Name: Características dos microgéis de polietilenoglicol formados por precipitação são controlados pelo peso molecular dos reagentes (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-12-23T14:15:00.000+00:00
Duration: 11 min 32 s
Description: Aprenda a formar microgéis de polietilenoglicol por fotopolimerização em precipitação para liberação controlada de fármacos e engenharia de tecidos. Este método permite ajustar propriedades controlando o peso molecular do PEG.

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O financiamento para este projeto foi feito por meio do Prêmio NSF CBET 1061834. Os autores gostariam de agradecer ao CIBA por uma amostra de fotoiniciador.

1. Preparando soluções para uso na fabricação de microgéis
<ol>
	<li>Antes de iniciar a reação de precipitação, fazer as soluções necessárias e aquecê-las a 37 °C. As soluções necessárias incluem fotoiniciador a 0,5%, 1,5 M Na2SO4, solução tampão, solução de diacrilato de PEG 200 mg/ml (PEG-DA) e 1x solução salina tamponada com fosfato (PBS). Nota: Acrilato de todos os precursores de PEG de acordo com os métodos publicados e armazenar a -20 °C sob argônio até o uso12.</li>
	<li>Pesar o fotoiniciador e dissolver em H2O desionizado (DI) para uma solução a 0,5 (p/v). É importante proteger a solução da exposição à luz UV.
	<ol>
		<li>Após a dissolução completa, filtrar através de um filtro de 0,22 μm. Esta solução pode ser preparada com antecedência e conservada a 4 °C na obscuridade. Nota: Diminua o tempo de agitação para aproximadamente 1 hora aquecendo a solução a 40 °C enquanto agita.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Para 1x PBS, adicione 1 comprimido de PBS a 1 L DI H2O e filtre através de um filtro de 0,22 μm. O PBS pode ser feito com antecedência e armazenado a 4 °C.</li>
	<li>Meça 39,4 ml de solução salina tamponada com fosfato (PBS, pH = 7,4) e adicione 612 μl de trietanolamina (TEOA) e 260 μl de ácido clorídrico (HCl) 6 M. Nota: TEOA é muito viscoso; pré-aqueça o TEOA a 37 °C antes da pipetagem.
	<ol>
		<li>Ajustar o pH do tampão de modo a que seja aproximadamente 7,7 e filtrar através de um filtro de 0,22 μm (pH final ~7,8). A solução tampão pode ser ampliada, fabricada com antecedência e armazenada a 37 °C.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Faça a solução de PEG-DA antes de iniciar a reação a cada vez; diminuição da reatividade foi observada se a solução for armazenada. Pese o PEG-DA e adicione o tampão PBS/TEOA/HCl até a concentração final de 200 mg/ml. Nota: Adicione o tampão lentamente para controlar cuidadosamente a concentração de PEG, pois o PEG incha na solução. 
	Nota: Esta solução é altamente personalizável. As opções para personalizar microgéis incluem: alterar o peso molecular inicial do PEG para alterar as propriedades do microgel, usar um precursor de PEG degradável para fabricar microgéis degradáveis, filtrar estéreis todas as soluções para microgéis biologicamente estéreis, completar o processo de formação em uma capela de fluxo laminar e, finalmente, adicionar grupos funcionais à superfície, incorporando-os na solução de PEG.</li>
	<li>Pesar Na2SO4 e dissolver em DI H2O para uma solução a 1,5 M. Para obter melhores resultados, a solução de sulfato de sódio também deve ser feita imediatamente antes de iniciar a reação.
	<ol>
		<li>Aquecer e vortex a solução até que o Na2SO4 esteja completamente dissolvido. Filtre através de filtro de 0,22 μm conforme necessário.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. Fabricação de microgel
<ol>
	<li>Coloque 127,5 μl de tampão PBS/TEOA/HCl, 10 μl de fotoiniciador a 0,5% e 25 μl de solução de PEG 200 mg/ml nos tubos onde os microgéis serão formados; normalmente tubos de microcentrífuga de 2 ml.
	<ol>
		<li>Aqueça esses tubos junto com a solução 1.5 M Na2SO4 a 37 °C.</li>
		<li>Misture os tubos enquanto aquece. Nota: Este protocolo de microgel pode ser ampliado.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Para encapsular moléculas nos microgéis, adicione a molécula desejada (por exemplo, ovalbumina) ao tampão PBS / TEOA / HCl, fotoiniciador e solução de PEG. Após a reticulação, a molécula ficará presa na rede de microgel.</li>
