Name: Infarto do Miocárdio e Avaliação de Resultados Funcional em porcos (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-04-25T13:45:00.000+00:00
Duration: 12 min 3 s
Description: Aprenda a criar um modelo de infarto do miocárdio em porcos usando oclusão por balão de 90 minutos da artéria descendente anterior esquerda. Este método permite avaliar função cardíaca, remodelamento ventricular e testar novas terapias para doença isquêmica do coração.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Cees Verlaan, Joyce Visser, Merel Schurink, e Grace Croft são gentilmente reconhecidos por sua assistência técnica excelente, com as experiências com animais.

Todos os experimentos in vivo foram conduzidos de acordo com o Guia para o Cuidado e Uso de Animais de Laboratório, preparados pelo Instituto de Recursos Animais de Laboratório. Os experimentos foram aprovados pelo Comitê de Experimentação Animal local. 1. Medicação, Anestesia Venosa Access, e intubação <ol><li> Medicação e Anestesia <ol><li> A pré-medicação <ol><li> Iniciar amiodarona 150 mg / kg, 10 dias antes da cirurgia para evitar arritmias. Continuar a amiodarona em uma dose de 100 mg / kg desde o dia da operação até ao dia 28. Reduzir a dosagem de 50 mg / kg no dia 29 e continua até ao final do estudo. </li><li> Comece a terapia anti-plaquetária, 1 mg / kg de clopidogrel dia 3 antes da cirurgia e 4,5 mg / kg de ácido acetilsalicílico um dia antes da cirurgia. Continuar clopidogrel 1 mg / kg por dia e de ácido acetilsalicílico a 80 mg / dia. </li><li> Comece a medicação para a dor um dia antes da cirurgia por fentanilo, 25mg / h para porcos ~ 70 kg. Continue o uso de adesivos de fentanil por 24 horas no pós-operatório para garantir medicamento adequado da dor. Além disso, monitorar diariamente para sinais de desconforto putativo (ou seja, o comportamento, a respiração, marcha, mobilidade, etc) para aumentar a medicação para dor. </li><li> Rápido o animal por 12 horas, manter o acesso ilimitado à água. </li></ol></li><li> Anestesia <ol><li> Para prevenir o stress e desconforto desnecessário, sedar o porco na sua estável por injecção intramuscular de uma mistura de midazolam 0,4 mg / kg, quetamina a 10 mg / kg, e atropina 0,014 mg / kg. </li><li> Obter acesso venoso através da canulação da veia da orelha com um 18 G iv cânula. Induzir a anestesia por administração intravenosa de 5 mg / kg sodiumthiopental, e dar 1000/100 mg de amoxicilina / ácido clavulânico para evitar infecções. O porco receberá 1000/100 mg de amoxicilina / ácido clavulânico no dia após a cirurgia, o tratamento com antibióticos. </li><li> Entubar o porco usando um endotrachtubo eal (tamanho 8.5 para suínos com peso ~ 70 kg). Se for necessário realizar balão de ventilação com uma frequência de 12/min e transportar o porco para a sala de operação. </li><li> Na chegada ao teatro de operação, começar imediatamente a ventilação com pressão positiva mecânica com FiO 2 0,50, 10 ml / kg volume corrente e uma freqüência de 12/min sob continua capnografia. </li><li> Comece a anestesia balanceada por continua infusão intravenosa de uma combinação de midazolam 0,5 mg / kg / hr, sufentanil 2,5 mcg / kg / hr e pancurônio brometo de 0,1 mg / kg / hr. Durante toda a operação, monitorar continuamente ECG, pressão arterial, temperatura e capnografia para medir a profundidade da anestesia. Por exemplo, se uma taquicardia sinusal está presente, verifique se medicação para a dor e / ou anestesia são adequados. </li><li> Infundir 4,3 mg / kg de amiodarona em 500 ml venofundin 6% por via intravenosa. </li><li> Monitorar o ritmo do coração por um 5 leva ECG. </li><li> Raspar e limpar a garganta e traseira limárea b. </li><li> Insira um cateter de Foley. </li></ol></li></ol></li></ol> 2. Ecocardiografia transtorácica <ol><li> Colocar o animal em decúbito lateral direito. Em suínos da raça Landrace, como porcos Dalland, apenas paraesternal (eixo longo e curto) podem ser obtidos. Devido à forma do tórax, aquisição apical não é viável. </li><li> Oriente e obter paraesternal eixo longo vista em 2D (modo B). Determine as dimensões do VE em diástole e sístole final final no modo-M. </li><li> Gire a sonda echo 90 ° no sentido horário, mantendo a sua posição paraesternal para adquirir os LV eixo curto a nível da válvula mitral, músculo papilar e ápice. O eixo curto do músculo papilar e ápice pode exigir a colocação da sonda echo um ou dois espaços intercostais inferiores em relação à posição da válvula mitral curto vista eixo. </li></ol> 3. Surgical Acesso Preparação e Vascular <ol><li> Disinfect as áreas cirúrgicas com iodo a 2% e usar panos cirúrgicos estéreis para cobrir as partes não estéreis do porco. </li><li> Faça uma incisão medial no pescoço. Passe a linha alba para minimizar o dano muscular e sem rodeios abordar a artéria carótida ea veia jugular interna ao lado da traquéia. </li><li> Cuidadosamente isolar a artéria carótida ea veia jugular interna. Verifique se o nervo vago não está danificada. Coloque suturas Vicryl 2-0 em torno de ambos os navios para ganhar o controle embarcação. Alcançar o acesso arterial através da canulação da artéria carótida interna com uma bainha 8F pela técnica de Seldinger. Fixe a bainha até a artéria, certifique-se a artéria não está totalmente obstruído pela sutura. O acesso venoso pode ser adquirido através da canulação da veia jugular com uma bainha 9F também utilizando a técnica de Seldinger. Antes de fixar a bainha certifique-se a veia é ligado. Alternativamente, a artéria femoral também pode ser utilizado para acesso arterial. </li><li> Administrar 100 IE / kg de heparina imediatamente após a inserção da bainhahs para inibir a formação de trombos. </li><li> Para a medição da pressão arterial estável e constante, canular uma das artérias menores em um dos membros traseiros, fazendo uma pequena incisão acima da artéria. A artéria é encontrado logo abaixo da pele, pulsações podem ser sentidos através da pele. Isolar a artéria do seu tecido circundante. Coloque 2 suturas Vicryl 2-0 ao redor do navio, uma proximal e distal 1. Ligadura do lado distal e inserir um 18 G iv cânula e segura firmemente conectar a pressão. </li></ol> 4. Pressão Invasiva Análise Volume de Loop <ol><li> Inserir um cateter Swann-Ganz (SG) através da bainha previamente colocado na veia jugular interna. </li><li> Conectar um dispositivo de débito cardíaco para a parte da SG que culmina no lúmen proximal. </li><li> Injetar 5 ml de solução salina 0,9% para o lúmen proximal do SG e medir o débito cardíaco; Repita isso três vezes e calcular a média dos índices. </li><li> Calibre o sistema fotovoltaico, utilizando o anteriormentesaída cardíaca determinada. </li><li> Insira