Name: Um ferimento Modelo Alkali queima de córnea neovascularização no Rato (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-04-07T15:30:00.000+00:00
Duration: 10 min 52 s
Description: Aprenda a criar um modelo de queimadura alcalina em córnea de rato para estudar neovascularização corneana e avaliar terapias antiangiogênicas. Este método permite quantificar a redução de vasos sanguíneos e inflamação ocular.

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Somos gratos pela ajuda de Dr. Xinyu Li na preparação do manuscrito. SW foi suportado por um fundo de Startup da Universidade de Tulane, do Conselho de Pesquisa New Award do Presidente Investigador da UT Southwestern Medical Center, NIH Grant EY021862, um prêmio de desenvolvimento de carreira a partir da pesquisa para prevenir a cegueira fundação, e um prêmio brilhante Foco na Idade Degeneração Macular Relacionada à Pesquisa .

Nota: O seguinte protocolo e os resultados representativos utilizar o inibidor HDAC SAHA como um composto de exemplo. No entanto, este protocolo é de modo algum limitado ao uso de SAHA, e é recomendada como um método geral para testar os efeitos de compostos solúveis em neovascularização córnea. Pequenas modificações terão de ser feitas para o grau de diluição, assim como a frequência e duração da aplicação. Além disso, os compostos que são facilmente solúveis em água poderá ser administrada na ausência de DMSO. Declaração de ética: Todos os experimentos com animais só deve ser realizado em conformidade com a legislação nacional e os regulamentos institucionais. Este protocolo foi aprovado para uso pela Universidade de Tulane Institutional Animal Care e do Comitê Use. 1. Elaboração de Materiais (em ordem de utilização) <ol><li> Cortar um pedaço de papel de filtro de celulose (11 mm) em 2 milímetros círculos. </li><li> Prepara-se uma solução 1 M de NaOH pordissolvendo 20 g de NaOH em ​​500 ml de água destilada H 2 O. Armazenar à temperatura ambiente. CUIDADO: soluções de NaOH são corrosivos e podem causar alcalinos-queimaduras. </li><li> Preparar um cocktail anestésico por diluição de 10 ml de 100 mg / ml de cetamina e 2,5 ml de 20 mg / ml de xilazina em 37,5 ml de 1x PBS para uma concentração final de 20 mg / ml de cetamina e 4 mg / ml de xilazina. </li><li> Prepara-se uma solução de 0,5% de cloridrato de proparacaína (para analgesia tópica) por dissolução de 500 mg de cloridrato de proparacaína, em 100 ml de PBS filtrado. </li><li> Prepare 1x PBS por dissolução de 8 g de NaCl, 0,2 g de KCl, 1,44 g de Na 2 HPO 4, e 0,23 g de NaH 2 PO 4, em 900 ml de H2O destilada Ajustar o pH para 7,4. Levar a solução para um volume final de 1000 ml com H2O destilada e filtro para garantir a esterilidade. </li><li> Preparar 1000 x soluções de estoque de SAHA em ~ 100 mM em dimetil-sulfóxido (DMSO) por dissolução de 26,4 mg de SAHA em 1 ml de DMSO. Dilui-se a um 1x (~ 10 mM)solução filtrada em PBS por cada utilização. Armazene a solução de reserva, a -20 ° C durante até um mês. CUIDADO: DMSO é uma toxina conhecida e mutagênico. </li><li> Prepara-se uma solução de 4% de paraformaldeído (PFA) para fixação. Dentro de uma câmara química, dissolver 4 g de PFA em 90 ml de PBS. Levar a mistura até 65 ° C e a titulação para um pH de 7,4. Uma vez que o PFA tem dissolvido, levar a solução a um volume final de 100 ml. Armazenar a 4 ° C por até um mês. CUIDADO: PFA é um conhecido por ser alergênico, cancerígeno e tóxico. </li><li> Preparar tampão de bloqueio por diluição 1x 5 ml de soro de cabra e de 500 ul de Triton X-100 em 94,5 ml de PBS. </li><li> Preparar tampão de lavagem 1x diluindo 500 ul de Triton X-100 em 99,5 ml de PBS. </li></ol> 2. Alkali-Burn Tratamento de Lesões e Composto <ol><li> Molhe um pedaço redondo de papel de filtro, ~ 2 mm de diâmetro, em uma solução de NaOH 1 M. </li><li> Anestesiar o rato com uma injeção de 100 mg / kg de ketamina e 5 mg / kg de xilazina, which é ~ 100 l do cocktail anestésico do passo de 1,3 por 25 g mouse. A anestesia deve tomar ~ 1-2 min para definir polegadas de profundidade da anestesia pode ser determinado comprimindo suavemente o dedo do pé ou da cauda do animal, se a anestesia for suficiente deve haver nenhuma resposta. Nota: Cuidados devem ser tomados para garantir o mouse não sucumbir à hipotermia induzida anestesia. </li><li> A utilização de um conta-gotas, aplicar topicamente uma gota de cloridrato de proparacaína a 0,5% sobre a superfície da córnea para analgesia local. </li><li> Utilizando uma pinça estéril, pegar um pedaço de papel de filtro embebido NaOH. Se você notar excesso de NaOH ou agarrando-se a pingar do papel de filtro, toque brevemente o papel de filtro embebido em um pedaço de papel de filtro seco para absorver o excesso. Coloque o pedaço de papel de filtro embebido NAOH na córnea central. Deixá-lo por 30 