	<li>Complete cada reação de microgel, uma de cada vez. Pegue o primeiro tubo e adicione 87,5 μl de 1,5 M Na2SO4.</li>
	<li>Misture o tubo pipetando 3-5x; alternativamente, espere 30 segundos. Após a mistura, a concentração de sal será distribuída uniformemente e a solução deve ser límpida.</li>
	<li>Coloque o tubo sob a luz UV e reticule por 30 segundos. Após a reticulação, deve haver uma camada turva no topo da solução, esta camada contém os microgéis. Veja a Figura 1 para o esquema de reação.</li>
	<li>Adicione 750 μl de PBS para formar um pellet após a centrifugação e misture bem.</li>
	<li>Lave os microgéis 5 x centrifugando por 2 min a 4.000 x g para formar um pellet e trocando o sobrenadante com PBS. Nota: Não perturbe o pellet de microgel durante a troca do tampão, pode não ser possível remover todo o sobrenadante.</li>
</ol>
3. Tamanho do microgel e polidispersidade
<ol>
	<li>Pipetar 30 μl de microgéis a partir do pellet formado a partir da centrifugação em 1 ml de DI H2O. Para obter melhores resultados, sonice a solução de microgel em um sonicador em banho-maria por 1 hora (50-60 Hz e 1,4 A) ou misture vigorosamente para suspender os microgéis.</li>
	<li>Pipete 15 μl da solução de microgel em uma lâmina de vidro limpa e coloque a lamínula # 1,5 por cima. Vire a lâmina e a lamínula sobre um tecido de laboratório e empurre a lâmina para baixo para remover o excesso de solução e garantir que os microgéis estejam em uma única camada.</li>
	<li>Capture várias imagens dos microgéis usando uma objetiva de óleo DIC 100X. Normalmente, 5 imagens são tiradas por amostra e 3 amostras por lote são recomendadas para um total de 15 imagens. Nota: nenhuma variação de lote para lote foi observada até o momento.</li>
	<li>Meça os microgéis para obter um diâmetro representativo.</li>
	<li>Calcule a PDI usando a seguinte equação baseada em volume, na qual N é o número total de microgéis e Vi é o volume de microgel i.</li>
</ol>
4. Densidade de microgel
<ol>
	<li>Prepare soluções de dextrano 7, 6, 5, 4, 3 e 1 (p / v) % em DI H2O para determinar a densidade do microgel. Essas densidades foram calculadas em 1,022, 1,020, 1,018, 1,016, 1,014 e 1,010 g/cm3, respectivamente.</li>
	<li>Adicione 1 ml de solução de dextrano a 7% a um tubo de centrífuga de 15 ml.
	<ol>
		<li>Pipetar lentamente 1 ml de solução de dextrano a 6% para formar uma camada distinta sobre o dextrano a 7%.</li>
		<li>Aguarde 5 minutos e adicione 1 ml da solução a 5%.</li>
		<li>Continue até que todas as soluções de dextrano estejam em camadas em ordem decrescente de concentração de dextrano.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Coloque cuidadosamente os microgéis acima da solução de dextrano a 1%.</li>
	<li>Centrifugue o gradiente por 10 min a 4.000 x g e 5 °C. A posição do microgel após a centrifugação permitiu o cálculo simples da densidade13.</li>
</ol>
5. Inchaço de equilíbrio de microgel
<ol>
	<li>Para medir a massa inchada (M s) dosmicrogéis, definida como a massa após o inchaço de equilíbrio (48 horas), primeiro lave os microgéis 5x em DI H2O e inche por um mínimo de 48 horas em tubos de microcentrífuga pré-pesados.</li>
	<li>Centrifugue os microgéis por 10 min a 4.000 x g.</li>
	<li>Remover todo o sobrenadante e registar a massa húmida. Use métodos de filtragem para garantir que todo o excesso de água seja removido para obter resultados mais precisos.</li>
	<li>Congelar os microgéis a -80 °C e, em seguida, liofilizar até obter a massa seca (Md).</li>
	<li>Calcule o teor de água nos microgéis por Água% = (Ms - Md) / Md x 100.</li>
	<li>Determine o teor de polímero por Polymer% = 100 - Water% .</li>
	<li>Realize análise estatística em todos os dados usando SAS com ANOVA de n vias e teste post-hoc de Tukey. As diferenças são observadas quando p<0,05.</li>
</ol>

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</ol>

Os autores declaram que não têm interesses financeiros concorrentes.

