Name: Cultura de Tecidos isolada Piso Placa e Produção de meio condicionado Para avaliar as propriedades funcionais dos pavimentos Sinais lançado placa (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-02-11T17:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 53 s
Description: Aprenda a produzir meio condicionado de placa do piso para estudar sinais neurais no desenvolvimento da medula espinhal em embriões de camundongo. Este método permite analisar a expressão de marcadores comissurais por western blot.

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Agradecemos Karine Kindbeiter, Muriel Bozon, e Florie Reynaud por sua ajuda. O trabalho é apoiado pelo CNRS, programa ANR Yoda e Labex DevWeCan.

DIA 1 1. Dissecção da medula espinhal Piso Plate (FP) de E12.5 embriões de camundongos Nota: O procedimento completo requer o uso de condições de esterilidade. É preferível realizar o esvaziamento sob uma capa de dissecação para evitar a contaminação. A superfície da capa deverá ser limpa com etanol. Todos os instrumentos de dissecção devem ser esterilizados e mantidos em uma placa de Petri estéril. Os líquidos (médio, médio dissecção) devem ser mantidas fechadas e colocar num banho de gelo. Cada embrião deve ser coletado em fresco gota individual. Isto é importante para a conservação de tecidos. A dissecção é realizada com Dumont # 5 fórceps. Para transferir os embriões entre pratos, pega o cordão umbilical ou a cabeça sem qualquer prejuízo para a parte posterior do cérebro. É fundamental para não danificar a medula espinhal para concluir com êxito a dissecção. Prepare frio tampão fosfato (PBS), Solução Salina Balanceada frio de Hank (HBSS) -6,5% de glicose e temperatura ambiente média neurobasal. 1.1 Spinal dissecção cabo Os animais são tratados de acordo com as diretrizes de cuidados de animais do Centre National de la Recherche Scientifique seguintes directivas europeias. O método da eutanásia é deslocamento cervical, que consiste em aplicar pressão para o pescoço e deslocando a coluna vertebral a partir do cérebro. Este método é recomendado para modelos animais de rato, e pode ser realizado de uma forma rápida e eficiente. <ol><li> Euthanize um rato grávida E12.5 de gestação (E0.5 = primeiro dia seguinte esteiras). Posicione o mouse lado ventral para cima. </li><li> Mergulhe o abdômen com etanol 70%. Aperte a pele do abdômen com uma pinça Adson e cortar através da pele e as camadas peritoneal com uma tesoura cirúrgica. Faça uma incisão e usá-lo para cortar em ambos os lados do mouse para expor a cavidade abdominal. </li><li> Uma cadeia de embriões está presente em cada um dos lados do rato. Segure um chifre do uterus no tecido entre dois embriões e dissecá-lo para fora a partir da parte exterior. Transferir o útero intacto para uma placa de 100 mm de Petri com PBS frio em gelo. </li><li> Extrair os embriões a partir de tecidos extra-embrionários. Segure o tecido da placenta (em vermelho escuro) com dois pares de fórceps e puxar suavemente para rasgar o tecido e remover os embriões a partir do saco uterino. </li></ol> Nota: Para uma melhor conservação, coletar os embriões de sua saída do útero, um por um. <ol start="5"><li> Os próximos passos são feitos sob lupa binocular e capuz dissecação. Coloque um embrião em uma queda de glicose frio HBSS-6,5%. </li><li> Utilizando uma pinça, decapitar o embrião. </li></ol> Nota: Corte entre a mandíbula inferior ea parte posterior do cérebro, a parte posterior do cérebro posterior é importante para os próximos passos. <ol start="7"><li> Coloque a face ventral do embrião para baixo com a parte anterior de frente para o experimentador. </li><li> Aperte a peledo embrião com um par de pinças e com o outro par de se afastar da pele. </li></ol> Nota: Este passo tem de ser repetido até que a pele é removida completamente a partir da parte anterior do embrião. <ol start="9"><li> Vire o lado anterior do embrião para a esquerda. Com uma pinça de &quot;fechar&quot; o embrião na parte anterior. Com os outros pinça agarre a pele e puxar para o lado rostral do embrião. A medula espinhal é então acessível. </li><li> Usar um lado da pinça para cortar as meninges que ainda