segundos para gerar um álcali-queimadura aguda de ~ 2 x 2 mm 2 de área. Um microscópio cirúrgico é útil para colocar adequadamente o papel de filtro. Nota: Apenas um olho do rato should ser feridos com o outro serve como um controlo. </li><li> Remover o papel de filtro. Usando uma seringa de 10 ml, lavar cuidadosamente o olho com 10 ml de PBS 1x duas vezes para lavar o resíduo de NaOH 1 M. </li><li> Imediatamente aplicar uma gota de solução de trabalho de 1 x SAHA (ou um controlo de veículo que consiste em PBS diluídas contendo DMSO sem SAHA) topicamente para a córnea. Repita 3x/dia pedido de 14 dias. Nota: durante este período uma pomada antibiótica tópica não é recomendado, pois pode interferir com o desenvolvimento da lesão e da entrega do composto. Usar uma solução de antibiótico líquido, solução de gentamicina, tal como 3%, em vez disso. </li><li> Vá diretamente para Avaliação Clínica (Protocolo 3 abaixo) ou sacrificar o mouse e enuclear os olhos por córnea plana de montagem (Protocolo 4 abaixo) ou parafina / histologia congelado convencional. </li></ol> 3. Avaliação Clínica <ol><li> Executar um exame diário dos ratinhos de forma cega sob o microscópio cirúrgico e marcar corneal NV baseado na opacidade da córnea, NV, e tamanho do vaso. Use pelo menos dois observadores e gravar um escore final que é a média dos dois. <ol><li> Pontuação opacidade da córnea em uma escala de 0-4. 0 = completamente claras; 1 = um pouco obscuro, íris ea pupila facilmente visível; 2 = ligeiramente opacos, íris ea pupila ainda detectável; 3 = opacos, alunos dificilmente detectáveis; e 4 = totalmente opacos, sem vista do aluno. </li><li> Pontuação NV numa escala de 0-3. 0 = sem neovasos; 1 = neovasos no limbo da córnea; 2 = neovasos que medem o limbo da córnea e se aproximando do centro da córnea; 3 = neovasos abrangendo o centro da córnea. </li><li> Pontuação tamanho do vaso em uma escala de 0-3. 0 = sem neovasos; 1 = neovasos detectáveis ​​ao microscópio cirúrgico; 2 = neovasos facilmente vistos ao microscópio cirúrgico; 3 = neovasos facilmente visto sem o microscópio. </li></ol></li><li> Usando uma câmera digital, tirar fotos representativas do olho em 7 dias e 14 dias. </li></ol> 4.Corneal Coloração e planas Mounts <ol><li> Fix olho enucleado em PFA a 4% durante pelo menos 1 hora a 4 ° C. </li><li> Transfira o olho para 1x PBS e utilize uma pinça para remover cuidadosamente o excesso de tecido. </li><li> Com o auxílio de um microscópio cirúrgico, usar uma agulha (18 gauge) ou micro-faca para perfurar a região pericorneal do olho (Atenção: este deve liberar líquido do olho). <ol><li> A partir da perfuração feita na secção 4.3.1 usar um par de tesouras cirúrgicas para cortar a porção anterior do olho (córnea) a partir da porção posterior. </li></ol></li><li> Transferir a córnea para trás em PFA a 4% para a fixação durante a noite a 4 ° C. </li><li> Descarte a 4% PFA (ATENÇÃO: PFA é perigoso e deve ser eliminado de acordo com as normas institucionais) e enxaguar a córnea três vezes com PBS 1x de remover qualquer PFA residual. </li><li> Incubar em 1x tampão de bloqueio durante, pelo menos, 2 horas à temperatura ambiente, para permeabilizar o tecido e impedir a ligação inespecífica do anticorpo primário. <ol><li> Aplicar o anticorpo primário em tampão de bloqueio 1x, a uma diluição de dobragem 100-500. (Por exemplo, rato anti-mouse-PECAM-1 para a detecção de vasos sanguíneos a 1:100, coelho anti-rato-lyve-1 para a detecção de vasos linfáticos em 1:500, e / ou anti-mouse-F4/80 rato para a detecção de macrófagos a 1:100). Incubar a 4 ° C durante a noite. </li><li> Lavar seis vezes com 1x tampão de lavagem durante 1 hora de cada vez, à temperatura ambiente para remover totalmente o anticorpo primário não ligado. </li><li> Aplicar um anticorpo secundário em 1x tampão de bloqueamento, a uma diluição de dobragem 500-1.000. (Por exemplo, uma lâmpada fluorescente de 488 nm com etiquetas de cabra anti-rato-IgG em 1:800 ou fluorescente 594 nm com etiquetas de cabra anti-coelho-IgG de 1:800). Incubar a 4 ° C durante a noite. </li><li> Lavar três vezes com 1x PBS, durante 1 h cada, à temperatura ambiente para remover completamente o anticorpo secundário não ligado. </li></ol></li><li> Transferir a córnea em fresco 1x PBS e, com o auxílio de um microscópio cirúrgico, cuidadosamente fazer quatro incisões da periferia para o center. Isso deve dividir a córnea em quatro quadrantes de tamanho aproximadamente igual (a forma resultante deve ser um pouco como uma borboleta) e deixe-o deitado em um slide. </li><li> Monte com um apropriado meio de montagem para a imagem latente fluorescente. Para melhores resultados, as amostras devem ser fotografada imediatamente e fotografias digitais feita, mas pode ser conservada durante várias semanas, ao abrigo da luz a 4 ° C. </li></ol>

