Name: Ensaios para Monitoramento juntamente redobramento de proteínas em Saccharomyces cerevisiae (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-07-09T12:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 52 s
Description: Aprenda a monitorar a ressolubilização e o reenrolamento de proteínas em Saccharomyces cerevisiae usando microscopia de fluorescência e ensaios enzimáticos. Este método permite quantificar a eficiência de reativação de enzimas desdobradas em tempo real.

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Este trabalho foi apoiado por uma bolsa da National Institutes of Health (NIGMS-074696) para KAM e uma Sociedade Americana de Microbiologia Robert D. Watkins Graduate Student Fellowship de Pesquisa de JLA Agradecemos também John Glover, da Universidade de Toronto para a prestação do FFL -GFP plasmídeo fonte.

1. Construção de variantes que contêm FFL-GFP plasmídeo Para este estudo, Saccharomyces cerevisiae BY4741 tensão (MAT a, his3Δ1, leu2Δ0, met15Δ0, ura3Δ0) foi utilizado juntamente com uma cepa de exclusão Hsp104 da coleção nocaute levedura (Abrir Biosystems / Thermo Scientific). A deleção foi confirmado utilizando um anticorpo específico de Hsp104 para análise de Western blot. FFL-GFP foi expresso a partir de p426MET25-FFL-GFP, construído a partir de uma fonte baseada em plasmídeo LEU2 obtido a partir do laboratório de Glover na Universidade de Toronto, 17 e que se obteria com os autores do pedido. A expressão da proteína GFP-FFL plasmídeo de fusão é controlada pelo promotor MET25 metionina-reprimível. O plasmídeo foi transformado em cada cepa usando um protocolo foi adaptado do Gietz et. al, 1995: <ol><li> Centrifugar 25 ml o<html> f as células em fase log em um tubo de 50 ml a 4400 rpm durante 2 min, lava-se com 500 ul de duplo H 2 0 destilada (ddH2O), e descartar sobrenadante. </li><li> Ressuspender as células em 250 ul de TE / LiAc (Tris-HCl 10 mM, pH = 7,5, EDTA 1 mM, 0,1 M de acetato de lítio). Incubar a 30 ° C sem mistura durante 20 min. </li><li> Transferir 50 uL de células competentes para um novo tubo, juntamente com 5 mL (50 ug) de ADN transportador e 5 ul (0,1-5 ug) do ADN do plasmídeo. Adicionar 300 uL de PEG / TE / LiAc (o mesmo que TE / LiAc acrescido de 40% de polietilenoglicol) a esta mistura, e as células a incubar a 30 ° C por mais 30 min. </li><li> Adicione 1/10 de volume (v / v) de DMSO (36 mL) a esta mistura e choque térmico a 42 ° C durante 6 min. </li><li> Centrifugar mistura a 6.000 rpm por 30 segundos e remove sobrenadante. Ressuspender as células em 100 ul de ddH 2 0 e células de chapa estéreis em meio sintético completo sem uracilo (SC-ura). </li></ol> 2. Indução de FFL-GFP nt &quot;&gt; FFL-GFP é induzida uma vez que as células estão na fase de log para a maioria da proteína antes de choque térmico foi recentemente feito para evitar que as proteínas agregadas terminais ao longo do tempo devido a deficiências associadas com o envelhecimento celular. <ol><li> Dia 1: Incubar as células em 5 ml de SC-ura a 30 ° C rotativa S / N. </li><li> Dia 2: Medida de DO600 e inocular culturas frescas em 5 ml de SC-URA 600 ~ 0,2 OD. </li><li> Incubar as culturas com rotação a 30 ° C até atingirem a fase de log de ​​0,8-1,0 OD 600 ~. </li><li> Centrifugar as células em tubos cónicos de 15 ml a 4400 rpm, durante 3 min, decanta sobrenadante e ressuspender o sedimento de células em 500 ul de ddH 2 0; solução de transferência para um tubo de microcentrífuga. </li><li> Centrifugar a 6.000 rpm e descartar sobrenadante. </li><li> Ressuspender as células em 5 ml de SC-URA-MET. As células devem ser incubadas rotativo neste meio durante 1 hora a 30 ° C. </li><li> Células centrífuga e lavagem de repetição em DDH 2 0 e descartar sobrenadante. </li><li> Resuspecélulas ª em 5 ml de mídia SC-Ura contendo 100 mg / ml de cicloheximida para inibir a expressão de proteínas e prosseguir imediatamente para a Etapa 3. </li></ol> 3. Enzimática FFL-GFP Ensaio de recuperação Este ensaio é um método quantitativo para determinar os níveis de enzima activa numa população. <ol><li> Preparação para este ensaio: <ol class="lroman"><li> Medir DO600 para cada amostra. </li><li> Preparar a quantidade necessária de D-luciferina necessário, com base no número de amostras e do número de repetições, mais cerca de 1200 ul de tubagem desejado. A concentração final de D-luciferina é de ~ 23 ug por 100 ul de células. Inicialmente, é dissolvido em água a uma concentração de solução de estoque de 7,5 mg / ml e diluído para 455 ug / ml em SC antes da experiência. Na Figura 2, três réplicas para cada amostra