Name: Otimizar Configurações de gases de combustão para promover o crescimento de microalgas em fotobiorreatores via simulações de computador (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-10-01T09:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 33 s
Description: Aprenda a otimizar o crescimento de Chlorella sp. em fotobiorreatores usando simulações computacionais de modelos cinéticos. Este método demonstra como controlar gases de combustão para cultivar microalgas de forma sustentável.

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Este estudo é apoiado por um programa de NSF (Investigação Experiências para alunos de graduação) na Universidade de Washington em St. Louis.

1. O cultivo de algas e Scale-up <ol><li> Preparar o meio de cultura usando água desionizada contendo 0,55 g / L -1 ureia, 0,1185 g / L -1 KH 2 PO 4, 0,102 g / L -1 MgSO4 · 7H 2 O 0,015 g / L de FeSO4 · -1 7H 2 O e 22,5 microelementos ul (18,5 g / L -1 H 3 BO 3, 21,0 g / L -1 CuSO4 · 5H 2 O, 73,2 g / L -1 MnCl2 · 4H 2 O, 13,7 g / L -1 CoSO 4 · 7H 2 O, 59,5 g / L -1 ZnSO4 · 5H 2 O, 3,8 g / L -1 (NH 4) 6 Mo 7 O 24 · 4H 2 O, 0,31 g / L -1 NH 4 VO 3 ). Ajustar pH do meio para 7-8. Esterilizar o meio de cultura através de filtro de seringa de 0,22 um. </li><li> Inocular Chlorella sp. a partir de uma única colônia em uma placa de ágar fresco em uma agitação flask contendo 50 ml de meio com uma ansa de inoculação estéril. Algas Cultura sob 150 rpm e 30 ° C durante seis dias (condição de luz contínua, de fluxo de fótons = 40-50 mol m -2 s -1). Monitorar a densidade celular por um espectrofotómetro (OD 730). </li><li> Transferir 50 ml de cultura de algas (fase de crescimento meio-log, OD 730&gt; 1) em um balão de vidro de 2-L (com ~ 1 L esterilizado meio de cultura). Bomba de ar filtrado (ou CO 2) para a cultura durante a incubação (durante 5 dias). </li><li> Transferência de 1 L de cultura de algas num garrafão de 20 L contendo 15 L de vidro médio não-esterilizado a cultura (nesta fase, o risco de contaminação microbiana é pequeno), então a cultura de algas sob a mesma condição como indicado no passo 1.3. </li><li> Coloque 15 L de cultura fresco algal (OD 730 = 2) e 85 L meio não esterilizado em uma placa plana photobioreactor (equipado com diodos emissores de luz, controlador do computador, mistura de gás, analisadores de densidade óptica celular, pH, dissolvido oxigen, temperatura e dissolveu-se CO 2). Bomba de gás de mistura ar / combustão no bioreactor. </li><li> Completamente seco limpa o photobioreactor utilizando etanol 70% após a colheita da biomassa (OD 730&gt; 20). </li></ol> 2. Demonstração Laboratório de Tratamento de Gás de combustão usando pequenos fotobioreatores <ol><li> Inocular culturas de algas em garrafas de vidro (200 ml / min médio / garrafa, OD inicial 730 ~ 0,3). </li><li> Queimar gás natural e bombear o gás de combustão (~ 250 cm 3 min -1) através de um funil, um tubo de condensador, e um frasco de 0,5 L de lavagem (contendo lama de água / calcário). </li><li> Os controladores de fluxo de massa de controlar o fluxo do gás de combustão para a cultura de algas (Figura 1). Pulsos de gases de combustão incluem dois modos: gás-em combustão e combustão de gás-off (bombear ar em seu lugar). </li></ol> 3. Modelo de Desenvolvimento Kinetic O modelo cinético assume: (1) as culturas são o sistema homogêneos. (2) concentração de CO 2 e de intensidade de luz nas culturas são fatores limitantes para o crescimento de algas. (3) CO 2 pressão parcial e o seu equilíbrio de fase líquida com H 2 CO 3, HCO 3 -, e CO 3 2 - é simplificada com a Lei de Henry). As equações do modelo são: <img alt="Equações 1 e 2" fo:content-width="4in" src="/files/ftp_upload/50718/50718eq1and2.jpg" width="500px" /> X é a biomassa (kg m-3). S é o CO 2 dissolvido (mol · m -3). P é a pressão parcial de CO2 na fase gasosa (Pa). p é a pressão parcial do i th composto tóxico nos gases (tais como NOx e SOx). P max.i é a pressão parcial de um gás tóxico para uma inibição completa do crescimento de biomassa. η i é o coeficiente empírico. K s é a constante de