Name: Transplante para a câmara anterior do olho para longitudinal, não-invasivo Em vivo Imaging com uma única célula de resolução em tempo real (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-03-10T14:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 54 s
Description: Aprenda o transplante de ilhotas pancreáticas na câmara anterior do olho de camundongo para imagem longitudinal não invasiva com resolução de célula única. Este método permite monitorar a viabilidade do enxerto por até 42 dias.

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Reconhecemos os drs. Camillo Ricordi, Antonello Pileggi, R. Damaris Molano, Stephan Speier e Daniel Nyqvist para discussões frutíferas. Agradecemos também Eleut Hernandez e Diego Espinosa-Heidmann para assistência técnica, e Mike Valdes e Margaret Formoso ajuda com gravação de vídeo. Byron Maldonado gravados, editados e produziu o vídeo final. Apoio à pesquisa foi fornecido pelo Instituto de Pesquisa do Diabetes Foundation ( <a href="http://www.DiabetesResearch.org" target="_blank">www.DiabetesResearch.org</a> ), o NIH / NIDDK / NIAID (F32DK083226 a MHA; NIH RO3DK075487 a AC; U01DK089538 para PO.B.). Apoio à pesquisa adicional para PO.B foi fornecido através de fundos do Karolinska Institutet, da Suécia Research Council, a Fundação Diabetes sueca, a Família Erling Persson-Fundação, a Família Knut e Alice Wallenberg Foundation, a Skandia Insurance Company Ltd., VIBRANTE ( FP7-228933-2), Programa de Pesquisa Estratégica em Diabetes no Karolinska Institutet, a Novo Nordisk Foundation e Fundação Berth von Kantzow de.

O procedimento seguinte é realizado sob a estereoscópio em 2 passos, o primeiro passo envolve o carregamento das ilhotas para dentro da cânula e a segunda etapa é o transplante de real no ACE. Todos os procedimentos realizados em animais foram aprovados pelo cuidado com os animais institucional e comissão de uso (IACUC), da Universidade de Miami. 1. Ilhotas de carga em cânula para Transplante <ol><li> Centro das ilhotas no prato de cultura girando o prato em círculos mais estreitos. </li><li> Desligar a cânula da &quot;reservatório&quot; e colocar a cânula eo tubo de ligação sobre uma superfície limpa. O reservatório pode ser feito de uma ponta de pipeta de plástico descartável 300 ul sem filtro (Figura 1a). </li><li> Lave as bolhas de ar para fora do reservatório para assegurar fluxo contínuo de ilhotas quando a aspiração no reservatório. A lavagem do reservatório é feito por impulsionar o mãos-livres motorizada seringa motorista usando o pedal(Figura 1b, c). Isto também irá criar espaço dentro da seringa para permitir que a aspiração das ilhotas para o reservatório (pré-carregado com uma solução estéril tal como a media salina, PBS ou cultura). </li><li> Aspirar cuidadosamente quantidade desejada de ilhotas para o reservatório. Ilhotas tenderá a rodar à medida que entram no reservatório e permanecerá em conjunto em direcção ao fundo. A aspiração é feita por condução motorizada para trás a seringa motorista usando o pedal. </li><li> Reconecte a cânula para o reservatório através da tubagem de ligação. </li><li> Colocar a ponta da cânula para trás na placa de cultura e lavar as ilhotas para fora do reservatório para dentro do tubo, em seguida, para dentro da cânula. Certifique-se de que as ilhotas permanecer juntos como de volta a encher o tubo / cânula suavemente &quot;sacudir&quot; (derivação) do tubo (Figura 1d). Parar, antes ou depois de todas as bolhas de ar antes de as ilhotas são lavadas para fora da cânula. Se não for claro, parar como ilhotas entrar na parte de trás da cânula enquanto o ar restantebolhas antes de ilhotas pode ajudar a prevenir o refluxo (retorno) de ilhotas fora da ACE. Dissipará durante a noite. </li><li> Nesta fase, você está pronto para injetar as ilhotas na ACE (por favor, consulte os passos seguintes). </li></ol> 2. Islet Transplantation dentro da câmara anterior do olho <ol><li> Posicione o mouse anestesiados em uma almofada quente sob estereoscópio. </li><li> Coloque o focinho do mouse em &quot;máscara&quot; anestesia ligado ao oxigênio / máquina de anestesia isoflurano. A máscara é feita de uma ponta de plástico descartável 1 ml pipeta (sem filtro), e ligada ao tubo da anestesia através da parte mais estreita (Figura 2a, b). </li><li> Gentilmente retrair as pálpebras do olho a ser transplantado utilizando o dedo indicador eo polegar de sua mão livre e &quot;pop&quot; do olho para fora para melhor exposição e fácil acesso (Figura 2c). Isso vai exigir um pouco de prática para aperfeiçoar sem impedindo a respiração do mouse por uma pressão excessiva sobre opescoço ou bloqueando o fluxo de sangue para a cabeça. </li><li> Utilizando uma seringa descartável de insulina (29 - 31G) como bisturi, com cuidado apenas a ponta penetrar na córnea e fazer uma única incisão lateral. Fazer a incisão no ponto médio entre o vértice da córnea e limbo para minimizar o refluxo dos ilhéus durante a injecção para fora do ACE (figura 2d). </li><li> Cuidadosamente inserir a cânula (pré-carregado com ilhotas) através da incisão. </li><li> Lentamente ejectar ilhotas para fora da cânula e depositá-los sobre a íris. Para evitar o refluxo de ilhotas devido à acumulação de pressão excessiva no ACE, ejectar as ilhotas de impulsos breves como pequeno volume (s) possível no quadrante oposto ao da incisão. Isto pode ser ainda assegurada por compactação ilhotas na tubagem durante o carregamento da cânula (por favor ver passo 1.6). </li><li> Lentamente retrair a cânula para fora da ACE. Este é um passo crítico, especialmente, se um grande volume de ilhotas foi injectado como refluxo islet devido à presse construir dentro da ACE pode ser inevitável. Para eliminar / minimizar refluxo ilhota, gire gentilmente a cânula enquanto dentro da ACE para liberar o excesso de pressão através da incisão ao redor da cânula. Verifique se há sinais de refluxo como você tentar retirar a cânula e, se necessário, aguarde até que desapareça completamente a pressão antes de retração da cânula para fora da ACE. </li><li> Lavar o olho transplantado com PBS estéril ou soro fisiológico. </li><li> Injectar buprenorfina para analgesia pós-operatória (0,05-0,1 mg / kg, por via subcutânea) a 48 h em primeiro lugar. </li><li> Aplicar pomada oftálmica antibiótico eritromicina ao olho transplantado imediatamente após o transplante. </li><li> Colocar o animal numa gaiola de volta aquecido para permitir a recuperação da anestesia. </li></ol>