As propriedades físicas dos microgéis de PEG foram examinadas quanto a mudanças nas condições de polimerização. Para esta reação de precipitação, uma solução tampão, solução de diacrilato de PEG a 20% (p / v) (MW 3.000, 4.600 ou 6.000 Da) e fotoiniciador foram misturados e aquecidos a 37 ° C. A adição de 1,5 M Na2SO4, um sal kosmotrófico que aumenta as interações entre as moléculas de água, fez com que o PEG precipitasse momentaneamente após sua adição. Este efeito é mais proeminente com PEG8</...

Por definição, microgéis são hidrogéis de qualquer forma com um diâmetro equivalente de aproximadamente 0,1-100 μm1. Devido ao seu tamanho e características, os microgéis poliméricos apresentam uma ferramenta versátil para o avanço dos sistemas de administração de medicamentos e engenharia de tecidos. Embora os hidrogéis a granel sejam amplamente utilizados como andaimes de engenharia de tecidos e veículos de entrega de medicamentos com grande sucesso2-4, uma mudança recente para o controle em microescala de andaimes oferece uma oportunidade única para que os microgéis sejam usados como materiais de base para a construção de andaimes. Além disso, os microgéis têm uma alta relação área de superfície para volume para interações celulares e, em solução, têm uma baixa viscosidade que os torna ideais para injeções. Finalmente, os microgéis podem ser formados usando vários polímeros por uma variedade de métodos, dependendo das características desejadas do microgel, tornando-os altamente personalizáveis para uma variedade de aplicações.
As técnicas para produzir microgéis incluem polimerizações em suspensão, emulsão, dispersão ou precipitação. As polimerizações de emulsão e suspensão normalmente requerem solventes orgânicos e surfactantes ou estabilizadores para formar os microgéis. A natureza desses métodos produz uma distribuição de tamanho de partícula altamente dispersa5. As reações de dispersão e precipitação produzem partículas com menor polidispersidade6; no entanto, as partículas formadas por polimerização por dispersão ainda requerem o uso de agentes estabilizantes6. Os microgéis formados por reações de precipitação são únicos, pois formam partículas de tamanho e forma uniformes sem o uso de estabilizantes ou surfactantes. A formação de microgéis é alcançada quando as cadeias poliméricas em crescimento se separam da fase contínua por precipitação entálpica ou entrópica7. A polimerização por precipitação geralmente ocorre em altas temperaturas que podem ser reduzidas pelo uso de sais kosmotróficos, que diminuem a solubilidade do polímero no solvente8. Este trabalho se concentra em microgéis formados a partir de poli(etilenoglicol) (PEG) por uma reação de precipitação fotopolimerizada sob condições biologicamente compatíveis, com variações para alterar as propriedades do microgel e encapsular moléculas para aplicações de liberação de fármacos.
Estudos anteriores com hidrogéis PEG mostram que as condições de polimerização influenciam muito as propriedades físicas e mecânicas dos hidrogéis, nomeadamente o teor de água do hidrogel e o módulo de compressão3,9. Esses materiais reticulados são de interesse porque a relação entre as propriedades estruturais e físicas descritas por Flory10 pode ser utilizada para adaptar o hidrogel reticulado para aplicações específicas. Esses princípios são semelhantes para microgéis. Descobriu-se que os microgéis de PEG formados por precipitação têm potencial para a medicina regenerativa11, no entanto, uma investigação mais aprofundada sobre as propriedades do microgel foi necessária para aprimorar seu repertório para futuras aplicações biomédicas. Este relatório descreve o procedimento para fabricar microgéis por reação de precipitação e alterar características, como diâmetro de micropartículas, índice de polidispersidade (PDI), densidade e inchaço, que seriam importantes para desenvolver ainda mais esses materiais para administração de medicamentos ou medicina regenerativa.

