Name: Fluorescência In situ Hibridizações (FISH) para a localização de vírus e bactérias Endosymbiotic em Plant e Insect Tecidos (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-02-24T15:30:00.000+00:00
Duration: 10 min 38 s
Description: Aprenda a técnica FISH para localizar vírus e bactérias endossimbióticas em tecidos de plantas e insetos. Este método permite visualizar ácidos nucleicos com precisão em amostras biológicas.

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Pesquisa no laboratório Ghanim foi apoiado por bolsa de pesquisa no. 908-42.12/2006 da Fundação Alemã-Israelense (GIF), conceder nenhuma. IS-4062-07 dos Estados Unidos-Israel Binacional Fundo das Nações Agrícola Pesquisa e Desenvolvimento (BARD) e bolsa de pesquisa no. 884/07 da Fundação para a Ciência Israel (ISF) para MG

1. Preparativos Geral Whitefly, Flora, e vírus para análise FISH <ol><li> B traseiro e Q whiteflies biótipo de plântulas de algodoeiro (Gossypium hirsutum L. cv. Acala) e manter dentro de gaiolas à prova de insetos e salas de crescimento sob condições padrão de 25 ± 2 ° C, 60% de umidade relativa, e uma luz de 14 horas / fotoperíodo escuro de 10 horas. </li><li> Executar PCR para testar a infecção com endosimbiontes utilizando iniciadores específicos de endossimbiontes como anteriormente descrito 15-19. </li><li> Compre mudas de tomate (Solanum esculentum cv. Beefsteak) a partir de um viveiro comercial ou de plantas de tomate sementes. </li><li> Manter sob as mesmas condições de criação descritos acima até que as plantas atingem o estágio de quatro folhas verdadeiras, a idade mais adequada para a inoculação mediada por mosca branca de TYLCV 15 (ver secção 4.1 abaixo). </li></ol> 2. Manipulação de insetos, Fixação, Probe projeto, hibridização e visualização para Endosimbionte FISH <ol><li> Colete 10 whiteflies adultos por aspiração de plantas de algodão, ou pegar 10 3 ª ou 4 ª ninfas de folhas de algodão. </li><li> Mergulhar imediatamente em fixador de Carnoy (ácido clorofórmio-etanol-ácido acético glacial, 06:03:01, v / v) em tubos Eppendorf. Correção para 2 horas durante a noite (de preferência durante a noite). </li><li> Remover completamente o fixador e descolorir em 6% de H 2 O 2 em etanol durante 2 horas. </li><li> Preservar as amostras em etanol absoluto por vários dias a várias semanas à temperatura ambiente, ou prosseguir para a próxima etapa. </li><li> Conceber sondas de DNA primers reversos como complementares com base nos genes de ARN ribossomal 16s de cada bactéria. Para projetar os testes, levar em conta as mesmas considerações para a concepção de iniciadores de PCR. Utilizar as sondas oligonucleotídicas BTP1 5&#39;-Cy5-TGTCAGTGTCAGCCCAGAAG-3 &#39;, 5&#39;-Rb1 Cy3 TCCACGTCGCCGTCTTGC-3&#39;, 5&#39;-Cy3 BTH-CCAGATTCCCAGACTTTACTCA-3 &#39;e 5&#39;-Ars2 Cy3TCATGACCACAACCTCCAAA-3 &#39;para o direcionamento específico de Portiera, Rickettsia, Hamilonella e Arsenophonus, respectivamente. </li><li> Hibridizam amostras durante a noite, no escuro, em tampão de hibridação (20 mM Tris-HCl, pH 8,0, 0,9 M de NaCl, 0,01% [peso / vol] de sulfato de dodecilo de sódio a 30% [vol / vol] formamida) contendo 10 pmol de sonda fluorescente por ml . Combinar mais do que uma sonda com diferentes corantes fluorescentes, se necessário. Use whiteflies não infectadas com a bactéria alvo e amostras não-sonda como controles negativos. </li><li> Monte as amostras de todo, numa lâmina de microscópio, em tampão de hibridação contido com um bloqueador de líquido, cubra com uma lamela, selar com unha polonês, e vista sob um microscópio confocal de fluorescência ou. </li></ol> 3. Mosca branca Órgão Dissection, Fixação, hibridização e visualização para TYLCV FISH <ol><li> Colete whiteflies adultos permanentemente criados em plantas de tomate TYLCV infectados