Michaelis-Mentende CO 2 (mol · m -3). K I é a constante de inibição de CO 2 (mol · m -3). K é a constante de Michaelis-Menten da intensidade da luz (umol · · m -2 s -1). H é constante o de Henry para o CO 2 (Pa · m 3 · mol -1). La K é a taxa de transferência de massa de CO 2 (-1 h). I é a intensidade média da luz, umol · · m -2 s -1, a qual pode ser calculada como se segue (Equação (3)) 9. <img alt="Equação 3" fo:content-width="4in" src="/files/ftp_upload/50718/50718eq3.jpg" width="500px" /> A definição dos parâmetros do modelo, é apresentada no Quadro 1. As condições iniciais para assumir que a biomassa e CO 2 dissolvido concentrações são de 100 mg / L e 13 mmol / L, respectivamente. O coeficiente de transferência de massa volumétrica pode ser estimada pela correlação empíricação ao biorreactor parâmetros 10: <img alt="Equação 4" fo:content-width="4in" src="/files/ftp_upload/50718/50718eq4.jpg" width="500px" /> P g / V é o consumo de energia do sistema arejada no bioreactor (W / m 3). u gs é a velocidade superficial do fluxo de gás através do bioreactor (m / seg). α, β e γ são constantes relacionadas com condições de mistura. <ol><li> Construir um arquivo Simulink para a simulação do modelo (capturas de tela são apresentados no material de apoio I). <ol><li> Escolha Arquivo / Novo / Modelo na interface MATLAB para criar um modelo Simulink, e aberto &quot;Browser Library&quot; (tela 1). </li><li> Escolha bloco &#39;Subsystem&#39; no navegador da biblioteca para criar os subsistemas para Equação 1 e 2. Arraste um bloco de subsistema para o arquivo de modelo Simulink, mudar seu nome para &quot;Equação 1&quot;, e, em seguida, repita os mesmos passos para a Equação 2. </li><li&gt; Criar blocos e parâmetros adequados em cada subsistema (tela 3). Clique bloco a &quot;Equação 1&quot;, escolha blocos apropriados a partir do navegador da biblioteca e conectá-los com setas que indicam a seqüência de cálculo, clique duas vezes os blocos para configurar os parâmetros, e repita essas etapas para o outro subsistema duplo. Nota: 1) A sequência deve começar com blocos de entrada e concluir com blocos de saída, 2) Os blocos de operador para adição, subtração, multiplicação, divisão e integração podem ser todos encontrados no navegador da biblioteca, e sugerimos aos usuários explorar os arquivos de ajuda do o Simulink para entender como usá-los, 3) O solucionador de otimização pode ser definido através de parâmetros via Simulação / Configuração na barra de ferramentas. </li><li> Ligar os dois subsistemas para representar equações do modelo (1 e 2). Ligue a saída de um subsistema para a entrada do outro subsistema pela seta, se necessário. Por exemplo, a concentração de CO 2 dissolvido é ooutput na Equação 2 subsistema, e também a entrada do subsistema Equação 1. </li><li> Use &#39;Pulse Generator&#39; bloco como as entradas para &quot;Equação 2 &#39;para simular os pulsos de CO 2 on-off, use block&#39; constante &#39;, como o valor de entrada de luz de superfície. Clique duas vezes os blocos para alterar os parâmetros, tais como o período de tempo e amplitude. </li><li> Escolha bloco &#39;Mux &quot;no navegador da biblioteca. Ligue todas as saídas para &quot;Mux&quot; e, em seguida, conectá-lo ao &#39;Para Workspace&#39; bloco que armazena os resultados simulados. </li><li> Defina o &quot;tempo de parada de simulação&quot; na barra de ferramentas superior, clique no botão &quot; <img src="/files/ftp_upload/50718/playarrow.jpg" alt="Seta" width="10px" fo:content-width="0.1in" fo:src="/files/ftp_upload/50718/playarrow.jpg" /> &quot;Para iniciar a simulação e os resultados serão mostrados na área de trabalho do MATLAB (tela 4). </li></ol></li><li> Aplicar abordagem de otimização dinâmica para o perfil ideal de CO 2 condições. </li&gt; </ol> Para encontrar as mudanças de entrada de fluxo de CO 2 perfil (P opt) que maximizam a produção de biomassa 11, a função MATLAB &#39;fmincon&#39; e CVP (controle de vetores parametrização) 12 são usados. Figura 2 ilustra o algoritmo de otimização (ver códigos de programação MATLAB no Coadjuvante Material III).

