Name: Um protocolo para infectar Caenorhabditis elegans Com Salmonella typhimurium (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-06-26T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 50 s
Description: Aprenda a infectar Caenorhabditis elegans com Salmonella typhimurium para estudar interações hospedeiro-patógeno usando RNAi. Este método permite identificar genes essenciais para a defesa contra Salmonella.

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Agradecemos ao Dr. Diane Baronas-Lowell para a leitura crítica do manuscrito. Este trabalho foi apoiado por uma FAU Charles E. Schmidt Faculdade de Ciências Grant Semente e uma bolsa Envelhecimento da Fundação Médica Ellison para KJ

1. Placas XLD (xilose lisina desoxicolato) Agar Ágar XLD é um meio de crescimento seletivo para Salmonella, que aparece como colônias pretas nas placas de ágar XLD. No entanto, se não existem preocupações de contaminação, uma placa LB regular pode ser substituído. <ol><li> Pesar 5,5 g de ágar XLD e ressuspender em 5 ml de água deionizada. </li><li> Misture bem até que todo o agar é molhado. Adicionar 95 ml de água deionizada até que todos os pedaços se foram e o meio é completamente em suspensão. </li><li> Ferva o meio para dissolver completamente (não autoclave). </li><li> Arrefece-se o meio à temperatura ambiente e 50 ° C. </li><li> Verter 25 mL de agar em cada um 95 x 15 mm (diâmetro x altura) da placa (placas seladas com Parafilm pode ser armazenado a 4 ° C durante até 1 mês). </li></ol> 2. Nematode Crescimento Médio (NGM) RNAi Alimentando Plates Preparação de C. elegans placas NGM foi descrito anteriormente 19. Aqui um procedimento é descrito resumidamente a adicionar o antibiótico ampicilina e a RNAi indutor químico isopropílico β-D-1-tiogalactopiranósido (IPTG) para o meio de NGM para fazer as placas de alimentação de RNAi. <ol><li> Dissolve-se 3 g de NaCl e 2,5 g de Bacto peptona em 1 L de água desionizada. </li><li> Adicione 17 g de ágar Bacto na mídia. </li><li> Autoclave a media durante 45 min e arrefecer a mídia para 50 ° C em um banho de água. </li><li> Adicionar as seguintes soluções: 1 ml de colesterol (5 mg / ml em etanol a 95%), 1 mL de 1 M de CaCl2, 1 ml 1 M MgSO4, e tampão de fosfato de potássio 25 ml 1 M (pH 6,0). Misture bem. </li><li> Adicionar 1 ml de 1 M de IPTG e 500 ul de ampicilina (100 mg / ml em água esterilizada). </li><li> Misturar a solução bem e despeje em 60 x 15 mm (diâmetro x altura) placas de Petri usando uma pipeta Aid e 25 ml de pipeta sorológica seguintes procedimentos estéreis. Encha cada placa com 12 ml de ágar. As placas podem ser armazenadas a 4 ° C durante até 1 mês. </li></ol> O gene essencial autofagia bec-1 é utilizado como um exemplo para examinar a função de um gene hospedeiro na defesa contra a infecção por Salmonella. Os procedimentos experimentais são ilustradas na Figura 1 e Tabela 1. O protocolo para a preparação de animais tratados em RNAi para infecção segue, com o dia de cada passo experimental dado entre parênteses. <ol><li> Inocular bec-1 RNAi alimentação e controlar o vector vazio L4440 RNAi bactérias alimentação pela colocação de um floco de -80 ° C bactérias congeladas em 2 ml de meio LB suplementado com 100 mg / ml de ampicilina (Dia 1). Repita este passo uma vez por semana, durante todo o experimento