Name: MALDI por espectrometria de massa de imagens de Investigação de metabólitos em Medicago truncatula Os nódulos radiculares (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-03-05T17:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 59 s
Description: Aprenda a realizar imagem por espectrometria de massa MALDI para investigar metabólitos em nódulos radiculares de Medicago truncatula. Este método permite mapear a distribuição espacial de moléculas biologicamente relevantes.

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Os autores gostariam de agradecer o Dr. Jean-Michel Ané no Departamento de Agronomia da UW-Madison para fornecer amostras truncatula Medicago. Este trabalho foi financiado em parte pelo financiamento da National Science Foundation (NSF) concessão CHE-0.957.784, a Graduate School da Universidade de Wisconsin ea Fundação Alumni Research Wisconsin (WARF) e programa Romnes Faculdade Bolsa de Investigação (a LL). EG reconhece um NSF Graduate Research Fellowship (DGE-1256259).

1. Instrumentação <ol><li> MALDI-TOF/TOF MSI. Use um espectrômetro de massa equipados com uma fonte MALDI para análise de moléculas pequenas (ver Tabela de Materiais / Equipamentos). Realizar aquisições no modo íon positivo ou negativo, dependendo dos analitos de interesse. Especifique um intervalo de massa de interesse e recolher 500 tiros de laser / local em 50 mM intervalos em ambas as dimensões X e Y em toda a superfície da amostra para gerar imagens de íons. A largura de varredura eo número de disparos de laser pode ser ajustado para se obter maior resolução espacial e intensidade máxima do sinal, respectivamente. Use picos matriz DHB ou padrões internos aplicados ao slide ou directamente ao tecido a calibrar o espectro de massa. </li><li> Alta resolução LC-MS. (Ver Tabela de Materiais / Equipamentos) extractos da amostra correr com LC-MS usando fase reversa (RP) LC com uma coluna C-18, ou fase normal (NP) com uma coluna HILIC dependendo dos analitos de interesse. Use fases móveis egradientes como apropriadas para o tipo de amostra específica. Realizar aquisições em modos de iões positivos ou negativos, dependendo do tipo de amostra. </li></ol> 2. Preparação Tissue <ol><li> Apare o nódulo da raiz da planta, deixando 3-4 mm de raiz ligados ao nódulo. </li><li> Imediatamente após a dissecação, fórceps para posicionar o tecido em um copo de criostato e cobrir com gelatina (100 mg / ml em água desionizada). É essencial para o tecido a ser preso ao fundo do copo, sem bolhas de ar. </li><li> Flash congelar o tecido colocando-o copo num banho de gelo seco / etanol até que a gelatina endureça e torna-se opaco. Armazenar as amostras a -80 ° C até à sua utilização. </li><li> Retirar amostras do freezer -80 ° C, cortar o copo criostato plástico e corte o excesso de gelatina. Monte o tecido incorporado ao mandril criostato com uma quantidade do tamanho de dez centavos de temperatura de corte ideal (OCT) de mídia, apesar de não deixar a outubro tocar no tecido. Coloque em criostatocaixa até as solidifica outubro. </li><li> Permitir que o chuck e gelatina para equilibrar na caixa de criostato (set para -20 ou -25 ° C) por aproximadamente 15 min. </li><li> Utilizar o criostato (ver Tabela de Materiais / Equipment) para a secção de tecido de aproximadamente a espessura de uma célula (8-20 mM, dependendo do tipo de tecido) e descongelamento montar cada fatia sobre o vidro ITO revestido por aquecimento da parte de trás (não ITO revestido lado) de uma lâmina de vidro ITO revestido na parte de trás da sua mão. Coloque o lado ITO revestido do slide aquecido perto da fatia tecido congelado e permitir que a fatia de ficar para o slide. Colocar as seções juntos no slide irá proporcionar um melhor alinhamento durante MSI. </li></ol> 3. Aplicação Matrix <ol><li> Aplicação Airbrush de MALDI Matrix <ol><li> Todos os procedimentos airbrush deve ser realizada numa hote. </li><li> Limpe bem a solução do recipiente e bico aerógrafo (ver Tabela de Materiais / Equipamentos) com metanol eencher o recipiente com solução de solução de matriz DHB (150 mg / ml em 50% de TFA methanol/0.1% v / v). </li><li> Segurar o spray de cerca de 35 cm da amostra e aplicar 10-15 camadas de matriz sobre a superfície da lâmina com uma duração de 10 segundos de pulverização de 30 s e o tempo de secagem entre cada demão. </li><li> Limpe bem o aerógrafo novamente com metanol quando terminar para evitar o entupimento da solução matriz. </li></ol></li><li> Aplicação pulverizador automático de MALDI Matrix <ol><li> Siga as instruções de arranque fornecidos pelos fabricantes do sistema de pulverizador automático. </li><li> Para MSI de metabolitos em nódulos de raiz, usando 40 mg / ml (em 50% de TFA methanol/0.1% v / v) como a matriz de DHB, ajustar a temperatura de ~ 80 ° C, a velocidade a 1.250 mm / min, velocidade de fluxo de 50 il / min, e o número de passagens