Name: Resgate de Vírus da Doença de Newcastle recombinante de cDNA (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-10-11T23:30:00.000+00:00
Duration: 10 min 55 s
Description: Aprenda a resgatar vírus recombinante da Doença de Newcastle a partir de cDNA clonado. Este método utiliza células mamíferas infectadas com vírus auxiliar e plasmídeos para replicação viral, seguido de cocultura com células aviárias e amplificação em ovos embrionados.

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Autores gostariam de agradecer aos membros passados ​​e presentes nos laboratórios do drs. Peter Palese e Adolfo García-Sastre para o desenvolvimento de NDV reverter genética técnicas e de assistência técnica. Pesquisa em vírus da doença de Newcastle em AG-S laboratório é parcialmente financiado pelo NIAD conceder R01AI088770 e pelo Departamento de Segurança Interna Ciência e Tecnologia Centro de Excelência para emergentes e zoonoses animais (CEEZAD, número prêmio 2010-ST-061-AG001). Pesquisa em LM-S laboratório é financiado pelos subsídios NIH RO1 AI077719, R21NS075611-01, R03AI099681-01A1, os Centros de Excelência para NIAID Influenza Pesquisa e Vigilância (HHSN266200700008C), e da Universidade de Rochester Center for Biodefense Imune Modeling (HHSN272201000055C) .