envolver a espinal medula. A medula espinhal está agora aberto. </li><li> Vire o lado anterior do embrião para a direita. </li><li> Separe o tecido da medula espinal a partir do lado do colo do útero do embrião. Deslize os fórceps sob a medula espinhal (a pinça deve ser mantido fechado para evitar danos da medula espinhal). A pinça tem de ser visível sob a medula espinhal. Pequenos movimentos rotatórios sob a medula espinhal são suficientes para retirar atecido circundante e os gânglios da raiz dorsal (DRG). </li></ol> Nota: Partindo tecido circundante ligada adicionar peso à medula espinhal, aumentando assim a probabilidade de quebra-lo durante o passo seguinte. <ol start="13"><li> Coloque o isolado medula espinhal em uma nova queda de glicose frio HBSS-6,5%. </li><li> Coloque a medula espinal na posição plana, as meninges, no lado de topo anterior e longe do experimentador. </li><li> &quot;Imobilizar&quot; a medula espinhal usando o hindbrain restante com uma pinça, e com o segundo fórceps agarrar as meninges. Retire as meninges a partir do lado rostral da medula espinhal. </li></ol> Nota: O movimento deve ser lento e constante, para evitar qualquer ruptura da medula espinhal. Movimentos vibratórios pode facilitar a separação das meninges. 1.2 FP dissecção <ol><li> Aperte a parte posterior do cérebro com um fórceps. </li><li> A FP é o tra centronsparent parte do tecido. Usando um bisturi cortar a placa de fundo. </li></ol> Nota: Para cortar ambos os lados com a mesma qualidade, que começa no lado rostral e alternadamente cortar o lado direito e do lado esquerdo da placa de fundo. <ol start="3"><li> Conserve o FP dissecado em meio Neurobasal à temperatura ambiente. </li></ol> 2. FP Cultura Nota: Todos os passos devem ser realizados sob condições estéreis, com um capuz de cultura de tecidos. Use meio fresco e suplementos e reagentes recém descongeladas. Prepare lamínulas estéreis de vidro, neurobasal quente + B27, plasma e HBSS-trombina. 2.1 cultura FP <ol><li> Coloque várias lamelas estéreis numa placa de Petri e 100 milímetros de pipeta 20 ul de plasma no centro de cada lamela. </li><li> Transferir 2-4 FP em cada gota de plasma e adiciona-se 20 ul de HBSS-trombina ao lado da gota de plasma e misturar cuidadosamente. Mantenha as lamelaspor um período mínimo de 10 minutos à temperatura ambiente para permitir a coagulação do plasma. </li></ol> Nota: Transferência dois PQ em caso de dissecção completa e mais em caso de dissecção parcial. Misture devagar, com uma ponta de pipeta e evitar o contato com os explantes PF. O coágulo de plasma retrai alguns mM como um sinal da coagulação. A coagulação não deve ser interrompida prematuramente, para evitar a separação do coágulo do plasma. <ol start="3"><li> Transferir cada lamela em uma placa de 24 cavidades e adicionar 500 mL de Neurobasal + B27. Incubar 48 horas a 37 ° C. </li></ol> DIA 3 3. FP condicionado Médio (FP cm) Colher Nota: de colheita deve ser realizada sob condições estéreis, com um capuz de cultura de tecidos. Se o sobrenadante está contaminado ou se as placas de piso são flutuante (o que significa que poderia ter morrido durante os peri culturaod), então não colher o cm FP deste poço. 3.1 FP cm colheita <ol><li> Colha cuidadosamente o meio de cada poço. </li></ol> Nota: Não pipetar a mistura de plasma de trombina polimerizado ou quaisquer fragmentos PF. <ol start="2"><li> Armazenar aliquotas de 100 uL a -80 ° C. </li></ol> DIA 4 4. Dissecção da Medula Espinhal comissural Neurônios de E12.5 embriões de camundongos Nota: A preparação não tem necessariamente de ser realizada sob condições estéreis. Siga o procedimento descrito acima para coletar os embriões. Prepare PBS frio, frio HBSS-6.5% de glicose e neurobasal frio. 4.1 Spinal dissecção cabo <ol><li> Utilizando uma pinça, decapitar o embrião. </li></ol> Nota: Corte entre o maxilar inferior e da parte posterior do cérebro, a parte posterior da parte posterior do cérebro é importante para opróximos passos. <ol start="2"><li> Coloque a face ventral do embrião para baixo em uma nova queda com a parte anterior de frente para o experimentador. </li><li> Comprima a pele do embrião com um fórceps e com o outro se