Name: Isolamento manual de células-tronco adiposo-derivadas de Lipoaspirates Humanos (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-09-26T20:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 23 s
Description: Aprenda a isolar células-tronco adiposo-derivadas de lipoaspirados humanos usando digestão enzimática com colagenase. Este método manual permite obter células viáveis para estudos de diferenciação e aplicações em medicina regenerativa.

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Os autores gostariam de reconhecer e agradecer aqueles pessoal adicional de pesquisa que contribuíram para o desenvolvimento do protocolo descrito e seu isolamento da ASC, incluindo: Dr. H. Peter Lorenz, MD, Dr. Hiroshi Muzuno, MD, Dr. Jerry Huang, MD , Dr. Adam Katz, MD, Dr. William Futrell, MD, Dr. Zhang Rong, DDS, PhD, Dr. Larissa Rodriguez, MD, Dr. Zeni Alfonso, PhD, e Dr. John Fraser, PhD. Os resultados apresentados foram financiados, em parte, por verbas de pesquisa dos Institutos Nacionais de Saúde, incluindo os NIAMS e Institutos NIDCR.

<ol><li>Zuk, P. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multi-lineage+cells+from+human+adipose+tissue%3A+implications+for+cell-based+therapies%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering%22%5BJournal%5D)">Multi-lineage cells from human adipose tissue: implications for cell-based therapies.</a> Tissue Engineering. 7 (2), 211-226 (2001).</li>
<li>Rodbell, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metabolism+of+isolated+fat+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Metabolism of isolated fat cells.</a> J. Biol. Chem. 239, 375-380 (1964).</li>
<li>Poznanski, W. J., Waheed, I., Human Van, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((fat+cell+precursors.+Morphologic+and+metabolic+differentiation+in+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Invest%22%5BJournal%5D)">fat cell precursors. Morphologic and metabolic differentiation in culture.</a> Lab Invest. 29 (5), 570-576 (1973).</li>
<li>Zuk, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adipose-derived+Stem+Cells+in+Tissue+Regeneration%3A+A+Review%5BTitle%5D)+AND+%22ISRN+Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Adipose-derived Stem Cells in Tissue Regeneration: A Review.</a> ISRN Stem Cells. , in press (2012).</li>
<li>Zuk, P. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+adipose+tissue+is+a+source+of+multipotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Biol.+Cell%22%5BJournal%5D)">Human adipose tissue is a source of multipotent stem cells.</a> Mol. Biol. Cell. 13, 4279-4295 (2002).</li>
<li>Mitchell, J. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunophenotype+of+human+adipose-derived+cells%3A+temporal+changes+in+stromal-associated+and+stem+cell-associated+markers%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Immunophenotype of human adipose-derived cells: temporal changes in stromal-associated and stem cell-associated markers.</a> Stem Cells. 24 (2), 376-385 (2006).</li>
<li>Oedayrajsingh-Varma, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phenotypical+and+functional+characterization+of+freshly+isolated+adipose+tissue-derived+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells+Dev%22%5BJournal%5D)">Phenotypical and functional characterization of freshly isolated adipose tissue-derived stem cells.</a> Stem Cells Dev. 16 (1), 91-104 (2007).</li>
<li>Yoshimura, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+freshly+isolated+and+cultured+cells+derived+from+the+fatty+and+fluid+portions+of+liposuction+aspirates%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Physiol%22%5BJournal%5D)">Characterization of freshly isolated and cultured cells derived from the fatty and fluid portions of liposuction aspirates.</a> J Cell Physiol. 208 (1), 64-76 (2006).</li>
<li>Zannettino, A. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multipotential+human+adipose-derived+stromal+stem+cells+exhibit+a+perivascular+phenotype+in+vitro+and+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Physiol%22%5BJournal%5D)">Multipotential human adipose-derived stromal stem cells exhibit a perivascular phenotype in vitro and in vivo.</a> J Cell Physiol. 214 (2), 413-421 (2008).</li>
<li>Chung, M. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CD90+%28Thy-1%29+Positive+Selection+Enhances+Osteogenic+Capacity+of+Human+Adipose-Derived+Stromal+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng+Part+A%22%5BJournal%5D)">CD90 (Thy-1) Positive Selection Enhances Osteogenic Capacity of Human Adipose-Derived Stromal Cells.</a> Tissue Eng Part A. , (2012).</li>
<li>Li, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adipogenic+potential+of+adipose+stem+cell+subpopulations%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg%22%5BJournal%5D)">Adipogenic potential of adipose stem cell subpopulations.</a> Plast Reconstr Surg. 128 (3), 663-672 (2011).</li>