para 24. Para melhor cobertura, recomenda-se rodar o bocal 90 ° e / ou deslocamento do bocal 1,5 mm entre cada passagem. Comece método pulverizador. Como um side nota, o sistema pulverizador particular usado aqui aquece o bocal para a mais rápida evaporação do solvente. À medida que o solvente se evapora, a concentração da matriz aumenta rapidamente. A matriz aplicada à amostra com o aerógrafo e do pulverizador automático têm concentrações comparáveis. </li><li> Siga as instruções de desligamento fornecidos pelos fabricantes do sistema de pulverizador automático. </li></ol></li><li> Aplicação de sublimação de MALDI Matrix <ol><li> Pesar 300 mg DHB para o fundo da câmara de sublimação (ver Tabela de Materiais / Equipamento). </li><li> Furar a lâmina de vidro para o dedo frio (porção superior da câmara de sublimação) com as secções de tecido virada para baixo com uma fita de dupla face, condutora. Cubra toda a parte de trás da lâmina com a fita dupla face, mesmo para condutividade, produzindo até mesmo deposição de matriz. </li><li> Fixar as metades superior e inferior da câmara de sublimação juntamente com o grampo C. Ligar o vácuo e add gelo e água fria para a parte superior do reservatório. </li><li> Coloque câmara de sublimação em uma manta de aquecimento, que está à temperatura ambiente. </li><li> Ligue a bomba de vácuo. Espere 15 minutos e ligue a manta de aquecimento. A manta de aquecimento deve atingir cerca de 120 ° C ao longo de 10 min. </li><li> Após 10 min, desligue o fogo, perto da válvula de vácuo (para o interior da câmara permanece sob vácuo) e desligue a bomba de vácuo. </li><li> Permitir que a câmara de voltar à temperatura ambiente, abre a válvula de libertação da pressão de vácuo e remover a amostra. O tamanho da câmara de sublimação vai determinar a quantidade de matriz sublimado à lâmina de vidro. As câmaras de sublimação maiores (do tamanho de um copo de 400 ml) vai usar aproximadamente 300 mg de DHB, enquanto as câmaras mais pequenas (do tamanho de um copo de 150 ml) vai usar aproximadamente 100 mg de DHB e irá requerer o corte da lâmina de vidro, de modo que ele se encaixa na câmara. </li></ol></li></ol> 4. Aquisição de Imagem <ol> &lt;li&gt; Mark um padrão + em cada canto da amostra com uma caneta corretivo líquido WiteOut para ser usado como &quot;ensinam pontos&quot;. Coloque a lâmina de vidro na placa de adaptador de slides MALDI e ter uma imagem óptica da amostra, utilizando um scanner. </li><li> Configure um arquivo de aquisição de imagem, utilizando o software fornecido pela empresa de instrumentos com um tamanho de passo de varredura de 50 mm e um diâmetro de laser igual ou menor do que o tamanho do passo de varredura. Neste instrumento em particular, que a configuração mínima do laser dá um diâmetro de laser de cerca de 10 um e uma pequena configuração de laser tem um diâmetro de 40-50 ^ m. </li><li> Carregar a imagem óptica para dentro do software e alinhar a placa com a imagem óptica. </li><li> Calibrar o aparelho antes de iniciar a aquisição usando íons comuns matriz de fragmentação, normas internas, ou uma mistura de calibração. </li><li> Especificar as áreas de tecido a ser analisado com a MSI, incluindo um local de matriz pura sobre a lâmina a ser usado como um &quot;branco&quot;. </li><li> Comece acquisition. </li></ol> 5. Geração de Imagem <ol><li> Abra o arquivo de imagem no software disponível comercialmente fornecido pelo fornecedor e extrair as imagens de íons. Outros softwares de código aberto está disponível para processamento de dados MSI 19. </li></ol> 6. Metabolite Identificação <ol><li> Selecione um m / z de interesse específico do espectro de massa usando o software específico do fornecedor (ver Tabela de Materiais / Equipamentos). Um objecto de análise pode ser distinguido de um ião de matriz quando um pico de analito é seleccionado a partir do espectro de massa e de iões de imagens são geradas especificamente localizada em secção de tecido. </li><li> Gere uma lista de analitos de interesse e realizar experimentos MS / MS. Ver Tabela 1 e Tabela 2 em resultados representativos para listas de amostras de analitos. </li><li> Realizar análise de LC-MS alvejado em um espectrômetro de massa de alta resolução (ou alta resolução MALDI-MS, se disponível) para obter resultados precisosmedições de massa dos analitos de interesse e também realizar LC-MS/MS dos analitos-alvo para obter padrões de fragmentação característico. </li><li> Realize banco de dados em busca de determinar identificações putativos para os analitos alvo. Exemplos de bases de dados de metabólitos incluem: METLIN, ChemSpider, PubChem, KEGG e HMDB. </li><li> Para confirmar as identificações putativos de pesquisa de banco de dados de massa exata, coincidir com o MS / MS dos analitos direcionados para MS / MS espectros dos padrões, da literatura, e / ou software de previsão de fragmentação. </li></ol>