afastar da pele. </li></ol> Nota: Este passo tem de ser repetido até que a pele é removida completamente a partir da parte anterior do embrião. <ol start="4"><li> Vire o lado anterior do embrião para a esquerda. Com uma pinça de &quot;fechar&quot; o embrião na parte anterior. Com as outras pinças, segure a pele e puxar para o lado rostral do embrião, para expor a medula espinhal. </li><li> Usar um lado da pinça para cortar as meninges que ainda envolver a espinal medula. A medula espinhal está agora exposta e aberta. </li><li> Posicione embrião lado do anterior para a direita. </li><li> Separe o tecido da medula espinal a partir do lado do colo do útero do embrião. Deslize os fórceps sob a medula espinhal (mantenha a pinça fechada). Paraceps deve visível sob a medula espinhal. Pequenos movimentos rotatórios sob a medula espinhal são suficientes para separar o tecido adjacente e os gânglios da raiz dorsal (DRG). </li><li> Transfira o isolado medula espinhal em uma nova queda de glicose frio HBSS-6,5%. </li><li> Coloque a medula espinal na posição plana, as meninges, no lado de topo anterior e longe do experimentador. </li><li> &quot;Imobilizar&quot; a medula espinhal usando o hindbrain restante com um fórceps, com o segundo fórceps agarrar as meninges. Retire as meninges a partir do lado rostral da medula espinhal. </li></ol> 4.2 comissural Neuron dissecção <ol><li> Aperte a parte posterior do cérebro com um fórceps. </li><li> Os neurônios comissurais estão localizadas na parte mais lateral da espinal-medula (lado dorsal). Recorte esta parte lateral com uma multa bisturi. </li></ol> Nota: A parte dorsal da espinal-medula pode ser distinguida da parte ventral pela diferença de célula density, a parte ventral sendo mais opaca. Nota: Para cortar os dois lados com a mesma qualidade, que começa no lado rostral e alternadamente cortar um pequeno comprimento do lado direito e do lado esquerdo. <ol start="3"><li> Conserve o tecido dissecado em meio Neurobasal no gelo para uso imediato. </li></ol> 5. O tratamento do tecido com o comissural cm FP Nota: Este procedimento não requer condições estéreis. O tecido deve ser coletado em tubos de 1,5 ml cada. A FP cm congelado deve ser usado apenas uma vez. Evite recongelamento múltipla. Prepare quente FP cm (37 ° C). 5.1 Tratamentos de neurônios comissurais <ol><li> Dilacerar o tecido comissural com pequenas tesouras. </li></ol> Nota: Cortar o tecido tão pequeno quanto possível, para potenciar a acessibilidade das células. <ol start="2"><li> Distribuir de forma justa o tecido entre a diferença de tratamento experimental e controle condições cm tratamento FP. </li><li> Centrifugar os fragmentos de tecido a 800 xg durante 1 min a 4 ° C. </li><li> Confira a repartição entre os tubos. </li></ol> Nota: Se necessário redistribuir e centrifugar novamente até que os fragmentos são igualmente distribuídos. <ol start="5"><li> Remover o sobrenadante. </li><li> Adicionar os centímetros e tratamentos de controlo de PF quentes para os tecidos. </li></ol> Nota: O volume tem de ser ajustada à quantidade de sedimento e deve ser pelo menos duas vezes o volume do pelete. <ol start="7"><li> Incubar a 37 ° C durante 30 min. </li></ol> Nota: Agite cada 10-15 min <ol start="8"><li> Centrifugar a 800 xg durante 1 min e remover o tratamento. </li><li> Adicionar o tampão de lise </li></ol> Nota: O volume deve ser ajustado à umamontagem da pastilha, e deverá ser, pelo menos, duas vezes o volume do pelete. <ol start="10"><li> Pipeta cima e para baixo para voltar a suspender o sedimento. </li></ol> Nota: Um vórtice também pode ser usado. <ol start="11"><li> Incubar 15 minutos em gelo. </li><li> Centrifugar a 14000 xg durante 15 min a 4 ° C. </li><li> Manter o sobrenadante e medir a quantidade de proteína com um ensaio de Bradford 9. </li><li> Adicionar 6x Laemmli Buffer. </li><li> Incubar a 95 ° C durante 5 minutos para desnaturar a proteína. </li></ol> Nota: As amostras podem ser utilizadas imediatamente ou podem ser armazenadas a -80 ° C. <ol start="16"><li> Avaliar os efeitos do tratamento por 10 Western Blot. </li></ol> Nota: Pelo menos 50 mg de proteínas totais deve ser carregado para cada pista.