<table><tbody><tr><td>Solução salina tamponada com fosfato (PBS)</td> <td>MP Biomedical</td><td>2810305</td><td></td></tr><tr><td>Trietanolamina (TEOA)</td> <td>J.T. Baker</td><td>9468-01</td><td>Pré-aqueça a 37 &graus; C antes da pipetagem</td></tr><tr><td>Ácido clorídrico (HCl)</td> <td>BDH Aristar</td><td>BDH3028</td><td></td></tr><tr><td>Sulfato de sódio</td><td>J.T. Baker</td><td>3891-01</td><td></td></tr><tr><td>Irgacure 2959</td><td>Ciba</td><td>029891301PS04</td><td></td></tr><tr><td>Ovalbumina (OVA)</td> <td>Invitrogen</td><td>34782</td><td></td></tr><tr><td>PEG 1.500</td><td>Alfa Aesar</td><td>A16241</td><td></td></tr><tr><td>PEG 3.000</td><td>Fluka</td><td>03997-1KG</td><td></td></tr><tr><td>PEG 4.000</td><td>Alfa Aesar</td><td>A16151</td><td></td></tr><tr><td>PEG 4.600</td><td>Sigma</td><td>373001-250G</td><td></td></tr><tr><td>PEG 6.000</td><td>Fluka</td><td>03394-1KG</td><td></td></tr><tr><td>PEG 10.000</td><td>Alfa Aesar</td><td>B21955</td><td></td></tr><tr><td>Dextran 70</td><td>TCI</td><td>D1449</td><td></td></tr></tbody></table>

características dos microgéis de polietilenoglicol formados por precipitação são controlados pelo peso molecular dos reagentes

Characteristics of Precipitation-formed Polyethylene Glycol Microgels Are Controlled by Molecular Weight of Reactants

Este trabalho descreve a formação de microgéis de poli(etilenoglicol) (PEG) por meio de uma reação de precipitação fotopolimerizada. As reações de precipitação oferecem várias vantagens sobre as técnicas tradicionais de fabricação de microesferas. Ao contrário das técnicas de emulsão, suspensão e dispersão, os microgéis formados por precipitação são de forma e tamanho uniformes, ou seja, baixo índice de polidispersão, sem o uso de solventes orgânicos ou estabilizantes. As condições amenas da reação de precipitação, as propriedades personalizáveis dos microgéis e a baixa viscosidade para injeções os tornam aplicáveis para fins in vivo. Ao contrário de outras técnicas de fabricação, as características do microgel podem ser modificadas alterando o peso molecular do polímero inicial. O aumento do peso molecular inicial do PEG aumentou o diâmetro do microgel e a taxa de inchaço. Outras modificações são sugeridas, como encapsular moléculas durante a reticulação de microgel. Adaptações simples aos blocos de construção de microgel PEG são exploradas para futuras aplicações de microgéis como veículos de entrega de medicamentos e andaimes de engenharia de tecidos.

O tamanho do microgel depende das condições de polimerização. Figura 2A ilustra como o diâmetro do microgel aumenta com o aumento do peso molecular inicial do PEG e do tempo de reticulação. Imagens representativas de microgeis utilizadas para determinação de tamanho, com diferentes pesos moleculares e reticulados por 30 segundos, são mostradas nas Figuras 2C-G. Para o PEG com peso molecular de 3.000 Da, o diâmetro médio do microgel aumentou de 1,65±0,26 para 2,20±0,54 μm quando a exposiç...

Este trabalho descreve a formação de microgéis de poli(etilenoglicol) (PEG) por meio de uma reação de precipitação fotopolimerizada. O aumento do peso molecular do PEG aumentou o diâmetro do microgel e a taxa de inchaço. Adaptações simples à reação de precipitação de microgel PEG são exploradas para futuras aplicações de microgéis como veículos de entrega de medicamentos e andaimes de engenharia de tecidos.

Características dos microgéis de polietilenoglicol formados por precipitação são controlados pelo peso molecular dos reagentes

This work describes the formation of poly(ethylene glycol) (PEG) microgels via a photopolymerized precipitation reaction. Precipitation reactions offer ...

