Name: Luminométricos levedura e Xenopus ovócitos eletrofisiológicos Exames do mecanosensibilidade Molecular de TRPV4 (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-12-31T13:15:00.000+00:00
Duration: 12 min 9 s
Description: Aprenda a investigar a mecanossensibilidade do canal iônico TRPV4 usando leveduras transgênicas e ovócitos de Xenopus. Este método combina luminometria de aequorina e eletrofisiologia para analisar respostas a estímulos hipotônicos.

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Gostaríamos de agradecer a Andrea Kremsreiter pela excelente assistência técnica. Trabalho em nosso laboratório é apoiado pelo NIH GM096088 eo Vilas Confiança da Universidade de Wisconsin - Madison.

1. Métodos Yeast luminometria Use BYYT cepa de Saccharomyces cerevisiae. É um yvc1-tok1-derivado de BY4741 (MATA, ura3D0, his3D1, leu2D0, lys2D0, yvc1 :: HIS3, tok1 :: kanMX4). Transformar as células com o plasmídeo que expressa pEVP1/Aeq aequorina Leu-seleccionável e o rato que expressam TRPV4 plasmídeo ura-selecionável p416GPDV4, tal como descrito em 26 Batiza et al. E 24 Loukin et al. Utilizar métodos normalizados de construção dos plasmídeos e transformação 27 . Cepa de levedura e plasmídeos estão disponíveis mediante solicitação. <ol><li> Cultura 2 ml de células de levedura durante a noite a fase pós-logarítmica em um agitador a 30 ° C em Leu-ura-&quot;DCD&quot; meio abandono 28 (uma variante empobrecido-sulfato do meio CMD-leu-ura 29), suplementado com sorbitol 1M . Inocular 200 mL destas culturas em 1,8 ml de meio fresco suplementado com 2 mM de o Luciferin celenterazina. Crescer no escuro à temperatura ambiente por mais de 24 horas sem agitação. </li><li> Medir a osmolaridade da cultura (normalmente a 1.400 mOsM) e outras soluções (a seguir) utilizando um osmómetro de pressão de vapor. </li><li> Aliquota de 20 ul de cultura fresco para um tubo de luminómetro de 12 milímetros para um único tubo do luminómetro. </li><li> Para o choque hipotónico, adicionar 200 mL de uma solução, contendo NaEGTA 25 mM (pH 7,2) ou nomes (pH 7,2) e NaCl 500-100 mM, (osmolaridade total de 1,200-400 mOsM), dependendo do grau desejado de choque. Monitorar continuamente a luminescência antes e pelo menos 120 segundos após o downshock osmótica, interrompido apenas pelo breve operação de diluição. Registrar saída luminometer em um computador desktop como unidades de luminescência relativa (LSD). </li></ol> Embora não seja para o estudo de TRPV4 transgénico, temos usado uma variante do protocolo acima num sistema automatizado para analisar as respostas de um grande número de estirpes de levedura. Estudo of as respostas aos hipo-30 ou 31 hiperosmóticas estímulos do deletome levedura (a coleção de 4.906 levedura deletants de um único gene), utilizando uma luminometer microplaca e analisados ​​com o software correspondente foi bem sucedida. 2. e 3. Ovócitos Métodos Eletrofisiologia Eletrofisiologia usa métodos básicos 32. PCR amplificar a grelha de leitura aberta de tipo selvagem ou mutante utilizando TRPV4 alta-fidelidade PfuUtra polimerase e integrado pGH19 33. Isto implica uma inserção precisa do ORF entre 5 &#39;e 3&#39; UTRs do gene da p-globina de Xenopus β e a jusante de uma polimerase de ARN de T7-promotor. Linearizar o construto a jusante da UTR 3 &#39;e utilizadas como modelos in vitro em T7 ARN polimerase de reacção. Use técnicas de biologia molecular padrão 34. Use estágio V-VI ovócitos de X. laevis. A criação de animais, ovariecto parcialminha, a remoção envelope defolliculation e vitelino siga os procedimentos padrão 32,33,35. Injetar 2-40 ng de solução cRNA por ovócitos utilizando um microinjetor automático Drummond Nanoinject II. Injetar ~ 30 ovócitos para cada conjunto de experimentos. Após injecção TRPV4-ARNc, incubar os oócitos no meio ND96 com gentamicina (100 ug / ml) e 1 pM de ruténio vermelho 14. 