Name: Electrospun fibrosa Andaimes de Poli (glicerol-dodecanedioate) para Engenharia Neural tecidos de rato as células estaminais embrionárias (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-06-18T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 3 s
Description: Aprenda a fabricar fibras eletrofiadas de poli(glicerol-dodecanodioato) para engenharia de tecidos neurais usando células-tronco embrionárias de rato. Este método demonstra a viabilidade de suporte e diferenciação celular.

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Este trabalho foi realizado utilizando as instalações do Departamento de Engenharia Biomédica da Universidade Internacional da Flórida.

1. Setup Electrospinning Collector <ol><li> Corte o papel alumínio em uma peça retangular. </li><li> Dobre o pedaço retangular em uma tira retangular, e anexá-lo perpendicular a uma placa de metal plana com fita adesiva (Figura 1). Nota: O tamanho da esteira de fibras dependem do comprimento e da largura da tira. Assim, as dimensões da tira pode ser ajustada conforme necessário. </li></ol> 2. Solução polimérica Preparação <ol><li> Mistura de glicerol e ácido dodecanóico (ADD) em razão molar de 1:1, num copo de 120 ° C durante 100 horas para se obter polímero de DGP. </li><li> Dissolve-se o poli (óxido de etileno) (PEO) e de gelatina, em etanol a 65% com uma proporção de peso de 1.5:3:95.5 em um tubo de 15 ml, apertar a tampa e aquecer a mistura num forno a 60 ° C durante 1 hora com agitação até que se torna uma solução homogénea (solução basal). </li><li> Para electrospinning, misture o polímero PGD ea solução basal em 04:06 de peso. Nota: concentração PGD tem um big efeito sobre o diâmetro da fibra. 30% -50% por cento PGD é aceitável para a produção de fibras mais do que 5 cm com diâmetros de fibra de aumento. </li><li> Adicionar 0,1% de riboflavina para a solução polimérica e misturar bem. </li></ol> 3. Electrospinning <ol><li> Alimente a solução polimérica em uma seringa de 5 ml de série com um 18 G embotada agulha de aço inoxidável. </li><li> Insira a seringa em uma bomba de seringa. </li><li> Ligue o cabo ligado à terra de uma fonte de alimentação de alta tensão para a placa de metal e o chumbo carregada positivamente para a agulha. </li><li> Ajustar a distância entre a agulha e a tira de folha de alumínio de 15 cm. </li><li> Coloque a bomba de seringa em um ângulo de aproximadamente 15 ° com a horizontal para impedir a agregação das fibras na parte da frente da faixa. </li><li> Ligar a bomba de seringa e ajustar a taxa de fluxo da bomba de 0,6 mL / hora. </li><li> Ligue a fonte de alimentação de alta tensão e ajustar a tensão de operação de 14,6 kV. </li></ol> 4.Processamento de fibras <ol><li> Após a recolha está completa, expor a esteira de fibra para a luz UV, durante 60 minutos para a ligação cruzada. </li><li> Transferir a esteira de fibras a partir da tira de folha de alumínio de uma placa de Petri de 100 milímetros, e expô-la à luz UV durante mais 20 min para a esterilização. </li><li> Em uma cabine de segurança biológica, cortar a manta de fibra em peças redondas do mesmo tamanho com uma lâmina de bisturi e colocar os pedaços em uma placa de 24 poços. </li><li> Para o tratamento das células de pré-sementeira, imergir amostras de fibras em 1 ml de tampão fosfato salino (PBS) e incuba-se a 37 ° C durante a noite. </li><li> No dia seguinte, cuidadosamente aspirado PBS, adicionar 1 ml de meio de diferenciação (DMEM/F12, N2, e FGF2) (ver receita na tabela Materiais) a cada poço e incuba-se a 37 ° C durante 3 hr. </li><li> Meio de diferenciação aspirado cuidadosamente, adicionar 0,2 mL de matrigel a cada amostra de fibra e incubar a 37 ° C durante 30 min. Nota: A laminina também pode ser utilizado para o revestimento de fibra. Adicionar 0,2 mL de 20 ug / ml de lamininapara a fibra e incubar à temperatura ambiente durante 3 hr. </li><li> Com cuidado, retire o excesso de matrigel de cada poço. Lavar com 2 ml de meio de diferenciação de uma vez. Nota: As amostras de fibras estão prontos para a cultura de células. </li></ol> 5. Sementeira celular em Fibras <ol><li> Adicionar 1 ml de Accutase para o prato de cultura de células MES e incubar durante 10 min a 37 ° C. </li><li> Após 10 min, as células MES são separadas do prato de cultura. Adicionar 4 ml de meio de diferenciação para a placa. Recolher as células MES flutuantes em um tubo de 15 ml e as células para cima e para baixo de pipeta para quebrar colónias (cerca de 15x). </li><li> Centrifugar a 400 xg durante 5 minutos e re-suspender as células em 4 ml de meio de diferenciação. </li><li> Contar as células usando um hemocitômetro. Transferir 200 ul da suspensão de células para um tubo de 15 ml e diluir 10x com meio de diferenciação. Transferir 15 uL da suspensão de células diluída a uma câmara na hemocitómetro com uma lamela no lugar. Contaras células no quadrado do centro a 1 mm e as quatro esquinas do hemocitómetro sob o microscópio. Nota: celular por ml = a contagem média por metro quadrado x fator de diluição x 10 4 </li><li> Colocar aproximadamente 5 x 10 4 células MES em cada poço. Gota lentamente a suspensão de células para o meio das amostras de fibras, em vez de correr para fora do lado do poço, para evitar que a solução de se drenar o tapete de fibra. </li><li> Adicionar 1 ml de meio de diferenciação em cada poço, e manter a placa numa incubadora a 37 ° C e 5% de CO2 para permitir que as células de fixação, o crescimento e diferenciação. </li><li> Aspirar o meio antigo em cada poço e substitua com 1 ml de meio de diferenciação fresco todos os dias. </li></ol> 6. Viabilidade celular <ol><li> Aspirar o meio antigo em cada poço. </li><li> Misture 1/10 de volume de Resazurina reagente de fluorescência com o meio de cultura e adicionar 1 ml para cada poço. </li><li> IncubComeram a 37 ° C e 5% de CO 2 durante 4 h, protegido da luz directa. </li><li> Depois de 4 horas, transferir 100 mL 3x do reagente de cada poço de uma placa de 96 poços, em seguida, as amostras estão prontas para ser medido em um espectrofotômetro de fluorescência usando configurações de filtro de 560EX nm/590EM. </li></ol> 7. PCR em Tempo Real <ol><li> Após 14 dias de cultura, adicionar tampão de lise às amostras e isolar o RNA total a partir das células nas amostras de fibras. </li><li> Use 4 ul de ARN total, para sintetizar ADNc em 20 uL de escalas de reacção de transcrição reversa. </li><li> Preparar a mistura de reacção de PCR em cada um dos tubos óptica: 10 ul Master Mix (2x), 0,2 ul de corante, 8 mL de água livre de nuclease, 1 ul de cDNA, e um iniciador pi (iniciadores utilizados neste estudo estão listados na Tabela 1). </li><li> Configure o programa de PCR: a. 95 ° C 02:20 min, um ciclo de b. 95 ° C 3 seg → 60 ° C 1 min, 40 ciclo c. 95 ° C 15 seg, um ciclo d. 60 ° C 1min, um ciclo de e. 95 ° C 15 seg, 1 ciclo. Escolha forma de C T comparativo para determinar os níveis de expressão gênica relativa. </li><li> Após PCR for concluído, analisar os resultados em tempo real PCR com software StepOne e exportar os resultados para o Excel. </li></ol>