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</ol>

Os autores declaram que não têm interesses financeiros concorrentes.

Como discutido acima, a preparação da amostra é a etapa mais importante no fluxo de trabalho MSI. A incorporação do tecido de forma desigual causará o corte ser difícil ou não ser possível, em alguns casos. O tamanho da seção e tempo de equilíbrio adequado são fundamentais para a manutenção da integridade do tecido e evitando dobrar e lágrimas. Selecção da matriz e da técnica de aplicação vai desempenhar um papel importante na determinação dos tipos de analitos a serem detectados, a resolução espacial, e a reprodutibili...

O crescente campo da metabolômica tem muitas aplicações biológicas importantes, incluindo a descoberta de biomarcadores, decifrando vias metabólicas em plantas e outros sistemas biológicos, e toxicologia profiling 4,6-10. Um grande desafio técnico ao estudar sistemas biológicos é estudar caminhos metabolômica, sem perturbar-los 11. MALDI-MSI permite a análise direta de tecidos intactos que permite a detecção sensível de analitos em órgãos individuais 12,13 e até células individuais 14,15. A preparação da amostra é um passo crucial na produção de imagens espectrais de massa reprodutíveis e confiáveis. A qualidade das imagens depende muito de fatores, tais como a incorporação de tecido médio, espessura de corte, matriz MALDI, e técnica de aplicação da matriz. Para aplicações de imagem, a espessura do corte ideal é a largura de uma célula (8-20 mM, dependendo do tipo de amostra). MALDI requer a deposição de um composto orgânico, a cristalinae composto de matriz, tipicamente um ácido fraco, por exemplo para auxiliar a ablação analito e ionização. 16 matrizes diferentes proporcionam diferentes intensidades de sinal, os iões interferentes, e eficiências de ionização de diferentes classes de compostos. A técnica de aplicação de matriz, também desempenha um papel na qualidade das imagens de espectro de massa e de diferentes técnicas são apropriadas para diferentes classes de analitos. Três métodos de aplicação da matriz são apresentadas neste protocolo: airbrush, pulverizador automático e sublimação. Aplicação matriz spray tem sido amplamente utilizado em imagiologia de MALDI. A vantagem da aplicação de spray matriz é de que é relativamente rápido e fácil. No entanto, a qualidade da aplicação matriz spray depende em grande medida da perícia do utilizador e tende a ser menos reprodutível e causar a difusão dos analitos, especialmente as pequenas moléculas de 17. Sistemas de pulverização automáticos tem mecânica semelhante ao aerógrafo aplicação da matriz, mas have foi desenvolvido para remover a variabilidade observada com aplicação manual de spray, fazendo a pulverização mais reprodutível. Este método pode às vezes ser mais demorado do que a aplicação da matriz aerógrafo tradicional. Ambos aerógrafo manual e sistemas de pulverização automáticos são métodos de aplicação de matriz à base de solvente. A sublimação é uma técnica de aplicação de matriz seca que está a tornar-se cada vez mais popular para a imagem