2. Dois eletrodos de tensão da braçadeira <ol><li> Puxe borosilicato pipetas de gravação de vidro de precisão descartáveis ​​micropipetas 100 ul individualmente com um puxador de pipeta. </li><li> Puxe os dois eletrodos de pipeta de corrente injeção de tensão de medição e são puxados para ter uma abertura de ponta de ~ 1 mícron de diâmetro. </li><li> Eletrodos de aterramento com 2 M KCl resultando em 0,1-0,2 mohms resistência. Montá-los em headstages HS2A, que em conjunto com um VG-2Ax100 virtual aterrado braçadeira banho, estão ligados a uma interface amplificador GeneClamp 500 através de um digitalizador Digidata 1440. Adquirir<html> dados utilizando software pClamp10. </li><li> Coloque o oócito para ser testado em um banho de 1 ml de uma câmara de plástico fabricada montado na plataforma de um microscópio de dissecação com 20X de ampliação. A solução do banho é virtual fundamentada por uma ponte de ágar 3 M KCl e um fio de prata clorada colocado perto do oócito e ligado a uma fase de terra virtual VG-2A. </li><li> Construa a câmara para a perfusão contínua com tubos de plástico como entrada e saída de solução. Ligar o tubo de entrada está ligado a um sistema de perfusão fabricada, que é um colector de 50 ml de seis reservatórios de seringas, cada um cheio com uma solução diferente. Taxas de alimentação de gravidade de qualquer solução particular é controlada para ~ 2-3 ml / min usando &quot;Keck&quot; grampos rampa nas tubulações. </li><li> Montar os dois eléctrodos com os seus headstages em micromanipuladores. Realize penetrações eléctrodos da ovócito por micromanipulação. </li></ol> 3. Grampo patch Exame de mecanosensibilidade direto &quot;&gt; Os métodos básicos de patch clamp incluindo a preparação pipeta, formação GÊ-selo, e em formação de células ou modos excisadas são aqueles em Hamill et al. 36 e Conn 32. <ol><li> Encha pipetas de vidro de silicato de boro, com uma abertura de diâmetro de ~ 1 mM na ponta (número de bolhas 5-6) com KCl 98 mM, MgCl2 1 mM, e 10 mM de K +-HEPES, pH 7,2. </li><li> Prenda a pipeta patch clamp através de um tubo de plástico para uma seringa de 5 ml e através de uma T-junção, também a um manômetro. Utilize um computador para lidar com ambos o eletrodo e as saídas manômetro. Aquisição de dados em 10 kHz, e, em seguida, reproduzir através de um filtro de oito pólos Bessel em 1 kHz para análise. </li><li> Diferentes remendos podem ser excisadas a partir do mesmo oócito repetidamente. Esta prática faz com que o exame da atividade molecular de TRPV4 mais eficiente e confiável. </li></ol>

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Os autores declaram que não têm interesses financeiros concorrentes.

Como foi dito na Introdução, os métodos comumente utilizados para estudar funções TRPV4 por vezes resultou em inconsistências e controvérsias. Os dois conjuntos de métodos aqui descritos oferecem algumas vantagens e pode complementar os métodos existentes. Enquanto que apenas descrevem estudos sobre TRPV4, os métodos podem ser estendidos para estudar outros canais iónicos bem. 1. Métodos Yeast luminometria Brotando levedura tem uma Ca 2 +-resposta influx...

