Name: Coleta e Extração de DNA de saliva para Next Generation Sequencing (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-08-27T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 58 s
Description: Aprenda a extrair DNA genômico de alta qualidade a partir de saliva inteira para genômica. Este método otimizado utiliza lise celular, remoção de RNA e precipitação, sendo adequado para PCR e sequenciamento de nova geração.

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Este trabalho foi financiado por um National Institutes of Health R01 (DC009453 apoio ao CWB).

NOTA: Antes de fornecer amostras de saliva todos os sujeitos deram consentimento informado em conformidade com as diretrizes para o tratamento de seres humanos do Hospital Nacional Infantil. 1. Saliva coleta e armazenamento <ol><li> Antes da coleta de saliva, garantir que a boca do tema é livre de alimentos ou outras substâncias estranhas, tendo o assunto lavar a boca com água e evitar comer ou beber por 30 minutos antes de coletar a amostra. </li><li> Abrir um tubo de centrífuga de 15 ml com 2,5 ml de tampão de estabilização de DNA 2 certificando-se de evitar tocar no interior da tampa ou do tubo, e o sujeito tem cuspir 2,5 ml de saliva na solução-tampão. Nota: Recolha de mais de 2,5 ml de saliva pode levar à degradação da amostra a partir de uma proporção suficiente de amostra para tampão de estabilização do ADN. Coleta de muito pouca saliva irá reduzir os rendimentos esperados do protocolo. Para avaliar volumes da coleção, use os gradientes numeradas no lado de tele tubo. </li><li> Recoloque a tampa e misturar por inversão até que a mistura é homogeneizada. A agitação vigorosa não é necessário. Armazenar as amostras a temperatura ambiente durante o armazenamento a curto prazo ou a 4 ° C para armazenamento a longo prazo (&gt; 3 meses). </li></ol> 2. Preparativos Iniciais e lise celular <ol><li> Antes de iniciar a extração, aqueça um banho de água a 37 ° C, e preparar um balde de gelo. Três tubos de 15 ml de centrífuga cônicos serão necessários para cada amostra extraída. Os três tubos será utilizado para conter o sedimento de células e de proteínas, a final ADNg extraída, e os sobrenadantes de isopropanol e etanol. </li><li> Recuperar amostras de armazenamento e amostras inverta várias vezes em seguida, vortex em velocidade média por 15 segundos. </li><li> Dispense 2,5 ml da amostra num tubo de centrífuga de 15 ml limpo, e adicionar 5 ml de solução de lise celular. Misturar a amostra 50 vezes por inversão, e incubar à temperatura ambiente durante 30 min. </li></ol> Remoção 3 RNA <ol><li> Adicionar 40 ul de ARNase A Solbuição de 100 mg / ml, e incubar a 37 ° C durante 15 min. </li><li> Retirar a amostra a partir da 37 ° C e banho de água fria no gelo por 3 min. <ol><li> Após a incubação com RNase A, aumentar a temperatura do banho de água a 65 ° C durante o passo de rehidratação ADN do protocolo. </li></ol></li></ol> 4. Protein e remoção de lipídeos <ol><li> Adicionam-se 50 ul de proteinase K a solução