o cateter 7F condutância através da artéria carótida para o ventrículo esquerdo sob orientação fluoroscópica. </li><li> Selecione o maior presente segmento no LV para medições de volume e executar uma varredura de linha de base em apnéia. </li><li> Após a calibração do volume é completado, ficha 10-15 bate em apnéia. </li><li> Remover o SG e colocar um cateter de balão na veia cava inferior ao nível do diafragma sob orientação fluoroscópica. </li><li> Realize redução da pré-carga por inflar o balão em apnéia e registrar os correspondentes PV-Loops. </li></ol> 5. Pressão intracoronária e Medição da vazão <ol><li> Diluir a nitroglicerina numa concentração de 100 ug / ml e dilui-se a adenosina a uma concentração de 30 ug / ml. </li><li> Posicione um cateter guia 8F no óstio da artéria coronária esquerda. </li><li> Coloque o fio de pressão / fluxo combinado na parte proximal do arter coronária esquerday. </li><li> Administrar 200 ug de nitroglicerina intracoronária e normalizar a pressão distai (Pd), medido pelo fio, com a pressão arterial. </li><li> Coloque o fio na parte média do artéria descendente anterior esquerda (LAD). </li><li> Comece a medir a pressão da linha de base e de fluxo. Induzir hiperemia pela administração de 60 mg de adenosina intracoronária, lave com 2 ml de solução salina e medir a pressão hiperemia e fluxo. Aguarde até que o fluxo de restaurar aos valores basais. Repetir a medição duas vezes. </li><li> Infundir mais 200 mg de nitroglicerina intracoronária e repita os passos 1.6 e 1.7 para a artéria coronária circunflexa esquerda. </li></ol> 6. Indução de MI <ol><li> Coloque o cateter intracardíaca desfibrilação no ventrículo direito utilizando a bainha venosa. Os eléctrodos distais devem ser no vértice do ventrículo, os eléctrodos proximal do átrio e / ou veia cava superior. Conectar o cateter para o desfibrilador e configurá-lo para 50J. </li><li> Medir o diâmetro da LAD distal a partir da segunda diagonal (D2) em AP e LAO 30 ° vista. </li><li> Escolher um balão de angioplastia com um diâmetro de acordo com o diâmetro da LAD distal do D2 (Figura 1). </li><li> Coloque um fio-guia através do cateter guia distal no LAD. </li><li> Avance o cateter balão sobre o fio-guia. Colocar o balão distai do D2. </li><li> Administrar 30 IE / kg de heparina. </li><li> Inflar o balão até que a pressão corresponde ao diâmetro direito da LAD. </li><li> Verifique a oclusão total da LAD pela angiografia (Figura 1). </li><li> Cubra o campo de trabalho estéril ea ferida no pescoço com panos de campos estéreis. Livre o peito de qualquer cobertura para torná-lo disponível para as compressões torácicas ou transtorácica desfibrilação. </li><li> Verifique a pressão no balão durante a próxima 90 min e restaurar a pressão, se necessário. </li><li> No caso de fibrilação ventricular:<ol><li> Iniciar imediatamente as compressões torácicas com uma frequência de 100/min. </li><li> Administrar 300 mg de amiodarona por via intravenosa na forma de bolus rápido (~ 1 min). </li><li> Comece a desfibrilação intracardíaca, dar choques de 50 J. </li><li> Após 5 choques sem sucesso, reiniciar as compressões torácicas. Mude desfibrilação intracardíaca à desfibrilação transtorácica e choque com 150 J. Em caso de choque sem sucesso, mudar a 200 J. </li><li> Se necessário, administrar outra dose de 150 mg de amiodarona e / ou 1 mg de adrenalina. Repetir adrenalina duas vezes com intervalos de 3-5 minutos, quando necessário. </li><li> Continue as compressões torácicas, intercaladas com desfibrilação transtorácica </li></ol></li></ol> Finalizando o procedimento cirúrgico (para acompanhamento a longo prazo) <ol><li> Após 90 min de verificação por angiografia se o LAD é ainda totalmente ocluído. </li><li> Administrar outros 30 IE / kg de heparina e desinflar o balão. Verifique a existência de reperfusão. Retire o balão vazio com o guidção a partir da bainha de cateter da carótida. </li><li> Cuidadosamente remover a bainha arterial e prender a artéria carótida imediatamente com uma pinça de anastomose (Figura 1). Utilização continua pontos (6-0 prolene) para fechar a artéria carótida. Retire o grampo e verificar se há vazamentos. </li><li> Remover o cateter de desfibrilhação interna e retirar a bainha da veia jugular interna. Ligadura proximal da entrada da bainha. </li><li> Feche o tecido subcutâneo e pele do pescoço em duas camadas, utilizando 2-0 Vicryl. </li></ol> 7. Ressonância magnética cardíaca <ol><li> Colocar o animal na cabeça mesa MRI primeiro em decúbito dorsal sob anestesia contínua. </li><li> Coloque um phased array bobina cardíaca dedicado sobre o peito do animal. </li><li> Para o planejamento de imagem obter imagens de escoteiros no eixo curto e duas câmaras visualizações eixo longo. </li><li> Adquirir fechado-ECG de estado estacionário de precessão livre (SSFP) cine de eixo curto (de ápice para a base de LV) e dois chamber visualizações eixos longo. </li><li> Realce pelo gadolínio Tarde (LGE) pode ser adquirida usando uma recuperação inversão 3D-turbo-gradiente-eco-técnica 15 minutos após a dose dupla injeção iv bolus de um agente de contraste gadolínio base. </li><li> Realizar análise off-line com software validado de parâmetros funcionais. Avaliar fração-ejeção do ventrículo esquerdo (FEVE), massa do VE, o volume diastólico final, volume sistólico final, volume sistólico, débito cardíaco, e massa cicatriz. </li></ol> 8. Fim de Estudo e infarto Tamanho <ol><li> No final do estudo, a seguir protocolos 1-5 e 7 para adquirir seguimento medições. </li><li> Faça uma média de 30-40 cm de incisão logo abaixo da fúrcula a um ponto logo abaixo do apêndice xifóide. Avance através da linha alba até o esterno. Dividir o xifóide e usar a tesoura Klinkenberg para separar o esterno posterior do pericárdio com cautela. Depois de usar a tesoura sem rodeios continuar mais separação. Realize uma esternotomia by por exemplo, usando um martelo e Lebsch faca. Hemorragia de medula óssea é minimizado pela fricção cera óssea na medula. Abra o tórax com um afastador de esterno. </li><li> Digite o espaço pleural 3 e localizar a veia cava inferior no mediastino. </li><li> Humanely sacrificar o animal, cortando a veia cava inferior sob anestesia profunda. Retirar sangue com um dispositivo de sucção. Coloque uma bateria de 9 V no ápice de induzir fibrilação ventricular. </li><li> Após excisão do coração, cortado a direito e no ventrículo esquerdo em cinco fatias de base para o ápice e incubadas em 1% de cloreto de trifenil-tetrazólio dissolvido em 0,9% de solução salina a 37 ° C durante 15 min. Em seguida, lavar as fatias em 0,9% de solução salina e fotografar as fatias a partir de ambos os lados. </li></ol>