do espectro de massa de metabolitos e pequenas moléculas, pois reduz a difusão do analito, no entanto, falta-lhe o solvente necessária para extrair e observar os compostos de massa mais elevados 18. Confiante identificação de metabólitos normalmente requer medições de massa precisas para obter identificações putativos seguidos de massa em tandem (MS / MS) experimentos para validação, com espectros MS / MS que estão sendo comparados com os padrões, a literatura, ou espectros teórico. Neste protocolo de alta resolução (massa potência de 60.000 a m ​​/ z de 400 a resolução), a cromatografia líquida (LC)-MS está acoplado a MALDI-MSI obter tanto informações espaciais e identificações confiantes de metabolitos endógenos, usando Medicago truncatula raízes e nódulos de raiz como o sistema biológico. Experimentos MS / MS pode ser realizada diretamente sobre o tecido com MALDI-MSI ou em extratos de tecidos com LC-MS e usado para a validação das identificações de metabólitos. Este protocolo fornece um método simples para mapear metabolitos endógenos em M. truncatula, que pode ser adaptado e aplicado a MSI de moléculas pequenas em vários tipos de tecidos e sistemas biológicos.

<table><tbody><tr><td>Gelatina</td><td>Difco</td><td><a href="http://catalog.bd.com/bdCat/viewProduct.doCustomer?productNumber=214340">214340</a></td><td>calor para dissolver</td></tr><tr><td>Criostato- HM 550</td><td>Lâminas</td> de vidro revestidas com óxido de índio e estanho (ITO) da Thermo Scientific <td>956564A</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp;</td><td>Delta Technologies</td><td>CB-90IN-S107</td><td>25 mm x 75 mm x 0.8 mm (largura x comprimento x espessura)</td></tr><tr><td>Matriz de ácido 2,5-dihidroxibenzoico (DHB)&nbsp;</td><td>ICN Biomedicals</td><td><a href="http://www.labsource.com/Catalog/Item.aspx? ItemID=1787195">PI90033</a></td><td></td></tr><tr><td>Airbrush</td><td>Paasche Airbrush Company</td><td>TG-100D</td><td>acoplado com recipiente de aço de 75 ml</td></tr><tr><td>Sistema de pulverização de matriz automática - TM-Sprayer</td><td>HTX Technologies, LLC</td><td>HTX. TMSP. H021-U</td><td>Instruções específicas de inicialização e desligamento serão dadas quando o instrumento for instalado</td></tr><tr><td>Aparelho de sublimação&nbsp;</td><td>Chemglass Life Science</td><td><a href="http://www.chemglass.com/product_view.asp?pnr=CG-3038">CG-3038-01</a></td><td></td></tr><tr><td>Bomba de vácuo- Alcatel 2008 A</td><td>Ideal Vacuum Products</td><td>P10976</td><td>Pressão final = 1 x 10-4 Torr</td></tr><tr><td>ultrafleXtreme MALDI-TOF/TOF</td><td>Bruker Daltonics</td><td>276601</td><td></td></tr><tr><td>FlexImaging</td><td>Bruker Daltonics</td><td>269841</td><td>Um exemplo de "software específico do vendedor"</td></tr><tr><td>MALDI LTQ Orbitrap</td><td>Thermo Scientific</td><td>IQLAAEGAAPFADBMASZ</td><td>Instrumento MALDI de alta resolução para medições de massa precisas</td></tr><tr><td>Q Exactive</td><td>Thermo Scientific</td><td>IQLAAEGAAPFALGMAZR</td><td>Instrumento LC-MS de alta resolução para medições de massa precisas</td></tr></tbody></table>