TRP (potenciais receptores transientes) composto por sete subfamílias de canais de cátions que servem funções sensoriais 1,2. Nos mamíferos, TRPV, subfamília vanilloid de TRP, tem seis variedades. TRPV4 (tipo 4) 3,4 responde ao calor, determinados produtos químicos, inchaço osmótico, ou tensão de cisalhamento. O gene TRPV4 foi repetidamente isolados por candidato a gene e / ou de clonagem de expressão 5-8. O último método seguido resposta do produto de gene a hipo-osmolaridade. TRPV4 é expresso em quase todos os órgãos e funções do desenvolvimento, fisiologia, patologia ou de muitos tipos de células diferentes de 3,4. Striking são os&gt; 50 autossômicas humano mutações TRPV4 dominantes, fazendo com que as neuropatias periféricas e / ou displasias esqueléticas (anormalidades no desenvolvimento do esqueleto) 9-11. As displasias esqueléticas variar de leve tipo brachyomia 3 (tipo 3 nanismo), displasia spondylometaphyseal tipo Kozlowski, a severe displasias, alguns causando morte neonatal ou embrionário. Apesar de todas as formas de mecanismos parecem possíveis, nenhum explica a diversidade, complexidade, variabilidade e sobreposições ocasionais dessas doenças 4. Como outros canais TRP 1, TRPV4 é um tetrâmero. No rato ou TRPV4 humana, cada subunidade é composta de 871 resíduos. O elemento central é o seis transmembranar de hélices (S1-S6), que são susceptíveis arranjados de uma forma semelhante aos canais sensíveis à voltagem de K +. Há, S1 a S4 formar um domínio periférica e a S5 e S6 formar o domínio de permeação de poro. Entre S5 e S6 de TRPV4 é uma hélice de poro curta seguido do LDLFKLTIGMGDL sequência, quatro dos quais presumivelmente convergem para formar o filtro de catião. O 470-resíduo segmento citoplasmático N-terminal contém seis repetições de anquirina, que se sabe ligarem a proteínas ou ligantes. O segmento citoplasmático de 152 resíduos C-terminal inclui uma sequência de ligação à calmodulina, entre outros possíveis locais que se ligam otseus elementos 3. TRPV4 é um canal de cátions que essencialmente exclui ânions 1. Embora a sua função fisiológica é a transdução de estímulos de influxo de Ca2 +, é também permeável a outros catiões com uma sequência de permeabilidade Eisenman IV, favorecendo bivalente numa Ca P: P Na ~ 7 12. Single-channel condutância retifica em ~ 90 pS para fora e para dentro ~ 40 pS 6,13,14. Heterologamente expressa atual (abaixo) pode ser ativado por hipo-osmótico inchaço, tensão de cisalhamento, ou calor 15. Ele também é ativado por ácidos graxos poliinsaturados 16,17 eo éster phorbal sintético 4αPDD 18. No presente, o agonista mais potente é GSK1016790A 19 e antagonista é GSK2193874, eficaz em 10 -9 a 10 -8 M 20, ambos descobertos pela maior taxa de transferência, a tela de pequeno peso molecular. Duas áreas-chave da investigação TRPV4 permanecer confuso: (1) Mesmo quando TRPV4 é amplamente estudada por sua mecanosensibilidade, a sua base molecular é controversa. Um modelo de hipo-osmolaridade de alguma forma activa a fosfolipase A2 (PLA2) para produzir o ácido gordo polinsaturado (PUFA) de ácido araquidônico (AA), que é convertido em ácido epoxyeicosatrienoic (IIT) por uma epoxigenase, e a ligação da EET activa TRPV4 16, 17. No entanto, a própria TRPV4 foi mostrado para responder directamente ao estiramento da membrana 14 (abaixo), fornecendo uma explicação mais simples. (2) As patologias são mutantes TRPV4 desconcertante. Na base, é preciso saber se as doenças são devido à perda, a redução ou o aumento das atividades do canal. Mesmo aqui, a literatura está longe de ser clara. Enquanto alelos múltiplos esquelético-displasia foram relatados para ter atividades mais elevadas, (ganho de função, GOF) 4,21, vários foram relatados para ter reduzido actividades (perda de função, LOF) 10,22. Um estudo sistemático de 14 alelos encontrou-os atodas as mutações ser GOF (abaixo) 23. A alegação de que alguns são LOFs parece contradizer o fenótipo de TRPV4-/ - rato knockout, que são viáveis ​​ou férteis, com apenas pequenos defeitos, apesar de uma perda completa da função TRPV4. Uma parte dessas controvérsias tem origem metodológica. Laboratórios usam diferentes métodos, ou variantes de um método, e empregam diferentes padrões de julgamento. Mais comumente, TRPV4 é transitoriamente expressa em células de mamíferos em cultura (HEK, CHO, HeLa) ea ascensão do interno [Ca 2 +] em cima de agonista ou estimulação hipotônica está registrado com o Ca 2 + corante fluorescente sensível, Fura-2. O excesso de confiança em este ensaio fluorimétrico foi criticado 1. O nível de expressão em diferentes populações, a distribuição no mesmo, bem como a concentração efectiva do corante, necessita de ser controlada e documentada. Mais confiável é os exames eletrofisiológicos diretos. Mesmo isto, como commonly praticado, também não é sem problemas. Porque os níveis de expressão em células de cultura individuais são difíceis de controlar, as correntes de células completas têm grandes variações. Além disso, porque as correntes são pequenos, estatísticas confiáveis ​​terá que contar com grandes tamanhos de amostra, muitas vezes não é prático. Exames de patch-clamp raramente foram executadas. Algumas dessas gravações mostram aglomerados de rajadas de atividade que fazem avaliação estatística desafiador 16,17. Para entender melhor o mecanosensibilidade molecular, nós desenvolvemos dois sistemas adicionais para examinar TRPV4. (1) Para isolar TRPV4 longe de seus parceiros de mamíferos habituais, temos expressa TRPV4 rato em brotamento levedura 24. Expressão funcional de TRPV4 neste contexto evolutivamente distante mostrou que ele ainda pode responder a força osmótica sem os seus parceiros habituais. Porque o fermento não faz PUFAs como AA ou EET, e seu genoma tem genes PLA2 ou epoxigenase, este expression também mostra que não são necessários para TRPV4 para detectar força. Tendo TRPV4 nos moleculares eucariontes biologicamente mais amenas também permite manipulações eficiente para a frente ou reversa genéticos 25. (2) Para as análises em profundidade biofísicos de TRPV4, expressamos TRPV4 em oócitos de Xenopus. Ao contrário das células cultivadas, que produzem sub-nA a nA (10 -10 a 10 -9 A) correntes, um ovócito expressa correntes em mA de (10 -6 a -4 10 A). Sinal muito maior sobre o ruído permite uma melhor quantificação e comparação mais confiante. TRPV4, de modo expresso, também podem ser examinados como moléculas individuais usando uma braçadeira de patch. Um único oócito permite amostragem remendo repetiu, novamente fazendo a quantificação mais confiável. Tais estudos mostraram que o próprio canal TRPV4 podem ser diretamente ativados por força trecho membrana 14. As análises também mostraram que 14 representantes alelos esquelético-displasia são todas as mutações de ganho de função. Além disso, o degree deste Ca 2 + vazamento constitutiva paralela à gravidade das doenças ósseas 23. Por causa de sua novidade e utilidade, os procedimentos detalhados desses dois métodos são montados aqui para permitir repetições, em futuras pesquisas sobre TRPV4 ou canais semelhantes.