ter bactérias RNAi frescos. Armazenar a cultura no frigorífico a 4 ° C quando não usado. </li><li> Semente 100 ml de cultura bacteriana durante a noite RNAi em placas de RNAi. Prepare três bec-1 RNAi e três controle vazio vEctor placas de RNAi. Incubar as placas a 37 ° C durante a noite (dia 2). </li><li> Remova as placas de RNAi da 37 ° C incubadora e deixe esfriar até a temperatura ambiente no banco. Pegue bem alimentados L4 tipo selvagem hermafroditas N2 e transferi-los para bec-1 RNAi e controlar placas RNAi vetores vazios. Coloque três vermes por placa, em placas triplicadas. No mesmo dia, para preparar as placas de RNAi, como descrito no passo 3.2 (Dia 3). </li><li> Incubar as placas de RNAi com vermes na incubadora a 20 ° C durante 36-40 hr e de transferência de vermes para placas frescas de RNAi correspondentes preparados no passo 3.3. Depois de vermes são transferidos, incubar as placas no 20 ° C incubadora por 64 horas (dia 4). </li></ol> 4. Prepare Salmonella para a Infecção <ol><li> Streak Salmonella -80 ° C lote congelado em 1 placa de ágar XLD e incubar a placa a 37 ° C durante a noite (dia 5 </strong&gt;). </li><li> Escolha bem isolado preto colónia de Salmonella e inocula-lo em 2 ml de meio LB a 37 ° C com agitação durante a noite (dia 6). </li><li> Semente de 80 ml ​​de cultura de uma noite de Salmonella em 1 de C. elegans 60 x 15 mm (diâmetro x altura) placa de ágar NGM e preparar 6 pratos no total. Incubar as placas à temperatura ambiente durante 6 horas. A cultura bacteriana deve secar e formar um relvado sobre a placa (dia 7). </li></ol> 5. Worms tratados com RNAi Infect com Salmonella <ol><li> Transferir bec-1 e controle de vetores vazios tratados com RNAi hermafroditas L4 N2 (progênie de minhocas criadas no passo 3) para placas de Salmonella tratados com RNAi. Colocar 40 vermes por placa em 3 placas para cada grupo. Incubar as placas sem-fim, a 20 ° C durante 48 h (Dia 7). </li><li> Prepare um conjunto de placas de RNAi frescos como descrito nos passos 3.1 e 3.2 (dia 7 e <strong&gt; Dia 8). </li><li> Após 48 horas de infecção, transferir vermes infectadas com Salmonella às placas correspondentes RNAi preparados na etapa 5.2 e incubar a 20 ° C (dia 9). </li></ol> 6. Ensaio de sobrevivência <ol><li> Marque a sobrevivência dos vermes diária e transferir worms para frescas correspondentes placas de RNAi durante o tempo de postura. Preparar um conjunto de novas placas de RNAi, antes de cada transferência de sem-fim, tal como descrito nas etapas 3.1 e 3.2. Toque o corpo verme (cabeça, parte intermediária e cauda) delicadamente com um fio de platina achatado-end. Um worm é marcado como morto se nenhum movimento do corpo verme é observada. </li><li> Marque a sobrevivência dos vermes diárias ou em dias alternados, e transferir para vermes frescas correspondentes placas de RNAi duas vezes por semana depois de vermes parar de pôr ovos. </li><li> Depois de todos os vermes morrem, reunir os dados de sobrevivência de placas triplicadas como um conjunto de dados. Introduza os dados de sobrevivência de cada grupo em software estatístico adequado, como GraphPad PRISM para gerar curvas de sobrevivência e para realizar a análise de sobrevida de Kaplan-Meier. Toda a experiência foi repetida pelo menos uma vez para confirmar a conclusão. </li></ol>