<li>Rada, T., Reis, R. L., Gomes, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Distinct+stem+cells+subpopulations+isolated+from+human+adipose+tissue+exhibit+different+chondrogenic+and+osteogenic+differentiation+potential%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Rev%22%5BJournal%5D)">Distinct stem cells subpopulations isolated from human adipose tissue exhibit different chondrogenic and osteogenic differentiation potential.</a> Stem Cell Rev. 7 (1), 64-76 (2011).</li>
<li>Heydarkhan-Hagvall, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+Adipose+Stem+Cells%3A+A+Potential+Cell+Source+for+Cardiovascular+Tissue+Engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Cells+Tissues+Organs%22%5BJournal%5D)">Human Adipose Stem Cells: A Potential Cell Source for Cardiovascular Tissue Engineering.</a> Cells Tissues Organs. 187 (4), 263-274 (2008).</li>
<li>Jack, G. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Processed+lipoaspirate+cells+for+tissue+engineering+of+the+lower+urinary+tract%3A+implications+for+the+treatment+of+stress+urinary+incontinence+and+bladder+reconstruction%5BTitle%5D)+AND+%22J+Urol%22%5BJournal%5D)">Processed lipoaspirate cells for tissue engineering of the lower urinary tract: implications for the treatment of stress urinary incontinence and bladder reconstruction.</a> J Urol. 174 (5), 2041-2045 (2005).</li>
<li>Banas, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+hepatic+fate+specification+of+adipose-derived+stem+cells+and+their+therapeutic+potential+for+liver+failure%5BTitle%5D)+AND+%22J+Gastroenterol+Hepatol%22%5BJournal%5D)">Rapid hepatic fate specification of adipose-derived stem cells and their therapeutic potential for liver failure.</a> J Gastroenterol Hepatol. 24 (1), 70-77 (2009).</li>
<li>Schreml, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Harvesting+human+adipose+tissue-derived+adult+stem+cells%3A+resection+versus+liposuction%5BTitle%5D)+AND+%22Cytotherapy%22%5BJournal%5D)">Harvesting human adipose tissue-derived adult stem cells: resection versus liposuction.</a> Cytotherapy. 11 (7), 947-957 (2009).</li>
<li>Oedayrajsingh-Varma, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adipose+tissue-derived+mesenchymal+stem+cell+yield+and+growth+characteristics+are+affected+by+the+tissue-harvesting+procedure%5BTitle%5D)+AND+%22Cytotherapy%22%5BJournal%5D)">Adipose tissue-derived mesenchymal stem cell yield and growth characteristics are affected by the tissue-harvesting procedure.</a> Cytotherapy. 8 (2), 166-177 (2006).</li>
<li>Ahmad, J., Eaves, F. F., Rohrich, R. J. 3rd, Kenkel, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+American+Society+for+Aesthetic+Plastic+Surgery+%28ASAPS%29+survey%3A+current+trends+in+liposuction%5BTitle%5D)+AND+%22Aesthet+Surg+J%22%5BJournal%5D)">The American Society for Aesthetic Plastic Surgery (ASAPS) survey: current trends in liposuction.</a> Aesthet Surg J. 31 (2), 214-224 (2011).</li>
<li>Tierney, E. P., Kouba, D. J., Hanke, C. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Safety+of+tumescent+and+laser-assisted+liposuction%3A+review+of+the+literature%5BTitle%5D)+AND+%22J+Drugs+Dermatol%22%5BJournal%5D)">Safety of tumescent and laser-assisted liposuction: review of the literature.</a> J Drugs Dermatol. 10 (12), 1363-1369 (2012).</li>
<li>Mojallal, A., Auxenfans, C., Lequeux, C., Braye, F., Damour, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influence+of+negative+pressure+when+harvesting+adipose+tissue+on+cell+yield+of+the+stromal-vascular+fraction%5BTitle%5D)+AND+%22Biomed+Mater+Eng%22%5BJournal%5D)">Influence of negative pressure when harvesting adipose tissue on cell yield of the stromal-vascular fraction.</a> Biomed Mater Eng. 18 (4-5), 193-197 (2008).</li>
<li>Matsumoto, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influences+of+preservation+at+various+temperatures+on+liposuction+aspirates%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg%22%5BJournal%5D)">Influences of preservation at various temperatures on liposuction aspirates.</a> Plast Reconstr Surg. 120 (6), 1510-1517 (2007).</li>
<li>Francis, M. P., Sachs, P. C., Elmore, L. W., Holt, S. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolating+adipose-derived+mesenchymal+stem+cells+from+lipoaspirate+blood+and+saline+fraction%5BTitle%5D)+AND+%22Organogenesis%22%5BJournal%5D)">Isolating adipose-derived mesenchymal stem cells from lipoaspirate blood and saline fraction.</a> Organogenesis. 6 (1), 11-14 (2010).</li>
<li>Boquest, A. C., Shahdadfar, A., Brinchmann, J. E., Collas, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+stromal+stem+cells+from+human+adipose+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Isolation of stromal stem cells from human adipose tissue.</a> Methods Mol Biol. 325, 35-46 (2006).</li>