O objetivo geral deste procedimento é formar microgéis de polietileno glicol utilizando uma reação de precipitação fotopolimerizada para uso como veículos de liberação de fármacos e suportes para engenharia de tecidos. Isso é realizado primeiramente preparando os reagentes, incluindo um fotoiniciador, tampões, trietilamina e solução de PEG DL, e aquecendo-os a 37 graus Celsius. O segundo passo é colocar os reagentes em um tubo de centrífuga microcêntrifugo e vórtex-los mantendo a temperatura de 37 graus Celsius.Em seguida, o sulfato de sódio é misturado e a solução é exposta à luz UV para realizar a reticulação por 30 segundos. Após a reticulação, formar-se-á uma camada turva na parte superior da solução, que contém os microgéis. O passo final consiste em adicionar PBS à mistura e centrifugar para formar um pellet.Por fim, a microscopia e a dispersão dinâmica de luz são utilizadas para medir o tamanho dos microgéis, e a densidade é medida usando um gradiente de densidade de dextrina. Além disso, a quantidade de inchamento é calculada pela medição dos pesos úmido e seco dos microgéis. A principal vantagem desta técnica em relação a outros métodos, como emulsão, suspensão e técnicas de dispersão, é que os microgéis formados por reação de precipitação apresentam um baixo índice de polidispersão, sem o uso de solventes orgânicos ou estabilizantes; as condições brandas da reação de precipitação, as propriedades personalizáveis dos microgéis e a baixa viscosidade para injeções os tornam adequados para aplicações em NVivo.Este método pode ajudar a responder perguntas fundamentais na área de engenharia de tecidos e medicina regenerativa, como a fabricação de scaffolds com tamanho uniforme e baixo índice de polidispersão. As implicações desta técnica podem estender-se à terapia de liberação de fármacos, pois os fatores de crescimento presentes nos medicamentos podem ser facilmente encapsulados. Para começar, pese 500 miligramas do fotoiniciador e adicione a 100 mililitros de água desionizada para obter uma solução de 0,5%.Proteja a solução da luz UV e aqueça-a a 40 graus Celsius, agitando constantemente por aproximadamente uma hora, para dissolver completamente o iniciador fotossensível. Após a dissolução completa, filtre esterilmente a solução passando-a por um filtro de 0,22 mícron e armazene-a a quatro graus Celsius, no escuro, até o momento do uso. Em seguida, aqueça previamente a trietilamina a 37 graus Celsius para reduzir sua viscosidade.Em seguida, adicione 612 microlitros desse volume juntamente com 260 microlitros de ácido clorídrico seis molar a 39,4 mililitros de PBS e ajuste o pH para 7,8 estéril. Filtre a solução final através de um filtro de 0,22 mícron e armazene-a a 37 graus Celsius até o momento do uso. Com base no trabalho de Sony em todos os acro lte, prepare os precursores de PEG segundo os métodos publicados e armazene o produto final a menos 20 graus Celsius sob Argonne. Imediatamente antes do uso, prepare um mililitro de uma solução de diacrilato de Peg a 200 miligramas por mililitro adicionando lentamente 0,8 mililitros do PBS com trietanolamina e ácido clorídrico a 200 miligramas de diacrilato de Peg.Além disso, logo antes do experimento, pese 213 miligramas de sulfato de sódio e dissolva em um mililitro de água deionizada. Para preparar uma solução 1,5 molar, aqueça a solução a 37 graus Celsius por 20 minutos e, em seguida, vortexe a solução até que esteja completamente dissolvida. Após a dissolução, filtre tanto a solução final de sulfato de sódio quanto a solução de PEG diacrilato a 37 graus Celsius através de filtros de 0,22 mícron.Combine 127,5 microlitros de PBS com trietilamina e ácido clorídrico, 10 microlitros do iniciador fotossensível a 0,5% e 25 microlitros da solução de 200 miligramas por mililitro de Peg diacrilato em um tubo microcentrífuga de 1,6 mililitro. Em seguida, adicione quaisquer moléculas desejadas para encapsulação.Aqueça esses tubos junto com a solução de sulfato de sódio 1,5 molar até 37 graus Celsius. Em seguida, adicione 87,5 µL da solução preaquecida de sulfato de sódio 1,5 molar ao primeiro tubo da solução de PEG e misture o tubo pipetando a solução de três a cinco vezes. Após a mistura, a concentração de sal será uniformemente distribuída e a solução deverá ficar transparente.Coloque o tubo sob a luz UV e realize a reticulação por 30 segundos após a etapa de reticulação. Deve haver uma camada turva na parte superior da solução contendo os microgéis. Em seguida, adicione 750 microlitros de PBS ao tubo e misture bem a solução por vortexagem.Em seguida, centrifugue a mistura a 4.000 vezes a gravidade durante dois minutos para formar um pellet. Após a formação do pellet, remova o SUP natin tomando cuidado para não perturbar o pellet e suspenda os microgéis em PBS fresco. Lave os microgéis um total de cinco vezes com PBS