Name: Alongamento Células micropatterned num PDMS Membrana (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-01-22T13:45:00.000+00:00
Duration: 9 min 41 s
Description: Aprenda a aplicar forças mecânicas unidirecionais em células aderentes usando membranas elásticas de PDMS micropatterned. Este método permite estudar deformações celulares durante a mitose com microscopia de vídeo.

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Este trabalho foi fundada pelo Institut Curie, Paris, França. O esticador mecânico foi projetado por Damien Cuvelier (Institut Curie) e é fabricado pela GREM (mecanique-grem.com). A padronização de PDMS foi desenvolvido por Ammar Azioune (Bordeaux II University).

1. A passivação do PDMS <ol><li> Corte um pedaço de PDMS aproximadamente 35 mm x 20 mm a partir de uma folha pré feita (por exemplo, GelPak, conforme listado na tabela de materiais). </li><li> Remover a parte superior e as camadas de protecção inferior de plástico (se necessário) e usar uma pinça para colocar o PDMS numa plástico (não tratados de cultura celular), uma placa de Petri. </li><li> Lavar o PDMS com etanol a 70% durante 5 minutos num rotor a 30 oscilações / min. </li><li> Seca-se a superfície de fluxo de ar sobre ela. </li><li> Iluminar com UV profunda (λ = 180 nm), durante 5 min, a uma certa distância das lâmpadas de UV de cerca de 5 cm (ver folha de Materiais para referência lâmpada; parâmetros irão variar de acordo com diferentes lâmpadas). </li><li> Prepare a 200 ul de solução de EDC / NHS para cada pedaço de PDMS (isto deve ser preparado imediatamente antes da utilização porque a reactividade da solução decai em questão de horas). Para se 1 ml de 0,05 M de MES + 0,5 M de tampão de NaCl a pH 6,0, adiciona 11,5 mg de Sulfo-NHS e 19,2 mg de EDC. </li><li> Transferir oPDMS folhas da placa de Petri para a tampa da caixa de Petri, a qual não foi esclarecida. Isto irá assegurar que o ambiente de PDMS são muito hidrofóbicas e facilitar o passo seguinte. </li><li> Adicionar solução de EDC / NHS e incubar durante 15 min à temperatura ambiente. </li><li> Enxágüe EDC / NHS com água. </li><li> Adicionar solução de PLL-g-PEG (0,5 mg / ml em HEPES 10 mM, pH 8,6) e incuba-se a partir de 3 horas a durante a noite à temperatura ambiente. </li><li> Lavar o PLL-g-PEG com água. PDMS passivadas (funcionalizadas com PLL-g-PEG) podem ser armazenadas durante vários dias a 4 ° C. </li></ol> 2. Padronização do PDMS <ol><li> Pegue uma folha de PDMS e colocá-lo em um photomask quartzo sintético tendo as microestruturas para padronização (veja a Figura 1). Coloque o lado do PDMS tendo a PLL-g-PEG de frente para o lado cromo do photomask. </li><li> Iluminar durante 7 min através da fotomáscara a uma distância das lâmpadas de UV de cerca de 5 cm.</li><li> Adicionar água sobre a máscara + PDMS e descascar as PDMS lentamente para fora da máscara. </li><li> Incubar com uma solução de fibronectina, a 50 mg / mL em tampão de HEPES, a pH 8.6 durante 1 hora à temperatura ambiente. É possível utilizar outras proteínas de ECM, mas estes não foram testados com este protocolo. </li><li> Lavar com PBS. </li></ol> 3. Montagem do Dispositivo <ol><li> Monte os PDMS anteriormente passivadas para o dispositivo de alongamento (ver discussão para solução de problemas). <ol><li> Anexar um lado do PDMS para a parte fixa da maca. </li><li> Corrigir o outro lado à parte móvel da maca sem apertar demasiado a folha de PDMS. </li></ol></li><li> Corte um retângulo de PDMS (22 mm x 19 mm) em um facada PDMS espessura e corte outro retângulo dentro, a fim de ter uma piscina (ou frame) que vai manter as células e meios de comunicação (ver Figura 2). </li><li> Adicionar graxa de silicone sob este PDMS piscina e colocá-lo no topo da folha de PDMS para criar um medium retenção piscina. A massa vai permitir o deslizamento da piscina sobre a folha de PDMS durante o alongamento. </li></ol> 4. Padronização das Células <ol><li> Retire as células a partir de uma confluência garrafa de cultura de 50% com Versene. </li><li> Contar as células e ressuspender-los a uma concentração de 200.000 células / ml. </li><li> Adicionar 1 ml de suspensão de células na piscina (ver discussão para obter detalhes adicionais). </li><li> Deixe as células ligam-se aos padrões de 10-30 minutos (dependendo do tipo de célula, células EPR-1 terá 10 min, e as células HeLa de 20 min). </li><li> Lavar suavemente as células flutuantes com meio equilibrada (equilibrar médio na incubadora). </li><li> Que as células se espalham por algumas horas sobre os padrões (RPE-1 precisará de pelo menos 2 horas; células HeLa terá 3 horas). </li><li> Adicionar uma lamela por cima da piscina para evitar a evaporação e meio de fuga no caso de o PDMS quebras. </li><li> Colocar o dispositivo sobre um microscópio invertido e começar a imagiologia. Evite o uso de ob imersão em óleotivos, uma vez que não vai funcionar devido a problemas de foco. </li></ol> 5. Alongamento <ol><li> Gire o parafuso micrométrico enquanto corrige a posição estágio no x, y, e z-axis (principalmente x). A posição de fase deve ser corrigido para compensar o aumento do PDMS e a perda do foco. (Consulte &quot;Durante o trecho&quot; parágrafo na discussão). </li></ol>