maldi por espectrometria de massa de imagens de investigação de metabólitos em<em&gt; medicago truncatula</em&gt; os nódulos radiculares

MALDI-Mass Spectrometric Imaging for the Investigation of Metabolites in Medicago truncatula Root Nodules

A maioria das técnicas utilizadas para estudar moléculas pequenas, tais como fármacos ou metabolitos endógenos, empregam extractos de tecidos que requerem a homogeneização do tecido de interesse, que poderia, potencialmente, causar alterações nas vias metabólicas em estudo 1. Imagiologia por espectrometria de massa (MSI) é uma poderosa ferramenta analítica que pode fornecer informação espacial dos analitos dentro fatias intactas de amostras de tecidos biológicos 1-5. Esta técnica tem sido amplamente utilizado para o estudo de vários tipos de compostos, incluindo proteínas, péptidos, lípidos, e moléculas pequenas, tais como metabolitos endógenos. Com matriz assistida por laser de dessorção / ionização (MALDI)-MSI, distribuições espaciais de vários metabolitos podem ser detectados simultaneamente. Aqui, um método desenvolvido especificamente para a realização de experimentos de metabolômica MSI não segmentados em raízes leguminosas e nódulos radiculares é apresentado o que poderia revelar insights sobre os processos biológicos que ocorrem. Ométodo aqui apresentado mostra um fluxo de trabalho típico MSI, desde a preparação da amostra para aquisição de imagem, e centra-se na etapa de aplicação da matriz, o que demonstra várias técnicas de aplicação da matriz que são úteis para a detecção de pequenas moléculas. Uma vez que as imagens são geradas MS, a análise e identificação de metabolitos de interesse é discutido e demonstrado. O fluxo de trabalho padrão apresentado aqui pode ser facilmente modificada para diferentes tipos de tecidos, espécies moleculares e instrumentação.

Uma visão geral experimental da MSI é mostrado na Figura 1. No início da experiência, a preparação da amostra é um passo crítico. Nódulos são cortados a partir da raiz da planta e incorporado em gelatina. O tecido deve ser achatadas contra o copo criostato, sem bolhas, enquanto ele está sendo congelado, o que irá garantir o alinhamento mais fácil e adequada do tecido enquanto ele está sendo seccionado. Quando o tecido está a ser cortado, é importante para cortar o tecido com a espessura adequada, demasi...

Imagiologia por espectrometria de massa (MSI) é uma ferramenta poderosa que pode ser usada para descobrir e identificar várias espécies químicas em tecidos intactos, preservando os compostos em seus ambientes nativos, que pode fornecer novos insights sobre processos biológicos. Aqui um método MSI desenvolvido para a análise de moléculas pequenas é descrito.

MALDI por espectrometria de massa de imagens de Investigação de metabólitos em<em&gt; Medicago truncatula</em&gt; Os nódulos radiculares

Most techniques used to study small molecules, such as pharmaceutical drugs or endogenous metabolites, employ tissue extracts which require the ...