de 20 mg / mL, misturar várias vezes por inversão, e incubar à temperatura ambiente durante um mínimo de 30 min. Nota: Este é um possível ponto de pausa para o protocolo. Após a adição da solução de proteinase K, a amostra pode ser armazenada a 4 ° C até que a extracção pode ser concluído. O armazenamento a 4 ° C durante até 24 h não foi demonstrado ter um efeito significativo sobre os rendimentos de extracção ou a qualidade do DNA. Armazenamento de longo prazo nesta fase não foi avaliado. </li><li> Adicionar 1,7 ml de solução de precipitação de proteína, vortex vigorosamente durante 20 segundos a alta velocidade, e colocar em gelo durante 10 min. </li&gt; <li> Uma vez que as amostras foram arrefecidas em gelo durante 10 minutos, centrifuga-se durante 10 min a 3000 xg e 4 ° C. As proteínas precipitadas deve formar um sedimento apertado para continuar. Se a pastilha não é apertado ou a solução está ainda turva, as amostras podem ser arrefecida em gelo durante 5 minutos e mais de centrifugação repetida. As amostras devem ser mantidas em gelo para garantir uma bolinha apertado. </li></ol> 5 Isolamento e purificação de ADNg <ol><li> Num tubo de centrífuga de 15 ml limpo, pipeta de 5 ml de isopropanol e 8 ul de solução do glicogénio puro a 20 mg / ml. </li><li> Verter o sobrenadante contendo o ADNg do passo 4.3 para dentro do tubo que contém a solução de isopropanol e do glicogénio, deixando para trás a proteína precipitada. Uma vez que tenha sido adicionado ao sobrenadante, misturar delicadamente a amostra 50 vezes por inversão e centrifuga-se durante 30 min a 3000 xg e 4 ° C. </li><li> Verter o sobrenadante lentamente para um tubo limpo de 15 ml. Após a remoção do sobrenadante, adicionar 1 ml de etanol a 70% paralavar o sedimento por balanço e lentamente movendo-se delicadamente sobre o etanol o sedimento precipitado várias vezes. Reter o etanol no tubo. </li><li> Após a lavagem inicial, centrifugar a amostra durante 1 min a 2000 xg e 20 ° C. Este passo de centrifugação pode ser feito em cada 4 ° C ou 20 ° C. Não houve efeito significativo da temperatura tem sido demonstrado para esta etapa. </li><li> Após a lavagem e centrifugação inicial da pastilha, verter lentamente a lavagem com etanol a partir do tubo e descarte, em seguida, executar uma segunda lavagem, repetindo os passos 5.3 e 5.4. </li><li> Após a remoção do sobrenadante a partir da segunda lavagem, o sedimento de permitir secar ao ar durante 15 min. <ol><li> Se a amostra não estiver completamente seca, o ar seco durante mais 15 min. </li></ol></li></ol> 6. Reidratação de gDNA <ol><li> Uma vez que a amostra tenha secado, adicionar 300 ul de Tris-EDTA para re-hidratar a pastilha seca ADNg. </li><li> Vortex da amostra durante 5 segundos em velocidade média e coloque em um65 ° C num banho de água quente durante 1 hora. </li><li> Retirar as amostras do banho-maria e incubar O / N à temperatura ambiente. NOTA: Todos os produtos e reagentes utilizados estão listados na tabela de materiais, bem como a Tabela 4. </li></ol>