<table><tbody><tr><td>Osmômetro de Pressão de Vapor</td><td>Wescor</td><td>Wescor 5500</td><td>Logan, UT, EUA</td></tr><tr><td>Sirius Luminômetro de Tubo Único&nbsp;</td><td>Titertek-Berhold</td><td>Sirius</td><td>Huntsville, LA, USA</td></tr><tr><td>Luminômetro de microplaca</td><td>Titertek-Berthold</td><td>Mithras LB940</td><td>Huntsville, LA, EUA</td></tr><tr><td>Software de luminometria</td><td>Titertek-Berthold</td><td>MikroWin2000</td><td>Huntsville, LA, USA</td></tr><tr><td>Braçadeira de remendo e software</td><td>Axon Instrument</td><td>HS2A headstage, braçadeira de banho aterrada virtual VG-2Ax100, amplificador GeneClamp 500, digitalizador digidata 1440, Software pClamp10</td><td>Union City, CA, EUA</td></tr><tr><td>Manômetro</td><td>Bio-Tec</td><td></td><td>Winooski, VT, EUA</td></tr><tr><td>Extrator de pipetas</td><td>Sutter Instrument Co</td><td>Modelo P-97</td><td>Novata, CA, EUA</td></tr><tr><td>Microinjetor</td><td>Drummond Scientific</td><td>Nanoinject II</td><td>Broomall, PA, EUA</td></tr><tr><td>Luciferina celenterazina</td><td>Invitrogen</td><td></td><td>Carlsbad, CA, EUA</td></tr><tr><td>T7 RNA polimerase reação</td><td>Ambion</td><td>mMessage mMachine</td><td>Austin, TX, EUA</td></tr><tr><td>Gentamicina</td><td>Sigma</td><td></td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Vermelho de rutênio</td><td>Sigma</td><td></td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Micropipetas&nbsp;</td><td>Micropipetas de</td><td>100 microlitros</td><td>Drummond Broomall, PA, EUA</td></tr><tr><td>Polimerase PfuUtra de alta fidelidade&nbsp;</td><td>Stratagene</td><td></td><td>La Jolla, CA, EUA</td></tr></tbody></table>

