7 de julho de 2014
Para obter imagens de alta resolução de células marcadas com fluorescência dentro de grandes tecidos, idealmente, as amostras biológicas devem ser visualizadas sem seccionamento. 3DISCO é um procedimento simples de limpeza de tecidos baseado na incubação sequencial com solventes orgânicos. Após a limpeza, os órgãos tornam-se transparentes, permitindo uma varredura a laser de ponta a ponta da amostra.
O objetivo geral do experimento a seguir é obter imagens de amostras biológicas intactas marcadas com fluorescência sem o uso de seccionamento histológico. Isso é alcançado por meio da incubação sequencial de tecidos fixados em solventes orgânicos até que uma transparência completa seja obtida. Como segundo passo.
Os tecidos transparentes são imagiados em 3D usando um microscópio a laser de varredura. Em seguida, os resultados da imagem são analisados e as estruturas neuronais na medula espinhal e no cérebro não seccionados podem ser reconstruídas em 3D a partir das três imagens coletadas. Este método pode ajudar a responder perguntas-chave na área de neurociência sobre como mapear conexões neuronais e GAL em todo o cérebro e medula espinhal.
As implicações dessa técnica estendem-se à terapia da neurodegeneração, pois agora podemos visualizar a integridade neural em todo o sistema nervoso. Embora este método possa fornecer informações sobre a organização do sistema nervoso, ele também pode ser aplicado a outros órgãos, como o pulmão ou tecido tumoral. Após dominada, essa técnica leva apenas algumas horas para órgãos pequenos, como a medula espinhal ou o pulmão, e cerca de um ou dois dias para o cérebro. Inicie o procedimento adicionando dois a três mililitros de THF 50% recém-preparado a um frasco de vidro para cada tecido coletado.
Em seguida, transfira os órgãos fixados para a solução de clareamento e feche firmemente os frascos. Coloque os frascos em um agitador rotativo e cubra-os com papel alumínio, agitando as amostras pelo tempo apropriado a uma velocidade constante de 30 RPM. Em seguida, remova a solução de clareamento e use um novo PE ou pipeta para suspender o tecido na próxima solução.
Conforme indicado na tabela durante a etapa final de clareamento, mantenha as amostras em solução até que fiquem completamente transparentes para microscopia multiphoton ou confocal. Assim que o clareamento completo for alcançado, monte a amostra em uma lâmina de imagem para esse fim. Utilize cimento dental para fazer uma borda ao redor do tecido.
Encha o poço com a solução de clareamento final pouco antes de o cimento dental ficar completamente rígido e, em seguida, coloque imediatamente a amostra clareada no centro do poço e cubra-a com um lamínula. Pressione o lamínula até que fique completamente selado pelo cimento dental e entre em contato com a superfície do órgão clareado para microscopia de folha de luz; assim que o clareamento completo for alcançado, monte e, então, gire manualmente o parafuso do suporte da amostra para fixar a amostra. Em seguida, mergulhe a amostra na câmara de imagem do microscópio de folha de luz preenchida com a solução de clareamento final apropriada para o tecido analisado.
Em seguida, realize varreduras Z cobrindo todos os tecidos clarificados na melhor resolução que o microscópio puder fornecer, aumentando o zoom nas regiões de interesse para obter imagens de maior resolução. Após a aquisição das imagens, carregue a série de imagens no software Amira com o módulo resolve RT. Quando a série tiver sido carregada, insira os tamanhos corretos de vóxeis na janela de parâmetros de leitura da imagem e clique em OK.
Em seguida, selecione o subaplicativo de visualização multiplanar. Depois, utilize os controles deslizantes primário e de espessura para escolher a espessura de projeção e o limiar ideais para os valores de cinza. Por fim, utilize o módulo de corte nos cantos para navegar pelas fatias em diferentes orientações 3D.