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</ol>

Os autores declaram que não têm interesses financeiros concorrentes.

C. elegans é um simples organismo modelo genético que se alimenta de bactérias como fonte de nutrientes. Assim, é fácil de substituir a sua comida bacteriana normal com um patógeno intestinal para investigar as interações entre C. elegans e o agente patogénico escolhido. Nisto um protocolo é descrito combinar infecção por Salmonella e C. elegans RNAi alimentando tratamento para examinar o papel dos genes do hospedeiro na defesa contra a infecção por Salmonella. Protocolos de ...

O solo de vida livre Caenorhabditis elegans nematóide é um organismo modelo simples e geneticamente tratável usada para estudar muitas questões biológicas. C. elegans dominantemente existe como hermafroditas auto-fertilização. Os machos são gerados de forma espontânea por não-disjunção do cromossomo X durante a gametogênese 1,2. Na presença de alimento abundante, C. elegans desenvolver continuamente através de quatro fases larval ao adulto. A temperatura também influencia C. desenvolvimento elegans; desenvolvimento mais rápido é observada a temperaturas mais elevadas. No laboratório, C. elegans é cultivada a uma temperatura normal de 20 ° C em placas de agar com semeado bactéria Escherichia coli (estirpe OP50) como alimento de 1,2. Na última década, C. elegans tem emergido como um organismo de invertebrados para estudar as interações patógeno-hospedeiro 3-5. Na natureza, C. elegans come bactérias como nutrient 1,2 fonte. Sua comida laboratório bacteriana normal, OP50, pode ser facilmente substituído por outros agentes patogénicos para examinar as interações entre C. elegans e qualquer agente patogénico escolhido. Sob estas condições, o intestino é o principal local da infecção. De facto, uma grande variedade de agentes patogénicos bacterianos tem sido mostrado para infectar letalmente C. elegans 3-5. A bactéria Salmonella gram-negativo é um patógeno gastrointestinal que causa doenças de origem alimentar humana em todo o mundo 6,7. C. elegans é um bom anfitrião modelo para Salmonella typhimurium como esta bactéria replica e apresenta infecções intestinais persistentes 8-10. C. elegans foi utilizado para identificar novas e anteriormente conhecida virulência de Salmonella factores 11. Curiosamente, a C. sistema imunitário elegans limita com sucesso a replicação de Salmonella. Foi relatado anteriormente que inibidoition de genes autofagia torna o aumento da replicação Salmonella em C. elegans, resultando em morte precoce de vermes infectados 10. Macroautofagia (aqui referido como autofagia) é um processo dinâmico, que envolve o rearranjo de membranas intracelulares para sequestrar citoplasma e organelas para entrega do lisossoma para degradação 12. Autophagy foi reportado para limitar a replicação de Salmonella em C. elegans e em mamíferos 10,13. O C. elegans genoma foi o primeiro genoma eucarionte multicelular seqüenciado; ele é sensível ao tratamento 14-16 RNAi. Além disso, o RNAi pode ser administrado de forma eficaz, sujeitando vermes ingerir bactérias contendo o ARN de cadeia dupla do gene alvo, conhecido como RNAi alimentação 16,17. Genoma bibliotecas inteiras de alimentação RNAi foram gerados por RNAi do genoma triagem 16,18. Nisto, uma infecção pro Salmonellatocolo está acoplado com o RNAi alimentação para permitir o teste C. elegans genes de interesse para a sua capacidade de proteger contra infecção por Salmonella.

<table><tbody><tr><td>LB Caldo</td><td>Fisher</td><td>BP9723-500</td><td></td></tr><tr><td>XLD</td><td>ágar EMD Produtos Químicos</td><td>1.05287.0500</td><td></td></tr><tr><td>Bacto</td><td>Agar Fisher</td><td>DF0140-01-0</td><td></td></tr><tr><td>Peptona</td><td>Fisher</td><td>BP1420-500</td><td></td></tr><tr><td>Cloreto de Sódio</td><td>Fisher</td><td>S671-500</td><td></td></tr><tr><td>Cloreto de Cálcio</td><td>Fisher</td><td>C69-500</td><td></td></tr><tr><td>Sulfato de magnésio</td><td>Fisher</td><td>M65-500</td><td></td></tr><tr><td>IPTG</td><td>Gold Biotechnology</td><td>12481C50</td><td></td></tr><tr><td>Colesterol</td><td>Sigma</td><td>C8667-25G</td><td></td></tr><tr><td>Ampicilina</td><td>Fisher</td><td>BP1760-25</td><td></td></tr><tr><td>Salmonella typhimurium</td><td>ATCC</td><td>ATCC14028</td><td></td></tr><tr><td>Placa de Petri 95 x 15 mm</td><td>Fisher</td><td>FB0875714G</td><td></td></tr><tr><td>Placa de Petri 60 x 15 mm&nbsp;</td>Pipeta sorológica <td>Fisher</td><td>08-757-13A</td><td></td></tr><tr><td>Falcon Fisher</td><td></td><td>13-668-2</td><td></td></tr><tr><td>Falcon Express Pipet-Aid</td><td>Fisher</td><td>13-675-42</td><td></td></tr><tr><td>MaxQ6000 incubadora agitadora&nbsp;</td><td>Incubadora Thermo Scientific</td><td>SHKE6000-7</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Percival</td><td>I-36DL</td><td></td></tr></tbody></table>

um protocolo para infectar<em&gt; caenorhabditis elegans</em&gt; com<em&gt; salmonella typhimurium</em