<li>Bunnell, B. A., Flaat, M., Gagliardi, C., Patel, B., Ripoll, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adipose-derived+stem+cells%3A+isolation%2C+expansion+and+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">Adipose-derived stem cells: isolation, expansion and differentiation.</a> Methods. 45 (2), 115-120 (2008).</li>
<li>Dubois, S. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+human+adipose-derived+stem+cells+from+biopsies+and+liposuction+specimens%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Isolation of human adipose-derived stem cells from biopsies and liposuction specimens.</a> Methods Mol Biol. 449, 69-79 (2008).</li>
<li>Mosna, F., Sensebe, L., Krampera, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+bone+marrow+and+adipose+tissue+mesenchymal+stem+cells%3A+a+user%27s+guide%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells+Dev%22%5BJournal%5D)">Human bone marrow and adipose tissue mesenchymal stem cells: a user's guide.</a> Stem Cells Dev. 19 (10), 1449-1470 (2010).</li>
<li>Zachar, V., Rasmussen, J. G., Fink, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+growth+of+adipose+tissue-derived+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Isolation and growth of adipose tissue-derived stem cells.</a> Methods Mol Biol. 698, 37-49 (2011).</li>
<li>Williams, S. K., McKenney, S., Jarrell, B. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Collagenase+lot+selection+and+purification+for+adipose+tissue+digestion%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Transplant%22%5BJournal%5D)">Collagenase lot selection and purification for adipose tissue digestion.</a> Cell Transplant. 4 (3), 281-289 (1995).</li>
<li>Wang, H., Van Blitterswijk, C. A., Bertrand-De Haas, M., Schuurman, A. H., Lamme, E. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+enzymatic+isolation+of+fibroblasts+for+the+creation+of+autologous+skin+substitutes%5BTitle%5D)+AND+%22In+Vitro+Cell+Dev+Biol+Anim%22%5BJournal%5D)">Improved enzymatic isolation of fibroblasts for the creation of autologous skin substitutes.</a> In Vitro Cell Dev Biol Anim. 40 (8-9), 268-277 (2004).</li>
<li>Pilgaard, L., Lund, P., Rasmussen, J. G., Fink, T., Zachar, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparative+analysis+of+highly+defined+proteases+for+the+isolation+of+adipose+tissue-derived+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Regen+Med%22%5BJournal%5D)">Comparative analysis of highly defined proteases for the isolation of adipose tissue-derived stem cells.</a> Regen Med. 3 (5), 705-715 (2008).</li>
<li>Kurita, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influences+of+centrifugation+on+cells+and+tissues+in+liposuction+aspirates%3A+optimized+centrifugation+for+lipotransfer+and+cell+isolation%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg%22%5BJournal%5D)">Influences of centrifugation on cells and tissues in liposuction aspirates: optimized centrifugation for lipotransfer and cell isolation.</a> Plast Reconstr Surg. 121 (3), 1033-1041 (2008).</li>
<li>Poloni, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+dedifferentiated+adipocytes+show+similar+properties+to+bone+marrow-derived+mesenchymal+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Human dedifferentiated adipocytes show similar properties to bone marrow-derived mesenchymal stem cells.</a> Stem Cells. 30 (5), 965-974 (2012).</li>
<li>D'Andrea, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Large-scale+production+of+human+adipose+tissue+from+stem+cells%3A+a+new+tool+for+regenerative+medicine+and+tissue+banking%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng+Part+C+Methods%22%5BJournal%5D)">Large-scale production of human adipose tissue from stem cells: a new tool for regenerative medicine and tissue banking.</a> Tissue Eng Part C Methods. 14 (3), 233-242 (2008).</li>
<li>Tallone, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adult+human+adipose+tissue+contains+several+types+of+multipotent+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cardiovasc+Transl+Res%22%5BJournal%5D)">Adult human adipose tissue contains several types of multipotent cells.</a> J Cardiovasc Transl Res. 4 (2), 200-210 (2011).</li>
<li>De Francesco, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+CD34%2FCD90+ASCs+are+capable+of+growing+as+sphere+clusters%2C+producing+high+levels+of+VEGF+and+forming+capillaries%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Human CD34/CD90 ASCs are capable of growing as sphere clusters, producing high levels of VEGF and forming capillaries.</a> PLoS One. 4 (8), e6537(2009).</li>
<li>Haasters, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morphological+and+immunocytochemical+characteristics+indicate+the+yield+of+early+progenitors+and+represent+a+quality+control+for+human+mesenchymal+stem+cell+culturing%5BTitle%5D)+AND+%22J+Anat%22%5BJournal%5D)">Morphological and immunocytochemical characteristics indicate the yield of early progenitors and represent a quality control for human mesenchymal stem cell culturing.</a> J Anat. 214 (5), 759-767 (2009).</li>
</ol>