foram analisadas resultou num total de 2,4 ml de D-luciferina sendo usado. </li><li> Programa leitor de placa para o flash lumiensaio nescence (adaptado de BioTek Gen5 &quot;luminescência Ensaio do Flash com Injection&quot;, para outros instrumentos de seguir as instruções do fabricante) <ol class="lalpha"><li> Ajustar a temperatura a 30 ° C </li><li> Definir leitor de placas para adicionar D-luciferina, agitar e ler cada poço individualmente. </li><li> Leia luminescência (leitura de endpoint, 5 seg tempo de integração, 180 níveis de sensibilidade) </li><li> Para o ensaio de recuperação entre cada shake de leitura para 5 min, demora 20 min, e agitar um adicional de 5 min. </li><li> Pipetar 50 ul de D-luciferina a partir de um injector. </li></ol></li></ol></li><li> Luminescência Pré-aqueça-choque é medido imediatamente após as células são adicionadas ao meio contendo cicloheximida para interromper a síntese de proteínas. <ol class="lroman"><li> Transferir 100 uL de células para cada amostra com o número desejado de repetições em uma placa de 96 poços branca sólida. </li><li> Os controlos devem incluir um espaço em branco de água e as células contendo um vetor vazio. </li><li> Inicie a leitura com o SPEcações acima listadas. </li></ol></li><li> Para desnaturar a porção de FFL FFL-GFP, incubar a 5 ml de cultura num tubo de cultura de vidro a 42 ° C com agitação durante 25 min. </li><li> Recuperação de leituras do ensaio de luminescência começar imediatamente após as células são removidas da incubadora, o que é o ponto de tempo zero. Medida luminescência mesmo como descrito acima para o primeiro ponto de tempo e a cada 30 min durante 90 min. </li><li> Normalizar amostras para pré-aquecer-choque valores de luminescência que foram atualizadas com base na OD 600 (dividir os valores pré-aquecer-choque por OD 600). </li></ol> 4. Microscopia por fluorescência Este ensaio é um método semi-quantitativo para determinar a solubilização de agregados ao longo do tempo, numa população de células. <ol><li> A indução é o mesmo como descrito na secção 2, Passos 1-8 de protocolos. </li><li> Os mesmos pontos de tempo são tomados como descrito acima (secção 3, Passo 4), mas para microscopy recolher 1 ml de células de pré-aquecer-choque e cada ponto de tempo de recuperação e as amostras a incubar em rotação a 30 ° C num tubo de cultura. </li><li> Visualização: <ol class="lroman"><li> Centrifugar 1 ml de células a 6.000 rpm por 30 segundos e remove sobrenadante. </li><li> Ressuspender o pellet celular em 2 mL de DDH 2 O. </li><li> Misturar 2 pi de células mais 2 mL de 2% de agarose de baixo ponto de fusão sobre a lâmina e adicionar uma lamela de cobertura. De modo a obter um único plano em células pressionar ligeiramente o dedo para baixo no centro da lâmina de cobertura e rodar até que a lâmina de cobertura é difícil de se mover. </li><li> Células são visualizadas usando objectivo óleo 100X em microscópio fluorescente; usam DIC para visualizar as células e o filtro FITC para visualizar fluorescência da GFP. </li><li> Tirar várias fotos para cada estirpe em cada momento para a quantificação. Campos para fotos devem conter ~ 15-30 células para análise pós-experimental quantitativa. </li><li> Para calcular a porcentagem de células que contêm agregados, conte 50Células -100 total e dividir o número de células que contêm agregados. </li></ol></li></ol> 5. Microscopia de uma única célula Este método é utilizado para seguir a solubilização de agregados individuais numa única célula ao longo do tempo. <ol><li> Induzir a expressão FFL-GFP, conforme descrito na Seção 2, as etapas 1-8. </li><li> Depois de choque térmico, as células de centrífuga de 15 ml em tubo cônico de 4.400 rpm por 2 min. </li><li> Lavar as células com 500 ul de água e ressuspender em 20 ml de ddH 2 O. </li><li> Para cada estirpe, cortar uma secção de uma placa de agar SC-URA 5x5 mm e utilizando a superfície que esteve em contacto com uma placa de Petri, pipeta 4 ul de células e propagação em torno da superfície de agar com pipeta. Deixe repousar por ~ 1 min. </li><li> Use uma pinça para colocar seção cubo agar virado para baixo sobre a ~ 55 milímetros de vidro de fundo prato No. 0 e pressione levemente. </li><li> Visualização: <ol class="lroman"><li> Veja i-iii em Sectião 4. </li><li> Definir coordenadas para 2-4 pontos focais para cada cepa, dependendo da densidade da cultura. </li><li> Definir câmera para tirar fotos com um Z-stack com escala apropriada (- / + 15 mm, com uma espessura de corte de 0,5-1,0 mM) a cada 5 min, por um período de 90 min. </li></ol></li></ol>