fresco, realizando a centrifugação entre cada lavagem.Após a lavagem final, remova o sobrenadante e pipete 30 microlitros de microgeis do pellet em um mililitro de água desionizada. Em seguida, sonique a solução de microgel em um banho de ultrassom por uma hora a 50-60 hertz e uma potência de 1,4 ampères. Depois, pipete 15 microlitros da solução de microgel sobre uma lâmina de vidro limpa e gravada com ácido e coloque um lamínula número 1,5 gravada com ácido por cima.Coloque a lâmina de cabeça para baixo sobre um papel toalha de laboratório e pressione suavemente para remover a solução em excesso e garantir que os microgéis estejam em uma única camada. Em seguida, utilizando um microscópio óptico, capture várias imagens dos microgéis usando uma objetiva de imersão em óleo DIC 100 x. Meça os microgéis para obter um diâmetro representativo.Calcule o índice de polidispersão utilizando a equação baseada em volume mostrada aqui, na qual N é o número total de microgéis e VI é o volume do microgel. Para medir a densidade média do microgel, prepare primeiro soluções de dextrina a 7, 6, 5, 4, 3 e 1% em água desionizada; as densidades das soluções de dextrina são mostradas aqui. Em seguida, adicione dois mililitros da solução de dextrina a 7% a um tubo cônico de 15 mililitros.Em seguida, pipete lentamente dois mililitros da solução de dextrina 6% para formar uma camada distinta sobre a dextrina 7%. Após cinco minutos, adicione dois mililitros da próxima camada, composta por dextrina 5%, e continue dessa maneira até que cada concentração de dextrina tenha sido sobreposta em ordem decrescente de concentração de dextrina. Em seguida, sobreponha cuidadosamente os microgéis acima da solução de dextrina 1%, e centrifugue o gradiente a cinco graus Celsius em 4.000 vezes a gravidade por 10 minutos.Em seguida, visualize a localização dos microgéis e calcule a densidade dos microgéis de acordo com sua posição entre as camadas. Para medir a massa inchada dos microgéis, primeiro pese previamente um tubo de microcentrífuga e então adicione um mililitro dos microgéis. Lave os microgéis cinco vezes com água desionizada, realizando uma lavagem entre cada etapa.Centrifugue a amostra por 10 minutos a 4.000 ×g para formar o pellet dos microgéis após a última lavagem. Re-suspenda-os em água desionizada e deixe-os inchar por um mínimo de 48 horas. Após 48 horas, centrifugue os microgéis inchados por 10 minutos a 4.000 ×g e, em seguida, remova todo o sobrenadante.Em seguida, pese a amostra e registre a massa úmida. Após obter um peso úmido preciso, congele os microgéis a menos 80 graus Celsius e, então, liofilize-os para remover a água e obter a massa seca. Uma vez que toda a água tenha sido sublimada, calcule o teor de água e de polímero nos microgéis utilizando as equações mostradas aqui, onde MS é o peso úmido dos microgéis e MD é o peso seco.O diâmetro médio dos microgéis de PEG formados utilizando vários pesos moleculares de PEG a 20% é mostrado aqui. O aumento do tempo de exposição à UV também teve um efeito sobre o diâmetro dos microgéis. À medida que o tempo de exposição à UV aumentava, os diâmetros das três formulações mostradas aqui também aumentavam.A densidade medida por gradientes de dextrina diminuiu com o aumento do peso molecular das moléculas precursoras de peg. Isso também é confirmado no gráfico de teor percentual de água, no qual observou-se que o peg de maior peso molecular possui maior quantidade de água por grama de polímero. Por fim, para demonstrar que os microgéis poderiam ser carregados com proteína conjugada fluorescentemente, uma albumina foi adicionada à mistura antes da polimerização e ficou aprisionada no interior das esferas.Concentrações crescentes da proteína marcada com fluoróforo aumentaram o índice de polidispersão das esferas, mas o tamanho médio permaneceu constante. Ao realizar este procedimento, é importante lembrar-se de aquecer todas as soluções a 37 graus Celsius e de realizar vortex e microgéis cuidadosamente para romper quaisquer agregados durante a lavagem e o preparo das lâminas para aquisição de imagens. Após este procedimento, métodos adicionais podem ser realizados para encapsulação de fármacos, a fim de responder perguntas adicionais sobre o efeito da liberação de fármacos.Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como criar microgéis de peg DA em condições brandas por meio de reações de precipitação.

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Research

JoVE Journal

Bioengineering

Bioengenharia

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Aprenda a formar microgéis de polietilenoglicol por fotopolimerização em precipitação para liberação controlada de fármacos e engenharia de tecidos. Este método permite ajustar propriedades controlando o peso molecular do PEG.

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