<ol><li>Granite, E. J., O'Brien, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Review+of+novel+methods+for+carbon+dioxide+separation+from+flue+and+fuel+gases%5BTitle%5D)+AND+%22Fuel+Process.+Technol%22%5BJournal%5D)">Review of novel methods for carbon dioxide separation from flue and fuel gases.</a> Fuel Process. Technol. 86, 1423-1434 (2005).</li>
<li>Chisti, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biodiesel+from+microalgae%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol.+Adv%22%5BJournal%5D)">Biodiesel from microalgae.</a> Biotechnol. Adv. 25, 294-306 (2007).</li>
<li>Li, Y., Horsman, M., Wu, N., Lan, C. Q., Dubois-Calero, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biofuels+from+microalgae%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol.+Prog%22%5BJournal%5D)">Biofuels from microalgae.</a> Biotechnol. Prog. 24, 815-820 (2008).</li>
<li>Schenk, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Second+generation+biofuels%3A+high-efficiency+microalgae+for+biodiesel+production%5BTitle%5D)+AND+%22BioEnergy+Research%22%5BJournal%5D)">Second generation biofuels: high-efficiency microalgae for biodiesel production.</a> BioEnergy Research. 1, 20-43 (2008).</li>
<li>Kumar, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enhanced+CO2+fixation+and+biofuel+production+via+microalgae%3A+recent+developments+and+future+directions%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Enhanced CO2 fixation and biofuel production via microalgae: recent developments and future directions.</a> Trends Biotechnol. 28, 371-380 (2010).</li>
<li>Kumar, K., Dasgupta, C. N., Nayak, B., Lindblad, P., Das, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+suitable+photobioreactors+for+CO2+sequestration+addressing+global+warming+using+green+algae+and+cyanobacteria%5BTitle%5D)+AND+%22Bioresour.+Technol%22%5BJournal%5D)">Development of suitable photobioreactors for CO2 sequestration addressing global warming using green algae and cyanobacteria.</a> Bioresour. Technol. 102, 4945-4953 (2011).</li>
<li>Lee, J. -N., Lee, J. -S., Shin, C. -S., Park, S. -C., Kim, S. -W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+to+enhance+tolerances+of+Chlorella+KR-1+to+toxic+compounds+in+flue+gas%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Biochem.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Methods to enhance tolerances of Chlorella KR-1 to toxic compounds in flue gas.</a> Appl. Biochem. Biotechnol. 84-86, 329-342 (2000).</li>
<li>Zeiler, K. G., Heacox, D. A., Toon, S. T., Kadam, K. L., Brown, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+use+of+microalgae+for+assimilation+and+utilization+of+carbon+dioxide+from+fossil+fuel-fired+power+plant+flue+gas%5BTitle%5D)+AND+%22Energy+Conversion+and+Management%22%5BJournal%5D)">The use of microalgae for assimilation and utilization of carbon dioxide from fossil fuel-fired power plant flue gas.</a> Energy Conversion and Management. 36 (95), 707-712 (1995).</li>
<li>Martínez, M. E., Camacho, F., Jiménez, J. M., Espínola, J. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influence+of+light+intensity+on+the+kinetic+and+yield+parameters+of+Chlorella+pyrenoidosa+mixotrophic+growth%5BTitle%5D)+AND+%22Process+Biochem%22%5BJournal%5D)">Influence of light intensity on the kinetic and yield parameters of Chlorella pyrenoidosa mixotrophic growth.</a> Process Biochem. 32 (96), 93-98 (1997).</li>
<li>Van't Riet, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Review+of+measuring+methods+and+results+in+nonviscous+gas-liquid+mass+transfer+in+stirred+vessels%5BTitle%5D)+AND+%22Ind.+Eng.+Chem.+Process%22%5BJournal%5D)">Review of measuring methods and results in nonviscous gas-liquid mass transfer in stirred vessels.</a> Ind. Eng. Chem. Process. 18, 357-364 (1979).</li>