<ol><li>Weigert, R., Sramkova, M., Parente, L., Amornphimoltham, P., Masedunskas, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intravital+microscopy%3A+a+novel+tool+to+study+cell+biology+in+living+animals%5BTitle%5D)+AND+%22Histochem.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Intravital microscopy: a novel tool to study cell biology in living animals.</a> Histochem. Cell Biol. 133 (5), 481-491 (2010).</li>
<li>Leibiger, I. B., Caicedo, A., Berggren, P. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Non-invasive+in+vivo+imaging+of+pancreatic+%3F-cell+function+and+survival+-+a+perspective%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Physiol.+%28Oxf%29%22%5BJournal%5D)">Non-invasive in vivo imaging of pancreatic ?-cell function and survival - a perspective.</a> Acta Physiol. (Oxf). , (2011).</li>
<li>Wang, Y., Maslov, K., Kim, C., Hu, S., Wang, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Integrated+photoacoustic+and+fluorescence+confocal+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22IEEE+Trans+Biomed.+Eng%22%5BJournal%5D)">Integrated photoacoustic and fluorescence confocal microscopy.</a> IEEE Trans Biomed. Eng. 57 (10), 2576-2578 (2010).</li>
<li>Ntziachristos, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Going+deeper+than+microscopy%3A+the+optical+imaging+frontier+in+biology%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Methods%22%5BJournal%5D)">Going deeper than microscopy: the optical imaging frontier in biology.</a> Nat. Methods. 7, 603-614 (2010).</li>
<li>Aswathy, R. G., Yoshida, Y., Maekawa, T., Kumar, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Near-infrared+quantum+dots+for+deep+tissue+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Bioanal+Chem%22%5BJournal%5D)">Near-infrared quantum dots for deep tissue imaging.</a> Anal. Bioanal Chem. 397 (4), 1417-1435 (2010).</li>
<li>Ghoroghchian, P. P., Therien, M. J., Hammer, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+fluorescence+imaging%3A+a+personal+perspective%5BTitle%5D)+AND+%22Wiley+Interdiscip+Rev.+Nanomed+Nanobiotechnol%22%5BJournal%5D)">In vivo fluorescence imaging: a personal perspective.</a> Wiley Interdiscip Rev. Nanomed Nanobiotechnol. 1 (2), 156-167 (2009).</li>
<li>Prescher, A., Mory, C., Martin, M., Fiedler, M., Uhlmann, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+FTY720+treatment+on+postischemic+pancreatic+microhemodynamics%5BTitle%5D)+AND+%22Transplant+Proc%22%5BJournal%5D)">Effect of FTY720 treatment on postischemic pancreatic microhemodynamics.</a> Transplant Proc. 42 (10), 3984-3985 (2010).</li>
<li>Leblond, F., Davis, S., Valdés, P., Pogue, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pre-clinical+whole-body+fluorescence+imaging%3A+Review+of+instruments%2C+methods+and+applications%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Photochem.+Photobiol.+B%22%5BJournal%5D)">Pre-clinical whole-body fluorescence imaging: Review of instruments, methods and applications.</a> J. Photochem. Photobiol. B. 98 (1), 77-94 (2010).</li>
<li>Toso, C., Vallee, J. P., Morel, P., Ris, F., Demuylder-Mischler, S., Lepetit-Coiffe, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinical+magnetic+resonance+imaging+of+pancreatic+islet+grafts+after+iron+nanoparticle+labeling%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Transplant%22%5BJournal%5D)">Clinical magnetic resonance imaging of pancreatic islet grafts after iron nanoparticle labeling.</a> Am. J. Transplant. 8 (3), 701-706 (2008).</li>
<li>Denk, W., Strickler, J. H., Webb, W. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two-photon+laser+scanning+fluorescence+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Two-photon laser scanning fluorescence microscopy.</a> Science. 248 (4951), 73-76 (1990).</li>
<li>Wang, B. G., Konig, K., Halbhuber, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two-photon+microscopy+of+deep+intravital+tissues+and+its+merits+in+clinical+research%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Microsc%22%5BJournal%5D)">Two-photon microscopy of deep intravital tissues and its merits in clinical research.</a> J. Microsc. 238 (1), 1-20 (2010).</li>