1. Preparação de células de mamíferos (Figura 4A, Dia 1) Dividir HEp-2 ou células A549 no dia anterior transfeco em placas de 6 poços. Densidade das células deve atingir 80-90% de confluência no dia seguinte. Normalmente, um prato de 100 mm confluentes podem ser divididos em 8 poços (cerca de 1 x 10 6 culas por po). Para cada vírus para ser resgatado, 2-4 poços diferentes devem ser incluídos, bem como dois poços adicionais para os controles pCAGGS-GFP e pCite GFP-18, com o objetivo de monitorar a transfecção e MVA-T7 eficiência de infecção, respectivamente. 2. A infecção de células de mamíferos com o vírus vaccinia recombinante Modificado Ancara Expressando o bacteriófago T7 ARN polimerase (MVA-T7) (Figura 4A, Dia 2) <ol><li> Aqueça PBS 1x/BA/PS e media a 37 ° C. </li><li> Lavar as células, duas vezes, com 1 ml de PBS 1x/BA/PS. </li><li> Infectar as células de mamíferos em cultura com o vírus MVA-T7 com uma multiplicidade de infecção (moi) De 1 pf u / célula a um volume final de 200 ul de PBS / BA / PS durante 1 hora à temperatura ambiente. </li><li> Durante a incubação da infecção viral, preparar a mistura de transfecção como descrito em 3. </li></ol> 3. A transfecção de células de mamíferos (Figura 4A, Dia 2) <ol><li> Preparação de Lipofectamina: Misturar 1-2 ug de LPF2000 com 250 ul de OptiMEM por tentativa de resgate e incubar durante 5 min à temperatura ambiente. </li><li> Preparação de DNA: Faça um cocktail plasmídeo para cada resgate em 50 ul de OptiMEM. Adicionar 0,4 g de pTM1-NP, 0,2 ug de pTM1-P, e 0,2 ug de pTM1-L por tubo. Adicionar 1 mg de a-clone de cDNA de NDV para ser resgatado a cada tubo. Também preparar dois transfections de controle, um com 2 mg de pCAGGS-GFP (para verificar a eficiência de transfecção) e outro com 2 mg de pCite-GFP (para verificar T7 polimerase impulsionado expressão pelo MVA-T7). </li><li> Após a solução LPF2000-OptiMEM foi pré-incubada durante 5 min (passo 3.1), adicionar 250ul da solução para os tubos de DNA (passo 3.2) e incubar durante 20-30 minutos à temperatura ambiente. </li><li> Após incubação com MVA-T7, remova o inóculo do vírus por aspiração e substituir com a mistura de transfecção de DNA LPF2000 (passo 3.3). </li><li> Adicionar 1 ml de meio DMEM 10% FBS / PS para cada prato. </li><li> Incubar as células transfectadas / infectadas durante 6-8 horas (ou durante a noite) a 37 ° C, 5% de CO 2 e, em seguida substituir o meio de transfecção com 1,5 ml de DMEM fresco de 10% FBS / PS. </li><li> Em 24 horas após a transfecção, os poços de controlo pode ser observado sob um microscópio de fluorescência para avaliar a eficácia de transfecção (pCAGGS-GFP) e a actividade da polimerase de T7 (pCite-GFP) (Figura 5A). Continuar com a co-cultura das células transfectadas / infectadas com fibroblastos aviárias, como descrito abaixo. </li></ol> 4. Co-cultura de células de mamíferos com células aviárias (Figura 4A, Dia 3) Geralmente, um confluente 100 milímetros de cultura de tecidos prato de frango (CEFs) or pato (defs) fibroblastos de embrião é utilizada por dois poços transfectadas. Certifique-se de preparar, com antecedência, o suficiente 100 milímetros pratos de cultura de tecidos de células aviárias por todas as tentativas de resgate. Para resgate eficiente do vírus, meio DMEM 10% FBS / PS é suplementado com 5% de fluido alantóide e 30 mM de MgCl 2. Neste ponto, 24 hr pi, as células de mamíferos podem começar a exibir o efeito citopático (CPE), devido à infecção MVA-T7, asevident na Figura 5A. <ol><li> Aqueça 1x e mídia PBS a 37 ° C. </li><li> Lave as células de mamíferos, 2x com 1 ml de PBS 1x. </li><li> Tripsinizar as células de mamífero com 0,2 ml de EDTA-tripsina, até que isolada. Ressuspender as células em 1 ml de meio DMEM 10% FBS / PS, 5% de fluido alantóide, 30 mM de MgCl 2 e de transferência de um tecido de 100 milímetros prato de cultura. Adicionar 3 ml de mesma mídia. </li><li> Lavar as células de aves, por duas vezes, com 4 ml de PBS 1x. </li><li> Tripsinizar as células de aves com 1 ml de EDTA-tripsina e incubar durante 1-2 min a 37 ° C até as células separar. ª Ressuspendercélulas e adicionando 8 ml de DMEM 10% FBS / PS, 5% de