<li>Methekar, R., Ramadesigan, V., Braatz, R. D., Subramanian, V. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimum+charging+profile+for+lithium-ion+batteries+to+maximize+energy+storage+and+utilization%5BTitle%5D)+AND+%22ECS+Trans%22%5BJournal%5D)">Optimum charging profile for lithium-ion batteries to maximize energy storage and utilization.</a> ECS Trans. 25, 139-146 (2010).</li>
<li>Kameswaran, S., Biegler, L. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simultaneous+dynamic+optimization+strategies%3A+Recent+advances+and+challenges%5BTitle%5D)+AND+%22Comput.+Chem.+Eng%22%5BJournal%5D)">Simultaneous dynamic optimization strategies: Recent advances and challenges.</a> Comput. Chem. Eng. 30, 1560-1575 Forthcoming.</li>
<li>He, L., Subramanian, V. R., Tang, Y. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experimental+analysis+and+model-based+optimization+of+microalgae+growth+in+photo-bioreactors+using+flue+gas%5BTitle%5D)+AND+%22Biomass+Bioenergy%22%5BJournal%5D)">Experimental analysis and model-based optimization of microalgae growth in photo-bioreactors using flue gas.</a> Biomass Bioenergy. 41, 131-138 (2012).</li>
<li>Novak, J. T., Brune, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inorganic+carbon+limited+growth+kinetics+of+some+freshwater+algae%5BTitle%5D)+AND+%22Water+Res%22%5BJournal%5D)">Inorganic carbon limited growth kinetics of some freshwater algae.</a> Water Res. 19 (85), 215-225 (1985).</li>
<li>Landry, M. R., Haas, L. W., Fagerness, V. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamics+of+microbial+plankton+communities+experiments+in+Kaneohe+Bay%2C+Hawaii%5BTitle%5D)+AND+%22Mar.+Ecol%22%5BJournal%5D)">Dynamics of microbial plankton communities experiments in Kaneohe Bay, Hawaii.</a> Mar. Ecol. 16, 127-133 (1984).</li>
<li>Silva, H. J., Pirt, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Carbon+dioxide+inhibition+of+photosynthetic+growth+of+Chlorella%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Gen.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Carbon dioxide inhibition of photosynthetic growth of Chlorella.</a> J. Gen. Microbiol. 130, 2833-2838 (1984).</li>
<li>Powell, E. E., Mapiour, M. L., Evitts, R. W., Hill, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Growth+kinetics+of+Chlorella+vulgaris+and+its+use+as+a+cathodic+half+cell%5BTitle%5D)+AND+%22Bioresour.+Technol%22%5BJournal%5D)">Growth kinetics of Chlorella vulgaris and its use as a cathodic half cell.</a> Bioresour. Technol. 100, 269-274 (2009).</li>
<li>Sawyer, C. N., McCarty, P. L., Parkin, G. F. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSawyer%2C+CN+%22Chemistry+for+environmental+engineering+and+science%22">Chemistry for environmental engineering and science</a>. , 5th, McGraw-Hil. 144(2003).</li>
<li>Doucha, J., Straka, F., Lívanský, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Utilization+of+flue+gas+for+cultivation+of+microalgae+Chlorella+sp.+in+an+outdoor+open+thin-layer+photobioreactor%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Appl.+Phycol%22%5BJournal%5D)">Utilization of flue gas for cultivation of microalgae Chlorella sp. in an outdoor open thin-layer photobioreactor.</a> J. Appl. Phycol. 17, 403-412 (2005).</li>
<li>Thimijan, R. W., Heins, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Photometric%2C+radiometric%2C+and+quantum+light+units+of+measure%3A+a+review+of+procedures+for+interconversion%5BTitle%5D)+AND+%22Hortscience%22%5BJournal%5D)">Photometric, radiometric, and quantum light units of measure: a review of procedures for interconversion.</a> Hortscience. 18, 818-822 (1983).</li>
</ol>