O objetivo geral deste procedimento é realizar uma imagem multiespectral confiável por espectrometria de massas de moléculas pequenas em tecido radicular de plantas. Isso é alcançado primeiramente preparando as amostras de tecido no tamanho apropriado. O segundo passo é otimizar e aplicar a matriz maldi na amostra de tecido.Em seguida, a amostra é submetida à MALDI, e espectros são coletados ao longo do tecido. O passo final é o processamento dos dados, no qual analitos biologicamente importantes podem ser identificados. Em última instância, a MSI por MALDI é utilizada para detectar metabólitos endógenos presentes em nódulos radiculares de leguminosas.Este método pode fornecer informações sobre os metabólitos presentes no tecido radicular de plantas, mas também pode ser aplicado ao estudo de moléculas pequenas e tecidos de outros sistemas modelo, incluindo mamíferos, insetos crustáceos e outros. Primeiro, remova as amostras de tecido vegetal previamente preparadas do congelador a menos 80 graus Celsius. Em seguida, corte o copo plástico do criostato e retire o excesso de gelatina, monte o tecido embutido em um porta-bloco de criostato com uma quantidade do meio de temperatura de corte ideal ou meio OCT do tamanho de uma moeda, tomando cuidado para que o OCT não entre em contato com o tecido.Coloque o suporte do criostato em uma caixa de criostato ajustada a menos 20 graus Celsius até que o OCT solidifique. Após deixar o suporte e a gelatina atingirem equilíbrio térmico no interior da caixa de criostato por cerca de 15 minutos, utilize o criostato para seccionar o tecido com espessura aproximada de uma célula. Em seguida, monte manualmente cada corte sobre uma lâmina de vidro pré-resfriada aquecendo o lado não revestido da lâmina na parte de trás da mão.Em seguida, posicione o lado do lâmina revestido com ITO próximo à fatia de tecido congelado e permita que a fatia adira à lâmina para a aplicação do matriz MALDI por aerógrafo. Limpe completamente o recipiente da solução e o bico do aerógrafo com metanol e encha o recipiente com a solução de matriz DHB. Segure o aerógrafo a aproximadamente 35 centímetros da amostra e aplique de 10 a 15 camadas de matriz sobre a superfície da lâmina, com duração de 10 segundos de pulverização e 30 segundos de tempo de secagem entre cada camada.Quando terminar, limpe completamente o aerógrafo com metanol para evitar entupimentos. Devido à solução da matriz, é importante observar que, embora os aerógrafos sejam mais facilmente disponíveis, os sistemas automáticos de pulverização da matriz frequentemente produzem uma cobertura de matriz mais uniforme e reprodutível para a aplicação por sublimação da matriz MALDI. Pese 300 miligramas de DHB e coloque no fundo da câmara de sublimação. Fixe a lâmina de vidro ao dedo frio com as seções de tecido voltadas para baixo, utilizando fita condutiva dupla face. Corte a lâmina se for muito grande.Para a câmara de sublimação, prenda as metades superior e inferior da câmara de sublimação juntas com o grampo em forma de C. Em seguida, coloque a câmara de sublimação em um manto de aquecimento que esteja à temperatura ambiente. Conecte o vácuo e adicione gelo em água fria ao reservatório superior.Uma vez que a bomba de vácuo tenha sido ligada, espere 15 minutos e ligue o manto de aquecimento. Após 10 minutos, desligue o aquecimento, feche a válvula do vácuo e desligue a bomba de vácuo. Quando a câmara tiver esfriado até a temperatura ambiente, abra a válvula para liberar a pressão do vácuo e remova a amostra.Em seguida, marque um padrão em forma de cruz em cada canto da amostra com a caneta de líquido corretivo para ser usada como pontos de referência. Coloque a lâmina de vidro na placa adaptadora para lâmina MALDI e obtenha uma imagem óptica da amostra usando um scanner. Verifique a imagem no computador e gire a figura para que ela apareça corretamente na tela.Na mesma orientação, a