fluido alantóide, 30 mM de MgCl 2 e adicionar 4 ml de células tratadas com tripsina para as células de mamíferos na co-cultura de tecido 100 milímetros prato de cultura para um volume total de 8 ml (4 ml de mamíferos, células de aves 4 ml). </li><li> Agitar suavemente à mão as células co-cultivadas na placa de 100 mm, a fim de ter uma distribuição uniforme e, em seguida, colocá-los na incubadora a 37 ° C durante 3-4 dias. Os critérios para infectar os ovos de 3 ou 4 dias após a co-cultura de células de mamíferos e de aves depende da quantidade de efeito citopático (arredondamento celular, morte, descolamento da superfície, etc.) É observada na infecção viral MVA-T7. </li></ol> 5. Infecção de ovos embrionados de galinha (Figura 4A, Dias 6-7) <ol><li> Depois de 3-4 dias de co-cultura de células de mamíferos e de aves, remover um ml de sobrenadante de cultura de tecidos e adicionar a um tubo Eppendorf. </li><li> Centrifuga-se o sobrenadante de cultura de tecidos durante 1 minuto a 12.000 rpm em um bancocentrífuga de topo para remover os detritos celulares. </li><li> Vela os ovos usando uma caixa de miragem luz para ver a interface entre o saco de ar e na cavidade alantóide. Faça uma marca na fronteira de interface evitando localização dos vasos sanguíneos. Spray de etanol de 70% sobre os ovos para estabelecer condições estéreis. Suavemente fazer um buraco na casca do ovo no local marcado e inocular 500 mL do sobrenadante usando uma insulina (1 ml) da seringa, com vista vertical e directamente a agulha para dentro da cavidade alantóide. (Figura 4B). </li><li> Selar o corte na casca de ovo com cera derretida ou parafina. </li><li> Incubar os ovos de 2-3 dias a 37 ° C. </li></ol> 6. Colheita de líquido alantóico de Infected ovos embrionados de galinha (Figura 4A, dias 8-10) <ol><li> Incubar os ovos infectados por 2-4 horas ou durante a noite a 4 ° C, a fim de matar o embrião de galinha e de coagular o sangue. </li><li> Pulverizar os ovos com etanol a 70% (para manter condições estéreis). </li><li> Toque cuidadosamente a porção apical do ovo, por cima da cavidade de ar, com uma colher. Uma vez que a casca do ovo está rachado, remover os fragmentos com uma pinça e totalmente expor a membrana alantóide. </li><li> Expor a cavidade alantóide por excisão da membrana alantóico com fórceps e tesouras, evitando danos aos vasos sanguíneos e a gema. </li><li> Empurre cuidadosamente para baixo o embrião com uma espátula e recolher o fluido alantóide upflowing (8-12 ml por ovo) com uma pipeta de 10 ml. Evite danificar a membrana da gema. Transferir o fluido alantóico a um tubo de centrífuga de 15 ml em gelo (usar um tubo por ovo). </li><li> Clarificar o fluido alantóide por centrifugação durante 5 min a 1500 rpm. Transferir o sobrenadante para um novo tubo, sem perturbar o sedimento. </li><li> Armazene as amostras a 4 ° C por até uma semana, até que verificá-los para a presença de NDV por ensaio de hemaglutinação. </li></ol> 7. Hemaglutinação (HA) Assay A presença do vírus no allantóico fluido a partir de ovos infectados pode ser determinada macroscopicamente pela sua capacidade para hemagglutinate peru glóbulos vermelhos (RBC). No caso de NDV, de cerca de 10 6 unidades formadoras de placas (pfu) por ml são necessárias para dar um sinal positivo no ensaio de HA. Os ensaios de HA são realizadas em placas de 96 poços de fundo em V. Negativo (PBS 1x, fluido alantóide não infectado), bem como positivo (fluido alantóide de qualquer vírus NDV) amostras de controle deve sempre ser incluído em qualquer ensaio HA para validá-lo. Para realizar um ensaio de HA: <ol><li> Pipetar 50 ul de 1x PBS por cavidade em uma placa de fundo em V de 96 poços. </li><li> Pipetar 50 ul das amostras de fluido alantóico nas cavidades na primeira coluna da placa. Efectuar diluições em série de 2 vezes através do resto da placa e descartar o último, 50 ul adicionais de poços na última coluna. </li><li> Dispensar 50 ul de 0,5% de peru RBC em PBS 1x por poço. Agite suavemente a placa tocando. </li><li> Incubar a placa a 4 ° C (ou gelo) fou 30-45 minutos ou até que um pelete é formado clara nos poços de controlo negativo. </li></ol>

