3 de fevereiro de 2015
Uma abordagem foi desenvolvida para identificar condições ideais de concentração viral para amostras de água de pequeno volume usando picos de adenovírus humano. As técnicas descritas aqui são usadas para identificar parâmetros de concentração para outros alvos virais e aplicadas à experimentação de concentração viral em larga escala.
O objetivo geral do experimento a seguir é otimizar a recuperação do vírus da água. Usando uma técnica de pequena escala originalmente projetada para otimizar as concentrações de vírus. Um filtro de celulose de vidro foi considerado o melhor filtro eletropositivo para concentrar adenovírus de água para a eluição secundária.
Uma técnica de concentração secundária de luz do mar provou ser a melhor para iludir o adenovírus das superfícies do filtro. O resultado na técnica recupera a maior parte do adenovírus da água da torneira com base em ter a maior porcentagem de recuperações observadas entre todas as combinações de filtro e eluição testadas. A principal vantagem dessa técnica sobre os métodos existentes, como a concentração de volume em larga escala, é que ela utiliza volumes de amostra menores, permitindo que uma infinidade de variáveis de concentração sejam avaliadas de forma rápida e fácil.
Ao se preparar para este protocolo, tenha todas as soluções necessárias prontas, incluindo a solução viral filtrada de 22 mícrons de 10 a 100.000 MPN por mililitro. Comece medindo um litro de água da torneira estéril. Transfira para um copo de dois litros com uma barra de agitação magnética enquanto mexe a água.
Adicione 0,7 gramas de tiossulfato de sódio e deixe dissolver completamente. Em seguida, ajuste um pH entre sete e 7,5 adicionando um ácido molar em soluções estoque de louro gota a gota. Em seguida, salpique a água com vírus.
Adicione um mililitro cheio da solução de vírus preparada. Cubra o frasco com um filme estéril e deixe o vírus se misturar na água por 10 minutos. Enquanto isso, prepare primeiro o filtro millipore, desembrulhe-o da embalagem e certifique-se de que esteja bem encaixado entre a tigela superior e a tela inferior.
Em seguida, verifique se o material de cortiça no filtro se encaixa perfeitamente na borda de um frasco de arma de um litro. Agora remova a tigela superior do filtro e, com uma pinça, coloque um disco de filtro eletropositivo de 47 milímetros diretamente na tela do filtro. Em seguida, recoloque a tigela e trave-a no lugar com um giro no sentido anti-horário.
Meça 100 mililitros de água da torneira enriquecida usando um cilindro estéril. Em seguida, transfira a água para a carcaça do filtro preparada no frasco de dois litros. O disco eletropositivo no filtro pode ser celulose de vidro plissada ou nano Illumina fibra de vidro vácuo suave pode ser usado para passar a água residual através do filtro.
Agora, mova a carcaça do filtro para um balão de arma lateral de 250 mililitros. Meça 100 mililitros de extrato de carne bovina e despeje lentamente no filtro. Deixe o extrato passar lentamente e use um vácuo suave para puxar o residual.
Em seguida, prossiga com qualquer uma das duas opções de concentração secundária para concentrar o vírus usando luz do mar. Transferir o conteúdo do balão de 250 mililitros, que contém o vírus, para uma placa de agitação. Usando uma barra de agitação, crie um pequeno vórtice.
Em seguida, adicione 0,1 gramas de pó cite a 100 mililitros de extrato de carne bovina. Deixe a luz C se dispersar e prepare-se para ajustar o pH das soluções usando adições gota a gota de ácido clorídrico 0,1 molar. Abaixe o pH para 4,0.
Em seguida, deixe a solução misturar por 10 minutos enquanto mistura. Conecte seu pré-filtro de 47 mililitros em um frasco de dois litros. Agora despeje 100 mililitros da mistura de extrato de carne leve do mar através do pré-filtro.
Um leve vácuo pode ser usado para finalizar. Em seguida, coloque um clipe de tubo de metal na extremidade de um bico de carcaça de filtro para o clipe. Colocar um tubo de recolha de polipropileno estéril de 15 ml e voltar a montar o filtro no balão.
Agora elua o vírus das partículas de luz do mar em cinco mililitros de um XPBS em pH nove. Permita que a maior parte do PBS escorra para o tubo de 15 mililitros por gravidade e puxe o resíduo com um leve vácuo para concentrar o vírus usando floculação orgânica. Transferir o conteúdo do balão de 250 mililitros contendo o vírus para uma placa de agitação.
Usando uma barra de agitação, crie um pequeno vórtice, ajuste o pH da solução para 3,5 usando adições gota a gota de um ácido clorídrico molar. Em seguida, deixe a mistura mexer por meia hora depois. Transferir a solução para um tubo de centrifugação cónico estéril de 250 ml.
Girar a solução a 2 500 G durante 15 minutos a quatro graus Celsius após a centrifugação. Tenha cuidado para não perturbar o pellet ao manusear os tubos com cuidado. Para enlatar o snat e ressuspender o pellet em cinco mililitros de PBS pH nove.
Certifique-se de que o palete esteja dissolvido. Em seguida, centrifugue o Resus a 4.000 G por 10 minutos a quatro graus Celsius. Agora colete o sobrenadante que contém o vírus concentrado.
O pellet pode ser descartado. Na otimização deste protocolo, três tipos de luz do mar foram comparados maiores. A luz do mar resultou em recuperações mais baixas de um DV 40 e um DV 41.
A eluição do filtro foi testada em PHS entre 7,5 e 12 para determinar qual seria a mais eficaz na coleta de partículas DV dos filtros. A maior recuperação foi obtida a partir de um filtro de celulose de vidro acoplado a extrato bovino em pH 10 e com luz do mar. O resultado foi o mesmo com um DV 40 e um DV 41.
O extrato bovino em pH 10 mostrou-se superior à floculação orgânica. O método otimizado foi comparado com a adição de 25% de tripsina e com a suplementação do extrato bovino com polifosfato de sódio a 0,1%. O tratamento melhorou significativamente.
Uma recuperação de DV Uma vez dominada, esta técnica pode ser feita em 45 minutos se executada corretamente.
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Este estudo apresenta um método para otimizar a recuperação de vírus a partir de amostras de água com pequeno volume, com foco específico no adenovírus humano. A abordagem utiliza um filtro de celulose de vidro e uma técnica de concentração secundária para aumentar as taxas de recuperação.
A otimização da recuperação de vírus a partir de amostras de água de pequeno volume permite a triagem rápida de parâmetros de concentração, apoiando o desenvolvimento inicial de ensaios em virologia ambiental. O método oferece uma abordagem escalável e economicamente eficaz para avaliar combinações de filtros e eluição, reduzindo o consumo de recursos em fluxos de trabalho de detecção de patógenos pré-clínicos. Ao identificar as condições ideais para a concentração de adenovírus, a técnica aumenta a confiança preditiva em aplicações de detecção posteriores.
O método se insere no continuum de descoberta, desde a verificação inicial de hipóteses até a identificação de compostos promissores na detecção de patógenos ambientais, permitindo iteração rápida nas variáveis de concentração antes da ampliação para volumes maiores.