<ol><li>Nawabi, H., Castellani, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Axonal+commissures+in+the+central+nervous+system%3A+how+to+cross+the+midline%5BTitle%5D)+AND+%22Cell.+Mol.+Life+Sci%22%5BJournal%5D)">Axonal commissures in the central nervous system: how to cross the midline.</a> Cell. Mol. Life Sci. 68, 2539-2553 (2011).</li>
<li>Placzek, M., Briscoe, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+floor+plate%3A+multiple+cells%2C+multiple+signals%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">The floor plate: multiple cells, multiple signals.</a> Nat. Rev. Neurosci. 6, 230-240 (2005).</li>
<li>Chedotal, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Further+tales+of+the+midline%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Further tales of the midline.</a> Curr. Opin. Neurobiol. 21, 68-75 (1016).</li>
<li>Nawabi, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+midline+switch+of+receptor+processing+regulates+commissural+axon+guidance+in+vertebrates%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+Dev%22%5BJournal%5D)">A midline switch of receptor processing regulates commissural axon guidance in vertebrates.</a> Genes Dev. 24, 396-410 (2010).</li>
<li>Ruiz de Almodovar, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((VEGF+mediates+commissural+axon+chemoattraction+through+its+receptor+Flk1%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">VEGF mediates commissural axon chemoattraction through its receptor Flk1.</a> Neuron. 70, 966-978 (2011).</li>
<li>Charoy, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((gdnf+activates+midline+repulsion+by+Semaphorin3B+via+NCAM+during+commissural+axon+guidance%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">gdnf activates midline repulsion by Semaphorin3B via NCAM during commissural axon guidance.</a> Neuron. 75, 1051-1066 (2012).</li>
<li>Kiecker, C., Lumsden, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+organizers+in+patterning+the+nervous+system%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">The role of organizers in patterning the nervous system.</a> Annu. Rev. Neurosci. 35, 347-367 (2012).</li>
<li>Le Dreau, G., Marti, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dorsal-ventral+patterning+of+the+neural+tube%3A+a+tale+of+three+signals%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Dorsal-ventral patterning of the neural tube: a tale of three signals.</a> Dev. Neurobiol. 72, 1471-1481 (2012).</li>
<li>Bradford, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+rapid+and+sensitive+method+for+the+quantitation+of+microgram+quantities+of+protein+utilizing+the+principle+of+protein-dye+binding%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Biochem%22%5BJournal%5D)">A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding.</a> Anal. Biochem. 72, 248-254 (1976).</li>
<li>Eslami, A., Lujan, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Western+blotting%3A+sample+preparation+to+detection%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Western blotting: sample preparation to detection.</a> J. Vis. Exp. , (2010).</li>
<li>Salinas, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+morphogen+sonic+hedgehog+collaborates+with+netrin-1+to+guide+axons+in+the+spinal+cord%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Neurosci%22%5BJournal%5D)">The morphogen sonic hedgehog collaborates with netrin-1 to guide axons in the spinal cord.</a> Trends Neurosci. 26, 641-643 (2003).</li>
<li>Bechara, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FAK-MAPK-dependent+adhesion+disassembly+downstream+of+L1+contributes+to+semaphorin3A-induced+collapse%5BTitle%5D)+AND+%22EMBO+J%22%5BJournal%5D)">FAK-MAPK-dependent adhesion disassembly downstream of L1 contributes to semaphorin3A-induced collapse.</a> EMBO J. 27, 1549-1562 (2008).</li>
</ol>