<ol><li>Migneco, F., Huang, Y. -C., Birla, R. K., Hollister, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Poly+%28glycerol-dodecanoate%29%2C+a+biodegradable+polyester+for+medical+devices+and+tissue+engineering+scaffolds%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Poly (glycerol-dodecanoate), a biodegradable polyester for medical devices and tissue engineering scaffolds.</a> Biomaterials. 30, 6479-6484 (2009).</li>
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<li>Ju, Y. M., Choi, J. S., Atala, A., Yoo, J. J., Lee, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bilayered+scaffold+for+engineering+cellularized+blood+vessels%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Bilayered scaffold for engineering cellularized blood vessels.</a> Biomaterials. 31, 4313-4321 (2010).</li>
<li>McCullen, S. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+situ+collagen+polymerization+of+layered+cell-seeded+electrospun+scaffolds+for+bone+tissue+engineering+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering+Part+C%3A+Methods%22%5BJournal%5D)">In situ collagen polymerization of layered cell-seeded electrospun scaffolds for bone tissue engineering applications.</a> Tissue Engineering Part C: Methods. 16, 1095-1105 (2010).</li>
</ol>

Não há conflitos de interesse declarados.

As limitações de coletores simples ou as complexidades de colecionadores que são usados ​​atualmente para eletrofiação aumentar a restrição de se obter o comprimento desejado e tamanho do tapete de fibra para algumas aplicações rotativas. Além disso, a transferência de fibras do coletor de terra para o prato de cultura ou outros substratos é um desafio 5. Neste relatório, um coletor recém-concebido, feito, simplesmente anexando uma tira de folha de alumínio para o coletor de castigo, foi capaz de obter grande...

Eletrofiação é um dos métodos de processamento eficazes para produzir suportes de fibra de tamanho micro-a-nanómetro. O princípio básico de electrospinning envolve um cone de Taylor de uma solução que é realizada ao nível do orifício de uma agulha através da aplicação de alta tensão entre a ponta da agulha e de um colector ligado à terra. Quando a repulsão electrostática na solução vence a tensão superficial, um jacto de fluido carregado é ejectado para fora da ponta da agulha, se desloca através do ar com a evaporação do solvente, e é, finalmente depositada sobre o colector ligado à terra. A bomba de seringa fornece um fluxo contínuo de uma solução que emerge da fieira e, portanto, múltiplas cópias das fibras electrospun pode ser fabricado dentro de um curto período de tempo. Durante o curso de deixar a fieira de chegar ao colector, o jacto carregada sofrer estiramento e batimento de acordo com uma série de parâmetros, que incluem a viscosidade e tensão superficial da solução polimérica, os electrostatic força na solução, ea interação do campo elétrico externo, etc 2. No processo de electrospinning, um colector serve como um substrato condutor em que as fibras de micro-a-nanométrica pode ser depositado. Neste estudo, um novo tipo de colector de fibras foi concebido para obter mantas de fibra com a dimensão desejada (comprimento x largura). Tradicionalmente, a folha de alumínio é usado como um colector, mas é difícil de transferir as fibras a partir da superfície plana a um outro substrato. A dificuldade de colher um tapete de fibra intacta de um colecionador tradicional deveu-se principalmente ao fato de que as fibras electrospun anexar fortemente à superfície do coletor. Portanto, nós modificamos o coletor dobrando um pedaço de papel alumínio em uma tira retangular e anexá-lo perpendicular a uma placa de metal plana. As fibras são electrospun esticado em toda a área entre a ponta da tira e a placa de metal, que pode ser facilmente transferida para outro substrate. Interesse em polímeros elastoméricos termicamente reticuladas está crescendo rapidamente por causa do trabalho pioneiro do grupo de Robert Langer, que introduziu poli (sebaçato glicerol) (PGS), um poliéster que é análoga à borracha vulcanizada, em 2002 3. Semelhante ao PGS, temos desenvolvido com sucesso poli (glicerol-dodecanoato) (PGD) por condensação térmica do glicerol e ácido dodecanodioíco e demonstrou a sua propriedade única memória de forma 1. Ao contrário rígida poli materiais sintéticos (hidroxil-butirato) ou poli (L-lactido) (módulos de Young de 250 MPa e 660 MPa, respectivamente), o PGD exibe propriedade elastomérica como a borracha, com um módulo de Young de 1,08 MPa, quando a temperatura estiver acima de 37 ° C, que é um jogo perto do nervo periférico in-situ (0,45 MPa). Além disso, o PGD é biodegradável e o tempo de degradação, podem ser afinadas variando a proporção de glicerol e ácido dodecanóico. Ácido dodecanodioíco é um sub de doze carbonoposição com dois grupos carboxílicos terminais, HOOC (CH2) 10 COOH. Ácidos dicarboxílicos pares numeradas como ácido sebácico e o ácido dodecanodióico pode ser metabolizado a acetil-CoA e introduzir o ácido tricarboxílico (TCA) / ciclo (ácido cítrico). O produto metabólico de ácidos dicarboxílicos, succinil-CoA, é um precursor gluconeogenetic e intermédia do ciclo de TCA 4. Assim, alguns estudos sugerem que poderiam ser utilizados como um substrato de combustível alternativo para nutrição entérica e parentérica, especialmente nas condições patológicas. Além disso, o PGD exibe memória de forma única por causa da sua temperatura de transição de vidro é de 31 ° C, portanto, apresenta propriedades mecânicas diferentes, à temperatura ambiente e à temperatura do corpo. Em suma, a PGD é biodegradável, biocompatível, exibindo propriedades elásticas únicas com propriedades mecânicas semelhantes aos tecidos nervosos; por conseguinte, é um material adequado para aplicações de engenharia de tecidos nervosos. Neste protocolo, o electrospunfibras longas que abrangem uma grande área de depósito foram fabricados através do coletor recém-projetado do PGD. Os andaimes de fibras pode suportar o crescimento e diferenciação de células-tronco pluripotentes.

