26 de setembro de 2013
Em 2001, pesquisadores da UCLA descreveu o isolamento de uma população de células-tronco adultas, chamadas células-tronco derivadas de tecido adiposo ou ASC, a partir de tecido adiposo. Este artigo descreve o isolamento de ASC de lipoaspirates usando, um protocolo de digestão enzimática manual utilizando colagenase.
O objetivo geral deste procedimento é isolar células-tronco derivadas do tecido adiposo da gordura obtida na forma de um lipoaspirado. Isso é feito removendo primeiro a solução cirúrgica e lavando o aspirado de glóbulos vermelhos contaminantes. O segundo passo é liberar as células-tronco por meio da digestão enzimática do lipoaspirado lavado com colagenase.
Em seguida, as células liberadas na forma de uma fração vascular estromal ou SVF são coletadas por centrifugação. A etapa final é remover o sobrenadante e a placa, as células SVF para seleção e cultura dos ASCs aderentes. Em última análise, indução in vitro desses ASCs cultivados em direção ao osso, gordura e cartilagem.
As linhagens podem ser usadas para confirmar a presença dessas células dentro da cultura, além de confirmar sua multipotencialidade. Geralmente, os indivíduos novos neste método terão dificuldades devido à logística de trabalhar com grandes volumes de lipoaspirina antes da colheita de células. Prepare a colagenase estéril Tipo um e o meio de controle estéril.
Colete o lippo aspirado em um recipiente de aspiração. Transvase cuidadosamente o aspirado lippo em um alto-falante de vidro estéril de um litro. Quando as camadas de lippo aspirado estiverem separadas por gravidade, aspire a camada superior de óleo, se houver.
Além disso, remova o inato inferior. Avalie o volume da camada de tecido adiposo resultante. Adicione um volume igual de XPBS estéril e mexa com a pipeta usada para aspiração.
Quando as duas camadas estiverem assentadas, aspirar o inato com uma pipeta serológica de 10 ml. Continue a lavar a fração de tecido adiposo com PBS até que a camada adiposa fique com uma cor ouro amarelo. Aspire o inato uma última vez, deixando a fração de tecido adiposo.
No alto-falante de vidro. Deixe as camadas de lippo aspirado assentarem por cinco minutos após a última lavagem e antes da aspiração final. Em uma unidade de filtro, prepare colagenase estéril uma solução.
Adicione um volume igual ao da fração adiposa e do filtro estéril. Em seguida, despeje cuidadosamente a fração adiposa lavada na solução de colagenase e feche bem o frasco. Em seguida, incube a mistura adiposa de colagenase em banho-maria a 37 graus Celsius por 30 minutos com giros suaves a cada cinco a 10 minutos, avalie a camada de tecido adiposo para uma aparência mais suave à medida que a digestão prossegue e, se necessário, aumente o tempo de reação para dissolver quaisquer pedaços sólidos de gordura.
Esterilize a unidade de filtro que contém a mistura adiposa de colagenase digerida com etanol a 70% e coloque-a de volta no gabinete de biossegurança. Agora pipete alíquotas de 25 mililitros do inato contendo a fração vascular estromal em tubos de centrífuga estéreis de 50 mililitros. Adicione 25 mililitros de meio de controle a cada tubo e incubado em temperatura ambiente por cinco minutos para inativar a colagenase.
Em seguida, centrifugue por 10 minutos a 1.200 vezes G para coletar a fração vascular estromal como um pellet no gabinete de biossegurança. Aspirar o sobrenadante de cada tubo. Certifique-se de que a camada superior de óleo e quaisquer adipócitos flutuantes sejam aspirados com este sobrenadante.
Em seguida, combine os pellets SVF em um tubo de centrífuga usando 30 mililitros de meio condicionado e divida igualmente em dois novos tubos de centrífuga de 50 mililitros após a centrifugação aspirar os sobrenadantes dos dois pellets. Se a lise de hemácias for desejada, esses dois pellets podem ser ressuspensos em 10 mililitros de um tampão de lise de hemácias e incubados em temperatura ambiente por 10 minutos. Após centrifugação, aspirar os sobrenadantes para produzir pellets da fração vascular estromal.
Combine esses dois pellets em um novo tubo de centrífuga. Usando de cinco a 10 mililitros de meio de controle, grandes partículas de tecido podem ser filtradas usando um filtro de malha de 100 mícrons colocado em cima de um novo tubo de centrífuga de 50 mililitros. Agora alicote a fração filtrada contendo as células-tronco adiposas em placas de cultura de tecidos.
Em seguida, complemente cada prato com um volume de controle apropriado. Cultura da mídia. As células por três a quatro dias sem alteração do meio aspiram a cultura, o meio e lavam as células uma vez com PBS estéril para remover quaisquer glóbulos vermelhos contaminantes, depois reabastecem o meio e continuam a cultura ao usar este enzimático manual para o isolamento de uma fração vascular estromal de uma amostra de lippo aspirado de grande volume.
A população A SC cultivada resultante é relativamente homogênea na aparência e composta de fibroblastos como células como o meio mais popular de validação. A indução in vitro da população A SC usando condições de cultura definidas resulta em sua diferenciação em linhagens mesodérmicas, ectodérmicas e endodérmicas. Enquanto in vitro o potencial da camada trigerminativa resultou no uso de ASCs para uma ampla variedade de sistemas modelo regenerativos.
A diferenciação em células adipogênicas, osteogênicas e congênitas é geralmente suficiente para identificar o A SC e confirmar sua multipotência. Além disso, as ASCs também podem ser diferenciadas em células miogênicas esqueléticas e miogênicas lisas da linhagem ectodérmica ou linhagem de células hepáticas endodérmicas. Depois de assistir a este vídeo, você deve ter uma boa compreensão de como isolar uma fração vascular estromal de Lipos.
Para o propósito de Turing, é um componente SC.
Veja a transcrição completa e aceda a milhares de vídeos científicos
Este artigo descreve o isolamento de células-tronco derivadas de adipócitos (ASCs) de lipoaspirados utilizando um protocolo manual de digestão enzimática com colagenase. O processo envolve a lavagem do aspirado, digestão enzimática e cultivo das células para estudos posteriores.
O isolamento de células-tronco derivadas de adipócitos (ASCs) de lipoaspirados fornece uma fonte escalonável de células multpotentes para pesquisas iniciais em medicina regenerativa. Este protocolo permite a validação de alvos e triagem fenotípica em sistemas relevantes para doenças, gerando populações aderentes de ASCs capazes de diferenciação multilinial. O método apoia a redução de riscos mecanicistas e confiança preditiva em modelos pré-clínicos, fornecendo células homogêneas derivadas da fração vascular estromal para aplicações posteriores.
O fluxo de trabalho de isolamento de ASCs insere-se no continuum de descoberta, desde a identificação do alvo até a otimização do composto líder, fornecendo uma fonte renovável de células para ensaios mecanicistas e triagem fenotípica antes da validação pré-clínica.