<ol><li>Vogel, V., Sheetz, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Local+force+and+geometry+sensing+regulate+cell+functions%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Mol.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Local force and geometry sensing regulate cell functions.</a> Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 7, 265-275 (2006).</li>
<li>Terenna, C. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Physical+mechanisms+redirecting+cell+polarity+and+cell+shape+in+fission+yeast%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Biol%22%5BJournal%5D)">Physical mechanisms redirecting cell polarity and cell shape in fission yeast.</a> Curr. Biol. 18 (22), 1748-1753 (2008).</li>
<li>Guillot, C., Lecuit, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanics+of+epithelial+tissue+homeostasis+and+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Mechanics of epithelial tissue homeostasis and morphogenesis.</a> Science. 340 (6137), 1185-1189 (2013).</li>
<li>Bosveld, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+control+of+morphogenesis+by+Fat%2FDachsous%2FFour-jointed+planar+cell+polarity+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Mechanical control of morphogenesis by Fat/Dachsous/Four-jointed planar cell polarity pathway.</a> Science. 336 (6082), 724-727 (2012).</li>
<li>Farhadifar, R., Roper, J. C., Aigouy, B., Eaton, S., Julicher, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+influence+of+cell+mechanics%2C+cell-cell+interactions%2C+and+proliferation+on+epithelial+packing%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Biol%22%5BJournal%5D)">The influence of cell mechanics, cell-cell interactions, and proliferation on epithelial packing.</a> Curr. Biol. 17, 2095-2104 (2007).</li>
<li>Rauzi, M., Verant, P., Lecuit, T., Lenne, P. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nature+and+anisotropy+of+cortical+forces+orienting+Drosophila+tissue+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Nature and anisotropy of cortical forces orienting Drosophila tissue morphogenesis.</a> Nat. Cell Biol. 10, 1401-1410 (2008).</li>
<li>Mitrossilis, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Real-time+single-cell+response+to+stiffness%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Real-time single-cell response to stiffness.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107 (38), 16518-16523 (2010).</li>
<li>Irimia, D., Charras, G., Agrawal, N., Mitchison, T., Toner, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polar+stimulation+and+constrained+cell+migration+in+microfluidic+channels%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Polar stimulation and constrained cell migration in microfluidic channels.</a> Lab Chip. 12, 1783-1790 (2007).</li>
<li>Fink, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((External+forces+control+mitotic+spindle+positioning%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Cell.+Biol%22%5BJournal%5D)">External forces control mitotic spindle positioning.</a> Nat. Cell. Biol. 13 (7), 771-778 (2011).</li>
<li>Azioune, A., Storch, M., Bornens, M., Théry, M., Piel, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simple+and+rapid+process+for+single+cell+micro-patterning%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Simple and rapid process for single cell micro-patterning.</a> Lab Chip. 9 (11), 1640-1642 (2009).</li>
<li>Azioune, A., Carpi, N., Tseng, Q., Théry, M., Piel, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protein+micropatterns%3A+A+direct+printing+protocol+using+deep+Uvs%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Protein micropatterns: A direct printing protocol using deep Uvs.</a> Methods Cell Biol. 97, 133-146 (2010).</li>
<li>Azioune, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Robust+method+for+high-throughput+surface+patterning+of+deformable+substrates%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Robust method for high-throughput surface patterning of deformable substrates.</a> Langmuir. 27 (12), 7349-7352 (2011).</li>
<li>Carpi, N., Piel, M., Azioun, A., Cuvelier, D., Fink, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micropatterning+on+silicon+elastomer+%28PDMS%29+with+deep+UVs%5BTitle%5D)+AND+%22Protoc.+Exch%22%5BJournal%5D)">Micropatterning on silicon elastomer (PDMS) with deep UVs.</a> Protoc. Exch. , (2011).</li>
<li>Sinha, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cells+respond+to+mechanical+stress+by+rapid+disassembly+of+caveolae%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Cells respond to mechanical stress by rapid disassembly of caveolae.</a> Cell. 144 (3), 402-413 (2011).</li>
</ol>

Os autores declaram não haver interesses financeiros concorrentes.