Os autores não têm nada a revelar.

Neste estudo, demonstramos o protocolo experimental para a ampliação cultivos de algas em fotobiorreatores. Também examinamos vários métodos para entradas de gases de combustão para promover o crescimento de algas. Usando um modelo de transferência de massa e de bio-reacção, que demonstram que o coeficiente de transferência de massa de CO 2 K La (determinado por biorreactor mistura condição e CO 2 velocidade superficial) influencia fortemente o crescimento de algas. A simulação do modelo ...

<table><tbody><tr><td>Espectrofotômetro</td><td>Thermal Scientific, Texas EUA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Analisador de gás CO2</td><td>LI-COR, Biosciences, Nebraska EUA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Controladores de fluxo de massa</td><td>OMEGA Engineering INC, Connecticut EUA</td><td>FMA5416</td><td></td></tr><tr><td>Placa de aquisição de dados</td><td>Measurement Computing Corporation, Massachusetts EUA</td><td>USB-1208FS</td><td></td></tr><tr><td>Filtros</td><td>Aerocolloid LLC, Minnesota EUA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>MATLAB/Simulink</td><td>Mathworks, Massachusetts EUA</td><td>R2010a</td><td></td></tr><tr><td>Frascos de vidro</td><td>Fisher USA</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

otimizar configurações de gases de combustão para promover o crescimento de microalgas em fotobiorreatores via simulações de computador

Optimize Flue Gas Settings to Promote Microalgae Growth in Photobioreactors via Computer Simulations

De gases de combustão das usinas pode promover o cultivo de algas e reduzir as emissões de gases de efeito de estufa 1. As microalgas não só captar a energia solar de forma mais eficiente do que as plantas 3, mas também sintetizam biocombustíveis avançados 2-4. Geralmente, CO 2 atmosférico não é uma fonte suficiente para suportar o crescimento de algas máxima 5. Por outro lado, as elevadas concentrações de CO 2 nos gases de escape industriais têm efeitos adversos sobre a fisiologia das algas. Consequentemente, ambas as condições de cultura (tais como nutrientes e luz) e o controlo do fluxo dos gases de combustão para os foto-biorreatores são importantes para o desenvolvimento de um &quot;gás de combustão para as algas&quot; eficiente do sistema. Os pesquisadores propuseram diferentes configurações photobioreactor 4,6 e estratégias de cultivo 7,8 com gás de combustão. Aqui, apresentamos um protocolo que demonstra como usar modelos para prever o crescimento de microalgas em resposta a tarrafa configurações de gás. Nós perfORM ambos ilustração e modelo simulações experimentais para determinar as condições favoráveis ​​para o crescimento de algas, com gás de combustão. Desenvolvemos um modelo baseado em Monod, juntamente com a transferência de massa e as equações de intensidade de luz para simular o crescimento de microalgas em uma foto-biorreator homogênea. A simulação do modelo de crescimento e compara combustão algas consumos de gás sob diferentes configurações de combustão a gás. O modelo ilustra: 1) como o crescimento de algas é influenciada por diferentes coeficientes de transferência de massa volumétrica de CO 2, 2) como podemos encontrar ótima concentração de CO 2 para o crescimento de algas, através da abordagem de otimização dinâmica (DOA), 3) como podemos projetar um rectangular on-off de impulsos de gás de combustão para promover o crescimento da biomassa das algas e para reduzir o uso de gás de combustão. No lado experimental, apresentamos um protocolo para o cultivo de Chlorella sob o gás de combustão (gerada pela combustão do gás natural). Os resultados experimentais qualitativamente validar as previsões do modelo que o gás de combustão de alta freqüência puLSEs pode melhorar significativamente o cultivo de algas.

Nossa análise experimental anterior indica que a exposição de gases de combustão contínua afeta negativamente o crescimento Chlorella, ao diminuir o tempo de exposição CO 2 é capaz de aliviar esta inibição 13. Para entender melhor o fluxo dos gases de combustão e relacionamento crescimento de algas, desenvolvemos um modelo empírico para simular o crescimento da biomassa na presença de gases de combustão. Assumimos que o gás de combustão contém 15% de CO 2 (nota: A típica concent...