Os autores não têm nada a revelar

A produção de laje meio condicionado oferece uma maneira fácil e eficiente para avaliar as propriedades biológicas dos sinais liberados placa de fundo. A matriz de plasma de trombina oferece excelentes condições para a sobrevivência dos tecidos. No entanto, este ambiente enriquecido pode ser uma limitação para alguns tipos de experiências. Assim, o tecido de placa de fundo pode também ser cultivadas em matriz de agarose. A qualidade do meio condicionado placa de piso pode ser avaliada atravé...

A laje é um centro de padronização bem conhecido da medula espinhal em desenvolvimento, desempenhando papéis importantes na especificação de progenitores e linhagens de células pós-mitóticas e controlar a navegação axônio 7,8. O procedimento experimental descrito aqui para produzir FP cm permite aos investigadores para avaliar as propriedades funcionais dos sinais provenientes de placas de piso em um de vários contextos de processos de desenvolvimento, a partir de padrões de células e a sobrevivência das células e a migração do axónio. Para ilustrar o uso de tais cm FP, os tecidos da medula espinal dorsal contendo neurónios comissurais são dissecados, dilacerada e estimuladas com o cm FP. Os tecidos podem então ser processadas para análise de Western blot. Isto permite investigar os regulamentos da máquina orientação do axônio por sinais liberados laje. O método de tratamento de tecido fresco dilacerada mantém a grande vantagem de preservar o microambiente das células dentro the tecidos. Assim, as conseqüências do tratamento por FP cm ou quaisquer tipos de tratamento são avaliados de forma mais fisiológica do que em condições de cultura de tecido celular e.

<table><tbody><tr><td colspan="4">Reagentes necessários</td></tr><tr><td>PBS</td><td>Invitrogen</td><td>14190-094</td><td></td></tr><tr><td>HBSS, Ca2+/Mg2+- livre</td><td>Invitrogen</td><td>14170-088</td><td></td></tr><tr><td>Glicose</td><td>Sigma</td><td>G-7021</td><td></td></tr><tr><td>Neurobasal</td><td>Invitrogen</td><td>21103-049</td><td></td></tr><tr><td>Plasma</td><td>Sigma</td><td>P-3266</td><td>1 mg/ml (Reconstituir em H2O e filtrado)</td></tr><tr><td>Trombina</td><td>Sigma</td><td>T-4648</td><td>10 mg/ml(Reconstituir em H2O e filtrado)</td></tr><tr><td>B27</td><td>Invitrogen</td><td>17504-044</td><td>50x</td></tr><tr><td>HEPES (260 g/mol)</td><td>Sigma</td><td>H-7006</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Sigma</td><td>E-5513</td><td>0,5 M, pH 8</td></tr><tr><td>MgCl2</td><td>Euromedex</td><td>2189</td><td>1M</td></tr><tr><td>Glicerol</td><td>VWR</td><td>24388.295</td><td></td></tr><tr><td>IGEPAL</td><td>Sigma</td><td>I-3021</td><td></td></tr><tr><td>Comprimidos de Coquetel Inibidor de Protease Completo</td><td>Roche</td><td>04 693 116 001</td><td></td></tr><tr><td>Ortovanadato de Sódio (Na3VO4)</td> <td>Sigma</td><td>S-6508</td><td></td></tr><tr><td>Destilado H 2O</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Tabela 1.Reagentes necessários. </td></tr><tr><td colspan="4">Tools and Materials</td></tr><tr><td>Surgical scissors</td><td>Fine Science Tools</td><td>14002-12</td><td></td></tr><tr><td>Adson forceps</td><td>Fine Science Tools</td><td>11027-12</td><td></td></tr><tr><td>Dumont #5 Fine Tips forceps</td><td>Fine Science Tools</td><td>11254-20</td><td></td></tr><tr><td>Microknives</td><td>Fine Science Tools</td><td>10136-14</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Tabela 2. Ferramentas e materiais. </td></tr><tr><td colspan="4"><table border="1"> <tbody> <tr> <td colspan="2">Dissecção e cultura FP</td> </tr> <tr> <td>Etanol 70%</td> <td></td> </tr><tr> <td>capa de dissecação</td> <td></tdMicroscópio de dissecação > </tr><tr> <td></td> <td></td> </tr><tr> <td>placas de Petri</td> <td></td> </tr><tr> <td>lamínulas de vidro</td> <td>18 mm x 18 mm</td> </tr><tr> <td> Queimador de gás Bunsen</td> <td></td> </tr><tr> <td>placa de 24 poços</td> <td></td> </tr><tr> <td>incubadora de cultura de tecidos (37 & C, 5% CO2, com umidade controlada)</td> <td></td> </tr><tr> <td>Centrífuga</td> <td></td> </tr><tr> <td colspan="2">Receitas</td> </tr> <tr> <td colspan="2" >FP meios de cultura</td> </tr> <tr> <td>Neurobasal</td> <td></td> </tr><tr> <td>B27</td> <td>1/50e diluição de estoque</td> </tr><tr> <td colspan="2">HBSS-trombina </td> </tr> <tr> <td>HBSS</td> <td>1 ml </td> </tr><tr> <td>Trombina 10 mg/ml</td> <td>30 &mu; l</td> </tr><tr> <td colspan="2">Tampão de lise pH 7,4</td> </tr> <tr> <td>HEPES (260 g/mol) </td> <td>25 mM</td> </tr><tr> <td>EDTA (pH 8) </td> <td>5 mM</ td> </tr><tr> <td>MgCl2 </td> <td>1 mM</td> </tr><tr> <td>Glicerol </td> <td>10%</td> </tr><tr> <td>IGEPAL (NP40) </td> <td>0,10%</td> </tr>< coquetel de inibidores de protease tr> <td> </td> <td>1x</td> </tr><tr> <td>Ortovanadato de sódio </td> <td>0,2 M</td> </tr><tr> <td>H2O</td> <td></td> </tr><tr> <td colspan="2">Laemmli Tampon</td> </tr> <tr> <td>Tris 0,5 M, pH 6,8 </td> <td>375 mM</td> </tr><tr> <td>SDS</td> <td>6%</td> </tr><tr> <td>Glicerol</td> < td>60%</td> </tr><tr> <td>DTT</td> <td>0,6 M</td> </tr><tr> <td>Azul de bromofenol</td> <td></td> </tr><tr> <td>H2O</td> <td></td> </ tr></tbody> </table></td></tr></tbody></table>