Embora esta técnica tem sido utilizada inúmeras vezes e é exaustivamente testado, há várias etapas críticas que podem levar a uma experiência fracassada. Sobre o PDMS: Para este trabalho, GelPak, uma folha fina de PDMS comercialmente disponível, foi usado. Alternativamente folhas PDMS pode ser convertido diretamente do mix PDMS. Recomendamos a utilização de GelPak porque é mais reprodutível e é menos propensos a quebrar em comparação com custom made PDMS. <p cla...

As células que constituem um tecido em organismos superiores estão sujeitos a tensões mecânicas e as forças de alongamento ou provenientes do ambiente externo, ou a partir de células que rodeiam 1,2. As células devem se adaptar e resistir a essas forças, a fim de manter a integridade do tecido. Essas forças também são importantes para os tecidos morfogênese durante o desenvolvimento 3,4. Aplicação de forças mecânicas sobre as células em cultura é uma forma de imitar o que pode acontecer num tecido, mas com um controlo quantitativo e independente da forma da célula e de deformação célula 5,6. Por isso, várias técnicas podem ser usadas. Pode-se pressionar sobre as células (a célula inteira ou parte dela), por exemplo, usando AFM ou derivados 7,8 ou esticar o substrato as células estão crescendo diante. O método descrito neste artigo demonstra como esticar um substrato plano revestida com as células. Esta técnica foi originalmente desenvolvido para avaliar o papel das forças exercidas sobre mcélulas de mamíferos itotic 9. As células mitóticas ficar ligado ao substrato por meio de fibras de retracção e o alongamento da membrana exercida uma força sobre as fibras, o que por sua vez, provocou a rotação do fuso mitótico. O interesse de se combinar micropadrões adesivas e de alongamento é conseguir um controlo independente das forças e forma de células individuais. Por exemplo, é possível esticar uma célula oval em uma forma perfeitamente redonda isotrópica, enquanto estiramento uniaxial é aplicada. Se as células não estão em tecendo micropadrões, estiramento uniaxial resultados do alongamento celular, com a maioria das células com um longo eixo alinhado com o eixo de estiramento. Em seguida, é difícil separar o efeito do alinhamento do eixo longo e o efeito do alongamento aplicado às células. O dispositivo é adequado para qualquer imagem de células vivas, incluindo microscopia fluorescente lapso de tempo longo, e os medicamentos podem ser acrescentados durante o experimento. O método UVs micropatterning profunda 10foi descrito em detalhes em Azioune et al. 11 Patterning em PDMS foi descrito em 12 Azioune et al. O presente protocolo de alongamento é uma versão em vídeo de Carpi et al. 13

<table><tbody><tr><td>GelPak</td><td>GelPak</td><td>PF-60-X4</td><td>Diferentes espessuras / viscosidade estão disponíveis. Uma alternativa poderia ser lançar seu PDMS&nbsp; se.</td></tr><tr><td>Graxa de silicone</td><td>GE Bayer Silicones</td><td>Baysilone-Paste</td><td>Este é biocompatível</td></tr><tr><td>Dispositivo de alongamento</td><td>GREM m&eacute; Maca Canique</td><td>2011</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>EDC (N- (3-Dimetilaminopropil) -N&prime; Cloridrato de etilcarbodiimida)</td> <td>Sigma</td><td>3450</td><td>Estável 6 meses a -20 & C</td></tr><tr><td>NHS (N-Hydroxysulfosuccinimida sodium salt)</td><td>Sigma</td><td>56485</td><td>Protect from humidity</td></tr><tr><td>Pll-g-peg (PLL(20)-g[3.5]-PEG(2) 20 mg)</td><td>SurfaceSolutions (Zurich)</td><td></td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Fotomáscara de Quartzo Sintético</td><td>Toppan</td><td></td><td>Pegue a fotomáscara binária padrão em</td></tr><tr><td>Quartzo Fibronectina de plasma bovino</td><td>Sigma</td><td>F1141</td><td>&nbsp;</td></tr></tbody></table>