por aspiração e anesthetize por exposição a toalha de papel impregnado com acetona. Expor whiteflies apenas para 1-2 min como demasiado longa exposição à acetona pode consertar tecidos moscas brancas. Use whiteflies nonviruliferous criados em plantas de tomate não infectadas e nenhuma amostra de sonda para controles para confirmar a hibridação específica. </li><li> Mount whiteflies sobre depressão lâminas de microscópio para dissecção de órgãos usando um microscópio estéreo. </li><li> Puxe a cabeça inseto do protórax e dissecar as glândulas salivares em 1x PBS suplementado com 1% de azul de toluidina mancha para melhor visualização, devido ao seu pequeno tamanho. Permitir que a absorção da mancha para 2-3 min. </li><li> Puxe o inseto além na junção entre o tórax eo abdômen para observar e expulsar o intestino médio. Expulse o conteúdo do abdômen, empurrando com uma pinça na ponta do abdome. </li><li> Remova cuidadosamente o PBS e azul de toluidina a partir de dissecações de sucesso e adicione delicadamente 300 ml de fixador de Carnoy para corrigir os órgãos para 5 min. </li><li> Add fixador de um dos lados do poço deprimido e não a partir do topo para evitar o movimento não controlado dos órgãos dissecados. Uma vez que tocar no fixador, os órgãos vai aderir ao vidro, e ao longo do processo que não se move. </li><li> Remover fixador e adicionar 500 ul de tampão de hibridação suplementadas com 10 pmoles da sonda de DNA fluorescente Cy5 5&#39;-GGAACATCAGGGCTTCGATA-3 &#39;, que é complementar a uma sequência no gene de proteína de revestimento de TYLCV. </li><li> Hibridizar durante a noite à temperatura ambiente no escuro por incubação da lâmina com a amostra no interior de uma pequena câmara húmida, composta de pequena caixa de plástico com toalha de papel húmido no fundo. </li><li> Após a hibridização, pegar os órgãos com uma ferramenta de dissecção fina e rapidamente movê-los para uma lâmina de microscópio fresco contendo 30 mL de novo tampão de hibridação suplementadas com DAPI (0,1 mg / ml em PBS 1x) e contidos com bloqueador de líquido. </li><li> Cubra as amostras com uma lamela, selar sagacidadeh unha polonês e vista sob um microscópio confocal de fluorescência ou. </li></ol> 4. Manipulação de Plantas, Mão-corte, fixação e hibridização para TYLCV FISH <ol><li> Inocular mudas de tomate com TYLCV usando inoculação mediada por mosca branca viróticas. O vírus pode ser detectado utilizando este método de FISH em plantas sem sintomas de uma semana após a inoculação. O sintoma típico são visíveis três semanas após a inoculação. Use plantas de tomate não infectadas e nenhuma amostra de sonda para controles para confirmar a hibridação específica. </li><li> Use uma lâmina de barbear histológica afiada para preparar 2-4 longos cortes longitudinais ou transversais cm cortados à mão de tomate caules e folhas. </li><li> Em tubos Eppendorf, fixar as secções em fixador de Carnoy, durante 2 horas a durante a noite à temperatura ambiente. </li><li> Remover fixador e preservar as seções em etanol absoluto por vários dias a várias semanas à temperatura ambiente, ou prosseguir para a próxima etapa. </li><li> Lavar as secçõestrês vezes, 1 min cada, em tampão de hibridação. </li><li> Hibridar as secções com 500 ul de tampão de hibridação suplementadas com 10 pmol do oligonucleótido sonda fluorescente Cy3-5&#39;-GGAACATCAGGGCTTCGATA-3 &#39;, que é complementar a uma sequência no gene de proteína de revestimento de TYLCV. </li><li> Lavar as secções três vezes, 1 min cada, em tampão de hibridação. </li><li> Mount seções inteiras em tampão de hibridação suplementadas com DAPI (0,1 mg / ml em PBS 1x) e contidos com bloqueador de líquido, cubra com uma lamela, selar com unha polonês e vista sob um microscópio confocal de fluorescência ou. </li></ol>