<ol><li>Roger, V. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heart+disease+and+stroke+statistics-2012+update%3A+a+report+from+the+American+Heart+Association%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Heart disease and stroke statistics-2012 update: a report from the American Heart Association.</a> Circulation. 125 (1), (2012).</li>
<li>Mosterd, A., Hoes, A. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinical+epidemiology+of+heart+failure%5BTitle%5D)+AND+%22Heart%22%5BJournal%5D)">Clinical epidemiology of heart failure.</a> Heart. 93 (9), 1137-1146 (1136).</li>
<li>vander Spoel, T. I. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+relevance+of+pre-clinical+studies+in+stem+cell+therapy%3A+systematic+review+and+meta-analysis+of+large+animal+models+of+ischaemic+heart+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovasc.+Res%22%5BJournal%5D)">Human relevance of pre-clinical studies in stem cell therapy: systematic review and meta-analysis of large animal models of ischaemic heart disease.</a> Cardiovasc. Res. 91 (4), 649-658 (2011).</li>
<li>Crick, S., Sheppard, M., Ho, S., Gebstein, L., Anderson, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anatomy+of+the+pig+heart+%3A+comparisons+with+normal+human+cardiac+structure%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Anat%22%5BJournal%5D)">Anatomy of the pig heart : comparisons with normal human cardiac structure.</a> J. Anat. 193 (1), 105-119 (1998).</li>
<li>Stubhan, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+cardiovascular+and+ECG+parameters+in+the+normal%2C+freely+moving+G%C3%B6ttingen+Minipig%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Pharmacol.+Toxicol.+Methods%22%5BJournal%5D)">Evaluation of cardiovascular and ECG parameters in the normal, freely moving Göttingen Minipig.</a> J. Pharmacol. Toxicol. Methods. 57 (3), 202-211 (2008).</li>
<li>Heusch, G., Skyschally, A., Schulz, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+in-situ+pig+heart+with+regional+ischemia%2Freperfusion+-+ready+for+translation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mol.+Cell+Cardiol%22%5BJournal%5D)">The in-situ pig heart with regional ischemia/reperfusion - ready for translation.</a> J. Mol. Cell Cardiol. 50 (6), 951-963 (2011).</li>
<li>Skyschally, A., van Caster, P., Iliodromitis, E. K., Schulz, R., Kremastinos, D. T., Heusch, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ischemic+postconditioning%3A+experimental+models+and+protocol+algorithms%5BTitle%5D)+AND+%22Basic+Res+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Ischemic postconditioning: experimental models and protocol algorithms.</a> Basic Res Cardiol. 104 (5), 469-483 (2009).</li>
<li>Iekushi, K., Seeger, F., Assmus, B., Zeiher, A. M., Dimmeler, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+cardiac+microRNAs+by+bone+marrow+mononuclear+cell+therapy+in+myocardial+infarction%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Regulation of cardiac microRNAs by bone marrow mononuclear cell therapy in myocardial infarction.</a> Circulation. 125 (14), 1765-1773 (2012).</li>
<li>Sijbesma, R. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reversible+polymers+formed+from+self-complementary+monomers+using+quadruple+hydrogen+bonding%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Reversible polymers formed from self-complementary monomers using quadruple hydrogen bonding.</a> Science. 278 (5343), 1601-1604 (1997).</li>
<li>van Slochteren, F. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Advanced+measurement+techniques+of+regional+myocardial+function+to+assess+the+effects+of+cardiac+regenerative+therapy+in+different+models+of+ischaemic+cardiomyopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+Heart+J.+Cardiovasc.+Imaging%22%5BJournal%5D)">Advanced measurement techniques of regional myocardial function to assess the effects of cardiac regenerative therapy in different models of ischaemic cardiomyopathy.</a> Eur. Heart J. Cardiovasc. Imaging. 13 (10), 808-818 (2012).</li>
<li>McCall, F. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myocardial+infarction+and+intramyocardial+injection+models+in+swine%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protoc%22%5BJournal%5D)">Myocardial infarction and intramyocardial injection models in swine.</a> Nature Protoc. 8 (7), 1479-1496 (2012).</li>
<li>Roussi, J., Andre, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Platelet+functions+and+haemostasis+parameters+in+pigs%3A+absence+of+side+effects+of+a+procedure+of+general+anaesthesia%5BTitle%5D)+AND+%22Thromb+Res%22%5BJournal%5D)">Platelet functions and haemostasis parameters in pigs: absence of side effects of a procedure of general anaesthesia.</a> Thromb Res. 81 (3), 297-305 (1996).</li>
</ol>

Este trabalho foi apoiado pelo Grupo BV HGG (SK), o &quot;Wijnand M. Pon Stichting&quot; (SC, SK). Esta pesquisa faz parte do Projeto P1.04 SmartCare do BioMedical Materiais instituto, cofinanciado pelo Ministério Holandês de Assuntos Econômicos, Agricultura e Inovação (SJL, JG). Todos os autores relataram que eles não têm relacionamentos para divulgar.