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</ol>

Não há conflitos de interesse declarados.

Neste artigo, a proteína modelo FFL-GFP foi usado para mostrar que o disaggregase levedura, a proteína Hsp104 contribui para a re-solubilização e reparação. Os ensaios enzimáticos e microscopia diferencialmente interrogado o estado da mesma proteína substrato para determinar a eficiência de redobragem e rendimento. Os resultados dos ensaios enzimáticos sugerem que a recuperação não é só a recuperação máxima na estirpe mutante hsp104D ineficiente, mas o valor inicial da tensão de desdobramento foi maior na estir...

Nos seres humanos, incluindo distúrbios neurodegenerativos doença de Alzheimer e de Parkinson, e doença de Huntington tem sido associada ao enrolamento incorrecto e agregação das proteínas 10. Células empregar chaperones moleculares para evitar armadilhas cinética de proteínas celulares em estruturas inativas deformadas 6. As chaperonas participar em redes de interacção intrincados dentro da célula, mas não está completamente compreendido como a soma destas interacções contribui para Proteostase organismos. Uma das principais chaperonas responsáveis ​​pela maioria da dobragem de proteína citosólica é a 70 kD da proteína de choque térmico (Hsp 70) 19 família. Tem sido demonstrado que a perda de levedura de Hsp70 diminui a capacidade de dobrar nascente FFL heterologamente expressos e redobrar a proteína endógena, ornitina transcarbamilase, in vivo, 18, ​​7. A capacidade de analisar dobrável com resolução de tempo quase real irá facilitar a compreensão de como fatores de celular cont adicionalribute para este processo de Hsp70-dependente. Além disso, dobrando / redobrando reações podem não ser completamente dependente destas proteínas contribuem, de modo ensaios deve ser sensível o suficiente para detectar pequenas e grandes mudanças na cinética e eficiência. O disaggregase célula de levedura, Hsp104, desempenha um papel vital na reparação de proteínas deformadas agregados. Embora Hsp104 homólogos foram identificados em fungos e plantas, esta família parece estar ausente no metazoários. Tem sido proposto que outras chaperonas como os da família Hsp110 executar algumas das actividades conhecidas Hsp104 em mamíferos 16. Hsp104 é um +, complexo de proteínas hexamérica AAA que funciona em levedura para agregados de proteína remodelar, contribuindo para refolding e reparação 13. Hsp104, juntamente com a levedura de Hsp70, SSA1, ea levedura Hsp40, Ydj1, é necessária para a recuperação de FFL desnaturado em células de levedura 5, 8. A pequena proteína de choque térmico, Hsp26, também tem sido demonstrado ser requivermelho para a desagregação Hsp104 mediada por FFL 2. FFL é uma proteína de duas domínio que se liga ao substrato luciferina no local activo e sequência de uma alteração conformacional que requer ATP e de oxigénio, o substrato libertando decarboxylates oxiluciferina, o dióxido de carbono (CO 2), monofosfato de adenosina (AMP), e luz 11, 9, 3. O substrato comercialmente disponível FFL, D-luciferina, resulta em emissão de luz entre 550-570 nm, que podem ser detectadas usando um luminómetro 15. FFL é extremamente sensível à desnaturação de tratamentos e agregados rapidamente químicas ou calor em cima de desdobramento. Quando exposto a temperaturas entre 39-45 ° C FFL é reversível desdobrado e inativada 12. Em contraste, a GFP e seus derivados são altamente resistentes à proteína desdobramento tensões 14. Portanto fusão destas duas proteínas permite FFL para funcionar como uma unidade experimentalmente lábil capaz de atingir funcional LPF para depósitos intracelulares que podem ser visualizados por microscopia de fluorescência, tanto a população e os níveis de células individuais. Aplicação do ensaio enzimático num leitor de placas multimodo semi-automatizada juntamente com microscopia automatizada permite a avaliação simultânea sem precedentes de cinética e rendimento de reacções de redobramento. Além disso, a genética molecular fácil do modelo eucariota Saccharomyces cerevisiae permite tanto a manipulação precisa da rede de controlo de qualidade de proteínas e a oportunidade para que as abordagens baseadas em descoberta para identificar novos jogadores contribuem para a resposta ao stress celular e Proteostase. Neste estudo, os de tipo selvagem (WT) e Hsp104 supressão estirpes que expressam FFL-GFP estão sujeitas a desnaturação da proteína de choque térmico. FFL-GFP refolding é monitorado através de um ensaio de enzimática e microscopia como uma leitura proxy para reparação do proteoma expresso ao longo de um curso de tempo de recuperação. Quando comparadas com as células WT, vamos mostrar ºe Hsp104 tensão eliminação é de aproximadamente 60% ​​menos eficiente na redobrando FFL-GFP, apoiando resultados anteriores estabelecer um papel para Hsp104 na reativação da desnaturado FFL 2.