A Protocol to Infect Caenorhabditis elegans with Salmonella typhimurium

Na última década, C. elegans tem emergido como um organismo de invertebrados para estudar interações entre hospedeiros e patógenos, incluindo a defesa do hospedeiro contra bactérias gram-negativas bactéria Salmonella typhimurium. Salmonella estabelece infecção persistente no intestino de C. elegans e resulta na morte prematura dos animais infectados. Um número de mecanismos de imunidade foram identificados em C. elegans para se defender contra infecções por Salmonella. Autophagy, uma via de degradação lisossomal evolutivamente conservadas, foi mostrado para limitar a replicação de Salmonella em C. elegans e nos mamíferos. Aqui, é descrito um protocolo para infectar C. elegans com Salmonella typhimurium, em que os vermes são expostos a Salmonella por um tempo limitado, semelhante à infecção por Salmonella em humanos. infecção por Salmonella encurta significativamente o tempo de vida de C. elegans &lt;/ Em&gt;. Usando o gene essencial autofagia bec-1 como exemplo, que combinado este método de infecção com C. elegans ARNi alimentação abordagem e mostraram que este protocolo pode ser utilizado para examinar a função de C. genes do hospedeiro elegans em defesa contra a infecção por Salmonella. Desde C. elegans genoma bibliotecas inteiras RNAi estão disponíveis, este protocolo torna possível para a tela de forma abrangente para C. elegans genes que protegem contra Salmonella e outros patógenos intestinais usando bibliotecas RNAi genômicos.

A 20 ° C, o tempo de vida médio de tipo selvagem vermes N2 de 17 dias (Figura 2A e Tabela 2). Infecção por Salmonella diminui significativamente o tempo de vida médio de vermes N2 a 10,5 dias (p = 0,0002, teste de log-rank) (Figura 2A ). Se um C. elegans gene desempenha um papel importante na defesa contra a infecção por Salmonella, prevê-se que a sua inibição irá conferir susceptibilidade à infecção por Salmon...

C. elegans tem emergido como um novo modelo genético para estudar as interações patógeno-hospedeiro. Aqui nós descrevemos um protocolo para infectar C. elegans com Salmonella typhimurium, juntamente com a técnica de interferência dupla vertente RNAi para examinar o papel dos genes do hospedeiro na defesa contra a infecção por Salmonella.

Um protocolo para infectar<em&gt; Caenorhabditis elegans</em&gt; Com<em&gt; Salmonella typhimurium</em

In the last decade, C. elegans has emerged as an invertebrate organism to study interactions between hosts and pathogens, including the host defense ...