Oclusão balão intracoronário da LAD fornece um modelo pré-clínico MI reprodutível e consistente em porcos que pode ser utilizado para investigar a segurança e a eficácia de novas terapias cardiovasculares que imita de perto a situação humana. Como mostrado na Figura 5, o modelo de enfarte de isquemia / reperfusão apresentado fornece a plataforma que pode ser ainda adaptada para investigar diferentes fases de MI e de pós-MI enquanto que a remodelação inicial a lesão de isquemia / reperfusão é idêntica para ambos. O sucesso do protocolo descrito aqui descrita é dependente da isquemia do miocárdio como a fase mais importante do protocolo. Colocação correta do balão distal ao segundo ramo diagonal da LAD é crucial para atingir o tamanho do infarto adequada, garantindo um elevado índice de sobrevivência. Com base neste modelo MI, a ~ taxa de mortalidade de 15% foi observada, enquanto extensa médio e segmentos apicais do anterior, septal e inferiou paredes foram enfartada, como visto na CMR e coloração de TTC (Figuras 2A e 2B). A duração da isquemia pode ser adaptado de acordo com o tamanho do enfarte desejado. Embora tenhamos usado suínos da raça Landrace neste protocolo, minipigs (ou seja, porquinhos Göttingen) geralmente requerem mais tempo de isquemia do miocárdio (por exemplo, 150 min oclusão). Análise de resultados em estudos pré-clínicos e clínicos MI é muitas vezes baseada FEVE. Embora menor FEVE foi firmemente associado com aumento do risco de mortalidade cardiovascular, continua a ser dependente de parâmetros hemodinâmicos, tais como pré-carga 9. Indiscutivelmente, uma vez que, em média, apenas 10-15% do VE é de infarto, várias limitações conceituais e práticas estão relacionadas com a FEVE sendo uma medida global da função sistólica do ventrículo esquerdo, em vez de refletir a melhoria local, 10. Portanto, as medidas propostas de resultado utilizada neste modelo lançar luz sobre os diferentes aspectos da<html> MI e pós-MI remodelação proporcionando assim aos investigadores os meios para avaliar com precisão a eficácia de novas terapias em vários níveis. Para otimizar a tradução a partir de modelos pré-clínicos para a prática clínica, optamos por usar grandes porcos em vez de porquinhos. As medidas hemodinâmicas, dosagens de medicamentos e dispositivos cirúrgicos podem ser facilmente trocados com a prática clínica. Comparado com porquinhos, grandes porcos ganham relativamente muito peso. Isso pode causar um problema em longo prazo de acompanhamento, em relação à comparabilidade dos resultados de série. Porcos da raça Landrace Dalland fêmeas pesam aproximadamente 70 kg em uma idade de 6 meses. Para evitar o ganho de peso abundante durante o período de acompanhamento, os animais são mantidos em uma dieta restrita. Porcos receber 750 g de alimentos de baixo teor calórico feito à medida (contendo: 15,6% de proteínas, gordura 2,0%, fibras de 14,8%, cinzas 8,8%, de cálcio 0,9%, fósforo a 0,57%, 0,29% de magnésio, de potássio e 0,18%), duas vezes por dia e ter cerca de 10 kg de peso em 4 semanas. e_content &quot;&gt; McCall e colegas de trabalho já publicado um protocolo semelhante para o infarto do miocárdio em suínos 11. existe uma considerável sobreposição entre este protocolo eo deles, enfatizando a preferência pela LAD, em vez de a artéria circunflexa (LCX) ou artéria coronária direita (RCA ). Em nossa experiência, há uma menor proporção do tamanho do infarto do ventrículo esquerdo total com LCX enquanto o infarto do RCA é acompanhado com maior chance de distúrbios da condução indesejados (ou seja, disfunção do nódulo sinusal, disfunção AV-nó). Uma diferença entre os dois protocolos refere-se ao uso de uma maior inibição de plaquetas farmacológica neste protocolo, como já se observou maiores taxas de não-refluxo com base na formação de trombos, como o resultado de 90 minutos de hemostasia na artéria coronária obstruída. Esta observação está de acordo com hipercoagulabilidade conhecido observado em porcos 12. Embora McCall propôs usar um único, de alta dosagem, bolus de heparina, this protocolo baseia-se na utilização de heparina em várias doses menores, distribuídos ao longo da cirurgia para minimizar as complicações trombóticas. Em resumo, apresentamos um modelo MI suína que permite aos pesquisadores para fazer uso de um modelo prático grande animal eficaz, reprodutível e, sobretudo, de doenças humanas para estudar novas terapias como um passo essencial para um primeiro-em-homem ensaio clínico.

A correction was made to <a href="/video/51269">Myocardial Infarction and Functional Outcome Assessment in Pigs</a>. An author's middle initial was omitted at publication.
The author's name was updated from:
Sanne Jansen of Lorkeers
to:
Sanne J. Jansen of Lorkeers

A correction was made to <a href="/video/51269">Myocardial Infarction and Functional Outcome Assessment in Pigs</a>.
The middle initial J. has been added to author Sanne Jansen of Lorkeers.

Erratum: Myocardial Infarction and Functional Outcome Assessment in Pigs

Infarto agudo do miocárdio (IAM) e suas sequelas a longo prazo, tais como insuficiência cardíaca crônica (ICC) impactar profundamente o prognóstico do paciente e qualidade de vida, e muito menos as restrições impostas alto custo dos nossos recursos de saúde disponíveis 1. A prevalência de CHF no mundo ocidental é estimado em 1-2%, dos quais ~ 60% dos casos são consequência da AMI como causa primária 2. Só nos EUA, cerca de 5,7 milhões de pacientes sofrem de CHF respondendo por cerca de US $ 30 bilhões em custos anuais de saúde em 2008, com um triplicado previsto em custos crescentes para 97.000 milhões dólares anualmente em 2030 1. Tomados em conjunto, estes números fazem um forte argumento para a desenvolvimento de novos tratamentos cardioregenerative que, para a tradução rápida, dependem de um animal modelo de infarto reprodutível e confiável grande miocárdio que imita com precisão o cenário humano. Suínos (Sus scrofa) estão cada vez mais sendo usados ​​em doeninvestigação lar para testes farmacológicos e toxicológicos 3. Uma das características responsáveis ​​por esse sucesso como uma ferramenta de pesquisa translacional é a sua semelhança na função cardíaca e da anatomia com o 4,5 coração humano. Por exemplo, a razão de porco coração-a-corpo de peso, tamanho cardíaco e distribuição anatomia das artérias coronárias têm demonstrado ser muito semelhante ao homem 4. Além disso, o metabolismo dos cardiomiócitos, as propriedades eletrofisiológicas e resposta a um insulto isquêmico, como AMI têm sido relatadas para mostrar altos níveis de acordo com a situação humana 6,7. Em última análise, para cumprir os critérios acima descritos, um protocolo de MI-padronizado que produz robusto e sustentável MI para testes de novos medicamentos de investigação (IND) é necessário. Aqui, apresentamos um modelo tão padronizada que usa um 90 min-peito fechado oclusão coronária balão da artéria descendente anterior esquerda (LAD), seguida de reperfusão, criando assim miocárdio reprodutível emmiocárdio cobrindo o anteroapical, paredes septal e ínfero do ventrículo esquerdo.