Os autores deste manuscrito são co-inventores sobre a patente de propriedade da Regentes da Universidade da Califórnia e licenciado para Cytori Therapeutics.

O tecido adiposo para o isolamento de ASC pode vir de várias formas: desde peças sólidas de tecido obtidos por meio de ressecção ou lipoaspiração em pedaços menores obtidos, quer através de extração de seringa ou lipoaspiração assistida por sucção (ou seja, a lipoaspiração). Se mais células SVF (ASC) e, assim, pode ser obtido a partir de amostras de tecido adiposo ressecados ou aspirados está claro como estudos conflitantes foram apresentadas 16, 17. É possível que um ou outro tipo de tecido adiposo ...

Em 2001, uma população putativo de células-tronco multipotentes do tecido adiposo foi descrito na revista Engenharia de Tecidos 1. Estas células receberam o nome Processado lipoaspirado ou PLA células devido à sua derivação de tecido lipoaspirado processado obtidos através de cirurgia estética. O método de isolamento descritas neste artigo foi baseado em estratégias enzimáticas existentes para o isolamento da fracção do estroma vascular (SVF) a partir de tecido adiposo 2. O SVF tem sido definida como uma população minimamente processados ​​de glóbulos vermelhos, fibroblastos, células endoteliais, células musculares lisas, pericitos e pré-adipócitos que ainda têm que aderir a um substrato de cultura de tecidos 2, 3. O cultivo deste SVF ao longo do tempo é proposto eliminar muitos destes contaminantes populações de células e resultar em uma população de fibroblastos aderente. Estes fibroblastos, foram identificados na literatura durante os últimos 40 anos como sendo pré-adipócitos. No entanto, nosso grupo de pesquisa demonstrou que estas células possuíam mesodermal multipotency e rebatizou a população SVF aderente como células PLA. Estudos posteriores por inúmeros outros grupos de pesquisa foram adicionados a esse potencial, o que sugere tanto endodermal e potenciais ectodérmicas (para revisão ver 4). Desde essa altura, numerosos termos adicionais para estas células têm aparecido na literatura. A fim de fornecer algum tipo de consenso, o termo células-tronco adiposo-derivadas ou ASC foi adotada na ª conferência anual IFATS 2. Como tal, o termo ASC serão usados ​​neste artigo. O protocolo descrito neste artigo é um procedimento relativamente simples, que requer equipamento laboratorial padrão e utiliza reagentes simples, tais como solução salina tamponada com fosfo, reagentes de meios de cultura de tecido padrão e colagenase. Pode produzir grandes números de ASC, dependendo da quantidade do volume inicial do tecido adiposo e subsequente culture tempo. No entanto, o processamento de uma grande quantidade de tecido adiposo, tais podem apresentar alguns problemas físicos que possam ser mitigados para um grau usando este protocolo. Além disso, este protocolo requer estéreis a cultura de tecidos e capuzes de biossegurança aprovados, implicando o uso de uma unidade de cultura de tecidos aprovado. Este requisito também pode diminuir a utilidade da população ASC em aplicações clínicas, a menos que eles sejam isolados em boa prática de fabrico (BPF instalações)-aprovados concebidos para o isolamento e a expansão do material para uso clínico. Como alternativa, os sistemas automatizados que podem isolar ASC em um sistema fechado na sala de operação evitaria esta questão fundamental e permitir a utilização imediata de ASC, sem necessidade de posterior expansão in vitro. Até à data, há seis sistemas automáticos que estão disponíveis comercialmente para o isolamento de células a partir de tecido humano. Estes sistemas podem tornar possível isolar umnúmero significativo de ASC de grandes quantidades de tecido adiposo imediatamente após a sua colheita. Estes ASC poderia, então, ser reintroduzida no paciente para uma variedade de fins regenerativos sem o paciente ter que deixar a sala de cirurgia. Além deste protocolo descrevendo o isolamento Manual de ASC, um protocolo para isolamento automatizado de ASC usando o Sistema Celution também é dada em um artigo do companheiro.

