Name: Dissecção Xenopus laevis Crista neural para In vitro Cultura Explant ou In vivo Transplante (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-03-04T17:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 7 s
Description: Aprenda a dissecção da crista neural de Xenopus laevis para estudos in vitro e transplante in vivo. Este método permite investigar a migração e diferenciação celular no desenvolvimento embrionário.

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Os autores agradecem Adeline Dolly para as fotos de explante sobre a fibronectina, Eric Théveneau para discussões úteis e Biotério do Institut Curie. CM é um pós-doutorado da Região Ile de France (Domaine d&#39;Interet Majeur Stem Pole), Universite Paris Sud (Adido Temporaire d&#39;Enseignement et de Recherche) e Agence Nationale de la Recherche. Este trabalho foi financiado pela Universite Paris Sud (Attractivite 2011), o Centre National de la Recherche Scientifique (Programa de Acção Thématique et incitativo sur), Associação pour la Recherche contre le Câncer Grant SFI20101201882, Ligue contre le Cancer, e Agence Nationale de la Recherche (Agence Nationale de la Recherche Programa Blanc).

Experimentos cumprir com a regulamentação nacional e comunitária relativa à protecção dos animais utilizados para fins científicos e com princípios internacionalmente consagrados de substituição, redução e aperfeiçoamento. 1. Preparação de Pratos fibronectina revestidos 14 <ol><li> Pipetar 500 ml de 10 mg / ml de fibronectina de grau de cultura diluído em 1x tampão fosfato salino (PBS) para uma placa de Petri de plástico padrão (Ø 40 x 11 mm). Incubar a 37 ° C durante 1 hora. Nota: se estiver usando pratos de vidro ou lamelas de vidro para imagens subsequentes, use a / ml solução fibronectina 100 mg. </li><li> Lavar três vezes com PBS 1x. </li><li> Substituir PBS com 500 ml de 1x PBS/0.1% Albumina de Soro Bovino (BSA). Incubar a 37 ° C durante 30 min. </li><li> Lavar três vezes com PBS 1x. </li><li> Encha-se com PBS 1x e manter a 4 ° C até à sua utilização (geralmente de 24-48 h). </li></ol> 2. Dissecção dos explantes NC &lt;ol&gt; <li> Preparar 3/4 normal anfíbio Médio (NAM) (NaCl 110 mM, KCl 2 mM, 1 mM de Ca (NO3) 2, 1 mM de MgSO4, 0,1 mM de EDTA, 1 mM de NaHCO 3, 0,2 x PBS, 50 mg / mL gentamicina 10,15). Não mantenha mais de 1 semana para dissecação, armazenar a 4 ° C. NAM mais podem ser utilizados para a preparação de pratos revestidos-de dissecação de agarose (abaixo). </li><li> Prepare 60 milímetros placas de Petri para dissecção, revestidos com 10 ml de 2% de agarose em 3/4 NAM. </li><li> Recolhe ferramentas de dissecação: pipetas de Pasteur de plástico, um pino mais fino inseto montado no suporte do pino (ver tabela materiais de referência), uma &quot;faca sobrancelha&quot; (feito com o cabelo da sobrancelha embebidos em parafina, na ponta de uma pipeta de Pasteur de vidro 16), dois fina fórceps de dissecação, pipeta P1000 e dicas, um estereoscópio binocular com ampliação de 8-40X 50, uma fonte de luz brilhante, com guias de fibras ópticas. Todas as ferramentas de dissecação devem ser mantidos limpos, depois de cada experimento, lavar duas vezes com água destilada, uma vez wiª etanol 100% e deixar secar. Guarde longe da poeira. </li><li> Preencha o prato dissecção com NAM fresco quase até o topo. </li><li> Obter X. laevis embriões de acordo com os procedimentos padrão 10 e idade deles até atingirem neurula fase 16 (de acordo com Nieuwkoop e Faber tabela de desenvolvimento 17). </li><li> Coloque fase 16 embriões no prato dissecção usando o Pasteur pipeta de plástico. </li><li> Realizar todas as etapas subseqüentes sob o escopo binocular. Retirar a membrana vitelina, com dois pares de pinças. Tenha cuidado para não danificar a parte dorsal dos embriões. </li><li> Espere até que os embriões atingiram fase 17 para iniciar a dissecção. Fase 17 é adequado uma vez que a crista neural é claramente separado do tubo neural, em contraste com as fases anteriores. Após fase 17, NC começa a migrar e se misturando com o mesênquima circundante. </li><li> Cave um buraco pequeno na agarose com uma pinça para fazer um nicho para os embriões, a fim de manterlos durante a dissecção. Coloque um embrião dorsal voltada para cima. Nota: massa de modelar pode ser utilizada para manter os embriões em vez escavar um buraco no agarose. </li><li> Faça uma incisão na parte lateral da prega neural anterior com