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<li>Wyatt, L. S., Moss, B., Rozenblatt, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Replication-deficient+vaccinia+virus+encoding+bacteriophage+T7+RNA+polymerase+for+transient+gene+expression+in+mammalian+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Virology%22%5BJournal%5D)">Replication-deficient vaccinia virus encoding bacteriophage T7 RNA polymerase for transient gene expression in mammalian cells.</a> Virology. 210, 202-205 (1995).</li>
<li>Niwa, H., Yamamura, K., Miyazaki, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+selection+for+high-expression+transfectants+with+a+novel+eukaryotic+vector%5BTitle%5D)+AND+%22Gene%22%5BJournal%5D)">Efficient selection for high-expression transfectants with a novel eukaryotic vector.</a> Gene. 108, 193-199 (1991).</li>
<li>Moss, B., Elroy-Stein, O., Mizukami, T., Alexander, W. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Product+review.+New+mammalian+expression+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Product review. New mammalian expression vectors.</a> Nature. 348, 91-92 (1990).</li>
<li>Conzelmann, K. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reverse+genetics+of+mononegavirales%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Top.+Microbiol.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Reverse genetics of mononegavirales.</a> Curr. Top. Microbiol. Immunol. 283, 1-41 (2004).</li>
</ol>

Adolfo García-Sastre é um inventor de patentes sobre o vírus da doença de Newcastle recombinantes que são de propriedade da Escola Icahn de Medicina Monte Sinai.

Vários fatores devem ser considerados para alcançar bons resultados ao resgatar NDV. Em primeiro lugar, a construção de cDNA completo para ser usado precisa ser projetado para permitir a incorporação funcional dos novos transgenes / modificações no genoma NDV. Isso significa que, como dito acima, que as seqüências (i) end apropriado gene (GE), intergênica (IG) e de início gene (GS) estão a ser adicionado, se necessário, (ii) não existem sequências GE ou GS putativos para o estrangeiro gene, e (iii) o genoma recombinante...