<table><tbody><tr><td>Glicerol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G7757</td><td></td></tr><tr><td>Ácido dodecanodióico</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D1009</td><td></td></tr><tr><td>Gelatina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D1890</td><td></td></tr><tr><td>Poli (óxido de etileno) (PEO)</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>182028</td><td></td></tr><tr><td>Riboflavina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>132350250</td><td>0,10%</td></tr> <tr><td>Células-tronco</td> <td>embrionárias de camundongoGlobalStem</td><td>GSC-5002</td><td></td></tr><tr><td>Matrigel</td><td>Becton Dickinson</td><td>356234</td><td></td></tr><tr><td>DMEM/F12</td><td>Thermo Scientific</td><td>SH30272.02</td><td></td></tr><tr><td>N2 suplemento</td><td>Invitrogen</td><td>17502048</td><td>1%</td></tr><tr><td>FGF2</td><td>Stemgent</td><td>03-0002</td><td>10 ng/ml</td></tr><tr><td>Accutase</td><td>Invitrogen</td><td>A11105-01</td><td></td></tr><tr><td>Solução salina tamponada com fosfato (PBS)</td><td>Invitrogen</td><td>10010-031</td><td></td></tr><tr><td>Resazurin fluorescência corante</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>62758-13-8</td><td></td></tr><tr><td>SV Sistema de Isolamento Total de RNA</td><td>Promega</td><td>Z3100</td><td></td></tr><tr><td>GoScript Sistema de Transcrição Reversa</td><td>Promega</td><td>A5000</td><td></td></tr><tr><td>GoTaq qPCR Master Mix</td><td>Promega</td><td>A6001</td><td></td></tr><tr><td>Bomba de seringa&nbsp;</td>Fonte de energia de alta tensão <td>Fisher scientific</td><td>14-831-200</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Spellman High Voltage Electronics Corporation</td><td></td><td>SL30</td></tr><tr><td>Luz UV</td><td>Philips</td><td>308643</td><td>15W/G15T8</td></tr><tr><td>Synergy HT Leitor de Microplacas Multimodo</td><td>BioTek</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Perkin Elmer GeneAmp PCR System 9600</td><td>Perkin Elmer</td><td>8488</td><td></td></tr><tr><td>StepOne Sistema de PCR em Tempo Real</td><td>Applied Biosystems</td><td>4376357</td><td></td></tr></tbody></table>

electrospun fibrosa andaimes de poli (glicerol-dodecanedioate) para engenharia neural tecidos de rato as células estaminais embrionárias

Electrospun Fibrous Scaffolds of Poly(glycerol-dodecanedioate) for Engineering Neural Tissues From Mouse Embryonic Stem Cells

Para aplicações de engenharia de tecidos, a preparação de scaffolds biodegradáveis ​​e biocompatíveis é a tarefa mais desejável, mas desafiador. Entre os vários métodos de fabricação, electrospinning é o mais atractivo, devido à sua simplicidade e versatilidade. Além disso, nanofibras electrospun imitar o tamanho da matriz extracelular natural, assegurando um apoio adicional para a sobrevivência e crescimento das células. Este estudo mostrou a viabilidade da fabricação de fibras longas, abrangendo uma área maior depósito de um polímero biodegradável e biocompatível romance chamado poli (glicerol-dodecanoato) (PGD) 1, usando um coletor recém-projetado para electrospinning. PGD ​​exibe propriedades elásticas originais com propriedades mecânicas semelhantes às dos tecidos nervosos, assim, ele é adequado para aplicações de engenharia de tecidos neurais. A síntese e fabricação set-up para fazer materiais fibrosos andaimes era simples, altamente reprodutível e barato. Em biocompatibilidadeteste, as células derivadas de células estaminais embrionárias de ratinho podia aderir e crescer nas fibras PGD electrospun. Em resumo, este protocolo fornecido um método de fabricação versátil para fabricação de fibras PGD electrospun para suportar o crescimento de células da linhagem neurais derivadas do rato de células-tronco embrionárias.