alongamento células micropatterned num pdms membrana

Stretching Micropatterned Cells on a PDMS Membrane

Forças mecânicas exercidas sobre as células e / ou tecidos, desempenham um papel importante em numerosos processos. Desenvolvemos um dispositivo para esticar as células semeadas em um polidimetilsiloxano (PDMS) de membrana, compatível com a imagem. Esta técnica é reproduzível e versátil. A membrana pode ser micropadronadas PDMS, a fim de limitar as células ou tecidos a uma geometria específica. O primeiro passo é a impressão micropadrões sobre a membrana de PDMS com uma técnica de UV profundo. A membrana PDMS é, em seguida, montado sobre um esticador mecânica. A câmara está ligada na parte superior da membrana com lubrificante biocompatível para permitir deslizamento durante o estiramento. As células são semeadas e deixada espalhar-se por várias horas nas micropadrões. A amostra pode ser esticado e não esticada várias vezes com a utilização de um parafuso micrométrico. Demora menos de um minuto para aplicar o trecho em toda sua extensão (cerca de 30%). A técnica aqui apresentada não inclui um dispositivo motorizado, o qual é necessário para umapplying ciclos repetidos de alongamento de forma rápida e / ou controlado alongamento computador, mas isso pode ser implementado. Alongamento de células ou tecidos podem ser de interesse para as questões relacionadas com as forças de celulares, a resposta celular ao estresse mecânico ou morfogênese do tecido. Esta apresentação de vídeo vai mostrar como evitar problemas típicos que podem surgir quando se faz este tipo de experimento aparentemente simples.

<html> A técnica apresentada neste protocolo de vídeo permitiu a aplicação de forças sobre as fibras de retração da mitose de células de mamíferos. Com efeito, durante a divisão celular, na fase de mitose, as células de mamíferos retrair a tomar a forma de uma esfera e deixar para trás os cabos de actina finas rodeado por uma membrana, que estão ligadas ao substrato. Estes cabos (fibras de retração), são a memória da geometria da célula antes de entrar em divisão. Fazendo micropadrões com UV profundo através de uma fotom...

Este manuscrito apresenta uma técnica de aplicar ou libertar forças em células aderentes ou tecidos usando alongamento unidirecional.

Alongamento Células micropatterned num PDMS Membrana

Mechanical forces exerted on cells and/or tissues  play a major role in numerous processes. We have developed a device to stretch  cells plated on a ...