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<li>Bucher, F., Parthasarathy, A., Bergua, A., Onderka, J., Regenfuß, B., Cursiefen, C., Bock, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Topical+Ranibizumab+inhibits+inflammatory+corneal+hem-+and+lymphangiogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Topical Ranibizumab inhibits inflammatory corneal hem- and lymphangiogenesis.</a> Acta Ophthalmol. , (2012).</li>
<li>Hajrasouliha, A., Sadrai, Z., Chauhan, S., Dana, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((b-FGF+induces+corneal+blood+and+lymphatic+vessel+growth+in+a+spatially+distinct+pattern%5BTitle%5D)+AND+%22Cornea%22%5BJournal%5D)">b-FGF induces corneal blood and lymphatic vessel growth in a spatially distinct pattern.</a> Cornea. 31 (7), 804-809 (2012).</li>
<li>Rogers, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+albino+mutation+of+tyrosinase+alters+ocular+angiogenic+responsiveness%5BTitle%5D)+AND+%22Angiogenesis%22%5BJournal%5D)">The albino mutation of tyrosinase alters ocular angiogenic responsiveness.</a> Angiogenesis. 16 (3), 639-646 (2013).</li>
<li>Connor, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantification+of+oxygen-induced+retinopathy+in+the+mouse%3A+a+model+of+vessel+loss%2C+vessel+regrowth+and+pathological%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">Quantification of oxygen-induced retinopathy in the mouse: a model of vessel loss, vessel regrowth and pathological.</a> Nat. Protoc. 4 (11), 1565-1573 (2009).</li>
</ol>

Os autores não têm nada a revelar.