<li>Denk, W., Delaney, K. R., Gelperin, A., Kleinfeld, D., Strowbridge, B. W., Tank, D. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anatomical+and+functional+imaging+of+neurons+using+2-photon+laser+scanning+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci.+Methods%22%5BJournal%5D)">Anatomical and functional imaging of neurons using 2-photon laser scanning microscopy.</a> J. Neurosci. Methods. 54 (2), 151-162 (1994).</li>
<li>Cahalan, M. D., Parker, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Choreography+of+cell+motility+and+interaction+dynamics+imaged+by+two-photon+microscopy+in+lymphoid+organs%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Choreography of cell motility and interaction dynamics imaged by two-photon microscopy in lymphoid organs.</a> Annu. Rev. Immunol. 26, 585-626 (2008).</li>
<li>Khorshidi, M. A., Vanherberghen, B., Kowalewski, J. M., Garrod, K. R., Lindstrom, S., Andersson-Svahn, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+transient+migration+behavior+of+natural+killer+cells+imaged+in+situ+and+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Integr.+Biol.+%28Camb%29%22%5BJournal%5D)">Analysis of transient migration behavior of natural killer cells imaged in situ and in vitro.</a> Integr. Biol. (Camb). 3 (7), 770-778 (2011).</li>
<li>Matheu, M. P., Cahalan, M. D., Parker, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunoimaging%3A+studying+immune+system+dynamics+using+two-photon+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harb.+Protoc%22%5BJournal%5D)">Immunoimaging: studying immune system dynamics using two-photon microscopy.</a> Cold Spring Harb. Protoc. 2011, pdb.top99(2011).</li>
<li>Celli, S., Albert, M. L., Bousso, P. Visualizing the innate and adaptive immune responses underlying allograft rejection by two-photon microscopy. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aCelli%2C+S+%22Nat.+Med%22">Nat. Med</a>. , (2011).</li>
<li>Fan, Z., Spencer, J., Lu, Y., Pitsillides, C., Singh, G., Kim, P., et al. In vivo tracking of 'color-coded' effector, natural and induced regulatory T cells in the allograft response. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aFan%2C+Z+%22Nat.+Med%22">Nat. Med</a>. 16 (6), 718-722 (2010).</li>
<li>Sabek, O., Gaber, M. W., Wilson, C. M., Zawaski, J. A., Fraga, D. W., Gaber, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+of+human+islet+vascularization+using+a+dorsal+window+model%5BTitle%5D)+AND+%22Transplant+Proc%22%5BJournal%5D)">Imaging of human islet vascularization using a dorsal window model.</a> Transplant Proc. 42 (6), 2112-2114 (2010).</li>
<li>Coppieters, K., Martinic, M. M., Kiosses, W. B., Amirian, N., von Herrath, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+technique+for+the+in+vivo+imaging+of+autoimmune+diabetes+development+in+the+pancreas+by+two-photon+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">A novel technique for the in vivo imaging of autoimmune diabetes development in the pancreas by two-photon microscopy.</a> PLoS One. 5 (12), e15732(2010).</li>
<li>Martinic, M. M., von Herrath, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Real-time+imaging+of+the+pancreas+during+development+of+diabetes%5BTitle%5D)+AND+%22Immunol+Rev%22%5BJournal%5D)">Real-time imaging of the pancreas during development of diabetes.</a> Immunol Rev. 221, 200-213 (2008).</li>
<li>Mostany, R., Portera-Cailliau, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Method+for+2-Photon+Imaging+of+Blood+Flow+in+the+Neocortex+through+a+Cranial+Window%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">A Method for 2-Photon Imaging of Blood Flow in the Neocortex through a Cranial Window.</a> J. Vis. Exp. (12), e678(2008).</li>
<li>Palmer, G. M., Fontanella, A. N., Shan, S., Hanna, G., Zhang, G., Fraser, C. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+optical+molecular+imaging+and+analysis+in+mice+using+dorsal+window+chamber+models+applied+to+hypoxia%2C+vasculature+and+fluorescent%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">In vivo optical molecular imaging and analysis in mice using dorsal window chamber models applied to hypoxia, vasculature and fluorescent.</a> 6 (9), 1355-1366 (2011).</li>
<li>Jain, R. K., Munn, L. L., Fukumura, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dissecting+tumour+pathophysiology+using+intravital+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Cancer%22%5BJournal%5D)">Dissecting tumour pathophysiology using intravital microscopy.</a> Nat. Rev. Cancer. 2 (4), 266-276 (2002).</li>