luminométricos levedura e xenopus ovócitos eletrofisiológicos exames do mecanosensibilidade molecular de trpv4

Yeast Luminometric and Xenopus Oocyte Electrophysiological Examinations of the Molecular Mechanosensitivity of TRPV4

TRPV4 (Transient Receptor Potenciais, família vanilloid, tipo 4) é amplamente expresso em tecidos de vertebrados e é ativada por vários estímulos, inclusive por forças mecânicas. Certas mutações TRPV4 causar óssea hereditária complexo ou patologias neuronais em humanos. De tipo selvagem ou mutante TRPV4 transgenes são geralmente expressos em células de mamífero de cultura e examinadas por Fura-2 fluorometria e pelos eléctrodos. Em termos de mecanismo de mecanosensibilidade e as bases moleculares das doenças, a literatura atual é confuso e controverso. Para complementar os métodos existentes, descrevemos dois métodos adicionais para examinar as propriedades moleculares de TRPV4. (1) de rato e um transgene TRPV4 aequorina são transformadas em leveduras de brotamento. Um choque hipo-osmtic da população transformante produz um sinal luminométrico devido à combinação de aequorin com Ca 2 +, lançado pelo canal TRPV4. Aqui TRPV4 é isolado a partir dos seus parceiros proteínas de mamíferos normaise revela o seu próprio mecanosensibilidade. (2) ARNc de TRPV4 é injectado em oócitos de Xenopus. Após um período de incubação adequado, a corrente de TRPV4 macroscópica é examinada com uma pinça de voltagem de dois eléctrodos. O aumento de corrente na eventualidade de remoção de osmótico inerte a partir do banho de oócitos é indicativo de mecanosensibilidade. Os microampere (10 -6 a -4 10 A) correntes de ovócitos são muito maiores do que os subnano a nanoampere (10 -10 a 10 -9 A) correntes de células em cultura, produzindo quantificações mais claras e avaliações mais confiantes. Correntes microscópicos que refletem as atividades das proteínas de canais individuais também pode ser registrada diretamente sob um patch clamp, em on-célula modo excisadas ou. O mesmo ovócito fornece várias amostras de patch, permitindo a replicação de melhores dados. Aspiradores aplicados aos patches podem ativar TRPV4 para avaliar diretamente mecanosensibilidade. Esses métodos devem também ser úteis no estudo de outros tipos de canais TRP.