<ol><li>Quinque, D., Kittler, R., Kayser, M., Stoneking, M., Nasidze, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+saliva+as+a+source+of+human+DNA+for+population+and+association+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Evaluation of saliva as a source of human DNA for population and association studies.</a> Analytical Biochemistry. 353, 272-277 (2006).</li>
<li>Min, J. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+mircosatellite+and+SNP+genotyping+success+rates+established+in+a+large+number+of+genomic+DNA+samples+extracted+from+mouth+swabs+and+genotypes%5BTitle%5D)+AND+%22Twin+Research+and+Human+Genetics%22%5BJournal%5D)">High mircosatellite and SNP genotyping success rates established in a large number of genomic DNA samples extracted from mouth swabs and genotypes.</a> Twin Research and Human Genetics. 9, 501-506 (2006).</li>
<li>Dlugos, D. J., Scattergood, T. M., Ferraro, T. N., Berrettinni, W. H., Buono, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recruitment+rates+and+fear+of+phlebotomy+in+pediatric+patients+in+a+genetic+study+of+epilepsy%5BTitle%5D)+AND+%22Epilepsy+%26+Behavior%22%5BJournal%5D)">Recruitment rates and fear of phlebotomy in pediatric patients in a genetic study of epilepsy.</a> Epilepsy & Behavior. 6, 444-446 (2005).</li>
<li>Etter, J. F., Neidhart, E., Bertand, S., Malafosse, A., Bertrand, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Collecting+saliva+by+mail+for+genetic+and+cotinine+analyses+in+participants+recruited+through+the+internet%5BTitle%5D)+AND+%22European+Journal+of+Epidemiology%22%5BJournal%5D)">Collecting saliva by mail for genetic and cotinine analyses in participants recruited through the internet.</a> European Journal of Epidemiology. 20, 833-838 (2005).</li>
<li>Hansen, T. V., Simonsen, M. K., Nielsen, F. C., Hundrup, Y. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Collection+of+blood%2C+saliva%2C+and+buccal+cell+samples+in+a+pilot+study+on+the+danish+nurse+cohort%3A+Comparison+of+the+response+rate+and+quality+of+genomic+DNA%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Epidemiol+Biomarkers+Prev%22%5BJournal%5D)">Collection of blood, saliva, and buccal cell samples in a pilot study on the danish nurse cohort: Comparison of the response rate and quality of genomic DNA.</a> Cancer Epidemiol Biomarkers Prev. 16, 2072-2076 (2007).</li>
<li>Van Schie, R. C. A. A., Wilson, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Saliva%3A+A+convenient+source+of+DNA+for+analysis+of+bi-allelic+polymorphisms+of+fc%CE%B3+receptor+iia+%28cd32%29+and+fc%CE%B3+receptor+iiib+%28cd16%29%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Immunological+Methods%22%5BJournal%5D)">Saliva: A convenient source of DNA for analysis of bi-allelic polymorphisms of fcγ receptor iia (cd32) and fcγ receptor iiib (cd16).</a> Journal of Immunological Methods. 208, 91-101 (1997).</li>
<li>Dawes, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Estimates%2C+from+salivary+analyses%2C+of+the+turnover+time+of+oral+mucosal+epithelium+in+humans+and+the+number+of+bacteria+in+an+edentulous+mouth%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+Oral+Biology%22%5BJournal%5D)">Estimates, from salivary analyses, of the turnover time of oral mucosal epithelium in humans and the number of bacteria in an edentulous mouth.</a> Archives of Oral Biology. 48, 329-336 (2003).</li>
<li>Bahlo, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Saliva-derived+DNA+performs+well+in+large-scale%2C+high-density+single-nucleotide+polymorphism+microarray+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Epidemiol+Biomarkers+Prev%22%5BJournal%5D)">Saliva-derived DNA performs well in large-scale, high-density single-nucleotide polymorphism microarray studies.</a> Cancer Epidemiol Biomarkers Prev. 19, 794-798 (2010).</li>
<li>Hu, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genotyping+performance+between+saliva+and+blood-derived+genomic+dnas+on+the+dmet+array%3A+A+comparison%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Genotyping performance between saliva and blood-derived genomic dnas on the dmet array: A comparison.</a> PLoS ONE. 7 (3), e33968(2012).</li>
<li>Simmons, T. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Increasing+genotype-phenotype+model+determinism%3A+Application+to+bivariate+reading%2Flanguage+traits+and+epistatic+interactions+in+language-impaired+families%5BTitle%5D)+AND+%22Human+Heredity%22%5BJournal%5D)">Increasing genotype-phenotype model determinism: Application to bivariate reading/language traits and epistatic interactions in language-impaired families.</a> Human Heredity. 70, 232-244 (2010).</li>
<li>Zeugin, J. A., Hartley, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ethanol+precipitation+of+DNA%5BTitle%5D)+AND+%22Focus%22%5BJournal%5D)">Ethanol precipitation of DNA.</a> Focus. 7, 1-2 (1985).</li>
<li>Li, H., Durbin, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fast+and+accurate+short+read+alignment+with+Burrows-Wheeler+Transform%5BTitle%5D)+AND+%22Bioinformatics%22%5BJournal%5D)">Fast and accurate short read alignment with Burrows-Wheeler Transform.</a> Bioinformatics. 25, 1754-1760 (2009).</li>
<li>McKenna, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Genome+Analysis+Toolkit%3A+a+MapReduce+framework+for+analyzing+next-generation+DNA+sequencing+data%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Res%22%5BJournal%5D)">The Genome Analysis Toolkit: a MapReduce framework for analyzing next-generation DNA sequencing data.</a> Genome Res. 20, 1297-1303 (2010).</li>
<li>DePristo, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+framework+for+variation+discovery+and+genotyping+using+next-generation+DNA+sequencing+data%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Genetics%22%5BJournal%5D)">A framework for variation discovery and genotyping using next-generation DNA sequencing data.</a> Nature Genetics. 43, 491-498 (2011).</li>
</ol>