cultura de tecidos isolada piso placa e produção de meio condicionado para avaliar as propriedades funcionais dos pavimentos sinais lançado placa

Culture of Isolated Floor Plate Tissue and Production of Conditioned Medium to Assess Functional Properties of Floor Plate-released Signals

Durante o desenvolvimento, progenitores e os neurônios pós-mitóticas receber sinais de territórios adjacentes que regulam o seu destino. A laje é um grupo de células gliais que revestem o canal ependimária na posição ventral. A laje expressa morfogénios fundamentais que contribuem para o padrão de linhagens de células da medula espinhal. Em fases posteriores de desenvolvimento, a laje regula a navegação dos axônios na medula espinhal, agindo como uma barreira para impedir a passagem dos axônios ipsi e cruzamento da linha média de controle por axônios comissurais 1. Estas funções são conseguidas através da secreção de várias pistas de orientação. Algumas dessas sugestões funcionar como atrativos e repelentes para os axônios em crescimento, enquanto outros regular receptores de orientação e sinalização a jusante para modular a sensibilidade dos axônios para as pistas de orientação locais 2,3. Aqui, descrevemos um método que permite estudar o comportamento de andar de placa sinais derivados de uma variedade de desencontextos lopmental, com base na produção de médio laje condicionado (FP cm) 4-6. Em seguida, exemplificam o uso deste FP cm no contexto da orientação do axónio. Em primeiro lugar, a espinal medula é isolado de embrião de ratinho em E12.5 e a laje é dissecados e cultivados numa matriz de plasma de trombina (Figura 1). Segundo, dois dias depois, tecidos comissural são dissecados a partir de embriões E12.5, triturado e exposto para o cm FP. Em terceiro lugar, o tecido são processadas para análise de Western blot de marcadores comissurais.

Comissurais tecidos foram tratados pelo cm PF e as amostras foram processadas para análise de níveis de receptores em Western blot. Aplicação das cm FP foi demonstrado que o aumento dos níveis de um receptor de orientação, PlexinA1, que medeia a sensibilidade de axónios comissurais para o repelente Semaphorin3B linha média depois de atravessar (Figura 2). Isto revelou que os sinais liberados pelo FP regular os níveis de PlexinA1 4,6. <p class="jove_content" fo:keep-t...

A placa do piso é uma estrutura fundamental das desenvolvimento da medula espinhal, que fornecem sinais difusíveis para progenitores e diferenciação de neurônios. Nós descrevemos um método para produzir laje meio condicionado, para aplicá-lo ao novo tecido da medula espinhal, e para avaliar as consequências sobre as proteínas de interesse pela bioquímica.

Cultura de Tecidos isolada Piso Placa e Produção de meio condicionado Para avaliar as propriedades funcionais dos pavimentos Sinais lançado placa

During development, progenitors and post-mitotic neurons receive signals from adjacent territories that regulate their fate. The floor-plate is a group of ...