<table><tbody><tr><td colspan="4">Reagent</td></tr><tr><td>DMEM (Dulbecco&#8217; s Modificação de Eagle&#8217; s Médio)</td><td>Mediatech Cellgro</td><td>10-013-CV</td><td>com 4,5 g/ml de glicose, L-glutamina, piruvato de sódio</td></tr><tr><td>Penicilina/Estreptomicina</td><td>Mediatech Cellgro</td><td>30-002-CI</td><td>10.000 UI/ml penicilina/10.000 &#956; g/ml de estreptomicina</td></tr><tr><td>Anfotericina B</td><td>Mediatech Cellgro</td><td>30-003-CF</td><td>250 &#956; g/ml de anfotericina B</td></tr><tr><td>10X PBS (solução salina tamponada fosfo)</td><td>Mediatech Cellgro</td><td>25-053-CI</td><td>sem cálcio, sem magnésio</td></tr><tr><td>Tripsina/EDTA</td><td>Mediatech Cellgro</td><td>20-031-CV</td><td>0,25% tripsina/2,21mM EDTA</td></tr><tr><td>Colagenase tipo IA (de Clostridium histolyticum)</td><td>Sigma</td><td>C2674</td><td>preparação bruta; < 125 unidades de digestão de colágeno/mg sólido</td></tr><tr><td>FBS (Soro Fetal Bovino) inativado pelo calor</td><td>Gemini Bioproducts</td><td>100106</td><td>fonte USDA, </td></tr><tr><td>pipetas sorológicas de 10 ml inativadas</td> pelo calor <td>Genesee Scientific</td><td>12-104</td><td></td></tr><tr><td>Pipetas sorológicas de 25 ml</td><td>Genesee Scientific</td><td>12-106</td><td></td></tr><tr><td>Tubos de centrífuga de polipropileno de 50 ml</td><td>Genesee Scientific</td><td>21-106</td><td></td></tr><tr><td>Placas de cultura de tecidos de 100 mm</td><td>Genesee Scientific</td><td>25-202</td><td></td></tr><tr><td>Placas de cultura de tecidos de 150 mm</td><td>Genesee Scientific</td><td>25-203</td><td></td></tr><tr><td>Unidades de filtro Stericup de 500 ml</td><td>Membrana Millipore</td><td>SCGPU05RE</td><td>PES, 0,22 &#956; filtros de células m pore</td></tr><tr><td></td><td>FisherBrand</td><td>22-363-549</td><td>100 &#956; m malha de nylon</td></tr><tr><td>dexametasona - solúvel</td><td>em água Sigma</td><td>D-2915</td><td></td></tr><tr><td>L-ácido ascórbico 2 fosfato</td><td>Sigma</td><td>A-8960</td><td></td></tr><tr><td>&#946;-glicerofosfato sal dissódico </td><td>Sigma</td><td>G-9422</td><td>também conhecido como glicerofosfato</td></tr><tr><td>insulina</td><td>Sigma</td><td>I-6634</td><td>feito de indometacina de pâncreas bovino</td></tr><tr><td></td><td>Sigma</td><td>I-7378</td><td></td></tr><tr><td>apo-transferrina</td><td>Sigma</td><td>T-4382</td><td></td></tr><tr><td>TGF&#946; 1</td><td>R& D Systems</td><td>240-B-002</td> óleo <td>humano recombinante</td></tr><tr><td>Red O</td><td>Sigma</td><td>O-0625</td><td></td></tr><tr><td>Alcian Blue</td><td>Sigma</td><td>A-5268</td><td></td></tr><tr><td>nitrato de prata</td><td>Sigma</td><td>S-0319</td><td></td></tr><tr><td>ácido clorídrico</td><td>Fisher Scientific</td><td>A144</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldeído</td><td>Fisher Scientific</td><td>30525-89-4</td><td>fornecido como estoque</td></tr> <tr>de 16%<td colspan="4">[cabeçalho]</td></tr><tr><td colspan="4">Equipamento necessário </td></tr><tr><td>Classe II A/B Capuz de biossegurança</td><td>Thermo Scientific</td><td></td><td>garante que o capuz tenha linhas de vácuo para aspiração</td></tr><tr><td>Centrífuga de bancada</td><td>Hermle Labnet</td><td>Z383</td><td>Rotor basculante para tubos de 50 ml necessário, capaz de 1200xg Banho-maria</td></tr><tr><td> </td><td>Fisher Scientific Isotemp</td><td>S52602Q</td><td>capacidade de 5-10L, capaz de 37C</td></tr><tr><td>Auxiliares de pipeta automatizados</td><td>Drummond Pipeta Aid XL</td><td>4-000-105</td><td></td></tr><tr><td>CO2 Incubadora</td><td>Thermo Scientific</td><td>Forma 310</td><td>com camisa direta de calor ou água</td></tr></tbody></table>