<ol><li>Czosnek, H., Laterrot, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+worldwide+survey+of+Tomato+yellow+leaf+curl+viruses%5BTitle%5D)+AND+%22Arch.+Virol%22%5BJournal%5D)">A worldwide survey of Tomato yellow leaf curl viruses.</a> Arch. Virol. 142, 1391-1406 (1997).</li>
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<li>Gotz, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Implication+of+Bemisia+tabaci+heat+shock+protein+70+in+Begomovirus-whitefly+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol%22%5BJournal%5D)">Implication of Bemisia tabaci heat shock protein 70 in Begomovirus-whitefly interactions.</a> J. Virol. 86, 13241-13252 (2012).</li>
<li>Nirgianaki, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Wolbachia+infections+of+the+whitefly+Bemisia+tabaci%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Wolbachia infections of the whitefly Bemisia tabaci.</a> Curr. Microbiol. 47, 93-101 (2003).</li>
<li>Baumann, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biology+of+bacteriocyte-associated+endosymbionts+of+plant+sap-sucking+insects%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+Rev.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Biology of bacteriocyte-associated endosymbionts of plant sap-sucking insects.</a> Ann. Rev. Microbiol. 59, 155-189 (2005).</li>
<li>Gottlieb, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+and+localization+of+a+Rickettsia+sp.+in+Bemisia+tabaci+%28Homoptera%29+Aleyrodidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22App.+Environ.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Identification and localization of a Rickettsia sp. in Bemisia tabaci (Homoptera) Aleyrodidae).</a> App. Environ. Microbiol. 72, 3646-3652 (2006).</li>
<li>Li, Z. X., Lin, H. Z., Guo, X. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prevalence+of+Wolbachia+infection+in+Bemisia+tabaci%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Prevalence of Wolbachia infection in Bemisia tabaci.</a> Curr. Microbiol. 54, 467-471 (2007).</li>
<li>Skaljac, M., Zanic, K., Hrncic, S., Radonjic, S., Perovic, T., Ghanim, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diversity+and+localization+of+bacterial+symbionts+in+three+whitefly+species+%28Hemiptera%3A+Aleyrodidae%29+from+the+east+coast+of+the+Adriatic%5BTitle%5D)+AND+%22+Bull.+Entomol.+Res%22%5BJournal%5D)">Diversity and localization of bacterial symbionts in three whitefly species (Hemiptera: Aleyrodidae) from the east coast of the Adriatic.</a> Bull. Entomol. Res. 103, 48-59 (2013).</li>
</ol>

Os autores não têm nada a revelar.

O protocolo aqui descrito para a localização de um vírus de plantas, na sua planta hospedeira e vector de insecto, bactérias e endosymbiotic no seu hospedeiro mosca branca específico, pode ser adaptado para a localização de outros vírus em plantas e até mesmo em tecidos animais. Além disso, o protocolo pode ser utilizado para localizar bactérias endosymbiotic e patogénicos e outros micro-organismos em sistemas de plantas e animais. Os métodos descritos dependem de conceito simples de hibridação entre uma sonda de DNA fl...