Os principais componentes do electrospinning são mostrados na Figura 1. Uma esteira de fibras de tamanho grande foi tipicamente obtida através da tira perpendicularmente ligada folha de alumínio e uma chapa de metal plana. Figura 2 mostra o desenho do colector e o tapete de fibra de electrospinning. A largura e o comprimento pode ser ajustado para diferentes aplicações. O comprimento da fibra feito com polímeros de PGD e mistura solução basal é de até 10 cm. A morfologia das fibras elec...

Síntese e fabricação de fibras longas electrospun abrangendo uma área maior depósito através de um coletor recém-concebido a partir de um polímero biodegradável romance chamado poli (glicerol-dodecanoato) (PGD) foi relatado. As fibras eram capazes de suportar o crescimento de células derivadas de células-tronco pluripotentes.

Electrospun fibrosa Andaimes de Poli (glicerol-dodecanedioate) para Engenharia Neural tecidos de rato as células estaminais embrionárias

For tissue engineering applications, the preparation of biodegradable and biocompatible scaffolds is the most desirable but challenging task. &#160;Among ...

Este procedimento fabrica fibras longas fiadas por eletros a partir de um novo polímero biodegradável chamado poliglicerol Dote Cano oito. Primeiro configure o coletor recém-projetado e prepare a solução polimérica para eletrofiação, usando uma seringa e uma bomba, entregue a solução ao coletor. Em seguida, transfira a esteira de fibra resultante para uma placa de cultura para reticulação.Em seguida, semeie células-tronco embrionárias de camundongos nas fibras cortadas. Em última análise, os resultados podem demonstrar que as células-tronco embrionárias de camundongos podem sobreviver e se diferenciar em células neurais nos andaimes de fibra. No vídeo de hoje, mostramos como preparar o biomaterial da fabricação de células syn e, finalmente, usar essas fibras eletro span para cultura de células.Especialmente quando combinamos com a célula derivada da célula poli e da coragem. Eles podem ter uma aplicação muito importante no futuro para a entrega celular e toda a fabricação de um tecido funcional. Tecido invisível hoje que ela vai demonstrar um procedimento horrível para você.Ela é a melhor coisa do meu laboratório. Corte o papel alumínio em um pedaço retangular. Dobre a peça retangular em uma tira retangular e prenda-a perpendicularmente a uma placa de metal plana com fita adesiva.O comprimento da tira depende do tamanho da esteira de fibra necessária para a solução polimérica. Glicerol misto e ácido diic decano em uma proporção de um para um molar a 120 graus Celsius por 100 horas. Para obter um poliglicerol, faça o polímero decanóico dissolver o óxido de polietileno e a gelatina em 65% de etanol com uma proporção de peso de 1,5 a três para 95,5 em um tubo de 15 mililitros.Aperte a tampa e aqueça a mistura no forno a 60 graus Celsius por uma hora, mexendo a cada 15 minutos até que a solução basal fique homogênea. Para eletrofiação, misture o polímero PGD e a solução basal. Em uma proporção de peso de quatro a seis, adicione 0,1% de riboflavina à mistura e misture bem.Alimente a solução polimérica em uma seringa padrão de cinco mililitros com uma agulha de aço inoxidável embotada de calibre 18. Em seguida, insira a seringa em uma bomba de seringa. Conecte o cabo aterrado de um alto voltage fonte de alimentação à placa de metal e o cabo carregado positivamente à agulha.Além disso, ajuste a distância entre a agulha e a folha de alumínio. Tira até 15 centímetros. Agora coloque a bomba de seringa em um ângulo de cerca de 15 graus com a horizontal para evitar a agregação das fibras na frente da tira.Ligue a bomba de seringa e ajuste a vazão da bomba para 0.6 mililitros por hora. Ligue o alto volumetage fonte de alimentação e defina o volume operacionaltage para 14.6 quilovolts. Após a conclusão da coleta, exponha o tapete de fibra à luz ultravioleta por 60 minutos de reticulação.Transfira o tapete de fibra da tira de papel alumínio para uma placa de Petri de 100 milímetros. Corte o tapete de fibra em pedaços redondos do mesmo tamanho com a lâmina cirúrgica e coloque os pedaços em uma placa de 24 poços. Em seguida, exponha a placa à luz ultravioleta por mais 20 minutos de esterilização para o