isolamento manual de células-tronco adiposo-derivadas de lipoaspirates humanos

Manual Isolation of Adipose-derived Stem Cells from Human Lipoaspirates

Em 2001, pesquisadores da Universidade da Califórnia, em Los Angeles, descreveu o isolamento de uma nova população de células-tronco adultas do tecido adiposo lipoaspirada que inicialmente denominado Células lipoaspirado ou células processados ​​PLA. Desde então, essas células-tronco foram renomeados como células-tronco adiposo-derivadas ou ASC e passaram a se tornar um dos mais populares populações de células-tronco adultas nos campos da investigação em células estaminais e medicina regenerativa. Milhares de artigos agora descrever o uso de ASC em uma variedade de modelos animais regenerativos, incluindo a regeneração óssea, reparação de nervos periféricos e engenharia cardiovascular. Artigos recentes começaram a descrever a miríade de usos para ASC na clínica. O protocolo mostrado neste artigo descreve o procedimento básico para manualmente e enzimaticamente isolando ASC de grandes quantidades de lipoaspirates obtidos a partir de procedimentos cosméticos. Este protocolo pode ser facilmente escalado para cima ou para baixo para accommodcomeu o volume de lipoaspirado e pode ser adaptado para isolar as ASC de tecido adiposo obtidas por abdominoplasties e outros processos semelhantes.

O esboço protocolo acima descreve um método manual, enzimática para o isolamento de um SVF a partir de um grande volume de amostra lipoaspirado. Dentro deste SVF são populações de células numerosas, incluindo o ASC. Numerosos estudos propõem que este SVF cultura sob condições de cultura de tecidos padrão irá seleccionar uma população de fibroblastos aderentes susceptíveis de ser composto principalmente do tipo ASC. Consistente com isto, temos mostrado, utilizando citometria de fluxo e de imunofluorescência, que os aglom...

Em 2001, pesquisadores da UCLA descreveu o isolamento de uma população de células-tronco adultas, chamadas células-tronco derivadas de tecido adiposo ou ASC, a partir de tecido adiposo. Este artigo descreve o isolamento de ASC de lipoaspirates usando, um protocolo de digestão enzimática manual utilizando colagenase.

Isolamento manual de células-tronco adiposo-derivadas de Lipoaspirates Humanos

In 2001, researchers at the University of  California, Los Angeles, described the isolation of a new population of adult  stem cells from liposuctioned ...