<li>Taylor, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+response+of+capillary+endothelium+to+changes+in+intravascular+pressure%2C+as+seen+in+the+rabbit%27s+ear+chamber%5BTitle%5D)+AND+%22Aust.+J.+Exp.+Biol.+Med.+Sci%22%5BJournal%5D)">The response of capillary endothelium to changes in intravascular pressure, as seen in the rabbit's ear chamber.</a> Aust. J. Exp. Biol. Med. Sci. 31 (5), 533-543 (1953).</li>
<li>Shan, S., Sorg, B., Dewhirst, M. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+rodent+mammary+window+of+orthotopic+breast+cancer+for+intravital+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Microvasc.+Res%22%5BJournal%5D)">A novel rodent mammary window of orthotopic breast cancer for intravital microscopy.</a> Microvasc. Res. 65 (2), 109-117 (2003).</li>
<li>Speier, S., Nyqvist, D., Cabrera, O., Yu, J., Molano, R. D., Pileggi, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noninvasive+in+vivo+imaging+of+pancreatic+islet+cell+biology%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Med%22%5BJournal%5D)">Noninvasive in vivo imaging of pancreatic islet cell biology.</a> Nat. Med. 14 (5), 574-578 (2008).</li>
<li>Speier, S., Nyqvist, D., Kohler, M., Caicedo, A., Leibiger, I. B., Berggren, P. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noninvasive+high-resolution+in+vivo+imaging+of+cell+biology+in+the+anterior+chamber+of+the+mouse+eye%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">Noninvasive high-resolution in vivo imaging of cell biology in the anterior chamber of the mouse eye.</a> Nat. Protoc. 3 (8), 1278-1286 (2008).</li>
<li>Falck, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Site+of+production+of+oestrogen+in+the+ovary+of+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Site of production of oestrogen in the ovary of the rat.</a> Nature. 184, Suppl 14. 1082(1959).</li>
<li>Bickford-Wimer, P., Granholm, A. C., Bygdeman, M., Hoffer, B., Olson, L., Seiger, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+fetal+cerebellar+and+cortical+tissue+transplanted+to+the+anterior+eye+chamber+of+athymic+rats%3A+electrophysiological+and+structural+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Human fetal cerebellar and cortical tissue transplanted to the anterior eye chamber of athymic rats: electrophysiological and structural studies.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 84 (16), 5957-5961 (1987).</li>
<li>Adeghate, E., Donath, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morphological+findings+in+long-term+pancreatic+tissue+transplants+in+the+anterior+eye+chamber+of+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Pancreas%22%5BJournal%5D)">Morphological findings in long-term pancreatic tissue transplants in the anterior eye chamber of rats.</a> Pancreas. 5 (3), 298-305 (1990).</li>
<li>Abdulreda, M. H., Faleo, G., Molano, R. D., Lopez-Cabezas, M., Molina, J., Tan, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-resolution%2C+noninvasive+longitudinal+live+imaging+of+immune+responses%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">High-resolution, noninvasive longitudinal live imaging of immune responses.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. , (2011).</li>
<li>Unutmaz, D., Xiang, W., Sunshine, M. J., Campbell, J., Butcher, E., Littman, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+primate+lentiviral+receptor+Bonzo%2FSTRL33+is+coordinately+regulated+with+CCR5+and+its+expression+pattern+is+conserved+between+human+and+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">The primate lentiviral receptor Bonzo/STRL33 is coordinately regulated with CCR5 and its expression pattern is conserved between human and mouse.</a> J. Immunol. 165 (6), 3284-3292 (2000).</li>
<li>Pileggi, A., Molano, R. D., Berney, T., Cattan, P., Vizzardelli, C., Oliver, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heme+oxygenase-1+induction+in+islet+cells+results+in+protection+from+apoptosis+and+improved+in+vivo+function+after+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes%22%5BJournal%5D)">Heme oxygenase-1 induction in islet cells results in protection from apoptosis and improved in vivo function after transplantation.</a> Diabetes. 50 (9), 1983-1991 (2001).</li>
</ol>