tratamento prévio da célula.Mergulhe as amostras de fibra em um mililitro de solução salina tamponada com fosfato e incube a 37 graus Celsius durante a noite no dia seguinte. Aspire o PBS com cuidado. Adicione um mililitro de meio de diferenciação a cada poço e incube a 37 graus Celsius por três horas.Depois de aspirar o meio de diferenciação, adicione cuidadosamente 0,2 mililitros de gel matri a cada amostra de fibra e incube a 37 graus Celsius por 30 minutos. Remova cuidadosamente o excesso de gel matri de cada um. Enxágue bem uma vez com dois mililitros de meio de diferenciação.Adicione um mililitro de tase à placa de cultura de células-tronco embrionárias de camundongo após 10 minutos, a 37 graus Celsius. Quando as células MES estiverem separadas, adicione quatro mililitros de meio de diferenciação. Recolher as células MES flutuantes para uma centrífuga de tubo de 15 mililitros a 400 Gs durante cinco minutos.Ressuspenda as células peletizadas em quatro mililitros de diferenciação. Média. Transfira 200 microlitros da suspensão celular para um tubo de 15 mililitros e adicione 10 volumes de diferenciação. Média. Transfira 15 microlitros da suspensão de células diluídas para uma câmara no hemocitômetro.Com uma lamínula no lugar, conte as células no quadrado central de um milímetro e nos quatro quadrados de canto do hemocitômetro. Agora caia cinco vezes 10 para o quarto. Células ES de camundongo lentamente no meio das amostras de fibra.Adicione um mililitro de meio de diferenciação a cada poço e cultive a 37 graus Celsius e 5% de dióxido de carbono para fixação celular. Crescimento e diferenciação. Reabasteça o mililitro de meio de diferenciação a cada dois dias.Para medir a viabilidade celular, aspire o meio antigo de cada poço e adicione um mililitro de um em cada 10 reagentes de diluição e fluorescência em cultura. Incubar médio a 37 graus Celsius e 5% de dióxido de carbono por quatro horas protegido da luz direta. Em seguida, transferir amostras triplicadas de 100 microlitros de cada poço para uma placa de 96 poços e medir imagens de microscopia eletrônica de varredura de fluorescência foram usadas para avaliar a morfologia das fibras eletrofiadas.Os diâmetros dessas fibras feitas de concentração de 40% PGD estão na faixa de micrômetros aqui. Células-tronco embrionárias diferenciadas de camundongo foram cultivadas por três dias nas fibras e a microscopia confocal foi usada para visualizar a proteína fluorescente verde superexpressa. O aumento do número de células fluorescentes verdes no sexto dia indica que os andaimes de fibra podem suportar tanto a adesão celular quanto a proliferação celular.As medições de Zu e fluorescência demonstraram que o revestimento com matrigel e laminina resultou em viabilidade celular equivalente e proliferação relativamente maior. A potência da gripe e os marcadores de células neurais foram quantificados por PCR em tempo real no primeiro dia. A maioria das células MES cultivadas em fibras expressou os marcadores de pluripotência.OUTUBRO quatro nano e SOX dois. Um subconjunto menor expressou os marcadores de células-tronco neurais PAC seis e neston. Após duas semanas em cultura, houve aumento dos níveis de expressão de alguns marcadores de células neurais, como o mapa dois e DCX, bem como o marcador oligodendrócito oligo um e o marcador de astrócitos.GFAP Uma vez dominado. Essa técnica pode ser feita em duas a três horas se for executada corretamente.

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Bioengineering

Bioengenharia

O processo de eletrofiação polímeros para engenharia de tecidos e de cultura de células é abordada neste artigo. Especificamente, o electrospinning de macromers fotorreativas com capacidades de processamento adicional de photopatterning e multi-polímero eletrofiação é descrito.

Eletrofiação Andaimes Polymer fibrosos para Engenharia de Tecidos e Cultura de Células

Fibras alinhadas electrospun direcionar o crescimento de neurônios in vitro e são um componente potencial de andaimes regeneração nervosa. Nós descrevemos um procedimento para elaborar substratos fibra electrospun e da cultura livre de soro-sensorial primário de ratos E15 (DRG) e neurônios motores. Visualização de neurônios por imunocitoquímica também está incluído.