O protocolo aqui apresentado resulta em níveis reprodutíveis de hemangiogenesis, lymphangiogenesis e inflamação, tornando-se um sistema ideal para estudar estes três processos (inter-relacionadas). Enquanto este método produz NV córnea centralizado, vários métodos que foram desenvolvidos para causar mais direcionado NV, ou seja, a sutura da córnea 17 e implantados do fator de crescimento expressando pelotas 18, também pode ser do seu interesse. Nosso protocolo é projetado para uso no rato adulto, p...

Cegueira da córnea é a quarta causa mais comum de cegueira, responsável por cerca de 4% de todos os casos de 1. Neovascularização da córnea (NV) desempenha um papel importante em muitas destas patologias, incluindo a ceratite herpética (a principal causa infecciosa de cegueira no Ocidente) e tracoma (a principal causa de cegueira no mundo inteiro infeccioso) 2. As terapias atuais incluem esteróides, medicamentos anti-inflamatórios não-esteróides (AINE), terapias anti-VEGF e ciclosporina A, bem como as técnicas cirúrgicas convencionais ou a laser 3. No entanto, a natureza altamente debilitante de patologias NV base da córnea, a escassez de instalações cirúrgicas capazes de tratar NV córnea, ea falta de uma opção farmacológica fortemente a realização de uma mesa redonda liderada especialista recente a concluir que, apesar das terapias existentes, a necessidade médica fundamentais apresentado por estas patologias permanece insatisfeita 4. A córnea humanaé composto por 5 camadas, 3 camadas celulares (epitelial, estroma e endotélio) e 2 de interface (membrana de Bowman e membrana Descemet). Ela funciona como uma barreira mecânica e a superfície de refracção para o olho. A sua natureza transparente é a conseqüência de um delicado equilíbrio de seus componentes, e é parte integrante da sua função própria 5. Normalmente avascular, a córnea recebe sangue microvasos que correm ao longo do seu bordo exterior, que são alimentados a partir da ciliar e artérias oftálmicas. Corneal NV ocorre quando um estimulo promove a angiogénese dos vasos, permitindo-lhes crescer em direcção ao centro da córnea e assim limitar a visão 6. Angiogênese corneana inclui hemangiogenesis e lymphangiogenesis, o que resultará no crescimento interno dos vasos sanguíneos e vasos linfáticos da arcada vascular do limbo em direção ao centro da córnea. Isto leva a uma quebra de córnea &quot;privilégio angiogênico&quot;, um aumento na opacidade da córnea e fibrose, rompimento da córnea laYERS, edema e 7. Os gatilhos precisas de NV córnea são inúmeras, que vão desde uma resposta a doenças infecciosas, como o tracoma a um estado induzido quimicamente causado medicamentos tradicionais, produtos químicos industriais, ou até mesmo agentes de guerra química. Os mecanismos moleculares deste processo não são, ainda, totalmente caracterizado; no entanto, alguns jogadores-chave foram identificados. Sob condições normais, a córnea possui um único &#39;privilégio angiogénico &quot;mantida por um conjunto redundante de factores anti-angiogénicos (tais como solúveis de VEGF-R1) 8. No entanto, em resposta a um estímulo externo (por exemplo, uma lesão), não haverá uma regulação positiva locais de factores pró-angiogénicos (por exemplo, VEGF-D). Este dicas o equilíbrio de fatores pró e anti-angiogênicos que subjaz privilégio angiogênico da córnea, e leva a hemangiogenesis, lymphangeogenesis e inflamação, portanto, causando patologia da córnea e até cegueira 9. &lt;p class = &quot;jove_content&quot;&gt; Dada a necessidade médica não atendida desta patologia altamente debilitante, é de interesse para o campo para ter um modelo animal confiável de NV córnea. Aqui apresentamos um modelo desse tipo: controlado lesão álcali-queimadura. Vários modelos olho-lesão com base em uso de anéis de papel de filtro são usados ​​desde 1970 10. Em 1989, um grupo de oftalmologistas Harvard Medical School caracterizado um modelo padrão de lesão da córnea alcalino-queimadura central em coelhos com base no embebendo um pedaço de papel de filtro circular com hidróxido de sódio (NaOH) e aplicando-a à córnea a uma gama específica de concentrações 11. Desde então esta técnica tem sido adaptada para uso no rato 12-14. Recentemente, o laboratório de Wang estudou os efeitos terapêuticos da histona deacetilase (HDAC) SAHA na patogênese da NV córnea utilizando um modelo de lesão da córnea alcalino-burn rato 15. A metodologia do modelo de lesão da córnea do rato alcalino-burn aqui apresentado foi construídoprincipalmente no trabalho prévio de dois outros jornais 14,16.