<table><tbody><tr><td colspan="4">Reagents</td></tr><tr><td>Synergy MX Microplate Reader</td><td>Microscópio</td> Confocal Invertido BioTek <td></td><td></td></tr><tr><td>Olympus IX81-ZDC</td><td>Olympus, Tóquio Japão</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Lumitrac 200 placas brancas de 96 poços</td><td>EUA Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>SlideBook 5.0 software de microscopia digital</td><td>Intelligent Imaging Innovations, Inc. Denver, CO, EUA</td><td></td><td></td></tr><tr><td colspan = "4" >Equipment</td></tr><tr><td>Tris Base</td><td>Fisher</td><td>BP152-1</td><td></td></tr> <tr><td>(LiAc) Acetato de Lítio</td><td>Sigma</td><td>L6883</td><td></td></tr><tr><td>PEG (polietilenoglicol)</td> <td>Fisher</td><td>BP233-1</td><td></td></tr><tr><td>EDTA Fisher</td><td></td><td>BP120-1</td><td></td></tr><tr><td>DMSO</td><td>Malinckrodt</td><td>4948</td><td></td></tr><tr><td>SC</td><td>Sunrise</td><td>1300-030</td><td></td></tr><tr><td>SC-URA</td><td>Sunrise</td><td>1306-030</td><td></td></tr><tr><td>cicloheximida</td><td>Acros Organics</td><td>357420050</td><td></td></tr><tr><td>D-luciferina</td><td>Sigma</td><td>L9504</td><td></td></tr><tr><td>baixa fusão agarose</td><td>NuSieve</td><td>50082</td><td></td></tr><tr><td>óleo de imersão</td><td>Cargille</td><td>16484</td><td></td></tr></tbody></table>

ensaios para monitoramento juntamente redobramento de proteínas em<em&gt; saccharomyces cerevisiae</em