a faca sobrancelha eo pino do inseto. Tenha cuidado para não ir muito fundo no embrião: destinam-se a cortar 2-3 camadas celulares (nunca chegam tão profundo como o archenteron!). Durante todo o processo de esvaziamento, nunca permitir que os tecidos dissecados para entrar em contacto com a interface ar-líquido desde X. tecidos embrionários laevis são lisadas pela tensão superficial. </li><li> Faça uma segunda incisão paralela na parte mais dorsal do neural dobra usando os mesmos instrumentos. </li><li> Se necessário, gire o prato em torno de 90 °. Fazer uma terceira incisão perpendicular com a faca sobrancelha e o pino de insectos, no lado posterior dos dois primeiros incisões. O NF é uma massa espessa de células debaixo da camada exterior pigmentada de ectoderma, lateralpara o tubo neural. </li><li> Utilize a ponta da faca sobrancelha para separar a camada pigmentada da ectoderme NC subjacente, a partir da terceira borda da incisão. </li><li> Usar o lado da faca sobrancelha para separar o tecido de NC a partir da terceira incisão. O tecido NC é bastante acinzentada, enquanto a mesoderme cefálica subjacente é branco. Separe cuidadosamente o NC a partir da mesoderme. </li><li> Retire o tecido NC anteriormente da vesícula óptica, e cortar a este nível para liberar o explante. Como um controlo para a primeira experiência, o controlo de expressão snail2 (um marcador NC canónica) em alguns explantes por hibridação in situ é recomendada. </li></ol> 3. Galvanização explantes sobre fibronectina <ol><li> Preencha o prato revestido com fibronectina Modificado Danilchick Médio (MDM, NaCl 53 mM, Na2CO 3 5 mM, K gluconato de 4,5 mM, Na Gluconate 32 mM, MgSO4 1 mM, CaCl2 1 mM, BSA 0,1%, ajuste de pH a 8.3 com 1 M de Bicina <sup&gt; 18). </li><li> Transferir os explantes no prato revestido com fibronectina com uma pipeta P1000. Nunca permitir que os explantes de tocar a interface ar-líquido. Primeiro, um pouco de líquido pipeta na ponta, em seguida, os explantes, em seguida, um pouco de líquido novamente. Não permita que o ar para a ponta durante a transferência dos explantes no prato revestido de fibronectina. Uma vez que a ponta está dentro do líquido do prato revestido de fibronectina, deixe-os explantes lentamente descer por gravidade, ou empurrar gentilmente. Evite ejetar os explantes rápido demais. </li><li> Coloque 10-30 explantes no prato usando a faca sobrancelha. Evitar os lados do prato, que não são adequados para a imagiologia subsequente. </li><li> Tente não mover o prato até os explantes ter anexado a fibronectina (leva cerca de 15-30 minutos). Se necessário, mova o prato com muito cuidado. </li><li> Coloque o prato em uma incubadora de refrigeração (entre 15-20 ° C, para ver gráfico de temperatura 17). Quando colocado a 15 ° C, as células de are geralmente migrando de forma eficiente e dispersão após 6 horas de incubação (este tempo pode variar entre os experimentos). </li></ol> 4. Enxertia explantes em embriões de host <ol><li> Corte uma lamela de vidro fino em pedaços muito pequenos, usando uma pinça grossa. O tamanho das peças deve ser de cerca de 1,5 mm 2. Mergulhar os pedaços num prato de Petri contendo 3/4 de NAM ou PBS utilizando fórceps. </li><li> Preparação do embrião hospedeiro: dissecar o anfitrião NC em 3/4 NAM como descrito em 3) com um cuidado especial para não danificar o embrião hospedeiro durante a remoção da membrana vitelina e dissecando o NC. A tensão do tecido tende a aumentar o tamanho da ablação de: permitir que o embrião hospedeiro curar parcialmente dissecando o embrião dador. </li><li> Em outro prato revestido de agarose ou em outra parte do mesmo prato, dissecar o explante NC a partir do embrião dador, tal como descrito no protocolo 3. Transferir o enxerto NC no prato contendo o hospedeiro com cuidado, como descrito emProtocolo no 3. </li><li> Imediatamente coloque o explante NC para a área de acolhimento ablated usando uma pinça. O explante deve anexar parcialmente. Coloque um pedaço de lamela de vidro para o embrião enxertada para manter o enxerto no lugar. Escolha um pedaço de vidro maior que o embrião para evitar danificá-lo. O embrião vai ser um pouco achatado. </li><li> Aguarde pelo menos 15-20 min, em seguida, remova cuidadosamente a lamela. Deixe o embrião recuperar durante mais 10 minutos e cuidadosamente pipetar-lo em um prato limpo preenchido com 3/4 de NAM, utilizando a pipeta de Pasteur de plástico. </li></ol>