O objetivo geral deste procedimento é isolar células-tronco derivadas de tecido adiposo a partir da gordura obtida na forma de aspirado de lipoaspiração. Isso é realizado primeiramente removendo a solução cirúrgica e lavando o aspirado para eliminar hemácias contaminantes. O segundo passo consiste em liberar as células-tronco por meio da digestão enzimática do aspirado de lipoaspiração lavado com colagenase.Em seguida, as células liberadas na forma de fração vascular estromal ou FVE são coletadas por centrifugação. O passo final é remover o sobrenadante e semear as células FVE para seleção e cultivo dos ASCs aderentes. Por fim, a indução in vitro desses ASCs cultivados para formar osso, gordura e cartilagem.As linhagens podem ser utilizadas para confirmar a presença dessas células na cultura, além de confirmar sua multipotencialidade. Geralmente, indivíduos novos neste método enfrentarão dificuldades devido à logística de trabalhar com grandes volumes de aspirado de lipo antes da colheita celular. Prepare uma solução estéril de colagenase Tipo I e meio de controle estéril.Colete o aspirado lipídico em um recipiente de aspiração. Despeje cuidadosamente o aspirado lipídico em um frasco de vidro estéril de um litro. Quando as camadas do aspirado lipídico se separarem por gravidade, aspire a camada superior de óleo, se presente.Além disso, remova a camada inferior. Avalie o volume da camada resultante de tecido adiposo. Adicione um volume igual de PBS 1× estéril e agite com a pipeta utilizada para a aspiração.Quando as duas camadas tiverem sedimentado, aspire o sobrenadante utilizando uma pipeta serológica de 10 mililitros. Continue lavando a fração de tecido adiposo com PBS até que a camada adiposa apresente uma coloração dourada-amarelada. Aspire o sobrenadante pela última vez, deixando a fração de tecido adiposo.No copo de vidro. Deixe os aspirados lipídicos repousarem por cinco minutos após a última lavagem e antes da aspiração final. Em uma unidade de filtração, prepare uma solução estéril de colagenase um.Adicione um volume equivalente ao da fração adiposa e filtre esterilmente. Em seguida, despeje cuidadosamente a fração adiposa lavada na solução de colagenase e feche bem o frasco. Incube então a mistura de colagenase e tecido adiposo em banho-maria a 37 graus Celsius por 30 minutos, com movimentos suaves de rotação a cada cinco a dez minutos. Avalie a camada de tecido adiposo quanto a uma aparência mais homogênea conforme a digestão progrida e, se necessário, aumente o tempo de reação para dissolver quaisquer fragmentos sólidos de gordura.Esterilize a unidade de filtro contendo a mistura de colagenase adiposa digerida com etanol 70% e coloque-a novamente na cabine de segurança biológica. Em seguida, pipete alíquotas de 25 mililitros da mistura contendo a fração vascular estromal para tubos cônico estéreis de 50 mililitros. Adicione 25 mililitros de meio controle a cada tubo e incube à temperatura ambiente por cinco minutos para inativar a colagenase.Em seguida, centrifugue por 10 minutos a 1.200 × g para coletar a fração vascular estromal como um pellet na cabine de segurança biológica. Aspire o sobrenadante de cada tubo. Certifique-se de que a camada superior de óleo e quaisquer adipócitos flutuantes sejam aspirados junto com este sobrenadante.Em seguida, combine os pellets da FVS em um único tubo de centrífuga utilizando 30 mililitros de meio condicionado e divida igualmente entre dois novos tubos de centrífuga de 50 mililitros; após a centrifugação, aspire os sobrenadantes dos dois pellets. Se desejar a lise de hemácias, cada um desses dois pellets pode ser ressuspenso em 10 mililitros de tampão de lise de hemácias e incubado à temperatura ambiente por 10 minutos. Após a centrifugação, aspire os sobrenadantes para obter os pellets da fração vascular estromal.Combine esses dois pellets em um novo tubo de centrífuga. Usando de cinco a 10 mililitros de meio controle, partículas grandes de tecido podem ser filtradas usando um filtro de malha de 100 mícrons colocado sobre um novo tubo de centrífuga de 50 mililitros. Agora, alíquotas da fração filtrada contendo as células-tronco adiposas devem ser distribuídas em placas de cultura de tecidos.Em seguida, suplemente cada placa com um volume apropriado de controle. Cultura em meio. As células por três a quatro dias sem troca do meio, aspire o meio de cultura, lave as células uma vez com PBS estéril para remover quaisquer hemácias contaminantes e, então, reponha o meio e continue a cultura ao utilizar este método enzimático manual para o isolamento de uma fração vascular estromal a partir de uma amostra de aspirado lipídico de grande volume.A população de ASC cultivada resultante é relativamente homogênea em aparência e composta por células semelhantes a fibroblastos, que constituem o meio mais comum de validação. A indução in vitro da população de ASC utilizando condições definidas de cultivo resulta em sua diferenciação em linhagens mesodérmica, ectodérmica e endodérmica. Embora o potencial tri-linhas germinativas in vitro tenha levado ao uso de ASCs em uma ampla variedade de sistemas modelo regenerativos.A diferenciação em adipogênicas, osteogênicas e células congênicas geralmente é suficiente para identificar a ASC e confirmar sua multivalência. Além disso, as ASCs também podem ser diferenciadas em linhagens miogênicas esqueléticas e miogênicas lisas, células da linhagem ectodérmica ou linhagem celular hepática endodérmica. Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como isolar uma fração vascular estromal de lipos.Para o propósito de Turing, é um componente SC.

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Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Este protocolo descreve o isolamento de derivadas de tecido adiposo a partir de células do estroma lipoaspirado e a criação de um defeito de 4 milímetros de tamanho crítico calvária em avaliar a regeneração óssea.