O vírus da doença de Newcastle (VDN), um paramyxovirus aviária pertencente ao gênero Avulavirus 1, é um agente zoonótico economicamente relevante e, portanto, amplamente pesquisados ​​e vigiado, o que pode afetar gravemente a avicultura em todo o mundo. Embora não seja um patógeno humano, NDV também tem sido minuciosamente estudados para além do campo veterinário tanto como um modelo paramyxovirus e, devido às suas propriedades muito interessantes, oncolíticos naturais 6. Pesquisa sobre NDV beneficiaram com o desenvolvimento de técnicas de genética reversa para, não-segmentadas vírus de RNA de sentido negativo de fita simples, primeiro descrito para o vírus da raiva por Conzelmann e coleagues 2. Uma variedade de NDVs geneticamente modificados, portadores de genes ou modificações de seu tipo selvagem genoma estrangeiros têm sido amplamente estudado desde então. Trabalhar com estes vírus recombinantes tem sido fundamental para caracterizar diferentes fatores de virulência, não só de NDV, mas também de outros huma relevanten patógenos, como vírus da gripe A 7 - ou o emergente Nipah vírus 8. Além disso, um certo número de diferentes estudos têm explorado o uso destas técnicas para melhorar a actividade anti-tumoral inato de NDV 6,9,10, na maior parte, aumentando as propriedades imunoestimulantes dos vírus. Outra área relevante da pesquisa sobre NDVs recombinantes tem sido a geração de vacinas candidatas contra outras doenças virais, como a gripe 5,11,12, 13 de HIV, sarampo 14, SARS 15, ou que causada pelo vírus sincytial respiratório (RSV) 16. Entre as várias vantagens notáveis ​​fornecidas por NDV são a ausência de imunidade preexistente em populações humanas, a estabilidade das inserções estrangeiras genéticas, falta de actividade recombinatórios e um perfil de segurança global elevada combinada com as acima mencionadas propriedades imunoestimulantes naturais 17. Também é digno de nota o uso potencial de vacinas bivalentes recombinantes em poultry, a gripe aviária de proteção tanto contra NDV e altamente patogênico vírus 11,12. Esta pode ser uma excelente maneira de diminuir as chances de o último espalhamento de selvagem a animais domesticados, contribuindo assim para evitar um possível salto inter-específica da gripe aviária temida para os seres humanos. Finalmente, o NDV-expressando repórter têm sido utilizados para a avaliação de respostas imunitárias inatas, bem como a identificação de antagonistas de interferão codificado por vários vírus 18-27. O processo de salvamento de uma forma recombinante, não segmentado, vírus de RNA de cadeia negativa consiste basicamente em forçar artificialmente um ciclo de replicação viral de uma célula produtora por transfecção de ADNc que codificam a maquinaria molecular infecciosa mínima, conhecido como ribonucleoproteína ou RNP (Figura 2). Os RNPs consistem em a polimerase viral (P e proteínas G), a nucleoproteína (NP) e o comprimento total de ARN antigenómico de vírus. Este RNA + antigenoma é thMolde e necessária para a geração dos genomas de ARN-complementares, as quais, também associados com o resto das proteínas da RNP virai, recapitula o mesmo complexo que um vírus infeccioso natural seria libertar no citoplasma da célula após a infecção (Figura 2A ). A partir deste passo em diante, o ciclo viral pode continuar naturalmente e os viriões recombinantes, encapsidar os genomas modificados, irá ser gerado (Figura 2B). Notavelmente, a transfecção de ADNc genómico, em vez do ADNc antigenï prejudica grandemente ou elimina completamente a eficiência de recuperação 2,28-30. Mesmo quando cDNA antigenï é transfectada, a eficiência da encapsidação do ARN recombinante em RNPs em células transfectadas é provavelmente muito baixo. Devido a isso, os protocolos de salvamento para NDV geralmente incluem diferentes passos para a amplificação das poucas partículas virais libertadas das células originalmente transf por coculturing los com células permissivas e / ou pelainfecção de ovos embrionados. Antes da recuperação, o cDNA pode ser manipulado por procedimentos de clonagem convencionais, de modo a gerar as modificações desejadas. Embora as mutações específicas dos diferentes produtos de genes e sequências reguladoras dos vírus pode ser directamente obtida desta maneira, muitos dos trabalhos publicados envolvendo NDV recombinante foi necessária a adição de uma nova unidade de transcrição no genoma de NDV. Como outros membros da família dos paramixovírus, o genoma de NDV codifica oito proteínas diferentes em seis unidades de transcrição, que são diferencialmente expressos em função da sua localização relativamente à extremidade 3 &#39;de um gradiente decrescente crítico para o ciclo de vida do vírus 1. Devido a isso, o local da nova unidade de transcrição dentro do genoma deve ser cuidadosamente escolhida para alcançar um equilíbrio entre a expressão do transgene e insuficiência de replicação viral. Inserção entre os genes P e M tem sido o mais usado, toutros sites Hough também foram testados 13,31. Seja qual for a inserção, a clonagem de cDNA para o NDV tem de seguir algumas regras para gerar um constructo rescuable: (i) qualquer novo gene a ser incluída dentro do genoma de NDV tem de estar sob o controlo dos sinais adequados para o vírus de ARN dependente de ARN- polimerase. Estas sequências devem ser adicionado a montante da nova estrutura de leitura aberta (ORF), de modo a polimerase pode reconhecer o fim do gene anterior (GE) e o início da nova transgene (GS), espaçadas por uma única sequência de nucleótidos intergénica (IG) . A adição de uma Kozak válido (K) de sequência para melhorar a tradução ribossomal eucariótica, também é recomendado para uma melhor expressão da proteína externa de 32, (ii) uma replicação eficiente de NDV, assim como para a maioria dos membros da família Paramyxoviridae, é dependente do comprimento do genoma sendo múltiplo de seis de 33 e, portanto, qualquer inserção na NDV tem que seguir essa &quot;regra de seis&quot;. Se necessário, reqnucleotídeos adicionais uired podem ser adicionados a jusante da nova ORF, e (iii) a seqüência do transgene devem ser verificadas para encontrar possíveis GE e GS como sequências que possam prejudicar a eficiência de recuperação, a expressão do transgene e / ou viabilidade vírus. Se presente, estas sequências devem ser removidas por mutagénese silenciosa. A geração de cDNA de comprimento total recombinante a seguir regras acima referidas é o primeiro passo para produzir eficientemente um NDV geneticamente modificado tal como descrito aqui. No sistema de todas as construções de ADN está sob o controlo do promotor da polimerase de ARN de T7 (Figura 3). Esta polimerase citoplasmática é fornecido em trans pela co-infecção com um recombinante de vaccinia modificado Ankara vírus (MVA-T7) 34. Figura 3A mostra o plasmídeo pNDV-B1, que codifica o ADNc de comprimento completo antigenï 5. Figura 3B mostra os plasmídeos pTM1 codificando NP, P e L ORF. Os plasmídeos pCite-GFP, que codifica, under o promotor T7, a proteína verde fluorescente (GFP), e pCAGGS GFP 18, que codifica para o mesmo ORF sob o promotor de beta actina de frango 35, são utilizados como controlos. Neste protocolo, mostram o procedimento para resgatar NDV recombinante a partir do ADNc do NDV lentogénico estirpe Hitchner B1 5 (Figura 4).