PO.B. é um dos fundadores da empresa de biotecnologia Biocrine, que vai usar a câmara anterior do olho como uma plataforma de serviços comerciais. AC é sobre a patente proteger esta tecnologia.

Ilhéus pancreáticos de murino foram isolados usando a digestão com colagenase seguido por purificação em gradiente de densidade, tal como descrito previamente 33. Ilhotas isoladas foram cultivadas durante a noite antes do transplante. Embora isto possa não ser necessário, é recomendado para permitir que as ilhotas para recuperar do procedimento de isolamento. Isto é crítico, quando é realizado o transplante em receptores diabéticos uma vez que irá assegurar o transplante de ilhéus sobreviventes / robustas. </...

Os avanços na microscopia intravital revelaram fenómenos fisiológicos não preditos por estudos in vitro 1. Isto realça o desafio na tradução resultados obtidos por métodos in vitro convencional para o animal vivo. Na última década, a visualização de tecidos em animais vivos foi consideravelmente melhorada por avanços tecnológicos em modalidades de imagem 2, 3, 4, 5, 6. Isto estimulou a necessidade de abordagens de imagiologia in vivo, com aplicação possível em modelos animais experimentais, para permitir a visualização de tecidos-alvo longitudinal de forma não invasiva. Técnicas de imagem, como ressonância magnética e tomografia por emissão de pósitrons ou bioluminescência permitiram não-invasivas de órgãos / tecidos profundos dentro do corpo 7-8, 9. Mas estas técnicas não podem atingir única célula de resolução devido aos sinais de fundo elevados e de resolução espacial baixa, a despeito do uso of materiais de elevado contraste ou tecido específico 4 luminescência. Esta foi tratada com o advento de dois fotões microscopia de fluorescência confocal 10. Dois fótons de microscopia intravital habilitado estudos de imagem para visualizar e quantificar eventos celulares com detalhes sem precedentes 11, 12. Isto conduziu à caracterização dos principais processos biológicos na saúde e na doença de 13, 14, 15, 16. Embora os estudos de imagem pioneiras intravital têm essencialmente &quot;imitada&quot; em condições in vivo em tecido excisado (por exemplo, nódulos linfáticos), outros estudos usaram abordagens invasivas em tecidos-alvo de imagem expostos in situ 17, 18, ​​19, 20, 21. Outros estudos também têm utilizado &quot;modelos de janelas de câmara&quot; para contornar limitações associadas a abordagens invasivas e resolução de imagem limitada in vivo 22, 23, 24, 25. No modelo de câmara de janela, uma câmara com uma janela transparente é implantado cirurgicamente na pele em difelocais de rendas (pele dorsal ou na orelha, almofada de gordura mamaria, no fígado, etc) no animal (por exemplo, rato, rato, coelho). Enquanto esta abordagem é claramente facilitador de alta resolução em imagiologia in vivo, requer uma cirurgia invasiva para implante da câmara e pode não ser capaz de acomodar os estudos de imagem longitudinais ao longo de semanas ou meses 22. Recentemente, foi demonstrado que a combinação de alta resolução de microscopia confocal com um procedimento minimamente invasivo, isto é, o transplante para a câmara anterior do olho (ACE) fornece uma &quot;janela de corpo natural&quot;, como um. Poderosa e versátil in vivo plataforma de imagem 26, 27 O transplante para o ACE tem sido utilizado nas últimas décadas para estudar aspectos biológicos de uma variedade de tecidos 28, 29, 30, e sua combinação recente com alta resolução de imagem permitiu o estudo da fisiologia das ilhotas pancreáticas, com uma única célula de resolução não- invasiva e longitudinalmente &lt;sup&gt; 26, 27. Esta abordagem foi utilizada para estudar as respostas auto-imunes, durante o desenvolvimento de diabetes do tipo 1 em modelos animais (dados não publicados). Também foi usado para estudar o desenvolvimento do pâncreas, bem como, em estudos de função renal através do transplante de pâncreas em papilas ECA ou individuais nos glomérulos renais, respectivamente (dados não publicados). Um relatório recente usando essa abordagem demonstrou ainda a sua aplicação para estudar as respostas imunes após transplante de ilhotas de pâncreas 31. Importante, este estudo mostrou que o transplante para a câmara anterior do olho fornece uma janela natural do corpo para realizar: (1) longitudinal, de imagem não invasiva de tecidos transplantados in vivo, (2) in vivo cytolabeling para avaliar o fenótipo celular e da viabilidade em situ, (3) acompanhamento em tempo real do infiltrado de células imunitárias no tecido alvo, e (4) a intervenção local por aplicação tópica ou por injecção intraocular. Aqui, nós demonstrate como realizar o transplante para a câmara anterior do olho utilizando ilhotas pancreáticas.