Os autores não têm nada a divulgar.

O presente procedimento é um protocolo de extração de DNA otimizado, que melhorou consideravelmente o rendimento de DNA de alto peso molecular em comparação com os métodos convencionais, sem comprometer a qualidade do DNA. O passo crítico com o maior efeito sobre o rendimento mais foi o passo 5.2, que inclui uma etapa de centrifugação durante a precipitação mais etanol do que qualquer protocolo publicado aqui analisados, com exceção de um que não foi amplamente distribuído 11. Nenhuma alteração na qualidade d...

A obtenção de DNA de alta qualidade para estudos genéticos humanos, é essencial no processo de descoberta do gene da doença. Sangue, embora exigindo um procedimento invasivo e também a ser mais caro do que a coleta da saliva, é favorecido para a criação de linhas de células imortalizadas como uma fonte infinita de DNA, ou iPSCs para estudos funcionais e, às vezes DNA do sangue é usado quando as linhas celulares não estão disponíveis. No entanto, a obtenção de sangue requer um flebotomista treinado e sangue tem uma meia-vida mais curta do que a saliva 1. DNA de saliva é mais barata e mais fácil de obter, uma vez que podem ser coletadas e enviadas pelo correio, sem a necessidade de um phlebotomist, aumentando, assim, potenciais piscinas sujeitas bem além da área de abrangência de hospitais e laboratórios 2. Inclusão no estudo pode ser melhorada quando os indivíduos têm a opção de dar uma amostra de saliva em vez de sangue 3, 4. Preocupações sobre a quantidade e qualidade de DNA de saliva pode ter limitado a sua generalizada nose apesar de diversos estudos recentes estudos que comprovem a adequação de toda saliva, com uma média de 4,3 x 10 5 células por mililitro, para testes de DNA ao longo dos mais antigos métodos de cotonetes bucais que não obtiveram uma quantidade significativa de saliva 2, 3, 4, 5, 6. Embora exista uma literatura modesta mostrando a adequação de DNA derivado saliva inteiro para aplicações de genotipagem incluindo métodos baseados em microarrays 8, 9, 10, nenhum estudo examinou sequenciamento de próxima geração (NGS). O objetivo de otimização deste protocolo toda a extração de DNA de saliva era maximizar quantidade e qualidade para aplicações de genética de uma forma rentável que pode ser facilmente implementado em laboratórios com reagentes e consumíveis comuns. Extracção de DNA a partir da saliva requer vários procedimentos: 1) a recolha e armazenamento, 2) lise celular, 3) tratamento com RNase, 4) precipitação de proteínas, 5) precipitação com etanol, 6) de re-hidratação de ADN. A solução de DNA Estabilização tampão, descrito2 anteriormente, funciona adequadamente sem alteração. Nenhuma tentativa foi feita para otimizar o tratamento RNase e etapas de reidratação de DNA. Para cada etapa restante, foram identificadas diversas variáveis ​​que podem afetar o rendimento. Cada variável foi manipulado individualmente e melhoria na produtividade e qualidade foi avaliada estatisticamente. Para as variáveis ​​que foram mostrados para melhorar a produtividade e / ou qualidade do DNA, os valores ótimos foram incluídos no protocolo final.