O objetivo geral deste procedimento é investigar as propriedades dos sinais derivados da placa de piso em uma variedade de contextos de desenvolvimento com base na produção de meio condicionado de placa de piso. Isso é feito primeiro isolando a medula espinhal do embrião de camundongo em E 12.5 e dissecando a placa do piso. O segundo passo é cultivar a placa de piso em uma matriz de trombina de plasma para produzir meios condicionados de placa de piso.Em seguida, as medulas espinhais de embriões de camundongos em E 12.5 são isoladas e o tecido dorsal contendo neurônios corais é dissecado. A etapa final é a tação e exposição do tecido de comunicação dissecado a amostras de meio condicionado por placa de piso. Em última análise, o tecido é processado para análise bioquímica, como western blot, para mostrar a expressão dos marcadores comissurais.Este método pode ajudar zuki a questionar no campo da biologia do desenvolvimento. Os sinais liberados pela placa de piso desempenham papéis cruciais na regulação da gordura celular, diferenciação, proliferação e orientação do axônio do tecido e células de várias origens. ZA ser exposto ao meio de condição da placa de piso, demonstrando que o

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A matriz extracelular desempenha um papel importante na definição do microambiente das células e na modulação do comportamento e fenótipo celular. Descrevemos um método rápido para o isolamento de matriz extracelular derivada de células, que pode ser adaptado a diferentes escalas para estudos microscópicos, bioquímicos, proteômicos ou funcionais.

A rápida, Método Scalable para o isolamento, estudo funcional, e Análise de matriz extracelular derivado de celular

Este protocolo fornece uma abordagem econômica para isolar e caracterizar pilhas do rato primária renal tubular que podem posteriormente ser sub cultivadas para avaliar funções biológicas renal ex vivo, incluindo bioenergética mitocondrial.

Isolamento, caracterização e alto Throughput análise de fluxo extracelular de Mouse primária Renal Tubular as células epiteliais

Células enterocromafins (CE) compõem um pequeno subconjunto de células epiteliais gastrointestinais. Células de CE são eletricamente excitáveis e liberam serotonina, ainda dificuldades no cultivo e identificação de células CE limitados estudos fisiológicos. O método apresentado aqui estabelece um modelo de cultura primária favorável ao exame de células únicas CE por eletrofisiologia.

Eletrofisiologia celular de células enterocromafins murino culta primário

Este manuscrito descreve um protocolo detalhado para produzir matrizes de microtissues musculares esqueléticos humanos 3D e minimamente invasivos a jusante em ensaios de função situ, incluindo força contraítil e análises de manuseio de cálcio.

Avaliação de métricas funcionais da saúde muscular esquelética em microtissues musculares esqueléticas humanas

Descrevemos uma abordagem para detectar e capturar subpopulações celulares invasivas em tempo real. O projeto experimental utiliza a Análise Celular em Tempo Real monitorando mudanças na impedância elétrica das células. Podem ser capturados câncer invasivo, células endoteliais ou estromais em tecidos complexos, e o impacto das co-culturas pode ser avaliado.

Detecção e Captura em Tempo Real de Subpopulações celulares invasoras de co-culturas

O protocolo apresentado descreve o desenvolvimento e o uso de uma técnica de coloração de actina filamentosa à base de faloidina com microscopia confocal de varredura a laser (CLSM) para visualizar a estrutura da camada celular aderente em canais de cultura dinâmica microfluídica e câmaras tradicionais de cultura estática de poço fixo. Essa abordagem auxilia na avaliação da confluência da camada celular, da formação da monocamada e da uniformidade da espessura da camada.

Preparação e avaliação estrutural de monocamadas de células epiteliais em um dispositivo de cultura microfluídica de tamanho fisiológico

Apresentamos aqui um protocolo para cultivo de células IDG-SW3 em uma matriz extracelular tridimensional (3D).

Cultivo de Células IDG-SW3 em Matriz Tridimensional Extracelular

Aprenda a produzir meio condicionado de placa do piso para estudar sinais neurais no desenvolvimento da medula espinhal em embriões de camundongo. Este método permite analisar a expressão de marcadores comissurais por western blot.

Cultura de Tecidos isolada Piso Placa e Produção de meio condicionado Para avaliar as propriedades funcionais dos pavimentos Sinais lançado placa (Vídeo) | JoVE Journal

Cultura de Tecidos isolada Piso Placa e Produção de meio condicionado Para avaliar as propriedades funcionais dos pavimentos Sinais lançado placa

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