amostra será colocada no instrumento. Configure um arquivo de aquisição de imagem utilizando o software fornecido pela empresa do instrumento, com um tamanho de passo raster de 50 micrômetros e um diâmetro de laser igual ou menor que o tamanho de passo raster. Neste momento, carregue a imagem óptica no software e alinhe a placa com a imagem óptica.Após calibrar o instrumento, especifique as áreas do tecido a serem analisadas por IMS, incluindo um ponto de matriz pura na lâmina para ser usado como branco. Em seguida, inicie a aquisição; após a aquisição dos dados, abra o arquivo de imagem no software fornecido pelo fabricante e extraia as imagens de íons selecionando uma razão massa/carga específica de interesse a partir do espectro de massas. Utilizando o software, crie uma lista de analitos específicos de interesse para identificação posterior.Realize uma busca em banco de dados por massa exata para determinar identificações putativas para os analitos direcionados. Para confirmar as identificações putativas obtidas pela busca em banco de dados por massa exata, compare os espectros de MS dos analitos direcionados com espectros MS/MS de padrões, da literatura ou de software de previsão de fragmentação. A seguir, é apresentada uma imagem óptica de uma seção de nódulo radicular de Mego Tula.Aqui está um exemplo de imagem óptica da cobertura da matriz e dos tamanhos dos cristais utilizando, respectivamente, pulverizador automático com aerógrafo e sublimação. O método de aplicação com aerógrafo gera cristais grandes e pequenos. Enquanto o método com pulverizador automático produz cristais pequenos de tamanho uniforme, a sublimação produz uma única camada homogênea de matriz.Matrizes convencionais como DHB produzem muitos íons na faixa de massa baixa abaixo de 500 Daltons. Esses íons da matriz podem interferir na detecção de metabólitos nesta faixa. São mostrados aqui os espectros de MS apenas da matriz DHB em comparação com tecido de nódulo radicular revestido com matriz DHB.Picos da matriz podem ser diferenciados de metabólitos reais utilizando as imagens de MS. Quando um pico é clicado, a imagem iônica é extraída e exibida sobreposta à imagem óptica. Aqueles picos que geram imagens com localização distinta no tecido e que não estão presentes na área da matriz apenas são considerados metabólitos; aqui são mostradas várias imagens iônicas representativas de metabólitos encontrados em tecido de nódulo radicular.Embora exemplos de imagens de EM correspondentes a picos relacionados à matriz sejam mostrados aqui, esta imagem mostra uma localização distinta no tecido do nódulo radicular e ausência de sinal na área exclusivamente de matriz que foi imageada. Este sinal apresenta pouca localização e está presente em todo o tecido. O sinal também é observado na área exclusivamente de matriz que foi imageada.O objetivo final dos experimentos de metabolômica não direcionada é detectar e determinar analitos biologicamente importantes e identificar os compostos de interesse. Um exemplo de um dos metabólitos detectados com IMS e CLAE é apresentado aqui. Esse metabólito foi identificado como heme com base na massa exata obtida com CLAE de alta resolução e no espectro MSS em modo MS/MS.Esses dados de MSMS foram comparados aos espectros de MSM S previamente publicados por Shima e Sato, correspondendo aos dois espectros de MSM S. Portanto, a identidade da razão massa/carga de 6 1 6 0,2 foi atribuída com confiança como heme, com base na busca em banco de dados de massas exatas e na comparação dos dados de MS.MS com os dados de MS.MS da literatura. Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como utilizar a imagem por espectrometria de massas com MALDI para detectar e mapear a distribuição espacial de metabólitos biologicamente relevantes, usando um método que pode ser aplicado ao estudo de moléculas pequenas em diversos tipos de tecidos e sistemas modelo.