<table><tbody><tr><td>0,9% de solução salina</td><td>Braun</td><td></td><td></td></tr><tr><td>6-0 Prolene</td><td>Ethicon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ácido acetilsalicílico</td><td>Ratiopharm</td><td></td><td>80 mg</td></tr><tr><td>Adenosina</td><td>Apotheek UMCU</td><td></td><td>3 mg/ml</td></tr><tr><td>AdVantage PV loop system</td><td>Transonic Science</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Amiodarone</td><td>Cordarone I.V. (Sanofi)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Amiodaron HCl (PCH)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Amoxicilina/clavulaanzuur</td><td>Sandoz</td><td></td><td>500/50 mg</td></tr><tr><td>Atropinesulfato</td><td>PCH</td><td></td><td>0,5 mg/ml</td></tr><tr><td>Cera de Medula Óssea</td><td>Syneture</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Desfibrilador Cardíaco</td><td>Philips</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Clopidogrel</td><td>Apothecon B.V.</td><td></td><td>Clopidrogel 75A</td></tr><tr><td>Agente de contraste</td><td>Telebrix</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tubo endotraqueal</td><td>Covidien</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Adesivo de fentanil</td><td>Durogesic (Janssen-Cilag)</td><td></td><td>25 &#956; g/hr</td></tr><tr><td>Cateter Fogarty</td><td>Edwards Life Sciences</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Gadolínio</td><td>Gadovist</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Guidewire</td><td>Abbott</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Heparina</td><td>Leo</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cânula IV</td><td>Abbocath (Hospira Venisystems)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Iodo</td><td>Jodiumtictuur 2% (Eurovet)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cetamina</td><td>Narketan 10 V&eacute; toquinol</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Midazolam</td><td>Actavis</td><td></td><td>5 mg/ml</td></tr><tr><td>Nitroglicerina</td><td>Pohl Boskamp</td><td></td><td>1 mg/ml</td></tr><tr><td>Brometo de</td><td></td><td></td> pancurônio <td>2 mg/ml</td></tr><tr><td>Bainha vascular de Seldinger 8F</td><td>Arrow</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sufentanil&nbsp;</td><td>Sufentanil-Hameln</td><td></td><td>50 &#956; g/ml</td></tr><tr><td>Cateter de Swann-Ganz</td><td>Criticath ref 680078 (Argônio)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Synolux</td><td>Pfizer</td><td></td><td>250 mg</td></tr><tr><td>Cateter tetrapolar</td><td>Transonic Science</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Thiopental</td><td>Inresa</td><td></td><td>0,5 g</td></tr><tr><td>Cloreto de trifenil-tetrazólio</td><td>Merck</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Venofundin</td><td>Braun</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vicryl 2-0</td><td>Ethicon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Volcano Sistema ComboMap Vulcão</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

infarto do miocárdio e avaliação de resultados funcional em porcos

Myocardial Infarction and Functional Outcome Assessment in Pigs

A introdução de terapêutica cardiovascular recém-descobertas em ensaios primeiro-em-homem depende de um roteiro ético e legal estritamente regulamentado. Um pré-requisito importante é uma boa compreensão de todos os aspectos de segurança e eficácia obtidos em um modelo animal de grande porte que validamente refletem o cenário humano de infarto do miocárdio (IM). Porcos são amplamente utilizados a este respeito que a sua dimensão cardíaca, hemodinâmica e anatomia coronariana estão perto dos seres humanos. Aqui, apresentamos um protocolo eficaz para a utilização do modelo MI suíno utilizando um baú fechado oclusão coronária balão da artéria anterior esquerda (LAD) descendente, seguida de reperfusão. Esta abordagem é baseada em 90 min de isquemia miocárdica, induzindo grande infarto do ventrículo esquerdo do anterior, septal e ínfero paredes. Além disso, apresentamos os protocolos para várias medidas de resultado que fornecem uma ampla gama de informações sobre o coração, como sistólica cardíaca e função diastólica, hemodinamicamentecs, a velocidade do fluxo coronário, resistência microvascular e tamanho do infarto. Este protocolo pode ser facilmente adaptada para atender às exigências específicas para estudar a validação de novos produtos biológicos cardioregenerative em diferentes fases (ou seja, logo após o insulto isquêmico agudo, no cenário subaguda ou mesmo no MI crônica uma vez a formação de cicatrizes foi concluída). Assim, este modelo fornece uma ferramenta útil para estudar translacional MI, posterior remodelamento adverso, eo potencial de novos agentes cardioregenerative.