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome do reagente </td><td> Companhia </td><td> Número de catálogo </td><td> Descrição / Comentários </td></tr><tr><td> IsoTHESIA (isoflurano) </td><td> Buttler Abastecimento Saúde Animal </td><td> 11695-6775-2 </td><td> 99,9% de isoflurano / ml </td></tr><tr><td> Ketaset (ketamina HCL) </td><td> Fort Dodge Animal Health </td><td> 0856-2013-01 </td><td> Anestesia injetável alternativa </td></tr><tr><td> Beprenex (buprenorfina HCL) </td><td> Reckitt Benckiser Saúde (UK) Ltd. </td><td> 12496-075-7-1 </td><td> 0,3 mg / ml </td></tr><tr><td> Eritromicina pomada oftálmica USP, 0,5% </td><td> Akron </td><td> 17478-070-35 </td><td> Aplicada profilaticamente a olho transplantado </td></tr><tr><td> Cloreto de Sódio a 0,9% (Solução salina) </td><td> Hospira Inc. </td><td> 0409-7983-03 </td><td> Para injecção iv. Estéril </td></tr><tr><td> PBS </td><td> Gibco </td><td> 10010-023 </td><td> 1X. Estéril </td></tr><tr><td> CMRL médio 1066 </td><td> Cellgro </td><td> 98-304 CV- </td><td> Complementada, modificação CIT. Meios preferidos para ilhotas </td></tr></tbody></table>

transplante para a câmara anterior do olho para longitudinal, não-invasivo<em&gt; em vivo</em&gt; imaging com uma única célula de resolução em tempo real

Transplantation into the Anterior Chamber of the Eye for Longitudinal, Non-invasive In vivo Imaging with Single-cell Resolution in Real-time

Intravital imagem surgiu como uma ferramenta indispensável na pesquisa biológica. No processo, muitas técnicas de imagiologia têm sido desenvolvidos para estudar diferentes processos biológicos em animais não-invasiva. No entanto, uma das principais limitações na técnica existentes modalidades de imagens intravital é a incapacidade de combinar não-invasivos de imagem, com as capacidades longitudinal de uma única célula de resolução. Mostramos aqui como o transplante para a câmara anterior do olho contorna limitação significativa tal que oferece uma plataforma versátil experimental que permite a não-invasivos de imagem, com a resolução longitudinal celular in vivo. Demonstramos o procedimento de transplante em ratinhos e proporcionam resultados representativos utilizando um modelo com relevância clínica, nomeadamente o transplante de ilhéus pancreáticos. Além de permitir a visualização directa de uma variedade de tecidos transplantados para a câmara anterior do olho, esta abordagem fornece uma plataforma para Screedrogas n realizando acompanhamento a longo prazo eo acompanhamento em tecidos-alvo. Devido à sua versatilidade o transplante, o tecido / célula para dentro da câmara anterior do olho, não só as terapias de transplante benefícios, estende-se a outras aplicações in vivo para o estudo de processos fisiológicos e patológicos tais como o cancro e a transdução do sinal ou o desenvolvimento da doença auto-imune.