<table><tbody><tr><td>DMEM</td><td>CORNING Cellgro</td><td>10-013-CV</td><td>Qualquer fornecedor</td></tr><tr><td>OptiMEM</td><td>GIBCO</td><td>31985-070</td><td></td></tr><tr><td>Lipofectamine 2000 (LPF2000)</td><td>Invitrogen</td><td>11668-019</td><td></td></tr><tr><td>35% Albumina bovina (BA)</td><td>Sigma</td><td>232-936-2</td><td>Qualquer fornecedor</td></tr><tr><td>Tripsina-EDTA</td><td>CORNING Cellgro</td><td>25-052-CI</td><td>Qualquer fornecedor</td></tr><tr><td>Penicilina/Estreptomicina (PS) 100x</td><td>CORNING Cellgro</td><td>30-002-CI</td><td>Qualquer fornecedor</td></tr><tr><td>Soro Fetal Bovino (FBS)</td><td>Hyclone</td><td>SH30070.03</td><td>Qualquer fornecedor</td></tr><tr><td colspan="4"> Linhas celulares Células A549 (número de catálogo CRL-185), células HEp-2 (número de catálogo CRL-185), fibroblastos de embriões de galinha (número de catálogo CRL-12203) e fibroblastos de embriões de pato (número de catálogo CCL-141) são disponível na American Type Culture Collection (ATCC, 10801 University Boulevard, Manassas, VA. 20110-2209 EUA). Todas as linhagens celulares são mantidas em um 37 &graus; C incubadora com 5% de CO2 em DMEM 10% FBS, 1% PS. Ovos de galinha embrionados Ovos de galinha embrionados podem ser obtidos nos Laboratórios Charles River, Specific Pathogen Fee Avian Supply (SPAFAS) Produtos e Serviços Aviários (Franklin Commons, 106 Route 32, North Franklin, CT 06254, EUA) e são mantidos a 37 °C. A viabilidade dos embriões é avaliada com um candler de ovo. Os ovos são infectados quando atingem 8 a 10 dias de idade. Tanto a infecção quanto a colheita do fluido alantóide ocorrem em condições estéreis. Todos os ovos são autoclavados e descartados seguindo os protocolos padrão de biossegurança laboratorial. Turkey red blood glóbulos (RBC) Turkey RBC pode ser comprado na Truslow Farms (201 Valley Road, Chestertown, Md 21620, EUA) e armazenado a 4 °C. Para preparar as hemácias para o ensaio de AH, lave 5 ml do estoque comercial com 45 ml de PBS 1x em um tubo cônico de 50 ml. Centrifugue por 5 min a 1.000 rpm e descarte cuidadosamente o sobrenadante. Dilua as hemácias peletizadas 1:1.000 em PBS 1x para uma concentração final de 0,5-1,0%. As hemácias lavadas podem ser armazenadas a 4 &graus; C por vários dias. Plasmídeos As preparações de plasmídeos são obtidas com qualquer kit maxiprep disponível comercialmente seguindo o fabricante&#039; s instruções, diluídas em ddH20 até uma concentração final de 1 &mu; g/&mu; l e armazenado a -20 ° C. A concentração e a pureza do DNA são avaliadas por espectrofotometria a 260 e 280 nm. Preparações com uma proporção 260/280 superior a 1,8 são consideradas de qualidade aceitável para o resgate. A qualidade do DNA do plasmídeo também é rotineiramente verificada por cromatografia em gel de agarose. Viruses O protocolo descrito para resgate da cepa lentogênica NDV Hitchner B1 pode ser realizado em condições de nível de biossegurança (BSL) 2. A Vaccinia Ankara modificada expressando a RNA polimerase T7 (MVA-T7) foi descrita34 e obtida do Dr. Bernard Moss. Este vírus é o crescimento em monocamadas confluentes de fibroblastos de embriões de galinha e titulado em células de mamíferos (A549 ou HEp-2). Os estoques de NDV são cultivados em ovos de galinha embrionados e titulados por IFA usando soro policlonal criado contra vírions purificados. Todo o material contaminado deve ser esterilizado com segurança e descartado de acordo com os procedimentos padrão de biossegurança. Meios e soluções de cultura de tecidos: DMEM 10% FBS 1% PS: Dulbecco&#039; s modified Eagle&#039; s Meio (DMEM) suplementado com 10% de soro fetal bovino (FBS) e Penicilina/Estreptomicina (P/S): 445 ml de DMEM, 50 ml de FBS inativado pelo calor, 5 ml de solução comercial 100x P/S. Armazenar a 4 &deg;C. 10x Solução salina tamponada com fosfato (PBS): 80 g de NaCl, 2 g de KCl, 11,5 g de Na2HPO4,7H2O, 2 g de KH2PO4. Adicione ddH2O até 1 L. Ajuste o pH para 7,3. Esterilizar em autoclave. Armazenar em temperatura ambiente. 1x PBS: Diluir 10x PBS 1:10 com ddH2O. Esterilizar em autoclave e armazenar em temperatura ambiente. 100x Ca/Mg : 1,327 g CaCl2.2H2O, 2,133 g de MgCl2,6H2O e adicionar ddH2O até 100 ml. Autoclave e armazene em temperatura ambiente. 1x PBS/BA/PS: 50 ml de solução salina tamponada com fosfato (PBS) 10x em 437 ml ddH2O. Autoclave e quando resfriado à temperatura ambiente, adicione 5 ml 100x Penicilina/Estreptomicina, 3 ml 35% Bovino e 5 ml de 100x Ca/Mg. Armazene a 4 >C. </td></tr></tbody></table>