De gases de combustão das usinas é um barato CO 2 fonte para o crescimento de algas. Nós construímos &quot;gás de combustão para cultivo de algas&quot; protótipo sistemas e descreveu como para ampliar o processo de cultivo de algas. Demonstrámos a utilização de um modelo bio-reacção de transferência de massa para simular e conceber o funcionamento óptimo do gás de combustão para o crescimento de Chlorella sp. em algas foto-biorreatores.

Otimizar Configurações de gases de combustão para promover o crescimento de microalgas em fotobiorreatores via simulações de computador

Flue gas from power plants can promote algal cultivation and reduce greenhouse gas emissions1. Microalgae not only capture solar energy more efficiently ...

O objetivo geral do seguinte protocolo é demonstrar que o controle de gás residual pode melhorar o crescimento de microalgas em gás de chaminé por meio de simulações computacionais, e mostrar os procedimentos para o cultivo e a ampliação do cultivo de algas. Isso é alcançado primeiramente utilizando um modelo cinético para simular as condições de crescimento de microalgas sob diferentes taxas de transferência de massa em modos de controle de gás residual, sendo que os perfis de concentração de dióxido de carbono apresentados aqui correspondem às equações do modelo. Em seguida, são demonstrados os procedimentos para o cultivo de algas e a ampliação do cultivo algal.Posteriormente, as algas são cultivadas sob gás de combustão em um pequeno biorreator fotobiológico. O gás de combustão é gerado pela combustão natural e suas vazões são controladas por um sistema de controle de fluxo de massa antes de ser introduzido no sistema algal. Os resultados das simulações do modelo mostram que o controle do gás de saída pode reduzir a inibição do substrato e promover o crescimento microalgal com o gás de combustão.Mostrou-se também que o controle de gás liga-desliga reduz o uso de gás residual e

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A integração do cultivo de microalgas com gás de combustão industrial acabará por introduzir metais pesados e outros compostos inorgânicos no meio de crescimento. Este estudo apresenta um procedimento utilizado para determinar o destino final e o impacto de metais pesados e contaminantes inorgânicos no crescimento de Nannochloropsis salina cultivada em fotobiorreatores.

Quantificação de Metais Pesados ​​e outros contaminantes inorgânicos sobre a produtividade de Microalgas

Este artigo descreve o processo de montagem e operação de um biorreator fotossintético de bench-scale que pode ser usado, em conjunto com outros métodos, para estimar os parâmetros de crescimento cinético pertinentes. Este sistema monitora continuamente o pH, a luz e a temperatura usando sensores, uma unidade de aquisição e controle de dados e software de aquisição de dados de código aberto.

Construção e configuração de um Bioreactor Fotossintético Algal com Escala de Banco com Monitoramento de Temperatura, Luz e pH para testes de crescimento cinético

Aqui, apresentamos um protocolo para construir laboratório-escala bolha coluna fotobiorreatores e usá-los para a cultura de microalgas. Ele também fornece um método para a determinação da taxa de crescimento da cultura e do conteúdo de lipídios neutros.

Cultivo de microalgas verdes em fotobiorreatores coluna de bolha e um ensaio para lípidos neutros

O cultivo axenic da bancada-escala facilita a caracterização microalgal e a optimização da produtividade antes da escala subseqüente do processo-acima. Os fotobiorreatores fornecem o controle necessário para experimentos microais confiáveis e reprodutíveis e podem ser adaptados para cultivar microalgas com segurança com os gases corrosivos (CO2,SO2,NO2)das emissões de combustão municipal ou industrial.

Cultivo de microalgas e quantificação de biomassa em um fotobiorreator em escala de banco com gases corrosivos de flue

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Um método para a determinação do teor de ácidos gordos e composição de microalgas baseado em ruptura mecânica da célula, a extracção de lípidos à base de solvente, a transesterificação, e quantificação e identificação de ácidos gordos por cromatografia em fase gasosa é descrito. Uma norma interna tripentadecanoin é usado para compensar as possíveis perdas durante a extração e transesterificação incompleta.

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