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</ol>

Os autores não têm nada a revelar.

Este protocolo descreve uma técnica fácil de explantar premigratory craniano NC em embriões laevis X.. Os embriões utilizados para tais experimentos precisam ser robusto e curar bem. Descarte qualquer lote de embriões saudáveis. Além disso, os embriões crescem a diferentes temperaturas (de 12 a 18-20 ° C), de modo a excisar crista neural na fase 17, e não depois. Após a fase 17, crista neural pode ser misturado com mesoderme cefálica e não pode ser removido completamente. Tecidos Xenopus curar rapidame...

A crista neural (NF) é uma população de células embrionárias transiente que surge a partir do tubo neural, no final de neurulação em embriões de vertebrados. Os eventos de sinalização e genéticos que controlam a especificação NC começar tão cedo quanto a gastrulação. O NC é especificado na fronteira entre o ectoderma neural e não neural por sinais de tecidos dorsais circundantes. No final da neurulação, células NC sofrer uma transição epitélio para mesênquima (EMT) e migrar extensivamente no embrião seguindo vias estereotipados por responder ao redor pistas orientadoras. Uma vez que eles chegaram ao seu destino final, eles se diferenciam em uma vasta gama de derivados, por exemplo, neurônios, glia, ossos, cartilagens e células pigmentadas 1-5. Por causa de sua contribuição para muitos tipos de células e tecidos embrionários, defeitos em qualquer etapa do desenvolvimento NC células, a partir de indução de diferenciação final, pode causar síndromes congênitas nomeados neurocristopathies 6. Emanipulação Xperimental do NC desenvolvimento em diferentes estágios - especificação, EMT, migração e diferenciação - irá melhorar a nossa compreensão da neurocristopathies e permitir desenho de estratégias terapêuticas potenciais. O embrião de Xenopus laevis é um modelo de escolha para estudar o desenvolvimento NC. Um grande número de embriões são fáceis de obter, e fecundação externa dá acesso aos primeiros passos do desenvolvimento. Muitas ferramentas estão disponíveis para manipular experimentalmente X. laevis desenvolvimento embrionário. Gene ganho de função e knockdown são fáceis de realizar por microinjecting células individuais dos primeiros blástulas. Tecidos embrionários podem ser cortados para in vitro reassociation 7-11 ou ensaios de back-enxerto 12,13. Neste protocolo, descrevemos como dissecar premigratory NC craniano em X. laevis neurulas final, antes da migração. Estes explantes podem ser cultivados em fibronectina coateplacas d para estudar a migração e diferenciação em controladas em condições experimentais in vitro. Explantes NC também pode ser enxertado em embriões hospedeiros normais ou manipuladas para estudar a sua migração e diferenciação in vivo.