Coupled Assays for Monitoring Protein Refolding in Saccharomyces cerevisiae

Proteostase, definidos como os processos combinados de proteína de dobragem / biogénese, redobragem / reparação e degradação, é um equilíbrio celular delicada que deve ser mantida para evitar consequências deletérias 1. Fatores externos ou internos que perturbam esse equilíbrio pode levar a agregação de proteínas, toxicidade e morte celular. Nos humanos este é um factor que contribui para os sintomas associados com doenças neurodegenerativas, tais como a doença de Huntington, doença de Parkinson, e doença de Alzheimer 10. Por conseguinte, é essencial que as proteínas envolvidas na manutenção da Proteostase ser identificados a fim de desenvolver tratamentos para estas doenças debilitantes. Este artigo descreve as técnicas para monitoramento de enovelamento de proteínas vivo na resolução de tempo quase real, utilizando o modelo de proteína firefly luciferase fundida a proteína verde fluorescente (GFP-FFL). FFL-GFP é um modelo de proteína quimérica única como o radical FFL é extremamente sensível ao stress induzido misfolding e agregação, que inactiva a enzima 12. A actividade da luciferase é monitorizada usando um ensaio enzimático, e a porção da GFP fornece um método de visualização FFL solúvel ou agregado usando microscopia automatizado. Estes métodos juntamente incorporar duas abordagens paralelas e tecnicamente independente para analisar tanto refolding e reativação funcional de uma enzima após o estresse. Recuperação da atividade pode ser diretamente correlacionada com a cinética de desagregação e re-solubilização para entender melhor como fatores de controle de qualidade de proteína, como chaperones proteína colaborar para executar essas funções. Além disso, as deleções ou mutações de genes podem ser usadas para testar as contribuições de proteínas específicas ou subunidades proteicas para este processo. Neste artigo, vamos examinar as contribuições da proteína disaggregase Hsp104 13, conhecida com a parceria com o fator de troca Hsp40/70/nucleotide (NEF) redobrando sistema 5, a proteína refolding para validar esta abordagem.

A levedura é dependente da disaggregase, Hsp104 redobrar eficientemente proteínas desnaturadas pelo calor. A atividade de FFL-GFP foi monitorado após um choque de 25 min de calor, através de um ensaio de flash luminescência Figura 1. Os resultados deste ensaio automático mostrado na Figura 2 revelou um aumento progressivo na actividade ao longo de 90 min, que levou a uma recuperação de&gt; 80% em células WT. A tensão hsp104Δ recuperou 19% da atividade original em relação ao mes...

Este artigo descreve o uso de uma luciferase de pirilampo-GFP proteína de fusão para investigar<em&gt; In vivo</em&gt; Dobramento de proteínas em<em&gt; Saccharomyces cerevisiae</em&gt;. Usando estes reagentes, redobrando de um modelo de proteína desnaturada pelo calor pode ser monitorizada por microscopia de fluorescência em simultâneo e um ensaio enzimático para sondar as funções dos componentes da rede Proteostase no controlo de qualidade de proteínas.

Ensaios para Monitoramento juntamente redobramento de proteínas em<em&gt; Saccharomyces cerevisiae</em

Proteostasis, defined as the combined processes of protein folding/biogenesis, refolding/repair, and degradation, is a delicate cellular balance that must ...

O objetivo geral deste procedimento é monitorar a ressolubilização e o refoldamento de proteínas in vivo em tempo quase real por meio de microscopia de fluorescência e ensaios enzimáticos. Isso é realizado primeiramente transformando células com um plasmídeo contendo luciferase de vagalume fundida à proteína verde fluorescente ou F-F-L-G-F-P. O segundo passo é induzir a expressão da proteína F-F-L-G-F-P, seguido pelo tratamento com cicloheximida para interromper a produção da proteína.Em seguida, meça a atividade da luciferase antes e durante um período de tempo após a desnaturação térmica. O passo final é visualizar as células para determinar a solubilidade da proteína F-F-L-G-F-P. Em última análise, a microscopia de fluorescência e ensaios enzimáticos são utilizadas para quantificar a eficiência da reativação de uma enzima desdobrada modelo em múltiplas linhagens.A principal vantagem desta técnica em relação a métodos existentes, como a análise de ponto final, é que é possível correlacionar a atividade da proteína com seu estado de agregação ao longo do tempo. Para determinar a relação entre esses dois fenômenos, este método pode ajudar a responder perguntas fundamentais na área

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Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Aqui nós descrevemos uma nova técnica proteômica quantitativa para a identificação de complexos de proteína em Saccharomyces cerevisiae. Neste estudo, nós utilizamos o método SILAC juntamente com purificação de afinidade seguido por espectrometria de massa para identificar com alta especificidade dos parceiros de ligação de uma proteína ER, Scs2p.