resgate de vírus da doença de newcastle recombinante de cdna

Rescue of Recombinant Newcastle Disease Virus from cDNA

O vírus da doença de Newcastle (VDN), o membro protótipo do gênero Avulavirus da família Paramyxoviridae 1, é um não-segmentado, negativo-sentido, de fita simples, envolto vírus RNA (Figura 1) com potenciais aplicações como um vetor para a vacinação e tratamento de doenças humanas. Exploração em profundidade dessas aplicações só se tornou possível após o estabelecimento de técnicas de genética reversa para resgatar vírus recombinantes de plasmídeos que codificam seus genomas completos como cDNA 2-5. ADNc viral pode ser convenientemente modificado, in vitro, utilizando procedimentos de clonagem padrão para alterar o genótipo do vírus e / ou para incluir novas unidades de transcrição. Resgate de tais vírus geneticamente modificados fornece uma ferramenta valiosa para entender os fatores que afetam vários estágios da infecção, bem como permite o desenvolvimento e aperfeiçoamento de vetores para a expressão e entrega de antígenospara a vacinação e terapia. Aqui nós descrevemos um protocolo para o resgate de NDVs recombinantes.

Resgate de NDV é um procedimento bem estabelecido, realizada rotineiramente nos laboratórios que têm acesso ao cDNA completo do vírus. No entanto, a natureza estocástica intrínseca do método faz com que seja difícil de alcançar 100% de eficácia de recuperação. Monitorando as primeiras etapas do processo, em especial a eficácia de transfecção e a infecção com o MVA-T7, ajuda a identificar possíveis problemas. Figura 5A mostra transfecção padrão e a eficiência de transfecção / infecção que são suficientes...

O vírus da doença de Newcastle (NDV) tem sido extensivamente estudada nos últimos anos de forma a desenvolver novos vectores para a vacinação e a terapia, entre outros. Estes estudos têm sido possível devido às técnicas para resgatar vírus recombinante a partir do cDNA, tais como aqueles aqui descrita.

Resgate de Vírus da Doença de Newcastle recombinante de cDNA

Newcastle disease virus (NDV), the prototype member of  the Avulavirus genus of the family Paramyxoviridae1, is a non-segmented,  negative-sense, ...

O objetivo geral deste procedimento é resgatar o vírus recombinante da doença de Newcastle ou NDV do DNA clonado. Isso é feito primeiro infectando células de mamíferos com um vírus auxiliar que codifica a T sete polimerase e, em seguida, seccionando essas células com plasmídeos, codificando a maquinaria mínima de replicação do vírus sob controle do promotor T sete. O segundo passo é co-cultivar as células de mamíferos transfectadas com células aviárias, que são dos hospedeiros naturais do vírus.As varians recém-geradas liberadas das células de mamíferos infectarão as células aviárias para uma primeira rodada de amplificação. Em seguida, o sobrenadante da co-cultura é inoculado em ovos de galinha embrionados para maior crescimento do vírus resgatado, a etapa final é coletar o fluido LAN toico dos ovos inoculados. Em última análise, um simples ensaio de nação hemaglutinina é usado para mostrar a presença de NDV no fluido tóico LAN e o sucesso do processo de resgate.Os vírus recombinantes resgatados por este método podem fornecer informações sobre diferentes fatores que afetam a infecção e também podem ser usados como vetores para a entrega de antígenos para vacinação e terapia antitu

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Imunologia e Infecção

O sistema de genética reversa para o vírus da febre Rift Vale cepa vacinal MP-12 é uma ferramenta útil para a criação de adicionais MP-12 mutantes com atenuação aumentada e imunogenicidade. Nós descrevemos o protocolo para gerar e caracterizar NSS cepas mutantes.

Usando genética reversa para manipular o NSS Gene do vírus da febre Rift Valley MP-12 Strain para melhorar a segurança e eficácia da vacina

Source: Yuan, M., et al. A Simple and Efficient Approach to Construct Mutant Vaccinia Virus Vectors. J. Vis. Exp. (2016)This video demonstrates the process of performing a fluorescent plaque assay using recombinant vaccinia virus encoding red fluorescent protein (RFP) in fibroblast cells, followed by plaque isolation and purification for further analysis.

Fluorescence-Based Detection and Purification of Recombinant Vaccinia Virus

Fonte: Yates, J. G. E., et al. Produção de Vírus Recombinante da Doença de Newcastle de Alto Título a Partir de Fluido Alantoico. J. Vis. Exp. (2022)O vídeo demonstra a purificação e concentração de partículas virais a partir de fluido alantoico clarificado coletado de ovos de galinha embrionados infectados com o vírus. Ele apresenta uma série de etapas de filtração e separação, incluindo filtração em profundidade, filtração de fluxo tangencial e ultracentrifugação em gradiente de densidade...

