Name: A cultura Caenorhabditis elegans Em Axenic Liquid Media e Criação de transgênicos Worms por bombardeamento com micropartículas (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-08-02T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 26 s
Description: Aprenda a cultivar Caenorhabditis elegans em meio líquido axênico CeHR para estudos nutricionais sem interferência bacteriana. Este método permite sincronizar populações de vermes e investigar necessidades nutricionais com precisão em biologia do desenvolvimento.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Este trabalho foi financiado pelos Institutos Nacionais de HealthGrants DK85035 e DK074797 (IH).

1. Cepas Worm <ol><li> Obter C. elegans do tipo selvagem estirpes Bristol N2 a partir do Centro de Genética Caenorhabditis (CGC) (http://www.cbs.umn.edu/cgc) e mantê-los em placas NGM semeados com E. OP50 coli 7. Nota: verme transgênico cepas IQ6011 (Phrg-1 :: GFP) utilizados foram gerados como descrito anteriormente 11. IQ6011 pode ser solicitado ao autor correspondente. </li></ol> 2. Preparação de modificação C. elegans Habitação e Reprodução Médio (mCeHR) Prepare mCeHR meios líquidos, como descrito abaixo de 12. Esta mídia líquido axênica permite que os vermes a crescer sem quaisquer fontes de alimentos adicionais. Realizar todas as manipulações dos meios líquidos axênicas e worms axênicos usando condições rigorosamente estéreis, como uma capela de fluxo laminar. <ol><li> Obter leite livre de gordura ultra-pasteurizado de uma mercearia. Use o pró refrigeradoduto e não o produto a temperatura ambiente. Antes de ser utilizado na mCeHR meio, a sequência de leite em Brain Heart Infusion (BHI) em placas de agar e incubar durante 3 dias a 30 ° C e 37 ° C para verificar a esterilidade. Colocar o leite para tubos de 50 ml estéreis e armazenar a -80 ° C </li><li> Prepare a cada um dos seguintes componentes e combinar na ordem e quantidades apresentadas para preparar 1 litro de mCeHR (Tabela 1A): 10 ml de 2 mM de citrato de colina diácido, 10 ml de vitaminas e mistura de factor de crescimento (ver receita na Tabela 1B), 10 ml de 2,4 mM de mio-inositol, 10 ml de 2 mM de cloreto de hemina, 250 ml de água deionizada. Aplicar sucção e filtra-se através de uma unidade de filtro de 0,22 um. </li><li> Adicionar 20 ml da mistura de ácido nucleico (receita na Tabela 1C), 100 ml de mistura de minerais (receita na Tabela 1E), 20 ml de 170 mg / ml de hidrolisado de lactalbumina, 20 ml de aminoácidos essenciais, 10 ml de aminoácidos não essenciais Os ácidos, de 20 ml de 450 mM de KH 2 PO 4,50 ml de 1,45 M de D-glucose, 10 ml de HEPES 1 M, sal de sódio, 250 ml de água desionizada. </li><li> Aplicar sucção para filtrar esterilizar os componentes. Retire o filtro e adicionar 1 ml de 5 mg / ml de colesterol. Certifique-se que o pH do meio é de cerca de 6-6,5. Nota: Esta solução pode ser armazenada a -80 ° C durante até um ano. </li><li> Adicionar 20% (v / v), ultra-pasteurizado de leite desnatado orgânico para o meio mCeHR antes da utilização. Use técnica escrupulosamente estéril (por exemplo, numa câmara de fluxo laminar), quando a abertura e alíquotas do leite. Armazene a mídia a 4 ° C. </li></ol> 3. Prepare C. elegans para a Cultura em Axenic mCeHR Líquido Médio <ol><li> Crescer vermes em dez 60 milímetros placas NGM até há muitos vermes grávidas e uma quantidade mínima de OP50 E. coli nas placas. </li><li> Remover as minhocas de cada placa por enxaguamento com 5 ml de tampão M9 (receita na Tabela 1F), e combinar num tubo de 50 ml. </li><li> Permita que os vermes para settle, deixando o tubo em repouso durante 5 a 10 min, em seguida, remover cuidadosamente o sobrenadante contendo a E. coli. </li><li> Repita os passos 3.2 e 3.3 2x para remover tanto as bactérias residuais quanto possível, antes de continuar o procedimento. </li><li> Ressuspender as minhocas em 0,1 N de NaCl num volume que é um múltiplo de três, por exemplo, 1,5 ml, 3 ml ou 6 ml, em que os vermes individuais pode ser visto no tubo. </li><li> Branquear os vermes por adição de NaOH 5 N e de hipoclorito de sódio a 5% solução (lixívia) numa proporção de 01:02:06 para a suspensão verme. Por exemplo, 1 ml de NaOH 5 N: 2 ml de hipoclorito de sódio a 5%: 6 ml de