<table><tbody><tr><td>Seringa de 1 ml</td><td>BD</td><td>309659</td><td></td></tr><tr><td>18 G Agulha</td><td>BD</td><td>305918</td><td></td></tr><tr><td>Seringa de 10 ml</td><td>BD</td><td>306575</td><td></td></tr><tr><td>25 G Agulha</td><td>BD</td><td>305916</td><td></td></tr><tr><td>Anti-F4/80 (rato anti-rato)</td><td>AbD Serotech</td><td>MCA497RT</td><td></td></tr><tr><td>Anti-LYVE-1 (coelho anti-rato)</td><td>Abcam</td><td>ab14917</td><td></td></tr><tr><td>Anti-PECAM-1 (rato anti-rato)</td><td>BD</td><td>553370</td><td></td></tr><tr><td>Anti-IgG Alexa 488 (cabra anti-rato)</td><td>Invitrogen</td><td>A11006</td><td></td></tr><tr><td>Anti-IgG Alexa 594 (cabra anti-coelho)</td><td>Invitrogen</td><td>A11012</td><td></td></tr><tr><td>Câmera</td><td>Tucsen</td><td>TCC 5.0 ICE</td><td></td></tr><tr><td>Lamínulas</td><td>Fisher</td><td>12-548-B</td><td></td></tr><tr><td>DMSO</td><td>Sigma</td><td>D4540-1L</td><td>Cuidado: Mutagênico,</td></tr><tr><td>Fórceps Tóxico (Blunt), Iris</td><td>WPI</td><td>15915</td><td></td></tr><tr><td>Fórceps (Sharp), Dumont # 4</td><td>WPI</td><td>500340</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>Fisher</td><td>P217-500</td><td></td></tr><tr><td>Solução de Cetamina</td><td>MedVet</td><td>RXCETAMINA</td><td>Substância controlada, licença adequada necessária para uso.</td></tr><tr><td>Fonte de luz para microscópio</td><td>AmScope</td><td>LED-14M-YA</td><td></td></tr><tr><td>Microscópio (estéreo 7X-45X)</td><td>AmScope</td><td>SM-1B</td><td></td></tr><tr><td>Meio de montagem, VECTASHIELD</td><td>Vector</td><td>H-1000</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Fisher</td><td>S271-10</td><td></td></tr><tr><td>NaH2PO4</td><td>Fisher</td><td>S397-500</td><td></td></tr><tr><td>NaOH</td><td>Fisher</td><td>S318-1</td><td>Cuidado:</td></tr><tr><td>Paraformaldeído</td><td></td> corrosivo <td>P6148-500G</td><td>Cuidado: Alergênico, carcenogênico, tóxico</td></tr><tr><td>Cloridrato de proparacaína</td><td>Tesoura Sigma</td><td>P4554-1G</td><td></td></tr><tr><td>(lâmina de 5 mm), Vanas</td><td>WPI</td><td>14003</td><td></td></tr><tr><td>Soro de cabra</td><td>MPBio</td><td>92939249</td><td></td></tr><tr><td>lâminas de microscópio</td><td>Fisher</td><td>12-550-15</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sigma</td><td>T8787-100ML</td><td></td></tr><tr><td>Whatman Grau 1 Papel de Filtro</td><td>Whatman</td><td>1001-6508</td><td></td></tr><tr><td>Solução de Xilazina</td><td>MedVet</td><td>RXANASED-20</td><td></td></tr></tbody></table>