A Cultura da Motor Primário e neurônios sensoriais no Media Definidas em electrospun Poly-L-ácido lático nanofibras Andaimes

Isso detalhes o trabalho de preparação de fibrina scaffolds 3D para cultura e diferenciação das células-tronco plutipotent. Tais suportes podem ser usados ​​para examinar os efeitos de vários compostos biológicos sobre o comportamento das células estaminais, bem como modificada para conter sistemas de entrega de drogas.

Preparação de fibrina Andaimes 3D para aplicações de cultura de células-tronco

Aqui nós descrevemos o uso de uma auto-montagem 3-dimensional andaime para a cultura humana células progenitoras neurais. Nós apresentamos um protocolo para liberar as células da scaffolds a serem analisados ​​posteriormente por exemplo, por citometria de fluxo. Este protocolo pode ser adaptado para outros tipos de células para realizar estudos detalhados mecanicamente.

Cultivo de células progenitoras neurais em um hidrogel Peptide 3-dimensional de auto-montagem

Electrospun andaimes podem ser processados ​​de pós-produção para aplicações de engenharia de tecidos. Aqui descrevemos métodos para girar andaimes complexos (por fiação consecutivos), para fazer andaimes mais espessa (por camadas de multi-uso de calor ou vapor de recozimento), para atingir a esterilidade (produção asséptica ou pós-produção de esterilização) e adequadas para atingir as propriedades biomecânicas.

Processamento de pós-produção de Fibras electrospun para Engenharia de Tecidos

Este protocolo combina eletrofiação e microesferas para desenvolver andaimes de engenharia de tecidos para direcionar os neurônios. O fator de crescimento nervoso foi encapsulado em microesferas de PLGA e eletrofiado em arcabouços fibrosos de ácido hialurônico (HA).  A bioatividade da proteína foi testada semeando os scaffolds com gânglios primários da raiz dorsal do pintinho e cultivando por 4-6 dias.

Electrospinning Fator de Crescimento Releasing Microesferas em fibrosa Andaimes

Aqui, apresentamos um protocolo para fabricar andaimes electrospun nanofibras com organização gradated de fibras e explorar suas aplicações na regulação da morfologia celular / orientação. Gradientes no que diz respeito às propriedades físicas e químicas dos scaffolds nanofibras oferecer uma ampla variedade de aplicações na área biomédica.

Electrospun nanofibras Andaimes com gradações de Organização Fiber

A percepção das ações complexas do cérebro requer ferramentas avançadas de pesquisa. Aqui, demonstramos um novo modelo de engenharia 3D baseado em colágeno de seda de tecido neural semelhante à arquitetura do cérebro. O modelo pode ser usado para estudar a montagem da rede neuronal, orientação axonal, interações célula-célula e atividade elétrica.

Baseada em Silk-colágeno Engineered 3D Model of Tissue polarizada Neural

Neste documento, apresentamos um protocolo para a cultura 3D do rato as células da glia derivado do cérebro, incluindo astrócitos, oligodendrócitos e micróglia. Vamos demonstrar a cultura de células primárias, síntese de hidrogel de ácido hialurônico methacrylated (HAMA), encapsulamento HAMAphoto-polimerização e celular e amostra de processamento de imagem microscópica confocal e varredura de elétrons.

Melhorado o hidrogel 3D culturas de células gliais primárias para In Vitro modelagem de Neuroinflammation

Este protocolo descreve a fabricação de um sistema de cultura de células para permitir a propagação de células-tronco em um andaime de polímero condutor para estimulação elétrica em vitro e subsequentes na vivo implantação da célula-tronco-semeado andaime usando um técnica minimamente invasiva.

Eletricamente condutivo Andaime modular e entregar as células-tronco

Aprenda a fabricar fibras eletrofiadas de poli(glicerol-dodecanodioato) para engenharia de tecidos neurais usando células-tronco embrionárias de rato. Este método demonstra a viabilidade de suporte e diferenciação celular.

Electrospun fibrosa Andaimes de Poli (glicerol-dodecanedioate) para Engenharia Neural tecidos de rato as células estaminais embrionárias (Vídeo) | JoVE Journal

Electrospun fibrosa Andaimes de Poli (glicerol-dodecanedioate) para Engenharia Neural tecidos de rato as células estaminais embrionárias

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