maldi-mass-spectrometric-imaging-for-investigation-metabolites

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Uma maneira rápida é descrito para obter insights sobre a estrutura de polissacarídeos em uma matriz extracelular. O método aproveita a especificidade do glycosylhydrolases ea sensibilidade da espectrometria de massa permitindo que pequenas quantidades de materiais a serem analisados. Esta técnica é adaptável para ser usada diretamente sobre o tecido em si.

Oligo Profiling Massa (OLIMP) de polissacarídeos extracelulares

Uma fonte de imagem de espectrometria de massa (MSI) operada à pressão atmosférica foi desenvolvida acoplando dessorção a laser de infravermelho médio e pós-ionização por eletrospray. A matriz de gelo exógena foi usada como matriz de absorção de energia para facilitar a dessorção ressonante do material relacionado ao tecido. Este manuscrito fornece um protocolo passo a passo para a realização de IR-MALDESI MSI de camundongos neonatais de corpo inteiro.

Whole-body Espectrometria de Massa de imagem por infravermelhos matriz assistida por laser de Dessorção Ionização por Electrospray (IR-MALDESI)

Espectrometria de massa de pulverizador de folha é uma técnica de análise química direta que minimiza a preparação da amostra e elimina a cromatografia, permitindo a detecção rápida de pequenas moléculas de tecidos vegetais.

Espectrometria de massa folha Spray: Uma técnica de ionização ambiente rápida para avaliar diretamente a metabolitos de tecidos vegetais

Este método usa imagens de espectrometria de massa (MSI) para entender processos metabólicos nas folhas de S. alba quando expostos a xenobióticos. O método permite a localização espacial de compostos de interesse e seus metabólitos previstos dentro de tecidos específicos e intactos.

Investigação do metabolismo xenobióticos em folhas de Salix alba via Imagem de Espectrometria de Massa

Um protocolo para estudar tecido biológico em alta resolução espacial usando microscopia de ressonância magnética de campo ultra-alto (MRM) utilizando microcoils é apresentado. Instruções passo a passo são fornecidas para caracterizar os microcoils. Finalmente, a otimização da imagem é demonstrada nas raízes das plantas.

Calibração e uso de desempenho da MRM Microcoil demonstrados em raízes de truncatula medicago a 22 T

O objetivo deste protocolo é fornecer orientação detalhada sobre a preparação da amostra ao planejar experimentos usando MALDI MSI para maximizar a detecção metabólica e molecular em amostras biológicas.

Preparação de amostras para perfil metabólico usando imagem de espectrometria de massa MALDI

Neste estudo, uma série de métodos são apresentados para preparar amostras de DESI-MSI de plantas, e um procedimento de instalação de montagem de DESI, aquisição de dados MSI e processamento é descrito em detalhes. Este protocolo pode ser aplicado em diversas condições para aquisição de informações do metaboloma espacial em plantas.

Visualização de Metabólitos Identificados no Metaboloma Espacial da Medicina Tradicional Chinesa Utilizando DESI-MSI

Este protocolo teve como objetivo descrever orientações detalhadas sobre a preparação de seções de amostras de sementes duras com baixo teor de água para análise de MALDI-IMS, mantendo a distribuição e abundância originais dos analitos e fornecendo sinal de alta qualidade e resolução espacial.

Preparação de sementes de palma dura para análise por espectrometria de massa assistida por dessorção/ionização assistida por matriz

Um método avançado foi desenvolvido para imagens por espectrometria de massa (MSI) de organoides cerebrais que permite mapear distribuições de metabólitos dentro desses modelos. Essa tecnologia oferece insights sobre as vias metabólicas do cérebro e assinaturas de metabólitos durante o desenvolvimento inicial e na doença, prometendo uma compreensão mais profunda da função cerebral humana.

Imagem molecular de organoides cerebrais humanos usando espectrometria de massa 

Demonstramos como as plantas de raiz peludo composto pode ser usado para estudar as interações planta rizóbio e nodulação na difíceis de transformar as...

Geração de plantas em Composite Medicago truncatula Utilizado para Ensaios Nodulação

Aprenda a realizar imagem por espectrometria de massa MALDI para investigar metabólitos em nódulos radiculares de Medicago truncatula. Este método permite mapear a distribuição espacial de moléculas biologicamente relevantes.

MALDI por espectrometria de massa de imagens de Investigação de metabólitos em

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