Ao estudar as interacções entre os vírus de plantas e outros organismos patogénicos com as suas plantas hospedeiras infectadas, é importante para visualizar os patógenos e seus respectivos ácidos nucleicos in situ, independentemente de causar efeitos negativos sobre os seus hospedeiros. Isto é muito importante quando se estuda o movimento patógeno dentro e entre as células de plantas. Localização in situ de produtos de genes do agente patogénico é um passo essencial que complementa outras abordagens para estudar o processo de patogenicidade. Muitos patógenos de plantas, principalmente os vírus, são transmitidas por insetos, com interações complexas e íntimas com seus vetores. A localização destes vírus em seus vectores é importante para estudar o caminho para a transmissão, e os possíveis locais de interacção no interior do vector. A transmissão de alguns vírus de plantas vetorizado por insetos é auxiliado por bactérias endosymbiotic que residem dentro desses insetos. Para melhor estudar a transmissão desses vírus de plantas by seus vectores, é também essencial para visualizar as bactérias endosymbiotic em geral, e aqueles que estão envolvidos na transmissão do vírus, em particular. Co-localização das bactérias e vírus endosymbiotic é assim desejado para investigar as possíveis relações entre esses organismos dentro de seu exército de insetos. Além da transmissão de vírus, bactérias endosymbiotic influenciar vários aspectos da biologia dos vectores de insecto, assim, a localização espacial destas bactérias dentro de insectos é de grande interesse e importância. Tomato virus (TYLCV) (Begomovirus, Geminiviridae) é o complexo de doença viral mais importante do tomateiro cultivado em todo o mundo 1-4. TYLCV é um vírus limita-floema e é exclusivamente vetorizado pela mosca branca Bemisia tabaci 5,6. Um modelo que descreve a translocação de begomovirus nos seus vectores de mosca branca tem sido proposto 6-9. Duas barreiras específicas estão ativamente cruzou durção esta transmissão circulativa: o intestino médio / hemolinfa e as barreiras da glândula hemolinfa / salivares. Este processo de transmissão é a hipótese de ser mediada pelos receptores desconhecido, que reconhecem a cápside do vírus. TYLCV é pensado para atravessar B. tabaci intestino 6,10, e é absorvida através da glândula salivar primário 6 antes de ser injectado para dentro da fábrica. Na hemolinfa mosca branca, TYLCV interage com uma proteína GroEL produzido pela bactéria endossimbiótica secundária inseto Hamiltonella. Essa interação garante o transporte seguro de TYLCV na hemolinfa, e protege-lo de um ataque pelo sistema imunológico do inseto 11. Hamiltonella e Portiera, o endosymbiont primário de moscas brancas, estão alojados em bacteriocytes, células de insetos encontrados na hemolinfa e casa endosymbiotic bactérias 11. B. tabaci abriga bactérias endosymbiotic adicionais, incluindo Rickettsia, Arsenophonus, Wolbachia e FritschEA, que pode ser localizada no interior ou no exterior das bacteriocytes, e têm efeitos diversos sobre a biologia do insecto 12. Vários relatórios têm tentado estudar a localização de TYLCV em plantas e moscas brancas, usando protocolos demorados e dispendiosos, como a microscopia eletrônica de transmissão (TEM), anticorpos e RNA in situ na seção de espessura microscópica 10,13, um estudo recente descreveu a localização de vírus de plantas dentro de suas plantas hospedeiras e de vetor usando um protocolo simples 14. Aqui nós descrevemos um protocolo simples para a localização de TYLCV em B. tabaci dissecado intestino médio e glândulas salivares, e nas seções preparados a partir de plantas TYLCV infectados. Descrevemos ainda mais a localização de Portiera, o endosymbiont primária de B. tabaci, e seus endossimbiontes secundárias Hamitonella, Rickettsia e Arsenophonus. Este protocolo é baseado no uso de sondas de DNA curtas, quesão marcadas por fluorescência em sua extremidade 5 &#39;, e hibridam especificamente com sequências complementares em sequências de genes virais ou bacterianas. O processamento das amostras é relativamente fácil e que o sinal obtido é altamente específico. O protocolo descrito pode ser utilizado para localizar os vírus, bactérias e outros organismos patogénicos nas plantas, animais e insectos hospedeiros, e ainda pode ser utilizado para localizar o ARNm em qualquer dado tecido.