O objetivo geral deste procedimento é infectar o elegans com salmonela para examinar as interações entre o hospedeiro e o patógeno. Isso é realizado primeiramente inibindo a expressão de um gene do hospedeiro por RNAi. O segundo passo do procedimento é infectar os vermes tratados com RNAi com salmonela.A infecção é interrompida transferindo os vermes infectados para placas de alimentação com rna eye não patogênicas. Os passos finais são registrar a sobrevivência dos vermes infectados. Calcule a sobrevivência a partir desses dados e, por fim, identifique os genes essenciais para a proteção contra a salmonela.Demonstrará o procedimento Julie John, técnica de um laboratório. Comece preparando as placas de cultivo necessárias. Primeiro, prepare as placas de ágar XLD.Eles são seletivos para salmonela, que aparecem como colônias pretas nestas placas. Certifique-se de ressuspender o ágar XLD em água a um grama por mililitro antes de misturá-lo ao volume total de água. Não autoclavar.Este ágar acabou de ser aquecido com uma placa aquecedora. Prossiga com a preparação de placas de XLD com diâmetro de 95 milímetros, adicionando 25 mililitros de ágar por placa. Para preparar as placas de alimentação NGM com RNAi, chamadas placas de RNAi, utilize métodos padrão; brevemente, adicione ampicilina e o indutor químico de RNAi, IPTG, ao meio após a autoclavação.Após o resfriamento, carregue placas de 60 milímetros com 12 mililitros de ágar; as placas são utilizáveis por até um mês, quando armazenadas a quatro graus Celsius antes do uso. Primeiramente, são incubadas com bactérias. Neste exemplo, Beck um é o gene alvo, pois é essencial para a defesa contra salmonela.Primeiro, prepare os cultivos de RNAI e controle. Adicione um fragmento de bactéria congelada do armazenamento a menos 80 graus Celsius a dois mililitros de lb com ampicilina. As bactérias devem expressar ou não o RNAi, mas ainda conter um vetor vazio.Transfira essas duas culturas para uma estufa e cultive-as durante a noite. Isso deve ser feito semanalmente para que as bactérias estejam sempre disponíveis no dia seguinte. Semee 100 microlitros da cultura em placas de RNA.Prepare pelo menos três placas de cada tipo experimental e controle. Incube essas placas a 37 graus Celsius durante a noite. No dia seguinte, leve as placas à temperatura ambiente.Em seguida, transfira três L4 selvagens N2 hermafroditas bem alimentadas para as placas. Três vermes por placa serão suficientes. Incube essas placas a 20 graus Celsius no mesmo dia.Prepare mais placas de RNAi com bactérias cultivadas. Após 36 a 40 horas a 20 graus Celsius, transfira os vermes das primeiras placas de RNAi para as novas placas de RNAi. Em seguida, retorne-as a 20 graus Celsius por mais 64 horas.Inicie o processo realizando o plaqueamento do estoque de salmonela a partir do congelador a menos 80 graus Celsius em uma placa de XLD. Incube a placa a 37 graus Celsius durante a noite. No dia seguinte, escolha uma colônia isolada preta da placa e inocule dois mililitros de lb.Deixe em agitação durante a noite a 37 graus Celsius e, na manhã seguinte, utilize o caldo LB inoculado para semear seis placas de NGM. Adicione 80 microlitros em cada placa após seis horas em temperatura ambiente; o cultivo bacteriano deverá ter secado e formará um gramado nas placas de NGM.Em seguida, transfira os vermes tratados com RNAi e os vermes tratados com controle para as placas de seis poços. Coloque 40 vermes em cada placa e deixe incubarem a 20 graus Celsius por 48 horas. A partir desse momento, comece a preparar diariamente novas placas com RNAi.Isso é para que estejam prontos em dois dias e todos os dias seguintes para o ensaio de sobrevivência. Após 48 horas, transfira os vermes infectados de volta para placas de RNAi recém-preparadas ou para placas de controle com vetor vazio. Retorne essas placas ao incubador a 20 graus Celsius a partir de então, todos os dias por volta do horário em que depositam ovos.Avalie a sobrevivência dos vermes e transfira os sobreviventes para placas frescas de RNA eye para avaliar a sobrevivência. Toque suavemente o verme com um fio de platina achatado. Se não houver resposta, o verme está morto.Durante o período de postura de ovos. Deve-se identificar o verme e, em seguida, removê-lo por morte devido à higiene interna. Esses vermes devem ser removidos de forma oportuna.Os dados seriam significativamente ordenados se este verme proteico for claramente contado como vermes experimentais. Assim que o verme parar de botar ovos, basta transferi-los para placas de RNAi frescas duas vezes por semana. Quando as populações tiverem morrido, reúna seus dados e represente sua sobrevivência em curvas de Kaplan-Meier.Independentemente da conclusão, realize o experimento pelo menos duas vezes para ter certeza. A 20 graus Celsius, a longevidade mediana de vermes tipo selvagem N dois é de 17 dias. A infecção por Salmonella reduz significativamente a longevidade mediana dos vermes N dois para 10,5 dias, conforme o esperado com o tratamento por RNAi Beck um.Sobrevivência reduzida após infecção por Salmonella. A longevidade média diminuiu de 10,5 para nove dias, e a longevidade máxima também foi significativamente menor. Dados que apoiam o papel de Beck um na defesa de Caenorhabditis elegans contra infecção.Animais tratados com Beck one RNAi, mas não tratados com salmonela, não apresentaram alteração significativa na longevidade. Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como realizar a abordagem de RNA e o protocolo de infecção para examinar o papel de genes do hospedeiro na defesa contra infecções por salmonela.

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Imunologia e Infecção

Fonte: Chen, Y., et al. Avaliando a Virulência e Patogênese da Infecção por Aeromonas em um Modelo de Caenorhabditis elegans . J. Vis. Exp. (2018)Este vídeo demonstra um ensaio de sobrevivência usando C. elegans para modelar a patogênese da Aeromonas , onde a ingestão oral da bactéria leva a infecção intestinal e mortalidade, possibilitando uma avaliação quantitativa da virulência bacteriana em um sistema hospedeiro vivo.