<table><tbody><tr><td>Fibronectina de plasma bovino</td><td>Sigma</td><td>F4759-1MG</td><td></td></tr><tr><td>Albumina de soro bovino, Fração V</td><td>Euromedex</td><td>04-100-811-C</td><td>Grau de qualidade inferior pode&nbsp; ser adequado para esta aplicação</td></tr><tr><td>Pinos de Insetos de Aço Inoxidável, Tamanho 000</td><td>FST</td><td>26001</td><td></td></tr><tr><td>Pinça Dumont #5 0.05 mm x 0.02 mm</td><td>FST</td><td>11252-20</td><td></td></tr></tbody></table>

dissecção<em&gt; xenopus laevis</em&gt; crista neural para<em&gt; in vitro</em&gt; cultura explant ou<em&gt; in vivo</em&gt; transplante

Dissection of Xenopus laevis Neural Crest for in vitro Explant Culture or in vivo Transplantation

A crista neural (NF) é uma população de células do tubo neural dorsal transiente que sofre uma transição epitélio para mesênquima (EMT) no final de neurulação, migra extensivamente para vários órgãos, e diferencia-se em vários tipos de derivados de (neurónios, células da glia, cartilagem e osso, as células pigmentadas e endócrino). Neste protocolo, descrevemos como dissecar o premigratory craniano NC a partir de embriões de Xenopus laevis, a fim de estudar o desenvolvimento NC in vivo e in vitro. O modelo sapo oferece muitas vantagens para estudar o desenvolvimento precoce; lotes abundantes estão disponíveis, os embriões se desenvolvem rapidamente, no ganho vivo e perda de estratégias de função permitem a manipulação da expressão gênica antes NC dissecção em doador e / ou embriões de acolhimento. Os explantes de NC podem ser semeadas em fibronectina e utilizados para estudos in vitro. Eles podem ser cultivadas durante vários dias, num meio definido isento de soro. Nós também descrevem como enxertar explantes NC voltaem embriões de acolhimento para estudar a migração NC e diferenciação in vivo.

Quando plaqueadas em fibronectina, os explantes da crista neural anexar-se rapidamente (15-30 min) e o explante estende horizontalmente dentro de 2 horas (Figura 1A). Depois de 3-6 células hr começar a se dispersar. Em 24 horas, a 15 ° C, muitas células começaram a migrar a partir do explante (Figuras 1B e 1C). Yolk torna as células muito brilhante em fase de contraste (Figura 1B). Protuberâncias celulares (filopodes e lamellipodes) são claramente visív...

Este protocolo descreve como dissecar crista neural craniana premigratory (NC) de Xenopus laevis neurulas. Estes explantes podem ser semeadas em fibronectina e cultivadas in vitro, ou enxertados em embriões hospedeiros. Esta técnica permite estudar os mecanismos da transição epitélio NC-to-mesênquima, migração e diferenciação.

Dissecção<em&gt; Xenopus laevis</em&gt; Crista neural para<em&gt; In vitro</em&gt; Cultura Explant ou<em&gt; In vivo</em&gt; Transplante

The neural crest (NC) is a transient dorsal neural tube cell population that undergoes an epithelium-to-mesenchyme transition (EMT) at the end of ...

O objetivo geral do procedimento a seguir é acompanhar a migração das células da crista neural do opus Lavis. Isso é realizado primeiramente dissecando as cristas neurais de embriões no estágio neural. Na segunda etapa, os explantes são semeados em uma placa revestida com fibronectina para estudar sua migração celular in vitro.Alternativamente, após a remoção da crista neural de um embrião hospedeiro, explantes podem ser enxertados novamente para rastrear sua migração in vivo. Em última análise, pode-se investigar a contribuição da migração das células da crista neural embrionária no desenvolvimento do opus lavis. Geralmente, pessoas novas neste método podem achar difícil porque embriões jovens são frágeis.A crista neural é uma população celular bastante pequena, e você precisa fabricar suas próprias ferramentas de dissecação. A demonstração visual deste protocolo é fundamental. Cada elemento do processo de dissecação foi otimizado para garantir a remoção limpa da crista neural.No dia do experimento, pegue um recipiente de dissecação de 60 milímetros revestido com cerca de 10 mililitros de agarose 2% e encha-o até quase o topo com três quartos de meio normal para anfíbios, ou nam.

dissection-xenopus-laevis-neural-crest-for-vitro-explant-culture-or

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Neurais culturas de explante de<em&gt; Xenopus laevis</em

O mesênquima craniana sofre movimentos morfogênicos dramáticas que provavelmente fornece uma força motriz para a elevação das pregas...