Numa experiência típica luminometria, uma gama de 400-1,200 mOsM hipotónicas choques para baixo é conseguida através da adição de 200 ul de soluções de choque de baixa osmolaridade diferente de 20 l de cultura a 1.400 mOsM. A actividade TRPV4 é evidente quando a RLU do experimental é comparada com a de dois controlos negativos: as células de levedura transformadas com o plasmídeo p416GPDV4 vazio ou um que contenha o gene TRPV4 com uma mutação no filtro de iões (Figura 1) 24. <p c...

Para complementar os métodos habitualmente utilizados para estudar TRPV4 de, dois métodos são descritos: O mecanosensibilidade pode ser estudada por Ca 2 +-aequorina luminometria em leveduras transgénicas após desafio com hipo-osmótico. Ele também pode ser examinada em TRPV4-ARN injectado oócitos de Xenopus a-célula inteira de dois eléctrodos de aperto de voltagem ou remendo grampo em no modo de célula ou excisadas.

Luminométricos levedura e Xenopus ovócitos eletrofisiológicos Exames do mecanosensibilidade Molecular de TRPV4

TRPV4 (Transient Receptor Potentials, vanilloid family, type 4) is widely expressed in vertebrate tissues and is activated by several stimuli, including ...

O objetivo geral do experimento a seguir é examinar a sensibilidade mecânica do canal iônico trip V quatro. Isso pode ser alcançado transformando células de levedura com o gene trip V quatro e examinando a entrada de cálcio hipoteticamente induzida através de um transgênico estranho usando um luminômetro. Isso também pode ser examinado com a abordagem eletrofisiológica.Trip V quatro CRNA é gerado pela primeira vez e injetado em citos de xenopus após a incubação. Os citos são examinados por dois grampos de tensão de eletrodo no desafio hipotônico. Para examinar a sensibilidade mecânica no nível de canal único, a sucção é aplicada aos adesivos de membrana excisados dos citos.Eu sou o professor Jin Kung. Anteriormente, as atividades dos quatro canais iônicos TRIP B foram amplamente mostradas pela URA ao mito de fluorescência desenvolvido aqui, fornecendo alternativas poderosas e quantitativas para examinar a sensibilidade mecânica do trip B quatro. O primeiro método que adotamos para o uso de lum lum é através de água transgênica para examinar a sensibilidade mecânica de Trip V quatro em levedura de brotamento.No segundo método com abordagem eletrofisiológica, as propriedades do Trip

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JoVE Journal

Biology

Biologia

A abordagem lacuna vaselina cut-aberto é usado para obter baixos gravações de ruídos de correntes iônicas e gating de canais iônicos dependentes de voltagem expressos em oócitos de Xenopus com alta resolução de cinética de canais rápidos. Com modificações menores, fixador de tensão fluorometria pode ser acoplado com o protocolo do oócito corte aberto.

O<em&gt; Xenopus</em&gt; Oocyte Cut-aberto vaselina Gap Técnica Voltage-clamp Com Fluorometria

Os microeletrodos afiados permitem a caracterização eletrofisiológica precisa da saída de fotorreceptores e interneurônios visuais em Drosophila viva. Aqui, mostramos como usar esse método para registrar respostas de voltagem de alta qualidade de células individuais à estimulação de luz controlada. Este método é ideal para estudar o processamento de informações neurais em olhos compostos de insetos.

Método eletrofisiológico para respostas gravação intracelular de tensão<em&gt; Drosophila</em&gt; Fotorreceptores e Interneurônios à luz Estímulos<em&gt; In Vivo</em

Estudar canais iônicos através de um sistema heterólogo expressar tornou-se uma técnica nuclear em pesquisa biomédica. Neste texto, apresentamos um método eficiente tempo para conseguir uma expressão de canal iónico com força controlada através da realização de transfecção transiente, sob o controlo de um promotor indutível.