A mortalidade e infarto Tamanho No nosso centro, de 32 porcos (Feminino Dalland Landrace, 6 meses velho, ~ 70 kg), que foram submetidos a este protocolo MI, cinco (15,6%) morreram devido à fibrilação ventricular refratária durante a isquemia. Este protocolo cria um enfarte cobrindo cerca de 10-15% do ventrículo esquerdo, localizado na ântero, septo e paredes ínfero (Figura 2A). Se a avaliação não-invasiva de série do tamanho do enfarte não se justifica, contraste de gadolínio tarde (LGE) em CMR pode ser utilizado para seguir a área de enfarte não viáveis ​​ao longo do tempo (Figura 2B). Função e Remodelação Cardíaca Quatro semanas após o IM, os parâmetros globais e regionais que refletem a função cardíaca deve ser diminuída em comparação com os valores basais saudáveis. Especificamente, a fração de ejeção ventricular esquerda (FEVE) deve diminuir para cerca de ~ 35-45% quatro semanas de pós-MI. Além da função sistólica global,vários parâmetros que refletem pós-MI remodelamento adverso também pode ser medida, como a morfologia e diâmetros usando CMR e ecocardiograma (Figuras 3A e 3B) LV. Quatro semanas depois do MI, um aumento no volume diastólico final (EDV) como um sinal de remodelação adverso pode ser esperado (Figuras 3A e 3B). Parâmetros de fluxo e pressão Coronárias A angiogênese ea formação de novos capilares são frequentemente considerados como importantes objetivos do tratamento na doença isquêmica do coração 8. Avaliação da resistência microvascular pode ser indirectamente com base na medição combinada de pressão e velocidade de fluxo intracoronária. Representante pressão e de medição de velocidade de fluxo sob condições e hiperemia máxima normal é mostrado na Figura 4. Quatro semanas depois do MI, a resistência microvascular hiperêmico deve ser aumentada na artéria coronária relacionada com enfarte (LAD), em comparaçãoà situação inicial 8. <img alt="A Figura 1" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51269/51269fig1highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51269/51269fig1.jpg" /> . Figura 1 modelo MI baseado na oclusão LAD balão (A) equipamentos cirúrgicos Standard com: 1.) Braçadeiras de toalha; 2) mosquitos; 3) dissecando fórceps; 4) recipiente redondo; 5) porta-agulhas (fina e áspera); 6) Klinkenberg tesoura; 7) dissecando tesoura (retas e curvas); 9) fórceps (De-Bakey, fina e áspera); 10) braçadeira; 11) braçadeira anastomose; 12) gazes; 13) lápis electrosurgical; 14) Suporte de bisturi; 15) Dreesman (sucção); 16) afastador; 17) suportes para lâmpadas. (B) anterior esquerda fluoroscopia oblíqua do LAD eo LCX. (C) Após visualizar o segundo ramo diagonal, posicione os dois marcadores radiopacos (ver caixa, setas pretas) do balão apenas distal do D2. Inflate e garantir que o fluxo sangüíneo coronariano é bloqueado com sucesso por injeção de contraste (ver asterisco). Intracardíaca chumbo desfibrilador pode ser visto no ventrículo direito (ver seta branca). LAD denota artéria descendente anterior esquerda; LCX denota artéria marginal esquerda; LAO denota incidência oblíqua anterior esquerda; AP denota vista posterior anterior; D1 denota primeiro ramo diagonal; D2 denota segundo ramo diagonal. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51269/51269fig1highres.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver imagem ampliada.</a> <img alt="Figura 2" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51269/51269fig2highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51269/51269fig2.jpg" /> Tamanho Figura 2. Enfarte após MI. (A) O balão de oclusão de 90 minutos da ADA leva a danos do miocárdio extensa e formação de cicatriz (cor branca), visualizadas por coloração de TTC a 1 meses de seguimento.(B) distribuição do enfarte esquemático que mostra o enfarte está localizado na região anterior, e segmentos ântero ínfero do coração. (C, D) eixo curto e longo final de gadolínio imagens CMR aprimorados mostrar a extensa cicatriz do infarto (sinal branco, ver setas pretas) localizada na região anterior, os segmentos ântero e ínfero do coração. LGE-CMR denota tarde gadolínio aprimorado de ressonância magnética cardíaca. Barra de escala denota 3 cm. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51269/51269fig2highres.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver imagem ampliada.</a> <img alt="A Figura 3" fo:content-width="4in" src="/files/ftp_upload/51269/51269fig3highres.jpg" width="400" /> Figura 3. Avaliação da função cardíaca em modelos de isquemia MI. (A) Representante CMR imagens cine-circuito no final da diástole e sístole final mostrando comprometimento funcional do infsegmentos da cicatriz ARCT. (B) imagem M-Mode de 2D eixo longo paraesternal por ecocardiografia, mostrando LV dilatação (aumento LVIDd) 1 mês após o IM, bem como comprometimento funcional (ausência de espessamento septal). EDV denota volume diastólico final; ESV denota volume sistólico final; LVIDd denota diâmetro interno do ventrículo esquerdo em diástole e LVIDs denota diâmetro interno do ventrículo esquerdo em sístole. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51269/51269fig3highres.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver imagem ampliada.</a> <img alt="A Figura 4" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51269/51269fig4highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51269/51269fig4.jpg" /> Figura 4. Intracoronary velocidade de pressão e fluxo de parâmetros derivados. Pressão intracoronária e gravações de velocidade de fluxo usando o Combowire mostrando valores (A) de referência anteriores a MI com altos response de hiperemia (seta preta). (B) 1 mês após o IM, o infarto relacionado artéria (LAD) tem uma resposta hiperêmico diminuição da velocidade de fluxo coronário (setas pretas). Como resultado, a pressão ea velocidade do fluxo parâmetros derivados (HMR) ou fluxo de reserva de velocidade (CFR) são reduzidos em comparação com a linha de base. BAPV denota pico de velocidade média basal; pAPV denota pico de velocidade média de pico; CFR denota reserva de fluxo coronário; HMR denota resistência microvascular hiperêmico. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51269/51269fig4highres.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver imagem ampliada.</a> <img alt="A Figura 5" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51269/51269fig5highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51269/51269fig5.jpg" /> Figura 5. Visão geral dos diferentes desenhos de estudo. (A) Esquema de vários projetos de estudo possíveis para validar novos medicamentos de investigação(INDs) em vários estágios de MI que utilizam este modelo suíno LAD MI. Dependendo da fase escolhida de MI que está sob investigação, análise funcional pode ser realizada imediatamente antes da alocação de tratamento como o valor de referência e avaliação da área de risco. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51269/51269fig5highres.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver imagem ampliada.</a>

Este protocolo descreve o modelo suíno infarto do miocárdio (IM) usando um 90 min-peito fechado oclusão coronária balão da artéria descendente anterior esquerda (LAD), seguida de reperfusão. Além disso, o protocolo para vários parâmetros de resultados, tais como a função cardíaca, hemodinâmica, resistência microvascular e tamanho do infarto, também são apresentados.

Infarto do Miocárdio e Avaliação de Resultados Funcional em porcos

Introduction of newly discovered cardiovascular therapeutics into first-in-man trials depends on a strictly regulated ethical and legal roadmap. One ...