Um ensaio de explante para avaliar o comportamento celular do mesênquima craniana

Xenopus laevis proporciona um sistema de modelo ideal para o estudo da especificação célula destino e função fisiológica de células individuais da retina em cultura celular primária. Aqui apresenta-se uma técnica para dissecar os tecidos da retina e geração de culturas de células primárias que têm imagem para a actividade de cálcio e analisados ​​por hibridação in situ.

Dissecção, Cultura, Análise e de<em&gt; Xenopus laevis</em&gt; Tecido embrionário da retina

Aqui vamos desenvolver as ferramentas necessárias...

Ex vivo imagens ao vivo de divisões celulares simples no mouse neuroepithelium

Este vídeo ilustra uma técnica para isolar as dobras neurais cranianas da região do mesencéfalo de embriões de pintinhos. Apresenta um processo detalhado de dissecção das dobras neurais, sua colocação e fixação em lamínulas revestidas com fibronectina, seguido pela observação da migração das células da crista neural das dobras neurais.

Isolando dobras neurais cranianas de um embrião de pintinho para uma cultura de células da crista neural

Este protocolo descreve um processo melhorado que implica...

Ex utero Eletroporação e Explantes hemisfério inteiro: um método simples Experimental de Estudos do Desenvolvimento Cortical Precoce

Uma técnica para o transplante "Extreme Anterior Domain" tecido facial entre embriões de Xenopus laevis foi desenvolvido. Tecidos podem ser movidos de um gene de expressão fundo em outra, permitindo o estudo das necessidades locais para o desenvolvimento craniofacial e sinalização para as interações entre as regiões faciais.

Transplantes faciais em<em&gt; Xenopus laevis</em&gt; Os embriões

Nos embriões de Xenopus, as células do teto do blastocele são pluripotentes e podem ser programadas para gerar vários tecidos. Aqui, descrevemos protocolos para usar explantes de telhado de blastocele de anfíbios como um sistema de ensaio para investigar as principais características in vivo e in vitro do desenvolvimento neural inicial.

Stem Cell-like<em&gt; Xenopus</em&gt; Embrionárias explantes Estudar características Neural desenvolvimento precoce<em&gt; In Vitro</em&gt; E<em&gt; In Vivo</em

A transição epitelial para mesenquimal (EMT) permite que os cânceres se tornem invasivos. Para investigar a EMT, é descrito um modelo in vitro baseado em células-tronco neurais (NSC) desprovido de soro e enzimas. Este sistema padronizado permite a avaliação quantitativa e qualitativa da migração celular, expressão gênica e proteica. O modelo é adequado para a descoberta de medicamentos.

Um Modelo de enzimas e Cultura de Células-Tronco Neural Serum-livre para EMT Investigation Adequado para Drug Discovery

Este protocolo descreve a dissecção e a cultura de pilhas neurais cranianas da crista dos modelos do rato, primeiramente para o estudo da migração da pilha. Nós descrevemos as técnicas ao vivo da imagem latente usadas e a análise da velocidade e da forma da pilha muda.

Dissecção, cultura e análise de células da crista neural craniana primária do mouse para o estudo de delaminação e migração de células de crista neural

Apresentamos um protocolo de duas partes que combina imagens fluorescentes de cálcio com hibridização in situ, permitindo que o experimentador correlacione padrões de atividade de cálcio com perfis de expressão genética em um nível unicelular.

Imagem fluorescente de cálcio e subsequente hibridização em Situ para caracterização do precursor neuronal em xenopus laevis

Aprenda a dissecção da crista neural de Xenopus laevis para estudos in vitro e transplante in vivo. Este método permite investigar a migração e diferenciação celular no desenvolvimento embrionário.

Dissecção

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