<table><tbody><tr><td>Marcado com fluorescência Sondas</td><td>Metabion</td><td>20 bp HPLC purificada</td><td>Sequência projetada pelo cliente</td></tr><tr><td>Azul de toluidina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>89640</td><td></td></tr><tr><td>Dodecil Sulfato de Sódio</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L3771</td><td>Grau de Biologia Molecular</td></tr><tr><td>Formamida</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F9037</td><td>Grau de Biologia Molecular</td></tr><tr><td>Tris-HCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T5941</td><td>Grau de Biologia Molecular</td></tr><tr><td>Ácido Acético Glacial</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>320099</td><td>Bloqueador</td></tr> de Líquido de Grau de Biologia <tr><td>Molecular</td><td>Ted Pella Inc.</td><td>22309</td><td></td></tr></tbody></table>

fluorescência<em&gt; in situ</em&gt; hibridizações (fish) para a localização de vírus e bactérias endosymbiotic em plant e insect tecidos

Fluorescence in situ Hybridizations (FISH) for the Localization of Viruses and Endosymbiotic Bacteria in Plant and Insect Tissues

Hibridização fluorescente in situ (FISH) é um nome dado a uma variedade de técnicas vulgarmente utilizadas para a visualização de transcritos de genes em células eucarióticas e pode ser ainda modificado para visualizar os outros componentes da célula, tais como a infecção com os vírus e as bactérias. Localização espacial e visualização de vírus e bactérias, durante o processo de infecção é um passo essencial que complementa a expressão profiling experiências como microarrays e RNAseq em resposta a diferentes estímulos. Compreender as infecções espaço-temporais com esses agentes complementa experiências biológicas destinadas a compreender a sua interação com componentes celulares. Várias técnicas para visualizar os vírus e as bactérias, tais como sistemas de gene repórter ou métodos imuno-histoquímicos são demoradas, e alguns estão limitados a trabalhar com organismos modelo e as metodologias complexas. PEIXES que tem como alvo de RNA ou DNA de espécies na célula é um me relativamente fácil e rápidoCTO para o estudo de localização espaço-temporal de genes e para fins de diagnóstico. Este método pode ser robusto e relativamente simples de implementar quando os protocolos empregar curto hibridação, as sondas comercialmente adquiridos, que não são caros. Isto é particularmente robusto, quando a preparação da amostra, a fixação, a hibridação, e a visualização microscópica não envolvem etapas complexas. Aqui nós descrevemos um protocolo para a localização de bactérias e vírus em tecidos de insetos e plantas. O método baseia-se na preparação simples, a fixação, e hibridação de insectos montagens inteiras e órgãos ou partes de plantas dissecadas feitos à mão, com 20 pares de bases de DNA sondas curtas conjugados com corantes fluorescentes na sua 5 &#39;ou 3&#39;. Este protocolo foi aplicado com sucesso a um número de tecidos de insecto e vegetais, e pode ser usada para analisar a expressão de ARNm ou de outras espécies de RNA ou de DNA na célula.

O sistema estudado neste manuscrito é mostrado na Figura 1 e inclui uma planta infectada com TYLCV, um adulto e uma ninfa da mosca branca B. tabaci, ea anatomia interna da mosca-branca, mostrando o caminho para a translocação TYLCV no inseto. Figura 2 mostra dupla FISH em uma mosca adulta para o simbionte primário Portiera eo simbionte secundário Arsenophonus. Figura 3 mostra dupla FISH para Portiera e Hamiltonella e ...

Descrevemos aqui um simples fluorescência de hibridação in situ (FISH), o método para a localização de vírus e bactérias, em tecidos de plantas e de insectos. Este protocolo pode ser estendido para a visualização de mRNA em toda montagem e cortes microscópicos.

Fluorescência<em&gt; In situ</em&gt; Hibridizações (FISH) para a localização de vírus e bactérias Endosymbiotic em Plant e Insect Tecidos

Fluorescence in situ hybridization (FISH) is a name given to a variety of techniques commonly used for visualizing gene transcripts in eukaryotic cells ...

fluorescence-situ-hybridizations-fish-for-localization-viruses

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Imunologia e Infecção

Montar toda a hibridização in situ é uma das técnicas mais utilizadas em biologia do desenvolvimento. Aqui, apresentamos uma alta resolução de dupla fluorescentes em protocolo de hibridização in situ para analisar o padrão de expressão precisa de um único gene e para determinar a sobreposição dos domínios de expressão dos dois genes. Incluímos uma propidium iodeto nuclear contra-coloração para destacar a organização do tecido.