O objetivo geral do seguinte experimento é avaliar a eficácia de novas estratégias terapêuticas para a doença cardíaca isquêmica. Em um modelo suíno, com oclusão da artéria descendente anterior esquerda como primeiro passo, a artéria carótida interna é canulada para acesso arterial. Em seguida, um cateter é avançado através da aorta e posicionado no ostium da artéria coronária principal esquerda, o que permite posicionar um fio-guia menor na artéria descendente anterior esquerda ou artéria LAD.Em seguida, o fio guia G é utilizado para direcionar um cateter com balão intra-coronariano para a artéria descendente anterior esquerda (ADE), e o balão é inflado por 90 minutos, bloqueando todo o fluxo sanguíneo. Após o segundo ramo diagonal, os resultados mostram que a função sistólica cardíaca diminuiu, que houve remodelação adversa subsequente do ventrículo esquerdo e que há tecido cicatricial substancial decorrente do infarto. Aqui, no Departamento de Cardiologia, reunimos diferentes disciplinas, engenheiros e parceiros industriais para criar terapias inovadoras que realmente avancem o tratamento de nossos pacientes.Um modelo reprodutível de infarto do miocárdio em grande animal permite-nos validar novas terapias experimentais, como a terapia com células-tronco cardíacas, e testar sua segurança e eficácia em suínos, cujo coração se assemelha muito ao humano. Em termos de tamanho e hemodinâmica, o modelo que desenvolvemos ajudará a abordar questões fundamentais na área da medicina regenerativa cardíaca. Ao testar novos compostos em um modelo animal de grande porte, poderemos preencher a lacuna entre a pesquisa básica e a prática clínica.A pesquisa translacional é essencial para obter novas descobertas mecanicistas e para introduzir novas terapias promissoras. Um passo mais próximo da aplicação clínica: após sedação e anestesia, coloque o porco em um ventilador e prepare o animal conforme descrito no protocolo do texto. Para obter um ecocardiograma de referência, posicione o animal em decúbito lateral direito.Oriente e obtenha uma visão parasternal no eixo longo no modo 2D e determine as dimensões do ventrículo esquerdo no final da diástole e no final da sístole. No modo M, gire o transdutor ecográfico 90 graus no sentido horário mantendo sua posição esternal para obter cortes no eixo curto do ventrículo esquerdo na região da válvula mitral e incline o transdutor para obter imagens nos níveis do músculo papilar e do ápice. Opcionalmente, posicione o transdutor ecográfico um ou dois espaços intercostais abaixo, após desinfetar as áreas cirúrgicas com iodo a 2%, e cubra as áreas não estéreis com campos cirúrgicos estéreis.Inicie a cirurgia com uma incisão medial de 15 centímetros no pescoço, cortando ao longo e além da linha alba. Para minimizar danos musculares, realize uma dissecação romba para alcançar a artéria carótida e a veia jugular interna ao lado da traqueia. Isole cuidadosamente a artéria carótida e a veia jugular interna.Tendo cuidado para não danificar o nervo vago. Coloque pontos de Vicryl dois OTT ao redor de ambos os vasos para obter controle vascular. Em seguida, canule a veia jugular com uma bainha de nove French.Utilizando a técnica de Seldinger, certifique-se de que a veia está ligada antes de fixar a bainha. Em seguida, canule a artéria carótida interna com uma bainha de oito French. Também utilizando a técnica de Seldinger, fixe a bainha à artéria, garantindo que a artéria não fique totalmente ocluída pelo ponto de sutura.O próximo passo é inserir um cateter de Swan Ganz através da bainha previamente posicionada na veia jugular interna. Em seguida, conecte um dispositivo de mensuração do débito cardíaco à parte do Swan Ganz que termina no lúmen proximal. Agora, injete cinco mililitros de solução salina a 0,9% no lúmen proximal do Swan Ganz e meça o débito cardíaco.Repita este procedimento mais duas vezes e calcule a média dos índices. Em seguida, calibre o sistema de loop de volume e pressão utilizando o débito cardíaco previamente determinado. Sob orientação fluoroscópica.Insira o cateter de condutância francês sete pela artéria carótida até o ventrículo esquerdo. Após a calibração de volume ser concluída, induza apneia desligando o respirador e registre de 10 a 15 batimentos sob apneia. Em seguida, ligue novamente o respirador e remova o cateter de Swan-Ganz.Em seguida, utilize orientação fluoroscópica para posicionar um cateter com balão na veia cava inferior ao nível do diafragma. Após desligar o respirador novamente, insufle o balão e registre os respectivos laços de pressão-volume para realizar a redução da pré-carga. Ao finalizar, ligue novamente o respirador.Para medições intracoronárias, posicione um cateter-guia de oito French no ostium da artéria coronária esquerda. Infunda 200 microgramas de nitroglicerina intracoronariamente para prevenir espasmos coronários. Em seguida, posicione o fio combinado de pressão e fluxo na parte proximal da artéria coronária esquerda.Em seguida, avance o fio até a parte média da ADA. Neste momento, inicie a medição da pressão e do fluxo basais. Então, induza hiperemia administrando 60 microgramas de adenosina por via intra-coronária.Em seguida, realize uma lavagem com dois mililitros de solução salina e inicie as medições de pressão e fluxo hipermicos. Aguarde o retorno do fluxo aos valores basais e repita a medição duas vezes. Ao concluir as medições, remova o fio de medição de pressão e fluxo da artéria descendente anterior como medida de precaução.Antes de induzir um infarto do miocárdio, insira o cateter de desfibrilação intracardíaca no ventrículo direito utilizando a bainha venosa. Posicione os eletrodos distais no ápice do ventrículo direito e os eletrodos proximais no átrio. Em seguida, conecte o cateter ao desfibrilador e configure-o para 50 joules.Em seguida, meça o diâmetro da artéria descendente anterior esquerda (LAD) distal ao ramo diagonal secundário ou D dois na vista anteroposterior (AP) e na vista oblíqua anterior esquerda a 30 graus. Escolha um balão de angioplastia com diâmetro igual ao tamanho ou ligeiramente maior que o diâmetro da LAD distal à posição D dois. Insira um fio-guia através do cateter-guia distalmente na LAD, avance o cateter-balão sobre o fio-guia, posicionando o balão distal à posição D dois.Após administrar 30 UI por quilograma de heparina, insufle o balão até que a pressão corresponda ao diâmetro correto da ADA. Em seguida, utilize angiografia para verificar se a ADA está totalmente ocluída. Cubra o campo operatório estéril e a ferida no pescoço com campos estéreis.Libere o tórax de qualquer cobertura para torná-lo acessível para compressões torácicas ou desfibrilação transtorácica, caso necessário. Após 90 minutos, verifique por angiografia para garantir que a artéria descendente anterior esquerda (LAD) ainda está completamente ocluída. Em seguida, administre mais 30 UI por quilograma de heparina e desinfle o balão.Após verificar a reperfusão, remova o balão desinflado e o cateter-guia da bainha carotídea. Siga as instruções no protocolo textual para os cuidados pós-operatórios e para a aquisição e análise de imagens por ressonância magnética. A oclusão do LAD com balão por 90 minutos provocou extenso dano miocárdico e formação de cicatriz, conforme demonstrado pela coloração branca visualizada na coloração com TTC no acompanhamento de um mês.O esquema da distribuição do infarto mostra que a lesão está localizada nos segmentos anterointerseptal e inferseptal do coração nestes eixos curto e longo. Nas imagens de RMC com realce tardio por gadolínio, o sinal branco indicado pelas setas pretas mostra a cicatriz extensa do infarto localizada nos segmentos anterointerseptal e inferseptal do coração. Essas imagens dinâmicas de RMC em fim da diástole e da sístole mostram comprometimento funcional dos segmentos com cicatriz de infarto.Imagens ecocardiográficas no modo M de eixo longo parasternal 2D mostram dilatação do ventrículo esquerdo um mês após infarto do miocárdio, conforme indicado pela linha azul mais longa na imagem inferior. A disfunção funcional é demonstrada pela ausência de espessamento septal. Gravações de pressão e velocidade de fluxo intracoronarianos, utilizando o fio combo, mostram alta resposta à hiperemia antes do infarto do miocárdio. Um mês após o infarto do miocárdio, a artéria relacionada ao infarto apresenta resposta hiperêmica reduzida na velocidade do fluxo coronariano. Como resultado, parâmetros derivados de pressão e velocidade de fluxo, bem como a reserva de velocidade de fluxo, estão diminuídos em comparação com os valores basais.Ao realizar este procedimento, é particularmente importante evitar que bolhas de ar fiquem aprisionadas dentro do cateter e das seringas, pois podem atuar como êmbolos aéreos, levando a uma oclusão permanente quando injetadas em uma das artérias coronárias. Em nossa experiência, você deve aguardar um mínimo de quatro semanas após o infarto se desejar estudar a miocardiopatia crônica e o remodelamento adverso progressivo. Este protocolo abre caminho para que pesquisadores explorem novas intervenções e terapêuticas no campo da doença cardíaca isquêmica, em um modelo que se assemelha estreitamente à situação humana.As técnicas utilizadas neste protocolo fornecem informações essenciais sobre a função cardíaca, conteúdo de colágeno no infarto, cicatriz, fluxo coronariano e resistência microvascular. As técnicas que mostramos a você hoje podem ser usadas como blocos separados para projetar o seu próprio delineamento experimental; por exemplo, você pode utilizar os desfechos funcionais, a histologia ou até mesmo a resistência microvascular como desfechos isolados em seu estudo. Além disso, ao ajustar o momento da terapia, você pode utilizar essas abordagens em um contexto de infarto agudo do miocárdio.Por exemplo, analisando a lesão por reperfusão ou examinando a infecção de longo prazo. O modelo de infarto do miocárdio crônico na utilização da terapia com células-tronco.