Existem alguns parâmetros que definem um transplante &quot;bom&quot;. Um transplante é um bom que prossegue sem hemorragia ao fazer a incisão, como pode ser visto no vídeo. Sangramento é impedido / minimizada por penetrar apenas a ponta do bisturi (agulha) para dentro do ACE (figura 3a). Isso também irá ajudar a evitar o contato e punção da íris. Ele também irá garantir uma pequena incisão que vai curar muito bem sem causar nebulosidade da córnea ao longo do tempo (Figura 3c, d). Outro ...

Uma nova abordagem combinando transplantação intra-ocular e microscopia confocal permite longitudinal, não-invasivo de imagem em tempo real, com uma única célula de resolução dentro dos tecidos enxertados<em&gt; In vivo</em&gt;. Demonstramos como transplantar ilhéus pancreáticos para dentro da câmara anterior do olho do rato.

Transplante para a câmara anterior do olho para longitudinal, não-invasivo<em&gt; Em vivo</em&gt; Imaging com uma única célula de resolução em tempo real

Intravital imaging has emerged as an indispensable tool in biological research.  In the process, many imaging techniques have been developed to study ...

Olá, sou eu Doretta do Instituto de Pesquisa em Diabetes da Escola de Medicina Miller da Universidade de Miami. Neste vídeo, demonstrarei como transplantar ilhotas pancreáticas na câmara anterior do olho de camundongo. O procedimento envolve duas etapas.O primeiro passo é carregar os ilhotas pancreáticas isoladas na cânula, e o segundo passo é o procedimento real de transplante. Para obter detalhes sobre instrumentação e reagentes, consulte o texto acompanhante. Destacamos aqui o driver motorizado de seringa com a seringa acoplada e os acessórios do reservatório e da cânula, que serão focados no próximo vídeo.Começamos carregando as argolas na cânula. Todos os procedimentos são realizados sob o estereoscópio. Comece centralizando as argolas girando ou rotacionando o recipiente em círculos.Quando centralizado, desconecte a cânula do reservatório e elimine as bolhas de ar acionando o driver da seringa motorizada para a frente. Isso é feito pressionando o pedal para frente com o pé. Quando pronto, comece a aspirar os orifícios no reservatório movendo agora o driver da seringa motorizada na direção oposta.E novamente, isso é feito pressionando o pedal traseiro para trás. Observe como as olhais tendem a se acumular na parte inferior do reservatório. Em seguida, reconecte a cânula ao reservatório e ejetar as olhais para fora do reservatório.Em seguida, insira o tubo na cânula para desalojar os olhais do reservatório e incentivá-los a permanecerem compactados dentro do tubo. Bata levemente no reservatório enquanto avança com o driver de seringa motorizado. Observe quão compactados estão os olhais no tubo ao começarem a entrar pela parte traseira da cânula.Neste momento, você já deverá estar pronto para transplantar os fragmentos oculares. Coloque o camundongo de tamanho NS sobre uma superfície e exponha ou protruda o olho a ser transplantado puxando a pele da cabeça com o indicador e o polegar. Utilize uma agulha nova como bisturi.Aproxime-se do olho com a extremidade biselada voltada para baixo para evitar contato e lesão da íris. Introduza a ponta da agulha na córnea e faça uma incisão lateral. Em seguida, introduza a cânula, previamente carregada com pálpebras, na câmara interna através da incisão e comece a infundir as olivas na câmara novamente acionando o driver de seringa motorizado para frente.Não se preocupe com bolhas de ar que possam ficar presas dentro da cânula, pois elas desaparecerão posteriormente. Além disso, atuarão como uma barreira natural para minimizar ou impedir o refluxo das pálpebras para fora da câmara. Retire lentamente e com cuidado a cânula da câmara interna.Agora lave o olho com PBS estéril. Injete o analgésico de sua preferência e, finalmente, aplique pomada antibiótica oftálmica. O transplante está concluído.Agora apresentamos resultados representativos mostrando pálpebras pancreáticas transplantadas para a câmara interior do olho. Para estudos de imagem longitudinal dos olhinhos individuais no sétimo dia. Após o transplante, os olhinhos estão claramente enxertados sobre a íris no 28º dia.Os olhinhos estão nas mesmas localizações observadas anteriormente 42 dias após o transplante. Os olhinhos são claramente visíveis nas mesmas localizações. Observe também quão bem a incisão cicatrizou, eliminando qualquer possibilidade de interferência na obtenção de imagens dos olhinhos individuais.

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Research

JoVE Journal

Medicine

Medicina

acompanhamento ao vivo de células progenitoras da retina WT individuais em fundos genéticos distintos permite a avaliação da contribuição das células de sinalização não autónomo durante a neurogênese. Aqui, uma combinação de silenciamento de genes, através de transplante de geração quimera embrião e na imagiologia de lapso de tempo in vivo confocal foi utilizada para este propósito.