Zebrafish Whole Mount Alta Resolução Duplo Fluorescente In Situ Hibridização

Hibridização In Situ para a localização precisa de transcrições em Plantas

Detecção de RNA viral por fluorescência<em&gt; In situ</em&gt; Hybridization (FISH)

Dentre os três gêneros de mosquito, ou...

Fluorescente<em&gt; In situ</em&gt; Hibridação em cromossomos mitóticos de mosquitos

Fonte: Ng, K. M., Tropini, C. Visualização das Interações Microbiota-Hospedeiro Intestinal via Hibridização In Situ por Fluorescência, Coloração por Lectina e Imagem. J. Vis. Exp. (2021).Este vídeo demonstra o procedimento de hibridização fluorescente in situ (FISH) para colorir a microbiota intestinal dentro do tecido intestinal do camundongo, hibridizando sondas fluorescentes com rRNA bacteriano (ácido ribonucleico ribossomal) e contracolorindo as estruturas do hospedeiro para análise...

Hibridização in situ por fluorescência de bactérias intestinais em seções intestinais de camundongos

Source: Zhang, L., et al. Immunofluorescent Labeling of Plant Virus and Insect Vector Proteins in Hemipteran Guts. J. Vis. Exp. (2021)The video demonstrates the preparation of gut tissue from a plant virus–infected insect vector for fluorescence imaging. Fixed guts were washed, permeabilized, and incubated with two fluorescent antibodies in a blocking solution—one targeting a viral antigen in vesicles, the other a vesicle-associated membrane protein. The tissue was counterstained for actin...

Immunostaining to Visualize Viral Antigen and Host Protein Colocalization in the Insect Gut

Foi estabelecido um protocolo de hibridização fluorescente in situ para a detecção de um genoma do vírus de ADN persistente nas secções de tecido de modelos animais. Este protocolo permite estudar processo de infecção por codetection do genoma viral, os seus produtos de ARN, e proteínas virais ou celulares no interior das células individuais.

A detecção do genoma e Transcrições de um vírus DNA persistente em tecidos neuronais por fluorescentes Em situ Hibridização Combinado com Imunocoloração

Este protocolo para marcação imunofluorescente de proteínas de vírus de plantas e proteínas de insetos vetores em intestinos de insetos excisados pode ser usado para estudar interações entre vírus e insetos vetores, funções de proteínas de insetos e mecanismos moleculares subjacentes à transmissão de vírus.

Marcação por imunofluorescência de vírus de plantas e proteínas de insetos vetores em intestinos de Hemiptera

Este protocolo simplificado detalha um fluxo de trabalho para detectar e imaginar bactérias em amostras complexas de tecido, desde a fixação do tecido até micróbios de coloração com hibridização fluorescente in situ .

Visualização de Interações de Microbiota intestinal via Fluorescência In Situ Hibridização, Mancha de Lectina e Imagem

Micróbios intestinais, incluindo bactérias extracelulares e patógenos intracelulares como o vírus Orsay e microsporídios (fungos), são frequentemente associados a nematoides selvagens de Caenorhabditis . Este artigo apresenta um protocolo para detecção e quantificação de micróbios que colonizam e/ou infectam nematoides de C. elegans e para medir a carga de patógenos após infecções controladas em laboratório.

Hibridização in situ por fluorescência de RNA (FISH) para visualizar colonização microbiana e infecção em intestinos de Caenorhabditis elegans

Aprenda a técnica FISH para localizar vírus e bactérias endossimbióticas em tecidos de plantas e insetos. Este método permite visualizar ácidos nucleicos com precisão em amostras biológicas.

Fluorescência

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