myocardial-infarction-and-functional-outcome-assessment-in-pigs

Research

JoVE Journal

Medicine

Medicina

avaliação fiável e exacta resultado é a chave para a tradução de terapias pré-clínicos para o tratamento clínico. O presente artigo descreve como avaliar três parâmetros de resultado primário clinicamente relevantes de desempenho cardíaco e danos em um modelo de infarto do miocárdio porco aguda.

Avaliação do resultado principal em um modelo suíno de Infarto Agudo do Miocárdio

A avaliação post-mortem do infarto do miocárdio (IM) em roedores é baseada na quantificação do infarto em cortes cardíacos corados. Descrevemos um método preciso para quantificar o tamanho do infarto usando amostragem sistemática de corações de ratos colhidos da base ao ápice e análises de imagem de cortes histológicos corados com tricrômio.

Quantificação histológico de miocárdio crônico infarto em ratos

Aqui vamos demonstrar um protocolo para padronizar os procedimentos de amostragem de um modelo estabelecido de suínos de infarto agudo do miocárdio, a fim de aumentar seu valor de translação no entendimento da fisiopatologia da lesão de isquemia/reperfusão miocárdica e para testar candidatos a novos fármacos.

Aprimoramento do modelo de suínos do miocárdio peito fechado pela padronização do tecido e os procedimentos de recolha de amostras de sangue

Buscamos estabelecer um modelo suíno de insuficiência cardíaca induzido pelo bloqueio da artéria circunflexo esquerda e ritmo rápido para testar o efeito e a segurança da administração intramiocárdia de células-tronco para terapias baseadas em células.

Estabelecendo um modelo suíno de insuficiência cardíaca pós-miocárdio para tratamento de células-tronco

O objetivo geral do presente estudo é apresentar as técnicas de indução do infarto do miocárdio (MI) e insuficiência cardíaca pós-miocárdio (pós-MI HF) em miniporcos de Göttingen adultos e a caracterização do modelo pós-MI HF em miniporcos de Göttingen em comparação com os porcos landrace.

Insuficiência cardíaca pós-miocárdio em oclusão coronariana de peito fechado/modelo de reperfusão em Miniporcos de Göttingen e Poros landrace

Os modelos animais de infarto do miocárdio (MI) que emulam o processo natural da doença em humanos são cruciais para entender mecanismos fisiodicos e testar a segurança e eficácia de novas terapias emergentes. Aqui, descrevemos um modelo de suíno MI criado pela implantação de uma bobina de embolização percutânea.

Infarto do Miocárdio por implantação de bobina de embolização percutânea em um modelo de suíno

A ecocardiografia transtorácica é o teste diagnóstico de primeira linha para disfunção ventricular esquerda pós-ressuscitação e alterações estruturais em um modelo suíno de parada cardíaca.

Ecocardiografia Transtorácica para Avaliação da Disfunção do Ventrículo Esquerdo Pós-Ressuscitação Após Infarto Agudo do Miocárdio e Parada Cardíaca em Suínos

O modelo do rato de infarto agudo do miocárdio (IAM) é útil para estudar as consequências do enfarte do miocárdio sobre a função fisiológica e fisiopatológica cardíaca.

Infarto Agudo do Miocárdio em Ratos

Zebrafish representa um modelo útil para estudar os mecanismos de regeneração do coração nos vertebrados. Aqui, apresentamos um protocolo para a indução de um infarto do coração em adultos usando cryoinjury zebrafish. Este método resulta em morte celular maciça dentro de 20% da parede ventricular, semelhantes às observadas em infartos de mamíferos.

Indução de Infarto do Miocárdio em Zebrafish adultos usando Cryoinjury

Descrevemos como realizar imagens de ressonância magnética e PET do coração do camundongo. O protocolo é adaptado para avaliar a eficácia do tratamento em modelos de infarto do miocárdio e insuficiência cardíaca.

Ressonância magnética e PET no rato modelos de Infarto do Miocárdio

Aprenda a criar um modelo de infarto do miocárdio em porcos usando oclusão por balão de 90 minutos da artéria descendente anterior esquerda. Este método permite avaliar função cardíaca, remodelamento ventricular e testar novas terapias para doença isquêmica do coração.

Infarto do Miocárdio e Avaliação de Resultados Funcional em porcos

Explorar mais vídeos