Controlável Expressão Ion Canal através de transfecção transiente Induzível

Este artigo descreve um aumento da Fluorometria Voltagem-Clamp convencional (VCF) onde Fluorescente Aminoácidos Não-naturais (fUAA) são usados ​​em vez de corantes maleimida, para sondar rearranjos estruturais em canais iônicos. O procedimento inclui injeção de DNA de oócito de Xenopus , coinjeção de ARN / fUAA e medições simultâneas de corrente e fluorescência.

Braçadeira de tensão Fluorometria em<em&gt; Xenopus</em&gt; Oócitos Usando Aminoácidos Fluorescentes Não-naturais

As gravações de células inteiras dos fotorreceptores Drosophila melanogaster permitem a medição de solavancos escuros espontâneos, colisões quânticas, respostas macroscópicas à luz e relações tensão-tensão em várias condições. Em combinação com as ferramentas de manipulação genética de D. melanogaster , este método permite o estudo da via de sinalização inositol-lipídico ubíqua e seu alvo, o canal TRP.

Método eletrofisiológico para gravações de tensão de célula inteira de<em&gt; Drosophila</em&gt; Fotorreceptores

Este artigo descreve métodos específicos para obter quantidades bioquímicas de detergente-solubilizado TRPV1 para análises espectroscópicas. Os protocolos combinados fornecem ferramentas bioquímicas e biofísicas que podem ser adaptadas para facilitar estudos estruturais e funcionais para os canais de íon mamíferos em um ambiente controlado por membrana.

Purificação e reconstituição de TRPV1 para análise espectroscópica

Aqui descrevemos a aquisição óptica e a caracterização de potenciais de ação a partir de cardiomiócitos derivados de células-tronco pluripotentes induzidos usando um sistema de fotometria modular de alta velocidade.

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Aqui apresentamos um protocolo descrevendo a transdução viral de regiões cerebrais discretas com construtos optogenéticos para permitir a caracterização eletrofisiológica específica da sinapse em cortes cerebrais agudos de roedores.

Ex Vivo Interrogação Optogenética da Transmissão Sináptica de Longo Alcance e Plasticidade do Córtex Pré-frontal Medial para o Córtex Entorrinal Lateral

O protocolo demonstra que, realizando microtransplante de membranas sinápticas em oócitos Xenopus laevis , é possível registrar respostas consistentes e confiáveis de receptores de ácido α-amino-3-hidroxi-5-metil-4-isoxazolepropônico e receptores de ácido γ-aminobutírico.

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A eletrofisiologia é o padrão-ouro para investigar a atividade do canal iônico. No entanto, existem muitas abordagens alternativas, incluindo métodos ópticos. Aqui, descrevemos um método para monitorar a atividade da repetição rica em leucina contendo canais de ânions formados por 8 canais (LRRC8) usando um método baseado em transferência de energia de ressonância de Förster (FRET) entre subunidades.

Monitoramento da atividade de 8 canais (LRRC8/VRAC) de repetição rica em leucina usando transferência de energia de ressonância de Förster de emissão sensibilizada (SE-FRET)

Para estudar as respostas de células excitáveis in vitro, o protocolo descreve o monitoramento óptico de mudanças na geração de potencial de ação devido à eletroporação em um modelo de célula excitável simples de células HEK de pico tet-on geneticamente modificadas, bem como mudanças na voltagem transmembrana com extração automatizada de parâmetros relevantes.

Monitoramento de mudanças induzidas por eletroporação na geração de potencial de ação em células Tet-On Spiking HEK geneticamente modificadas

Aprenda a investigar a mecanossensibilidade do canal iônico TRPV4 usando leveduras transgênicas e ovócitos de Xenopus. Este método combina luminometria de aequorina e eletrofisiologia para analisar respostas a estímulos hipotônicos.

Luminométricos levedura e Xenopus ovócitos eletrofisiológicos Exames do mecanosensibilidade Molecular de TRPV4

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