um ferimento modelo alkali queima de córnea neovascularização no rato

An Alkali-burn Injury Model of Corneal Neovascularization in the Mouse

Sob condições normais, a córnea é avascular, e esta transparência é essencial para manter uma boa acuidade visual. Neovascularização (NV) da córnea, o que pode ser causado por trauma, ceratoplastia ou doença infecciosa, decompõe o chamado &#39;privilégio angiogénico&#39; da córnea e forma a base de várias patologias visuais que podem mesmo conduzir à cegueira. Embora existam várias opções de tratamento disponíveis, a necessidade médica fundamentais apresentados por patologias neovascular córnea permanece inacabado. A fim de desenvolver terapias seguras, eficazes e direcionados, é necessário um modelo confiável de NV córnea e intervenção farmacológica. Aqui, descrevemos um modelo de neovascularização corneana lesão álcali-queimadura no mouse. Este protocolo fornece um método para a aplicação de uma lesão alcalino-queima controlada para a córnea, a administração de um composto farmacológico de interesse, e a visualização do resultado. Este método poderia ser instrumentaltal para o estudo dos mecanismos e oportunidades de intervenção em NV córnea e outros distúrbios neovascular.

Após lesão alcalino-queimadura, NV córnea ocorre em, dependente do tempo de forma previsível. Figura 1 demonstra a diferença gritante tanto na neovascularização e opacidade da córnea entre um animal não tratado (Figura 1A) e de um animal tratado com o inibidor de HDAC SAHA (Figura 1B ) no ponto de tempo de 7 dias. As Figuras 2A e 2B mostram uma montagem plana da córnea de um olho de controlo não tratado com ...

A neovascularização (NV) da córnea pode complicar múltiplas patologias visuais. Utilizando um modelo controlado lesão alcalino-queima, um nível quantificável da NV córnea pode ser produzido para o estudo mecanicista da NV córnea e avaliação de potenciais terapias para doenças neovascular.

Um ferimento Modelo Alkali queima de córnea neovascularização no Rato

Under normal conditions, the cornea is avascular, and this transparency is essential for maintaining good visual acuity. Neovascularization (NV) of the ...

O objetivo geral do experimento é observar o efeito da terapia antiangiogênica em um modelo murino de neovascularização corneana. Isso é conseguido mediante a aplicação breve de uma solução de um molar de hidróxido de sódio no olho do camundongo, para induzir um nível controlado de neovascularização corneana. Como segundo passo, o composto antiangiogênico é administrado diariamente, inibindo o crescimento de novos vasos para dentro da córnea lesionada.Em seguida, o camundongo é eutanasiado e o olho lesionado é coletado, dissecado e submetido à imunomarcação. Para quantificar o grau de neovascularização e inflamação, os resultados demonstram uma redução mensurável na neovascularização com base tanto na observação clínica quanto na imunomarcação. As implicações dessa técnica estendem-se a novas terapias para a cegueira corneana, pois proporcionam um nível reprodutível de neovascularização contra o qual é possível testar novos compostos e terapias.Portanto, este método pode fornecer informações sobre a neovascularização patológica da córnea. Você também pode servir como modelo para explorar os mecanismos gerais de angiogênese e inflamação. Demonstrar o procedimento serábo um pôster no

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Research

JoVE Journal

Medicine

Medicina

Este protocolo descreve um método para infligir uma abrasão na superfície ocular do mouse e a seguir a ferida que daí em diante o processo de cura. O protocolo se aproveita de uma rebarba ocular para remover parcialmente o epitélio superficial do olho em camundongos anestesiados.