suspensão de vírus. Misture o NaOH e branqueador antes da adição à suspensão de verme. </li><li> Vortex se vigorosamente a solução até as minhocas grávidas são dissolvidos e apenas os ovos são visíveis dentro da suspensão (cerca de 5 a 10 min). Monitorar o processo usando um microscópio de contraste de fase com uma objetiva de 10X. </li><li> Após os vermes se ter dissolvido completamente, a pelota imediatamenteovos de 800 g durante 45 segundos a 4 ° C. Remover o sobrenadante e lavar o sedimento duas vezes com 10 ml de água estéril, por centrifugação a pelota em 800 xg durante 45 seg a 4 ° C. </li><li> Após o branqueamento, transferir o sedimento de ovo a um frasco de 25 de tecido cm 2 de cultura contendo 10 ml de meio mCeHR suplementadas com 100 ug / ml de tetraciclina. Realizar este procedimento usando técnicas estéreis. Se for o caso, adicionar antibióticos adicionais, incluindo 250 ug / ml de ácido nalidíxico, para prevenir o crescimento bacteriano nas culturas líquidas axênicos. </li><li> Incubar as culturas liquidas a 20 ° C num incubador com agitação a cerca de 70 rpm. </li><li> Verificar os vermes diária observar a fase de desenvolvimento e a taxa de crescimento. Nota: Worms inicialmente crescem lentamente e exigem 7 a 10 dias para se tornar grávido. No entanto, como os vermes aclimatar ao meio líquido o tempo de geração irá diminuir a aproximadamente 4 dias para o tipo selvagem (N2) vermes. </li><li> Depois que os vermes têm desenvolvido para a fase grávida em meio líquido, a transferência da cultura para um tubo sem-fim cónico e sedimentar as minhocas a 800 xg por 5 min a 4 ° C utilizando um rotor de balde oscilante. </li><li> Remover o sobrenadante e ressuspender cuidadosamente o sedimento de vírus num volume igual de 0,1 M de NaCl. Por exemplo, utilizar 10 ml de 0,1 M de NaCl para vermes cultivados em 10 ml de mCeHR. Permita que os vermes que se contentar com 5 min no gelo. </li><li> Realizar o procedimento de clareamento, como descrito acima em passos 3,5-3,8, e permitir que os vermes a crescer para uma segunda geração nos meios líquidos axênicas. Se necessário, adicionar o antibiótico de novo para inibir o crescimento bacteriano. </li><li> Novamente permitir que os vermes se tornar prenhe então granulada e ressuspender os vermes em 0,1 M de NaCl, tal como descrito nos passos 3.12 e 3.13, então lixívia novamente como descrito nos passos de 3,5-3,8, para produzir uma população sincronizada. Crescer os vermes larvais L1 em ​​meios líquidos sem antibióticos a partir de agora. </li></ol> 4. Sincronizando Worms de líquidoCultura <ol><li> Pellet e ressuspender os vermes em NaCl 0,1 M, como descrito acima nos passos 3.12 e 3.13. Lixívia como descrito acima nos passos 3,5-3,8. </li><li> Ressuspender o sedimento de ovo em 10 ml de tampão M9 e permitir que as larvas eclodem O / N a 20 ° C num agitador de plataforma rotativa. Nota: Os ovos eclodem em larvas L1, mas não vai desenvolver ainda mais, sincronizando os vermes na fase L1. </li><li> Para manter e vermes subcultura, pelota larvas L1 a 800 xg durante 5 min, em seguida, voltar a suspender as larvas em 10 ml de mCeHR e transferência para um frasco de 25 cm 2. Permitir que os vermes a crescer a 20 ° C numa plataforma rotativa. Manter uma densidade máxima de 3.000 vermes / ml / cm 2 para garantir nutrição adequada para os vermes. Nota: Nesta fase, os antibióticos não são necessárias para manter as condições axénicas, quando os procedimentos são efectuados utilizando técnicas esterilizadas numa hote de fluxo laminar. Worms deve ser verificado diariamente para acompanhar o crescimento. </li></ol> 5. Grátiszing e descongelamento Worms para culturas Axenic Médio <ol><li> Congelar culturas vermes assíncronos axênicos ou larvas L1 sincronizado em nitrogênio líquido. Vermes pelete a 800 x g durante 5 min e em seguida ressuspender em tampão S (6,45 mM KHPO 4, 43,55 mM KHPO 4, NaCl 146,25 mM) usando 0,5 ml para cada frasco. Adicionar um volume igual de tampão de S com 30% v / v de glicerol a cada frasco e transferir os vermes para -80 ° C, antes de armazenamento a longo prazo em N2 líquido. Congelar a cerca de 1 x 10 6 por ml vermes em cada frasco. </li><li> Descongelar vermes por incubação dos tubos a 37 ° C durante aproximadamente 