Modelagem da Patogênese de Aeromonas em C. elegans Usando um Ensaio de Sobrevivência

O wormsorter facilita telas genéticas em Caenorhabditis elegans, classificando vermes de acordo com a expressão de repórteres fluorescentes. Aqui, descrevemos um novo uso: triagem de acordo com a colonização por um patógeno expressando GFP, e empregá-lo para examinar o papel mal compreendida de reconhecimento do patógeno em iniciar respostas imunes.

A separação automática de<em&gt; C. elegans</em&gt; Variably Colonizada por um patógeno bacteriano

C. elegans é normalmente cultivadas em placas de agar sólido ou em meio líquido semeadas com E. coli. Para evitar subprodutos bacterianos de confundir os estudos toxicológicos e nutricionais, utilizamos um meio líquido axênico, CEHR, para crescer e sincronizar um grande número de vermes para uma gama de aplicações a jusante.

A cultura Caenorhabditis elegans Em Axenic Liquid Media e Criação de transgênicos Worms por bombardeamento com micropartículas

Aqui, apresentamos o nemátodo Caenorhabditis elegans como modelo de acolhimento versátil para estudar a interação microbiana.

O nemátode Caenorhabditis Elegans - um modelo versátil na Vivo para estudar interações do anfitrião-micróbio

Peixe-zebra (Danio rerio) estão se tornando vertebrado modelo animal utilizado para colonização microbiana e patogénese. Este protocolo descreve o uso do protozoário Paramecium caudatum como um veículo para a infecção de origem alimentar em larvas de peixe-zebra. P. caudatum prontamente internaliza as bactérias e obter retomadas por larval zebrafish através de comportamento predando natural.

Usando o protozoário Paramecium caudatum como um veículo para infecções de origem alimentar em larvas de Zebrafish

Este protocolo descreve um modelo do rato da fibrose intestinal conduzida salmonela que se assemelha a características patológicas chaves de Crohn ' doença de s que inclui a inflamação e a fibrose transmural. Este método pode ser usado para avaliar os fatores hospedeiros que alteram os desfechos fibróticos usando camundongos mutantes mantidos em um fundo genético C57Bl/6.

Infecção crônica por Salmonella induzida por fibrose intestinal

O protocolo a seguir descreve o desenvolvimento e otimização de um fluxo de trabalho de alto rendimento para cultivo de vermes, imagens de fluorescência e processamento automatizado de imagens para quantificar agregados de poliglutamina como uma avaliação de mudanças na proteostase.

Automatizando quantificação agregada em caenorhabditis elegans

A infecção da Caenorhabditis elegans pelo parasita microsporidiano Nematocida parisii permite que os vermes produzam descendentes altamente resistentes ao mesmo patógeno. Este é um exemplo de imunidade herdada, um fenômeno epigenético mal compreendido. O presente protocolo descreve o estudo da imunidade herdada em um modelo de verme geneticamente tratável.

Estudando imunidade herdada em um modelo de infecção por microsporidia

Os micróbios intestinais podem impactar positiva ou negativamente a saúde de seu hospedeiro por meio de mecanismos específicos ou conservados. Caenorhabditis elegans é uma plataforma conveniente para rastrear esses micróbios. O presente protocolo descreve a triagem de alto rendimento de 48 isolados bacterianos quanto ao impacto na resistência ao estresse dos nematoides, usados como um proxy para a saúde dos vermes.

Triagem de alto rendimento de isolados microbianos com impacto na saúde de Caenorhabditis elegans

Este protocolo descreve uma interrupção de 96 poços de caenorhabditis colonizada individualmente elegans após paralisia fria e branqueamento superficial para remover bactérias externas. A suspensão resultante é emplacada em placas de ágar para permitir quantificação precisa e média de carga bacteriana em um grande número de vermes individuais.

Usando dados de verme único para quantificar a heterogeneidade em Interações elegans-bacterianas de Caenorhabditis

Aprenda a infectar Caenorhabditis elegans com Salmonella typhimurium para estudar interações hospedeiro-patógeno usando RNAi. Este método permite identificar genes essenciais para a defesa contra Salmonella.

Um protocolo para infectar

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