Cicatrização de feridas abrasão epitelial da córnea com Burr Ocular como um modelo para córnea

Aqui, modelos animais baseados em camundongos e coelhos são desenvolvidos para lesão mecânica e química do epitélio corneano para triagem de novas terapêuticas e do mecanismo subjacente.

Modelos Animais Ex Vivo e In Vivo para Lesões Mecânicas e Químicas do Epitélio da Córnea

Este protocolo enfoca a neovascularização corneana induzida por queimadura alcalina em camundongos. O método gera um modelo de doença corneana reprodutível e controlável para estudar a angiogênese patológica e os mecanismos moleculares associados e testar novos agentes farmacológicos para prevenir a neovascularização corneana.

Modelo de neovascularização da córnea em camundongos por queimadura alcalina

Este protocolo descreve um método para induzir uma lesão córnea e límbica precisa e reprodutível em um modelo de camundongo. O protocolo é vantajoso, pois permite uma lesão uniformemente distribuída na córnea e no limbo de camundongos altamente curvos.

Indução de lesão de córnea e límplice alcalino pela técnica punch-trephine em modelo murino

O modelo de camundongo de lesão de reperfusão de isquemia renal descrito aqui compreende uma nefrectomia direita que fornece tecido de controle e pinçamento do pedículo renal esquerdo para induzir isquemia que resulta em lesão renal aguda. Este modelo usa uma abordagem de laparotomia de linha média com todas as etapas realizadas por meio de uma incisão.

Renal Isquemia Reperfusão: um modelo do rato de lesão e regeneração

Aqui, apresentamos o protocolo de neovascularização coroidal induzida por laser de camundongo (CNV), um modelo experimental que recria as características vasculares da degeneração macular relacionada à idade neovascular (DMRI). Uma vez dominado, ele pode induzir a CNV de forma confiável e eficaz como um sistema modelo para testar várias medidas experimentais.

Um modelo de rato para induzida por laser coróide Neovascularização

Os atletas absorvem várias centenas de lesões cerebrais traumáticas leves (mTBI) / concussões todos os anos; No entanto, a conseqüência disso no cérebro é mal compreendida. Portanto, um modelo animal de mTBI único e repetitivo que replica consistentemente sintomas clinicamente relevantes fornece os meios para avançar o estudo do mTBI e concussão.

Um modelo de mouse de lesões cerebrais traumáticas leves simples e repetitivas

Neovascularização da íris, uma complicação comum da doença isquêmica da retina, pode levar a risco de vista neovascular glaucoma. Aqui, descrevemos um protocolo murino para induzir a neovascularização da íris experimental que pode ser utilizada para avaliação não invasiva da angiogênese-modulando as substâncias.

Induzida por punção neovascularização de Iris como um modelo do rato da Rubeosis Iridis

A técnica de myograph do fio é usada para investigar as funções do músculo liso vascular e tela novas drogas. Nós relatamos um protocolo detalhado para medir a contratilidade isométrica da artéria mesentérica de rato e para a seleção de novos relaxantes do músculo liso vascular.

Medição de contratilidade isométrica da artéria mesentérica Mouse usando fio miografia

Este estudo apresenta um protocolo para medição da microcirculação em mucosa oral humana por imagens de contraste de salpico do laser. O acompanhamento da cicatrização após vestibuloplasty combinado com um enxerto de colágeno xenogénica é apresentado um caso clínico.

Uma nova abordagem para o monitoramento de neovascularização de enxerto na gengiva humana

Aprenda a criar um modelo de queimadura alcalina em córnea de rato para estudar neovascularização corneana e avaliar terapias antiangiogênicas. Este método permite quantificar a redução de vasos sanguíneos e inflamação ocular.

Um ferimento Modelo Alkali queima de córnea neovascularização no Rato

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