<table><tbody><tr><td>Tubos de centrífuga de 15 ml</td><td>Fisher</td><td>12-565-268</td><td></td></tr><tr><td>Solução de lise celular</td><td>Qiagen</td><td>158908</td><td></td></tr><tr><td>Proteinase K</td><td>Sigma</td><td>P6556</td><td></td></tr><tr><td>Solução de precipitação de proteína</td><td>Qiagen</td><td>158912</td><td></td></tr><tr><td>Isopropanol</td><td>Fisher</td><td>A416-4</td><td></td></tr><tr><td>Glicogênio</td><td>EZ-BioResearch</td><td>S1003</td><td></td></tr><tr><td>70% Etanol</td><td>Fisher</td><td>04-355-305</td><td></td></tr><tr><td>Tris-EDTA (TE)</td> <td>Fisher</td><td>BP2473-1</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Fisher</td><td>AC194090010</td><td></td></tr><tr><td>Tris HCl</td><td>Fisher</td><td>BP1757-100</td><td></td></tr><tr><td>EDTA (0.5 M) Solução</td><td>Fisher</td><td>03-500-506</td><td></td></tr><tr><td>Dodecil Sulfato de Sódio</td><td>Fisher</td><td>BP166-100&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Misturador de vórtice analógico</td><td>Fisher</td><td>02-215-365</td><td></td></tr><tr><td>Centrífuga 5810R</td><td>Eppendorf</td><td>5811 000.010</td><td></td></tr></tbody></table>

coleta e extração de dna de saliva para next generation sequencing

Collection and Extraction of Saliva DNA for Next Generation Sequencing

A fonte preferida de DNA na pesquisa de genética humana é o sangue, ou linhagens celulares derivadas do sangue, pois essas fontes produzem grandes quantidades de DNA de alta qualidade. No entanto, a extração de DNA da saliva pode produzir DNA de alta qualidade com pouca ou nenhuma degradação/fragmentação, que é adequado para uma variedade de ensaios de DNA sem a despesa de um flebotomista e pode até ser adquirido pelo correio. No entanto, até o momento, nenhum protocolo de coleta/extração de DNA de saliva para sequenciamento de próxima geração foi apresentado na literatura. Este protocolo otimiza os parâmetros de coleta/armazenamento de saliva e extração de DNA para serem de qualidade e quantidade suficientes para ensaios de DNA com os mais altos padrões, incluindo genotipagem de microarray e sequenciamento de próxima geração.

Para determinar parâmetros ótimos para Extração de DNA de uma série de extrações de DNA pareadas foi realizada. Uma única amostra de saliva foi dividido e cada porção ensaiada por um dos dois valores possíveis para uma determinada variável. Pelo menos oito repetições de cada teste emparelhado foram realizadas (por exemplo, uma única amostra de saliva foi dividido em alíquotas para testar a extracção com e sem inicial de incubação de 50 ° C). Otimização foi baseada em quatro métricas padrão: produção total de DN...

A extração de DNA da saliva pode fornecer uma fonte prontamente disponível de DNA de alto peso molecular, com pouca ou nenhuma degradação/fragmentação. Este protocolo fornece parâmetros otimizados para coleta/armazenamento de saliva e extração de DNA para qualidade e quantidade suficientes para ensaios de DNA a jusante com requisitos de alta qualidade.

Coleta e Extração de DNA de saliva para Next Generation Sequencing

The preferred source of DNA in human genetics research is blood, or cell lines derived from blood, as these sources yield large quantities of high quality ...