Identificação de complexos de proteínas com proteômica quantitativa em S. cerevisiae

Neste protocolo um método para medir refolding proteína intracelular após choque térmico é descrito. Este método pode ser usado para estudar foldases como chaperonas moleculares e seus co-fatores ou compostos capazes de influenciar a sua actividade. Firefly luciferase atividade é utilizado como repórter para medir a atividade refolding acompanhante.

Ensaio redobrando intracelular

Este vídeo descreve um ensaio de degradação para proteínas mal dobradas usando tratamento com cicloheximida junto com fracionamento de detergente. Este método ajuda a estudar a dinâmica de proteínas mal dobradas e a descobrir os mecanismos aprofundados de renovação de proteínas.

Ensaio de degradação de proteínas propensas a dobramento incorreto: uma técnica para monitorar a degradação de proteínas mal dobradas usando tratamento com cicloheximida e fracionamento de detergente

Para estudar a relação entre homeostase proteica, estresse e envelhecimento, monitoramos as mudanças no dobramento proteico acompanhando a disfunção proteica, a localização da proteína na célula e a estabilidade proteica nos níveis organismo, celular e proteico, usando o metazoário geneticamente tratável Caenorhabditis elegans como sistema modelo.

Usando Caenorhabditis elegans como um sistema modelo para estudar a homeostase de proteínas em um organismo multicelular

Este artigo descreve um ensaio baseado no crescimento de leveduras para a determinação dos requisitos genéticos para a degradação de proteínas. Ele também demonstra um método para extração rápida de proteínas de levedura, adequado para western blotting para confirmar bioquimicamente os requisitos de degradação. Essas técnicas podem ser adaptadas para monitorar a degradação de uma variedade de proteínas.

Determinação baseado no crescimento e confirmação bioquímica de Requisitos Genéticos para a degradação de proteínas em<em&gt; Saccharomyces cerevisiae</em

Apresentamos um protocolo detalhado para construir e rastrear bibliotecas mutantes para campanhas de evolução dirigida em Saccharomyces cerevisiae.

Dirigido Método Evolução<em&gt; Saccharomyces cerevisiae</em&gt;: Mutant Biblioteca Criação e Triagem

interações proteína estão no cerne da função de uma célula. calorimétrica técnicas espectroscópicas e são vulgarmente utilizados para os caracterizar. Aqui, descrevemos a anisotropia de fluorescência como uma ferramenta para estudar a interacção entre a proteína mutada na Síndrome Shwachman- diamante (SBDS) e o factor de alongamento como uma GTPase (EFL1).

Anisotropia de fluorescência como uma ferramenta para estudar as interações proteína-proteína

Este artigo descreve um protocolo fret-based do citometria do fluxo para quantificar o Self-assembly da proteína em células de S. cerevisiae e de HEK293T.

Detectando e caracterizando a auto-montagem da proteína in vivo por citometria de fluxo

Aqui, apresentamos um protocolo para o uso de substratos exibidos na superfície da levedura para ensaios de modificação enzimática. A plataforma foi demonstrada usando a análise da atividade de desfosforilação da tirosina fosfatase SHP-2 contra um de seus substratos como um ensaio de modificação enzimática representativa.

Modificação enzimática e avaliação por citometria de fluxo de proteínas exibidas na superfície de leveduras

Aqui, descrevemos um protocolo detalhado para a reassociação in vitro de subunidades ribossomal eucarióticas purificadas e lavadas com sal para a análise da formação de partículas 80S. Esse método é ilustrado pela análise de subunidades ribossomiais isoladas de uma cepa selvagem de Saccharomyces cerevisiae e de uma cepa mutante deficiente na proteína ribossomal eL24.

In Vitro Ensaio de reassociação para medir a formação de partículas ribossomais-80S usando subunidades ribossomicas lavadas com sal

Aprenda a monitorar a ressolubilização e o reenrolamento de proteínas em Saccharomyces cerevisiae usando microscopia de fluorescência e ensaios enzimáticos. Este método permite quantificar a eficiência de reativação de enzimas desdobradas em tempo real.

Ensaios para Monitoramento juntamente redobramento de proteínas em

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