17 de agosto de 2014
A doença de Parkinson é uma desordem neurodegenerativa que resulta da degeneração dos neurónios dopaminérgicos no sistema nervoso central, causando defeitos de locomoção. Modelos rotenona doença de Parkinson em Drosophila. Este documento descreve dois ensaios que caracterizam as deficiências de locomoção tanto espontâneas e induzidas por assustar causadas por rotenona.
O objetivo geral do experimento a seguir é determinar a locomoção espontânea induzida por sobressalto e de longo prazo em um modelo de drosófila da doença de Parkinson induzida por rotenona, isso é alcançado criando drosófila em alimentos suplementados com rotenona para induzir o fenótipo. Como segunda etapa, as moscas são submetidas ao ensaio de resposta de sobressalto e a um aparelho de frasco duplo e ensaio de locomoção espontânea de longo prazo. Em um monitor de atividade de drosófila, os resultados mostram que a exposição à rotenona causa defeitos de locomoção em drosófila com base na quantificação do sobressalto e locomoção espontânea de longo prazo.
Esses métodos podem ajudar a responder a questões-chave no campo da drosófila, modelos de distúrbios neurodegenerativos e de locomoção, como defeitos na locomoção induzida por sobressalto e locomoção espontânea de longo prazo. Para começar, adicione 1,5 gramas de meio drosófilo instantâneo. Em um frasco padrão para moscas, constitua o meio com cinco mililitros de água deionizada contendo a dose apropriada de rotenona.
Em seguida, sedam, oito a 12 moscas machos com idade de um a três dias usando dióxido de carbono e as transportam para frascos contendo a droga. Os alimentos suplementados permitem que as moscas se recuperem da sedação por 20 minutos com o frasco na posição horizontal. Em seguida, coloque o frasco na vertical em uma incubadora escura clara de 12 horas a 25 graus Celsius pelo restante do experimento.
Em seguida, inverta um frasco de mosca padrão em cima de outro frasco e sele a costura com fita adesiva para criar um aparelho de frasco duplo. Em seguida, divida o frasco duplo em três seções iguais de 6,33 centímetros, marcando círculos ao redor dos frascos com um marcador permanente. Após três dias de exposição ao medicamento, transfira as moscas para o aparelho de frasco duplo.
Substituir a fita sobre a costura permite que as moscas se aclimatem ao novo ambiente por 15 minutos. Em seguida, coloque os frascos em um fundo branco e configure a câmera digital. Certifique-se de que todo o aparelho esteja visível em um único porta-retratos e que o aparelho de frasco duplo e o temporizador estejam à vista e que todas as moscas estejam focadas.
Marque a localização da câmera e do frasco para manter quadros consistentes entre os ensaios, exibindo claramente o número do ensaio e o tratamento medicamentoso na visualização da câmera. Em seguida, bata firmemente o aparelho de frasco duplo contra a bancada três vezes e certifique-se de que todas as moscas caiam no fundo do frasco e inicie o cronômetro imediatamente. Tire uma foto do aparelho a cada cinco segundos por um minuto.
Em seguida, permita que as moscas se recuperem sem serem perturbadas por um minuto. Repita o ensaio mais duas vezes com um minuto de recuperação entre cada tentativa. Revise as fotos e registre o número de moscas em cada seção ao longo do tempo para fazer os cálculos reconstituírem três gramas de oph instantâneo, um meio com 15 mililitros de água deionizada e a dose apropriada de rotenona.
Após cinco minutos, coloque cuidadosamente os tubos verticalmente em frascos transparentes e carregue o alimento firme com um centímetro de altura girando o tubo. Em seguida, empurre suavemente a tampa plástica na extremidade do tubo, evitando a criação de bolhas de ar Sedar. Moscas machos de um dia com dióxido de carbono e inserem cuidadosamente uma mosca em cada tubo com um pincel.
Em seguida, tampe a extremidade do tubo com uma pequena bola de algodão. Permita que as moscas se recuperem do dióxido de carbono com os tubos na posição horizontal por 15 minutos e certifique-se de que todas as moscas estejam vivas e ativas. Insira os tubos no monitor de atividade de drosófila ou DAM e verifique se todos os tubos estão na mesma posição em relação ao DAM.
Coloque o DAM em uma incubadora escura clara de 12 horas a 25 graus Celsius. Em seguida, conecte o DAM ao sistema de coleta de dados. Em seguida, abra o software DAM em preferências.
Selecione um comprimento de compartimento de 10 minutos para iniciar a coleta de dados e permitir que o programa colete dados por sete dias. Em seguida, abra o programa de verificação de arquivos DAM e acesse os dados do monitor clicando em selecionar dados de entrada. Em seguida, selecione o intervalo de monitor apropriado e defina o comprimento do compartimento para intervalos de 10 minutos.
Em seguida, no tipo de arquivo de saída, escolha os arquivos de canal e deixe todas as outras opções em seus padrões. Em seguida, clique em digitalizar dados e salve os arquivos em uma pasta designada. Por fim, importe dados para o software de análise de dados circadianos para obter contagens por minuto.
Após três dias de exposição a diferentes dosagens de moscas de cantão do tipo selvagem roone expostas a doses aumentadas, mostraram uma deficiência na resposta de sobressalto. Uma porcentagem menor de moscas estava na seção superior e uma porcentagem maior na seção inferior do aparelho após 30 segundos, indicando uma deficiência na resposta saral, uma tendência semelhante foi observada para moscas no ensaio de locomoção espontânea. As contagens por minuto foram medidas no monitor de atividade de drosófila ou DAM.
No quarto dia após a exposição, as moscas expostas a 250 micromolares e 500 micromolares de rotenona exibem uma redução significativa nas contagens por minuto. Esses ensaios podem ser convenientemente adaptados para caracterizar defeitos de locomoção em outros modelos esofágicos de doença e eficácia de agentes terapêuticos.
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Este estudo investiga deficiências na locomoção em um modelo de Drosophila da doença de Parkinson induzida por rotenona. A pesquisa concentra-se tanto na locomoção espontânea quanto na induzida por estímulo súbito, fornecendo insights sobre distúrbios neurodegenerativos.
Este estudo fornece uma abordagem escalonável e de alto rendimento para quantificar déficits locomotores em um modelo de Drosophila da doença de Parkinson, permitindo a validação precoce de alvos e a redução de riscos mecanicistas para terapêuticas neurodegenerativas. Ao capturar fenótipos de movimento espontâneos e induzidos por estímulo súbito, os ensaios oferecem confiança preditiva em campanhas de triagem fenotípica e modulação de vias. A metodologia oferece continuidade translacional desde a descoberta até a avaliação pré-clínica, facilitando a priorização ajustada ao risco de compostos que afetam a integridade dos neurônios dopaminérgicos e a função mitocondrial.
O método integra-se aos fluxos de trabalho de descoberta inicial ao estabelecer linhas de base locomotoras antes da triagem de compostos e prossegue até a otimização de compostos líderes para confirmação do mecanismo de ação.