O objetivo geral deste procedimento é extrair DNA genômico de alta qualidade da saliva integral. Isso é realizado primeiramente lisando as células para liberar o DNA. O segundo passo do procedimento consiste em remover impurezas de RNA e proteínas. O terceiro passo é precipitar o DNA genômico e remover quaisquer contaminantes ou impurezas remanescentes. O passo final é reidratar o DNA genômico para aplicações posteriores, como PCR e sequenciamento. Em última análise, espectrofotometria e amplificação podem demonstrar que o DNA genômico coletivo é de alta qualidade.A principal vantagem desta técnica em relação aos kits de coleta é que os custos serão significativamente reduzidos sem qualquer perda no rendimento. Meia hora antes da coleta da saliva, os indivíduos devem enxaguar a boca com água e, em seguida, abster-se de alimentos ou bebidas até que a amostra seja coletada. Para coletar a amostra, oriente o indivíduo a cuspir exatamente 2,5 mililitros de saliva em um tubo de 15 mililitros contendo 2,5 mililitros de tampão de estabilização de DNA.Não toque na parte interna do tubo ou na parte interna da tampa. Durante este processo, tampe o tubo e homogeneíze a mistura por inversões, não por agitação. Em seguida, armazene a amostra à temperatura ambiente a curto prazo ou a quatro graus Celsius por até três meses.Os preparativos incluem aquecer um banho-maria a 37 graus Celsius e ter três tubos de 15 mililitros prontos. Comece invertendo a amostra algumas vezes, depois vortexe-a em velocidade média por 15 segundos. Transfira 2,5 mililitros da amostra para um dos tubos.Adicione cinco mililitros da solução de lise celular à alíquota e misture a solução de lise na amostra invertendo o tubo 50 vezes. Após misturar a amostra, deixe-a em incubação por 30 minutos. Após meia hora, à temperatura ambiente, adicione 40 microlitros de RNA A a 100 miligramas por mililitro à solução de células lisadas.Em seguida, inverta rapidamente o tubo cinco vezes. Incube a reação de RNA a 37 graus Celsius por 15 minutos. Em seguida, resfrie o tubo em gelo por três minutos.Neste ponto, aumente a temperatura do banho-maria para 65 graus Celsius. Em seguida, retire o tubo do gelo. Adicione 50 microlitros de proteinase K e misture, deixando a reação incubar à temperatura ambiente por 30 minutos ou de 16 a 24 horas a quatro graus Celsius.Em seguida, adicione 1,7 mililitros da solução de precipitação de proteínas e vortexe o tubo por 20 segundos em alta velocidade. Depois, deixe a amostra esfriar em gelo por 10 minutos. Após o resfriamento, centrifugue uma amostra por 10 minutos a 3000 Gs e a quatro graus Celsius.Se o pellet não estiver compacto, resfrie a amostra por mais cinco minutos e centrifugue novamente por cinco minutos. Repita este processo até obter um pellet compacto. Mantenha sempre a amostra fria.Inicie o isolamento do DNA preparando um tubo limpo de 15 mililitros com cinco mililitros de isopropanol e oito microlitros de solução de glicogênio a 20 miligramas por mililitro. Em seguida, despeje o sobrenadante da amostra centrifugada neste tubo. Descarte o pellet e misture a amostra 50 vezes por inversão.Em seguida, centrifugue a amostra a 3000 Gs e a quatro graus Celsius por 30 minutos. Despeje o sobrenadante em outro tubo limpo de 15 mililitros, deixando o pellet. Adicione um mililitro de etanol a 70% e agite manualmente de lado por 30 segundos.Em seguida, centrifugue a solução de etanol por um minuto a 2000 Gs e a quatro graus Celsius ou 20 graus Celsius. Descarte o sobrenadante vertendo-o lentamente e, em seguida, adicione mais etanol ao pellet. Agite manualmente a mistura e repita a centrifugação.Em seguida, despeje lentamente o etanol novamente. Durante a lavagem, o pellet pode soltar-se. Se ele se desprender, certifique-se de que permaneça na solução de etanol e não adere às paredes ou à tampa do tubo.Não inverta o tubo durante esta lavagem. Após as lavagens com etanol, deixe o tubo secar ao ar por 15 a 30 minutos. Em seguida, reidrate o pellet de DNA genômico adicionando primeiro 300 microlitros de tampão tris EDTA.Em seguida, vortexe uma amostra em velocidade média por cinco segundos e transfira a amostra para um banho-maria a 65 graus Celsius por uma hora. Após o aquecimento no banho, deixe a amostra em incubação durante a noite à temperatura ambiente. No dia seguinte, o DNA estará pronto para uso. A eletroforese em gel de amostras de saliva e extração de DNA mostra bandas de alto peso molecular apropriadamente, sem borramento indicativo de DNA degradado. A etapa de remoção de RNA é necessária e muito eficaz.Após a digestão do RNA, a razão entre 260 nanômetros e 280 nanômetros é em média 1,74. Importante, o DNA é adequado para sequenciamento de alto rendimento. Um kit de enriquecimento alvo foi aplicado a 24 amostras, visando 2,6 megabases de DNA; 12 amostras com código de barras foram sequenciadas por lane.Todos os 24 amostras apresentaram dados de NGS de alta qualidade e polimorfismos de nucleotídeo único raros puderam ser identificados. Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como extrair DNA genômico de alta qualidade da saliva integral.