Para visualizar as amostras, mapear a organização estrutural dos neurônios é extremamente importante para compreender como eles funcionam na saúde e na doença. Embora o método three disco possa ser empregado em diversos órgãos, ele é particularmente útil para rastrear longas conexões neuronais na medula espinhal e no cérebro. Por exemplo, utilizando varreduras de ultramicroscopia de segmentos grandes da medula espinhal transparentizados, as conexões axonais podem ser seguidas ao longo de centímetros na medula espinhal de roedores, como ilustrado nestas imagens.
De maneira semelhante, todo o cérebro e o hipocampo de camundongos clarificados podem ser imagiados para acompanhar as conexões neuronais no cérebro. Quando se utiliza microscopia confocal ou de múltiplos fótons, a resolução de imagem pode ser significativamente melhorada, especialmente na dimensão Z. Por exemplo, a imagem de múltiplos fótons de medulas espinhais clarificadas de camundongos da linhagem GFPM produz uma imagem contínua em toda a profundidade de 1,5 a dois milímetros da medula espinhal.
A microscopia confocal na medula espinhal clareada fornece resolução melhorada de maneira semelhante. A imagem obtida por microscopia de múltiplos fótons de cérebros clareados fornece imagens de resolução muito alta para visualizar detalhes finos das estruturas neuronais, incluindo espinhos dendríticos. As amostras para o três disco podem ser marcadas de várias formas.
Por exemplo, é possível marcar toda a vasculatura do cérebro e da medula espinhal utilizando traçadores fluorescentes conjugados com lectina, os quais podem ser usados para estudar a barreira hematoencefálica em condições fisiológicas e patológicas. Utilizando três disco, células menores em tecidos grandes também podem ser visualizadas. Por exemplo, tanto a microglia quanto os astrócitos estão fortemente implicados na patologia da neurodegeneração, incluindo a doença de Alzheimer e lesões traumáticas.
Utilizando três disco, pode-se estudar sua densidade e distribuição na medula espinhal. Tecidos não neuronais também podem ser analisados por imagem. Por exemplo, células de Clara em todo o pulmão de roedores podem ser marcadas por imunomarcação com anticorpos e analisadas por imagem sem seccionamento, ao nível de célula única.
Da mesma forma, é possível tornar transparentes e imaginar células no tecido pancreático não tratado. Por exemplo, as células alfa marcadas com fluorescência são imagiadas após o processo de clareamento nestas imagens do pâncreas. A demonstração visual deste método é importante porque, embora as etapas de clareamento e aquisição de imagens sejam diretas, a análise dos dados pode ser complicada.
Embora aplicando este procedimento, é importante imaginar tecidos claros assim que a transparência completa for alcançada, pois o sinal fluorescente se degradará com o tempo na solução de clareamento. O desenvolvimento desta técnica abriu caminho para que pesquisadores explorassem detalhes e órgãos intactos, como o mapeamento de redes neuronais no cérebro. Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como clarear e imaginar estruturas celulares e subcelulares em órgãos inteiros, e subsequentemente visualizá-las e analisá-las.
Este estudo apresenta um método para a obtenção de imagens de amostras biológicas intactas marcadas com fluorescência sem o uso de seccionamento histológico, utilizando a técnica 3DISCO. O processo envolve a incubação sequencial de tecidos fixados em solventes orgânicos para alcançar transparência, seguida por imagem 3D com microscópio de varredura a laser.
O 3DISCO permite a aquisição de imagens tridimensionais de alta resolução de sistemas biológicos intactos sem necessidade de seccionamento, apoiando a validação de alvos e a redução de riscos mecanicistas em pesquisas e desenvolvimento em neurociência e oncologia. Ao preservar a arquitetura tecidual e permitir a visualização de órgãos inteiros, aumenta a confiança preditiva em modelos pré-clínicos e reduz a ambiguidade biológica em estudos de interação com alvos. Essa capacidade acelera a identificação de compostos líderes e a descoberta de biomarcadores translacionais ao fornecer dados quantitativos com resolução espacial em sistemas relevantes para doenças.
3DISCO insere-se no continuum de descoberta, desde a validação de alvos até a imagem pré-clínica, apoiando a verificação de hipóteses e a redução de riscos mecanicistas em programas de neurociência e imuno-oncologia.