase nenhuma resistência. A partir de cinco dias após a transferência de linfócitos T, monitore diariamente os camundongos receptores quanto ao desenvolvimento de diabetes tipo 1.Meça a glicose na urina utilizando tiras reagentes de acordo com as instruções do fabricante. Observe que camundongos com duas leituras consecutivas de glicose na urina superiores a 250 miligramas por decilitro são considerados diabéticos. Em um experimento típico, cada camundongo doador BDC 2.5 fornece cerca de duas vezes e meia 10 elevado a 6 células T CD4 positivas ingênuas transgênicas após a classificação celular; após a transferência adotiva de células T CD4 positivas diabetogênicas, os camundongos foram monitorados quanto às concentrações de glicose na urina.A transferência adotiva de pequenos números de células de camundongos doadores BDC 2.5 induziu diabetes tipo um em todos os receptores não skid até o dia 11. Quando realizada corretamente, esta técnica pode ser feita em aproximadamente oito horas, da coleta do órgão à transferência de linfócitos T.

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Imunologia e Infecção

Nosso protocolo foi desenvolvido para fornecer precisão e facilidade ilhotas ou células sob a cápsula renal de camundongos. Células estão concentradas em pelotas na tubulação final utilizada para o transplante de células sob a cápsula renal. A facilidade desta técnica reduz o estresse nas células e mouse.

Transplante de ilhotas pancreáticas para a cápsula renal de ratos diabéticos

Nós descrevemos a formação de neo-hepática ilhota em STZ (estreptozotocina) induzida ratos diabéticos por transferência de genes de Neurogenin3 (Ngn3) e betacelulina (BTC), utilizando ajudante dependente do vector adenoviral (HDAD) e reversão da hiperglicemia. O nosso método tem vantagens do ajudante dependente de vectores adenovirais com a sua grande eficácia na transdução in vivo e a expressão do gene de longa duração.

Neo-Islet Formação em fígado de ratos diabéticos por Helper dependente de Transferência de Gene adenoviral Vector Mediada

Este vídeo demonstra um método baseado em imagem para visualizar células beta transplantadas que expressam luciferase em um camundongo imunodeficiente diabético não obeso. A introdução de esplenócitos de um camundongo diabético leva à destruição progressiva das células beta, visualmente confirmada pelo declínio da luminescência após a introdução do substrato.

Imagem de células beta transgênicas em um camundongo imunodeficiente desafiado com esplenócitos diabéticos

Aqui, apresentamos um protocolo para induzir inflamação colônica em camundongos por transferência adotiva de células Taltas CD4+CD45RB singênicas para receptores deficientes em células T e B. As características clínicas e histopatológicas mimetizam as doenças inflamatórias intestinais humanas. Este método permite o estudo do início da inflamação colônica e da progressão da doença.

Indução de Murino inflamação intestinal por transferência adotiva de Effector CD4<sup&gt; +</sup&gt; CD45RB<sup&gt; Alta</sup&gt; Células T em imunodeficientes Mice

Este artigo descreve um protocolo para a geração de pilhas CD8 T antígeno-específicas, e sua expansão in vitro, com o objetivo de render números elevados de pilhas de T funcionais para o uso in vitro e in vivo.

Geração de alta eficiência de células T Cytotoxic do rato preliminar antígeno-específico para o teste funcional em um modelo auto-imune do diabetes

Neste protocolo, é descrito um modelo de colite de transferência de células T específica de microbiota intestinal. As células T CD4+ são isoladas de camundongos transgênicos CBir1 TCR. Estes são específicos para um antígeno de microbiota intestinal imunodominante CBir1 flagellin, que é transferido para camundongos Rag1-/- receptores, levando à inflamação intestinal.

Indução da Inflamação Intestinal por Transferência Adotiva de Células CD4+ T Transgênicas CBir1 T para camundongos imunodeficientes

Este protocolo descreve um método simples e minimamente invasivo para transplante e obtenção de imagens de células NIT-1 em camundongos imunodeficientes combinados não-obesos diabéticos (NOD)-graves desafiados com esplenócitos purificados de camundongos NOD espontaneamente diabéticos.

Monitoramento Bioluminescente da Sobrevida do Enxerto em Modelo de Transferência Adotiva de Diabetes Autoimune em Camundongos

Fornecemos um protocolo minimamente invasivo para o transplante intramuscular de ilhéus de células-tronco pancreáticas derivadas de células-tronco humanas em camundongos imunodeficientes, para implantação in vivo e análise posterior.

Transplante Intramuscular de Células Endócrinas Pancreáticas Derivadas de Células-Tronco Humanas Pluripotentes em Camundongos

Ensaios de citotoxicidade para medir as respostas das células natural killer lítica de células infectadas pelo HIV é limitada pela pureza das células-alvo. Demonstramos aqui o isolamento de uma população altamente purificada de HIV-1 infectados primários de células T explosões tirando vantagem da capacidade do HIV-1 s para down-modular CD4.

Preparação e Uso de HIV-1 infectados CD4 + T-Primária células como as células-alvo em Ensaios Natural Killer Celular citotóxicos

Linhagens determinados são capazes de resistir a indução de encefalomielite autoimune experimental (EAE) com proteína básica de mielina. Descrito aqui é um simples protocolo de imunização que reverte a apatia e induz a doença paralítica em vários típicos EAE manchas resistentes do mouse.

Superando indiferença em Encefalomielite autoimune experimental (EAE) linhagens mais resistentes por transferência adotiva e desafio antigênico

Aprenda a induzir diabetes tipo 1 em camundongos por transferência adotiva de células T CD4+ diabetogênicas. Este método rápido e reprodutível permite estudar a patogênese da doença e testar intervenções terapêuticas em apenas duas semanas.

Accelerated Diabetes Tipo 1 Indução em Ratos por transferência adotiva de diabetogênicos TCD4 +

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