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Considerando coleta de saliva para uma futura aplicação clínica, um pirulito, como ultrafiltração sonda (LLUF) foi fabricada para caber na cavidade bucal humana. Análise directa da saliva não digerido por espectrometria de massa nanoLC-LTQ demonstraram a capacidade das sondas de LLUF para remover as proteínas grandes e proteínas de abundância elevadas, e fazer de baixa abundantes péptidos mais detectável.

Amostragem Peptidome saliva humana Indígena Usando uma sonda de Ultrafiltração Lollipop-Like: simplificar e melhorar a detecção Peptide de Espectrometria de Massa Clínica

O sequenciamento de amplicon de bissulfito (BSAS) é um método para quantificar a metilação da citosina em regiões genômicas alvo de interesse. Este método usa conversão de bissulfito emparelhada com amplificação de PCR de regiões-alvo antes do sequenciamento de próxima geração para produzir quantificação absoluta da metilação do DNA em um nível específico de base.

Alvejado DNA análise de metilação por Sequenciação de próxima geração

Este manuscrito descreve uma abordagem automatizada de seleção de tamanho de gel para purificar fragmentos de DNA para sequenciamento de próxima geração. A tecnologia Ranger fornece automação completa de todo o processo de carregamento de gel de agarose, análise eletroforética e recuperação de fragmentos de DNA direcionados, permitindo bibliotecas de sequenciamento de última geração de alto rendimento e alta qualidade.

Automated Gel seleção de tamanho para melhorar a qualidade das bibliotecas de sequenciação de próxima geração Preparado a partir de amostras de água do ambiente

Nós descrevemos um método eficiente, robusto e de baixo custo para extração de ácidos nucleicos de cotonetes para a caracterização das comunidades bacterianas usando 16S rRNA amplicon gene seqüenciamento. O método permite uma abordagem comum para processamento de múltiplos tipos de amostras e acomoda uma série de processos analíticos jusante.

Eficiente de Ácido Nucleico Extração e sequenciamento genético 16S rRNA para Bacteriana Comunidade Caracterização

Metagenomics foi usada para investigar o microbioma da alimentação de bovinos para silagem. A análise foi realizada por sequenciamento shotgun. Essa abordagem foi utilizada para caracterizar a composição da comunidade microbiana na alimentação do gado.

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Aqui descrevemos um protocolo simples para gerar perfis de impressão digital de DNA amplificando o lócus VNTR D1S80 do DNA celular epitelial.

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Descrito aqui é um protocolo de extração de DNA usando contas magnéticas para produzir extrações de DNA de alta qualidade de mosquitos. Essas extrações são adequadas para uma abordagem de sequenciamento de próxima geração a jusante.

Um protocolo de extração de DNA de mosquito baseado em contas magnéticas para sequenciamento de próxima geração

Este protocolo detalha uma abordagem abrangente para a montagem de um genoma híbrido de bactérias urinárias. Fornece um procedimento reprodutível para a geração de sequências completas de genomas circulares úteis no estudo de elementos genéticos cromossômicos e extracromosômicos que contribuem para a colonização urinária, patogênese e disseminação de resistência antimicrobiana.

Montagem híbrida de genoma de Novo para a geração de genomas completos de bactérias urinárias usando tecnologias de sequenciamento de leitura curta e longa

Apresentamos um método otimizado para extração de DNA de escarro descontaminado usando um método de extração baseado em matriz combinado com uma purificação de esferas magnéticas para sequenciamento de próxima geração direcionado a jusante de Mycobacterium tuberculosis.

Extração de DNA baseada em matriz para sequenciamento de próxima geração direcionado em amostras de escarro descontaminadas

Aprenda a extrair DNA genômico de alta qualidade a partir de saliva inteira para genômica. Este método otimizado utiliza lise celular, remoção de RNA e precipitação, sendo adequado para PCR e sequenciamento de nova geração.

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