17 de agosto de 2014
A doença de Parkinson é uma desordem neurodegenerativa que resulta da degeneração dos neurónios dopaminérgicos no sistema nervoso central, causando defeitos de locomoção. Modelos rotenona doença de Parkinson em Drosophila. Este documento descreve dois ensaios que caracterizam as deficiências de locomoção tanto espontâneas e induzidas por assustar causadas por rotenona.
O objetivo geral do experimento a seguir é determinar a locomoção induzida por estímulo sonoro e a locomoção espontânea de longo prazo em um modelo de doença de Parkinson induzido por rotenona em drosófila, o que é alcançado criando drosófilas em alimento suplementado com rotenona para induzir o fenótipo. Como segundo passo, as moscas são submetidas ao ensaio de resposta ao susto e a um aparato de dois frascos, bem como ao ensaio de locomoção espontânea de longo prazo. Em um monitor de atividade de drosófila, os resultados mostram que a exposição à rotenona causa defeitos na locomoção em drosófila com base na quantificação da resposta ao susto e da locomoção espontânea de longo prazo.
Esses métodos podem ajudar a responder perguntas fundamentais na área de drosófila, modelos de distúrbios neurodegenerativos e de locomoção, como defeitos na locomoção induzida por estímulo súbito e locomoção espontânea de longo prazo. Para começar, adicione 1,5 grama de meio instantâneo para drosófila. Em um frasco padrão para moscas, prepare o meio com cinco mililitros de água desionizada contendo a dose apropriada de rotenona.
A seguir, sede de oito a 12 moscas machos com idade entre um e três dias usando dióxido de carbono e transfira-as para frascos contendo a droga. Deixe a comida suplementada para que as moscas se recuperem da sedação por 20 minutos com o frasco na posição horizontal. Em seguida, coloque o frasco na posição vertical em um incubador com ciclo de 12 horas de luz e 12 horas de escuro a 25 graus Celsius pelo restante do experimento.
Em seguida, inverta um frasco padrão para moscas sobre outro frasco e feche a junção com fita adesiva para criar um aparato com dois frascos. Em seguida, divida o aparato duplo em três seções iguais de 6,33 centímetros, marcando círculos ao redor dos frascos com uma caneta permanente. Após três dias de exposição à droga, transfira as moscas para o aparato com dois frascos.
Substitua a fita sobre a emenda para permitir que as moscas se aclimatizem ao novo ambiente por 15 minutos. Em seguida, coloque os frascos sobre um fundo branco e posicione a câmera digital. Certifique-se de que todo o aparato seja visível em um único quadro de imagem e que o aparato com os dois frascos e o cronômetro estejam à vista, com todas as moscas em foco.
Marque a posição da câmera e do frasco para manter quadros consistentes entre os ensaios e exiba claramente o número do ensaio e o tratamento com o fármaco na imagem da câmera. Em seguida, bata firmemente o aparato com os dois frascos contra a bancada três vezes, certificando-se de que todas as moscas caiam para o fundo do frasco, e inicie imediatamente o cronômetro. Tire uma foto do aparato a cada cinco segundos durante um minuto.
Em seguida, deixe as moscas recuperarem-se sem perturbação por um minuto. Repita o ensaio mais duas vezes com intervalos de recuperação de um minuto entre cada ensaio. Revise as imagens e registre o número de moscas em cada seção ao longo do tempo para realizar os cálculos: reconstitua três gramas do meio instantâneo oph com 15 mililitros de água deionizada e a dose apropriada de rotenona.
Após cinco minutos, coloque cuidadosamente os tubos verticalmente em frascos transparentes e carregue o alimento firme até uma altura de um centímetro girando o tubo. Em seguida, empurre suavemente a tampa de plástico na extremidade do tubo, evitando a formação de bolhas de ar. Sedar moscas machos de um dia de idade com dióxido de carbono e inserir cuidadosamente uma mosca em cada tubo com um pincel.
Em seguida, tampe a extremidade do tubo com uma pequena bola de algodão. Deixe as moscas se recuperarem do dióxido de carbono com os tubos em posição horizontal por 15 minutos e certifique-se de que todas as moscas estejam vivas e ativas. Insira os tubos no monitor de atividade de drosófila ou DAM e verifique se todos os tubos estão na mesma posição em relação ao DAM.
Coloque o DAM em um incubador com ciclo de 12 horas de luz e escuridão a 25 graus Celsius. Em seguida, conecte o DAM ao sistema de coleta de dados. Depois, abra o software do DAM em preferências.
Selecione um comprimento de bin de 10 minutos para iniciar a coleta de dados e permita que o programa colete dados durante sete dias. Em seguida, abra o programa de análise de arquivo DAM e acesse os dados do monitor clicando em selecionar dados de entrada. Depois, selecione o intervalo do monitor apropriado e defina o comprimento do bin em intervalos de 10 minutos.
Em seguida, no tipo de arquivo de saída, escolha os arquivos de canal e mantenha todas as outras opções nos valores padrão. Depois, clique em escanear dados e salve os arquivos em uma pasta designada. Por fim, importe os dados para um software de análise de dados circadianos para obter as contagens por minuto.
Após três dias de exposição a diferentes dosagens de roone, moscas do tipo selvagem Canton s expostas a dosagens aumentadas apresentaram deficiência na resposta a susto. Um percentual menor de moscas estava na seção superior e um percentual maior na seção inferior do aparelho após 30 segundos, indicativo de uma deficiência na resposta saral; uma tendência semelhante foi observada para as moscas no ensaio de locomoção espontânea. As contagens por minuto foram medidas no monitor de atividade de drosófila ou DAM.
No quarto dia após a exposição, moscas expostas a 250 micromolares e 500 micromolares de rotenona exibem uma redução significativa nas contagens por minuto. Esses ensaios podem ser convenientemente adaptados para caracterizar defeitos na locomoção em outros modelos esofágicos de doenças e na eficácia de agentes terapêuticos.
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Este estudo investiga deficiências na locomoção em um modelo de Drosophila da doença de Parkinson induzida por rotenona. A pesquisa concentra-se tanto na locomoção espontânea quanto na induzida por estímulo súbito, fornecendo insights sobre distúrbios neurodegenerativos.
Este estudo fornece uma abordagem escalonável e de alto rendimento para quantificar déficits locomotores em um modelo de Drosophila da doença de Parkinson, permitindo a validação precoce de alvos e a redução de riscos mecanicistas para terapêuticas neurodegenerativas. Ao capturar fenótipos de movimento espontâneos e induzidos por estímulo súbito, os ensaios oferecem confiança preditiva em campanhas de triagem fenotípica e modulação de vias. A metodologia oferece continuidade translacional desde a descoberta até a avaliação pré-clínica, facilitando a priorização ajustada ao risco de compostos que afetam a integridade dos neurônios dopaminérgicos e a função mitocondrial.
O método integra-se aos fluxos de trabalho de descoberta inicial ao estabelecer linhas de base locomotoras antes da triagem de compostos e prossegue até a otimização de compostos líderes para confirmação do mecanismo de ação.