O objetivo geral deste procedimento é esticar células padronizadas sobre uma membrana elástica de poli(dimetilsiloxano) ou PDMS. Isso é realizado por meio da ação de uma folha de PDMS, seguida pela aplicação de um padrão microestruturado sobre o PDMS. A folha de PDMS com padrão microestruturado é então montada no dispositivo de alongamento e uma câmara de retenção de meio é colocada em cima.Em seguida, as células são semeadas na superfície da lâmina de PDMS com microdesenho e deixadas aderirem ao padrão antes da lavagem para remoção das células não aderidas. O passo final consiste em aplicar uma elongação ao PDMS contendo as células, para esticar as células. Em última análise, a microscopia de vídeo é utilizada para demonstrar que a aplicação de forças nas fibras de retração de células mamíferas mitóticas durante o estiramento celular resulta em deformação da célula.Este método pode ajudar a responder perguntas-chave na área de biomecânica, como quais são os efeitos de forças externas sobre processos celulares como a divisão? Tivemos a ideia inicial deste método ao querer aplicar forças sobre uma célula em divisão para iniciar o corte de um pedaço de PDMS com aproximadamente 35 por 20 milímetros a partir de uma folha pré-fabricada. Aqui, utiliza-se uma folha fina de PDMS disponível comercialmente porque é mais reprodutível e tem menor probabilidade de romper em comparação com o PDMS feito sob encomenda.Remova as camadas protetoras superior e inferior de plástico e use pin&ccedil;as para colocar o PDMS em uma placa de petri de pl&aacute;stico. Em seguida, lave o PDMS com etanol 70% por cinco minutos em um agitador rotativo a 30 oscila&ccedil;&otilde;es por minuto. Ap&oacute;s a lavagem, seque a superf&iacute;cie passando ar sobre ela.A seguir, ilumine o PDMS com luz ultravioleta profunda por cinco minutos, a uma distância de aproximadamente cinco centímetros das lâmpadas ultravioleta. Enquanto isso, prepare uma solução de E-D-C-N-H-S conforme descrito no protocolo no texto. A solução deve ser preparada imediatamente antes do uso, pois a reatividade da solução decai em algumas horas.Transfira as lâminas de PDMS da placa de Petri para a tampa da placa de Petri, que não foi iluminada. Isso garantirá que o ambiente ao redor do PDMS seja altamente hidrofóbico e facilitará o próximo passo.Pipete a solução E-D-C-N-H-S sobre o PDMS e incube por 15 minutos à temperatura ambiente. Após a incubação, enxágue o excesso de E-D-C-N-H-S com água.Em seguida, adicione a solução de PEG enxertado com PLL e incube de três horas a durante a noite à temperatura ambiente. Após a incubação, lave o excesso de PEG enxertado com PLL da superfície do PDMS com água. O PDMS agora está passivado ou funcionalizado com PEG enxertado com PLL e pode ser armazenado por vários dias a quatro graus Celsius. Para fazer o padrão no PDMS, coloque uma folha de PDMS sobre uma máscara fotolitográfica de quartzo sintético contendo as microestruturas para padronização.Posicione o lado de PDMS com o PEG enxertado com PLL voltado para o lado cromado da máscara fotográfica. Em seguida, ilumine por sete minutos através da máscara fotográfica a uma distância de cerca de cinco centímetros das lâmpadas de luz ultravioleta. Após a iluminação.Adicione água sobre a máscara e o PDMS, em seguida, retire lentamente o PDMS da máscara. Monte o PDMS previamente passivado no dispositivo de alongamento. Fixe um lado do PDMS à parte fixa do esticador. Prenda o outro lado à parte móvel do esticador sem prender excessivamente a folha de PDMS.Se o PDMS for fixado em excesso, ele se torna mais curto e isso pode levar à ruptura, pois a tensão será maior para a mesma distância de alongamento. Certifique-se de que os parafusos estejam bem apertados, caso contrário, a lâmina de PDMS irá deslizar assim que o alongamento começar, ou posteriormente durante o experimento. Em seguida, incube o PDMS com a solução de fibronectina por uma hora.À temperatura ambiente, é possível usar outras proteínas da matriz extracelular, mas estas não foram testadas com este protocolo. Como etapa final, enxágue o PDMS com solução salina tamponada com fosfato. Em seguida, corte um retângulo de PDMS em um bloco grosso de PDMS.Em seguida, recorte um outro retângulo no interior. Para obter uma câmara que retenha as células e o meio, adicione graxa de silicone sob este recorte retangular de PDMS e coloque-o sobre a folha de PDMS para criar uma câmara que retenha o meio. A graxa permitirá o deslizamento da câmara sobre a folha de PDMS durante o alongamento, possibilitando o padronamento das células.Primeiro, desprenda as células de um frasco de cultura com 50% de confluência. Uma vez que as células estejam em suspensão, pipete-as várias vezes com uma ponteira de 200 microlitros para dissociar agregados, o que garantirá que células individuais se liguem ao padrão. Em seguida, adicione um mililitro da suspensão celular na câmara.Deixe as células se ligarem aos padrões por 10 a 30 minutos, dependendo do tipo celular, em um incubador a 37 graus Celsius. Uma vez que as células tenham aderido aos padrões, lave suavemente as células não aderidas com meio equilibrado para remover as células flutuantes.Remova o meio com uma pipeta de aspiração enquanto adiciona simultaneamente meio. É fundamental manter um fluxo suficiente para remover as células não aderidas, ao mesmo tempo em que mantém as células submersas no meio. Em seguida, coloque um lamínula sobre a poça para evitar evaporação e vazamento do meio caso o PDMS se rompa, e deixe as células se espalharem por algumas horas sobre os padrões.Em seguida, coloque o dispositivo em um microscópio invertido e inicie a aquisição de imagens. Evite o uso de objetivas de imersão a óleo, pois elas não funcionarão devido a problemas de foco. Para esticar as células do padrão microestruturado, gire o parafuso micrométrico enquanto corrige a posição da platina nos eixos x, y e Z.A posição do estágio precisa ser corrigida para contrabalançar o alargamento do PDMS e a perda de foco. A técnica apresentada neste protocolo em vídeo permitiu a aplicação de forças sobre as fibras de retração de células mamíferas mitóticas mediante o alongamento do substrato no início da metáfase. Algumas dessas fibras de retração foram puxadas para longe do corpo celular, resultando em uma força mecânica aplicada sobre o córtex de células mitóticas antes do alongamento; para isso, a célula é cultivada sobre um padrão oval.O padrão é feito com o PDMS sendo esticado durante a impressão de padrões circulares por meio da máscara fotográfica. Após o estiramento, o substrato é alongado de modo que o padrão se torne um círculo. Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como pode semear células em padrões macroscópicos e, em seguida, aplicar forças de estiramento ao substrato.

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