Purificação de Vírus do Fluido Alantoide de Ovos de Galinha Embrionados

Fonte: Yun, S. et al. Cromossomos Artificiais Bacterianos: Uma Ferramenta de Genômica Funcional para o Estudo de Vírus de RNA de Fita Positiva. J. Vis. Exp. (2015)Este vídeo demonstra a recuperação do vírus da encefalite japonesa infeccioso a partir de RNA sintético transcrito de um clone de cromossomo artificial bacteriano. Mostra como as células são eletroporadas com o RNA sintético, permitindo que o genoma viral oriente a produção de novos viriões. As placas resultantes formadas em...

Recuperação de vírions infecciosos de células transfectadas com RNA sintético derivado de cromossomo artificial bacteriano

Resgate de arenavírus recombinantes a partir de ADNc clonados, uma abordagem designada por genética reversa, permite aos investigadores para investigar o papel dos produtos de genes virais específicos, bem como a contribuição dos seus vários domínios e resíduos específicos, de diferentes aspectos da biologia do arenavírus . Da mesma forma, inverter técnicas de genética em linhas de células aprovadas pela FDA (Vero) para o desenvolvimento da vacina proporciona novas possibilidades para a...

Geração de Arenavirus recombinante de Desenvolvimento de Vacinas no FDA-approved células Vero

Nos últimos 15 anos, os vetores derivados do adenovírus canino tipo 2 (CAV2) provaram sua eficiência na transdução de células in vitro e in vivo e são amplamente utilizados para vacinação e terapia gênica. Aqui, descrevemos um procedimento para construir, produzir e purificar vetores CAV2, dando origem a suspensões virais de alto título.

Produção e Purificação de Adenovírus não replicativa Canino Tipo 2 vectores derivados

Nós descrevemos um método para gerar e amplificar geneticamente modificado vírus sincicial respiratórios (RSVs) e um ensaio de placa otimizado para RSVs. Ilustramos este protocolo criando dois vírus recombinantes que respectivamente permitem quantificação de replicação RSV e análise de corpos de inclusão RSV e grânulos associada a corpos de inclusão dinâmica de viver.

Geração, amplificação e titulação do vírus sincicial respiratórios recombinantes

A recente epidemia do vírus Zika destaca a importância de estabelecer abordagens genéticas inversas para desenvolver vacinas e/ou estratégias terapêuticas. Aqui, nós descrevemos o protocolo para resgatar um vírus de recombinação contagioso do Zika de um clone full-length do cDNA montado em um cromossoma artificial bacteriano o controle do promotor imediato-adiantado humano do citomegalovírus.

Resgate do vírus Zika recombinante de um clone de cDNA de cromossomo artificial bacteriano

Aqui fornecemos um procedimento detalhado para produção, purificação e quantificação do vírus recombinante da doença de Newcastle. Este protocolo rende consistentemente &gt; 6 × 109 unidades formadoras de placas/mL, fornecendo quantidades de vírus apropriadas para estudos in vivo em animais. Ensaios adicionais de controle de qualidade para garantir a segurança in vivo são descritos.

Produção de Vírus da Doença de Newcastle Recombinante de Alta Titer a partir de fluido allantóico

Este trabalho de protocolo descreve a metodologia de microinjeção embrionária de lente de frango de um retrovírus RCAS(A) como uma ferramenta para estudar a função in situ e a expressão de proteínas durante o desenvolvimento do cristalino.

Microinjeção de Retrovírus RCAS(A) Recombinante em Lentes de Galinha Embrionárias

Este artigo apresenta um método simplificado para preparar o antígeno de 4 unidades de hemaglutinação para o teste sorológico do vírus da doença de Newcastle. Ao determinar com precisão o título de hemaglutinação do antígeno, combinado com um método de titulação reversa mais rigoroso e um processo de ajuste bem definido, aumenta a eficiência do teste, reduz os falsos positivos e melhora a vigilância da doença em aves.

Otimização da preparação do antígeno para ensaio de inibição da hemaglutinação da sorologia do vírus da doença de Newcastle

Aprenda a resgatar vírus recombinante da Doença de Newcastle a partir de cDNA clonado. Este método utiliza células mamíferas infectadas com vírus auxiliar e plasmídeos para replicação viral, seguido de cocultura com células aviárias e amplificação em ovos embrionados.

Resgate de Vírus da Doença de Newcastle recombinante de cDNA

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