In vivo de imagens de Gene Transgenic Expressão em Individual Retinal Progenitores em embriões Zebrafish Quimérico para estudar celular Influências não-autônomos

Células epiteliais de pigmento retinal podem servir como uma terapia de reposição celular para a forma avançada de degeneration macular age-related seco. Este protocolo descreve a geração de um modelo de grandes olhos de atrofia geográfica e o subretinal transplante de células epiteliais de pigmento retinal embrionárias humanas células-tronco derivadas para este modelo de doença.

Subretinal transplante de células epiteliais de pigmento retinal derivado de células-tronco embrionárias humanas em um modelo de grandes olhos de atrofia geográfica

O objetivo do protocolo é mostrar longitudinal intravital acompanhamento em tempo real de timócitos por laser, microscopia em implantes do timo na câmara anterior do olho do rato. A transparência da córnea e vascularização do enxerto permitem gravar continuamente recrutamento de células progenitoras e egresso de células T maduro.

No Vivo controle de timócitos na Câmara Anterior do olho a Laser, microscopia eletrônica de varredura em tempo real

Apresentada aqui é uma plataforma microscópica multifotípica para imagens de superfície ocular de rato vivo. O camundongo transgênico fluorescente permite a visualização de núcleos celulares, membranas celulares, fibras nervosas e capilares dentro da superfície ocular. Sinais de segunda geração harmônica não lineares derivados de estruturas colágenas fornecem imagens sem rótulos para arquiteturas estromais.

Uma plataforma personalizada de microscopia multifotn para imagens ao vivo de córnea de rato e conjuntiva

A imagem in vivo é uma ferramenta poderosa para o estudo da biologia na saúde e na doença. Este protocolo descreve imagens transpupilares da retina de camundongos com um microscópio padrão de dois fótons. Também demonstra diferentes métodos de imagem in vivo para marcar fluorescentemente múltiplas coortes celulares da retina.

Imagem transpupilar de dois fótons in vivo da retina do rato

O protocolo apresenta uma nova ferramenta para simplificar a obtenção de imagens intravitais usando microscopia confocal invertida.

Abordagem simplificada de imagem intravital para monitoramento de longo prazo da dinâmica do tecido epitelial em um microscópio confocal invertido

Aqui, descrevemos uma plataforma que permite imagens in vivo não invasivas de esferoides hepáticos enxertados na câmara anterior do olho do camundongo. O fluxo de trabalho abrange desde a geração de esferoides de células hepáticas primárias até o transplante para o olho do camundongo e imagens in vivo em resolução celular por microscopia confocal.

Imagens in vivo de esferoides hepáticos enxertados na câmara anterior do olho do camundongo

Alta freqüência de ultra-som Doppler é uma nova tecnologia para avaliar a função miocárdica regional. Este trabalho apresenta primeira evidência demonstrando aplicabilidade desta plataforma de imagem versátil para a medida repetida de tensão do miocárdio, dp / dt, e regurgitação mitral na isquemia-reperfundidos coração (IR) murina.

De alta freqüência Ecocardiografia de alta resolução: primeira evidência de não-invasivos Medida repetida de Strain miocárdico, contratilidade, e regurgitação mitral no coração Isquemia-reperfundidos murino

Apresentamos um modelo de transplante renal de ratos para não-invasiva avaliar a rejeição do enxerto aguda usando tomografia por emissão de pósitrons com 18F-fluorodeoxyglucose.

Imagem não invasivo de rejeição do enxerto aguda após Rat Transplante Renal Usando<sup&gt; 18</sup&gt; F-FDG PET

Nós combinamos domínio da freqüência medidas espectroscopia no infravermelho próximo de oxigenação cerebral hemoglobina com medidas de correlação difusas espectroscopia de índice de fluxo sangüíneo cerebral para estimar um índice de metabolismo do oxigênio. Nós testamos a utilidade desta medida como uma ferramenta de triagem de cabeceira para avaliar a saúde e desenvolvimento do cérebro do recém nascido.

Não-invasivo de medição óptica do metabolismo cerebral e Hemodinâmica em Lactentes

Aprenda o transplante de ilhotas pancreáticas na câmara anterior do olho de camundongo para imagem longitudinal não invasiva com resolução de célula única. Este método permite monitorar a viabilidade do enxerto por até 42 dias.

Transplante para a câmara anterior do olho para longitudinal, não-invasivo Em vivo Imaging com uma única célula de resolução em tempo real (Vídeo) | JoVE Journal

Transplante para a câmara anterior do olho para longitudinal, não-invasivo

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