Reparação de um modelo de defeito crítico porte calvária Usando derivadas de tecido adiposo células do estroma colhidas lipoaspirado

Este vídeo demonstra uma técnica para isolar e cultivar células-tronco derivadas do tecido adiposo do arco periaórtico murino marcadas com fluorescência (ADSCs) do tecido adiposo do arco periaórtico murino. Após o isolamento, os NCADSCs são detectados, classificados usando classificação de células ativadas por fluorescência e, posteriormente, cultivados em uma placa, promovendo a proliferação celular.

Isolando células-tronco derivadas de tecido adiposo do tecido adiposo periaórtico murino

A heterogeneidade transcricional dentro das células estromais derivadas do tecido adiposo humano pode ser definida no nível de célula única usando marcadores de superfície celular e genes osteogênicos.  Descrevemos um protocolo que utiliza citometria de fluxo para o isolamento de subpopulações celulares com potencial osteogênico aumentado, que pode ser usado para melhorar a reconstrução esquelética craniofacial.

Isolamento e Enriquecimento da Human adiposo-derivadas células estromais para Osteogenesis Aprimorado

Aqui, apresentamos um protocolo para obter a fração vascular do estroma do tecido adiposo através de uma série de processos mecânicos, que incluem emulsificação e múltiplas centrifugações.

Micronização mecânica de Lipoaspirates para terapia regenerativa

A divulgação precisa de métodos e protocolos é crucial para a absorção em larga escala de terapias com células-tronco. Aqui, apresentamos um protocolo para isolar células regenerativas derivadas de adipose, usadas para uma única injeção intracavernósia como tratamento de disfunção erétil (ED) após prostatectomia radical (RP).

Isolamento de células regenerativas derivadas de adipose para o tratamento da disfunção erétil após a prostatectomia radical

Este protocolo fornece um método livre de enzimas para isolar as células-tronco mesenquímicas de abdominoplastia e amostras lipoaspirate usando um método explant. A ausência de enzimas duras ou etapas de centrífuga fornece células-tronco clinicamente relevantes que podem ser usadas para estudos in vitro ou transferidas de volta para a clínica.

Um método sem enzimas para isolamento e expansão de células-tronco mesenchymal derivadas do adiposo humano

Aqui, nós apresentamos o tecido adiposo humano microfragmentação enzima-livre usando um dispositivo fechado do sistema. Este novo método permite a obtenção de aglomerados de submilímetro de tecido adiposo adequado para transplante in vivo, cultura in vitro e maior isolamento e caracterização celular.

Micro-fragmentação do tecido adiposo humano para a caracterização do Phenotyping e do Secretome da pilha

O presente protocolo descreve uma metodologia aprimorada para o isolamento de ADSC, resultando em um tremendo rendimento celular com ganho de tempo em comparação com a literatura. Este estudo também fornece um método simples para a obtenção de um número relativamente grande de células viáveis após a crioppreservação a longo prazo.

Técnica para obtenção de células-tronco mesenquimais a partir da caracterização do tecido adiposo e da fração vascular estromal em criopreservação a longo prazo

Este protocolo descreve uma metodologia para isolar e identificar células-tronco mesenquimais (CTMs) derivadas do tecido adiposo de ratos Sprague Dawley.

Isolamento e Identificação de Células-Tronco Mesenquimais Derivadas do Tecido Adiposo de Ratos Sprague Dawley

Este protocolo descreve o isolamento semi-automatizado da fração vascular estromal (FVS) do tecido adiposo murino para obtenção de pré-adipócitos e diferenciação de adipócitos in vitro. O uso de um dissociador tecidual para digestão da colagenase reduz a variação experimental e aumenta a reprodutibilidade.

Isolamento Semi-Automatizado da Fração Vascular Estromal do Tecido Adiposo Branco Murino Usando um Dissociador de Tecido

Aqui, apresentamos um método padrão para isolar eficientemente células-tronco e adipócitos derivados do adiposo, caracterizado por redução de &gt;90% no tempo de processamento, alta viabilidade celular e ampla compatibilidade.

Isolamento Eficiente de Células-Tronco e Adipócitos Derivados do Adiposo a partir do Tecido Adiposo Suíno

Aprenda a isolar células-tronco adiposo-derivadas de lipoaspirados humanos usando digestão enzimática com colagenase. Este método manual permite obter células viáveis para estudos de diferenciação e aplicações em medicina regenerativa.

Isolamento manual de células-tronco adiposo-derivadas de Lipoaspirates Humanos

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