2 minutos até quase todo o gelo é derretido. Em uma câmara de fluxo laminar, transferir os vermes para um frasco estéril contendo mCeHR e colocá-los a 20 ° C. </li></ol> 6. Determinar o efeito de Hemin Concentração de Crescimento e Reprodução em mCeHR <ol><li> Use mídia mCeHR axênicos para ensaio de crescimento dependente de nutrientes de C. elegans. Para determinar o efeito of concentração hemina sobre o crescimento e desenvolvimento sem fim, use sincronizado vermes N2 axênicos ou outras cepas de interesse. Sincronizar larvas L1, como descrito acima na seção 4. </li><li> No dia seguinte, pelota e contar larvas L1 sincronizado e diluir a 1 verme por mL de mídia axênicas. Adicione cloreto de hemina a 10 mM em 0,3 M de NH 4 OH e ajustar a pH 8, utilizando HCl concentrado. </li><li> Adicionar 800 ul de meio mCeHR para uma placa de 24 poços. Adicionar 100 vermes para cada poço em 100 ul de meio. Adicionar cloreto de hemina a cada poço em concentrações que variam de 0 uM, 1,5 uM a 1,000 uM em triplicado. Assegurar que todos os poços contêm a mesma concentração de 0,3 M de NH 4 OH. Suavemente ressuspensas os vermes antes pipetando para assegurar que 100 larvas L1 são adicionados a cada poço. </li><li> Examine os vermes diariamente e observe o crescimento em cada concentração em cada poço. Contar o número de vermes após 9 dias de incubação e traçar o número de vermes / ml correspondem a cada hemeconcentração (Figura 1). </li></ol> 7. Efeito da Hemin Concentração em Heme Sensor Worms <ol><li> Incubar sincronizados L1 vermes sensores heme (Phrg-1 :: GFP) em mCeHR contendo 4 pM, 8 pM, 10 uM e 20 uM de hemina. </li><li> Imagem os vermes usando microscopia confocal de fluorescência, 48 pós horas de incubação (Figura 2). </li></ol> 8. Utilizando mCeHR gerar Transgênicos C. elegans Usando Microparticle Bombardeio Nota: O procedimento para a criação e a realização de bombardeamento com micropartículas usando vermes cultivados em mCeHR unc-119 (ed3) é mostrada na figura 3 13. <ol><li> Preparação Worm <ol><li> Transferir cerca de 1 x 10 6 assíncronas unc-119 (ed3 vermes) em 90 ml de meio mCeHR em um balão de 175 centímetros 2 uma semana antes do bombardeamento. Permita que os vermes a crescer a 20 ° C ona plataforma de agitação em ~ 70 rpm (Figura 3-1). Nota: Uma semana mais tarde, a densidade de sem-fim deve ser significativamente maior com diversos vermes adultos grávidos. Aproximadamente 3 x 10 7 vermes será necessária para bombardeamento com micropartículas. </li><li> Frio JM109 E. coli semeadas 10 placas NGM cm no gelo. </li><li> Transferir os vermes axênicos para dois tubos de 50 ml e centrifugar cónicas dos vermes a 800 xg durante 2 min. Aspirar o sobrenadante e ressuspender os vermes em cada tubo de 50 ml de tampão M9 (Figura 3-2). </li><li> Permita que os vermes adultos para sedimentar por gravidade por 10 a 15 min em gelo. Nota: Os sedimentos de 2 ml agora deve conter&gt; 90% vermes adultos. Este sedimento 2 ml devem ter aproximadamente 5 x 10 6 de vermes e é suficiente para um bombardeamento de micropartículas. </li><li> Casaco de toda a superfície da placa de JM109 refrigerados semeadas NGM com o sedimento de 2 ml de vermes. Deixe o líquido ser absorvido completamente em seguida, deixar a placapor 30 min no gelo antes de prosseguir (Figura 3-3). </li></ol></li><li> Preparação de partículas de ouro <ol><li> Pesar 30 mg de partículas de ouro para um tubo de microcentrífuga siliconizada. Adicionar 1 ml de etanol 70% e vortex do tubo durante 5 min. </li><li> Permitir que o tubo em repouso durante 15 min, depois, centrifugar a 6000 xg durante 10 seg para sedimentar as partículas de ouro. Retirar o sobrenadante utilizando uma pipeta, tocando cuidadosamente a ponta para o lado oposto do tubo com as partículas de ouro. </li><li> Lavar as partículas de ouro com 1 ml de água estéril, vortex durante 1 min e centrifugar brevemente o tubo a 6.000 xg durante 10 seg. Repetir o passo de lavagem, duas vezes, em seguida, voltar a suspender as partículas de ouro, em 0,5 ml de glicerol a 50% estéril. Nota: A concentração final das partículas de ouro será de 60 mg / ml e pode ser armazenado durante 1 a 2 meses a 4 ° C. </li></ol></li><li> Preparar a mistura de partículas de DNA a ouro <ol><li> Combinar 10 ug do ADN de plasmídeo desejado com 10 &amp;# 956; g do unc-119 plasmídeo de resgate em uma siliconizada 1,5 ml tubo de microcentrífuga. Adicionar 50 mL de água DI e 100 ul de solução de partículas bem ressuspenso ouro depois vórtice durante 1 min. </li><li> Adicionar 150 ul de 2,5 M CaCl2 e vortex a solução novamente durante 1 min. A esta solução, adicionar 60 ul de espermidina 0,1 M e vortex durante 3 a 5 min. </li><li> Pulso centrifugar a solução a 6.000 xg durante 10 seg, remover o sobrenadante e adicionar 300 ul de etanol a 70%. Vortex bem durante 1 min, centrifugar a 6.000 xg pulso, remove-se o sobrenadante e ressuspender em 170 ul de etanol a 100%. Vortex vigorosamente a solução durante 5 a 10 minutos, em seguida centrifuga pulso e remover o sobrenadante. </li></ol></li><li> Bombardeio (Figura 3-3) Nota: Este protocolo realiza-se com o sistema de entrega de partículas especificado na Tabela de Materiais / equipamento. Siga as instruções para o instrumento de entrega de partículas disponível. <ol> &lt;li&gt; Coloque uma folha de papel de tecido em uma placa de 15 cm. Com uma pinça, mergulhe sete macrocarriers individualmente em etanol 100% e colocá-las sobre o tecido para secar. </li><li> Limpe bem a câmara de biobalística, titular microtransportador, e placa-alvo com etanol 70%. Limpe e autoclave as telas de parada antes de cada procedimento de bombardeio. </li><li> Coloque as macrocarrriers no suporte usando uma pinça e imprensa no suporte usando a ferramenta de estar. </li><li> Uniformemente distribuído 20 ul do DNA de partículas de ouro revestidas, no centro de cada microtransportador e, em seguida, permitir que a solução seque completamente. </li><li> Limpar as duas partes do divisor de pressão com etanol e montar com etanol limpo discos de ruptura. Aperte o divisor de pressão montado e discos de ruptura na câmara de bombardeamento. </li><li> Montar uma tela de parada autoclavado com o titular da microtransportador e coloque o aparelho em cima da prateleira de metal necessárias e trava no lugar. </li><li> Insira o macr montadoAparelho ocarrier na câmara biolística na ranhura colocado abaixo do divisor de tensão e alinhar com o divisor de tensão. </li><li> Tape a placa NGM aberto com os vermes na prateleira placa-alvo e fechar a porta da câmara. </li><li> Para bombardear vermes, ajustar a pressão para que a necessária para quebrar os discos de ruptura. Ligue o vácuo de 28 polegadas de pressão de Hg, em seguida, pressione o botão de fogo até que os discos de ruptura. </li><li> Solte o vácuo e retirar a placa NGM do aparelho. Lave os vermes da placa e redistribuir em vinte placas de 10 cm NGM semeados com JM109 E. coli (Figura 3-4). </li><li> Permitir que os vermes se crescer durante 10 a 14 dias a 25 ° C e as placas de fome. Worms resgatados de defeito unc-119 terá movimento normal e pode ser identificada neste momento. Escolha pelo menos 10 &quot;tipo selvagem&quot; vermes de pratos separados para análise uma vez que estes representam linhagens transgênicas independentes (Figure 3-5). </li></ol></li></ol>

<ol><li>Kamath, R. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Systematic+functional+analysis+of+the+Caenorhabditis+elegans+genome+using+RNAi%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Systematic functional analysis of the Caenorhabditis elegans genome using RNAi.</a> Nature. 421, 231-237 (2003).</li>
<li>Nass, R., Blakely, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Caenorhabditis+elegans+dopaminergic+system%3A+opportunities+for+insights+into+dopamine+transport+and+neurodegeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+review+of+pharmacology+and+toxicology%22%5BJournal%5D)">The Caenorhabditis elegans dopaminergic system: opportunities for insights into dopamine transport and neurodegeneration.</a> Annual review of pharmacology and toxicology. 43, 521-544 (2003).</li>
<li>Lapierre, L. R., Hansen, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lessons+from+C+elegans+signaling+pathways+for+longevity%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+endocrinology+and+metabolism+TEM%22%5BJournal%5D)">Lessons from C elegans signaling pathways for longevity.</a> Trends in endocrinology and metabolism TEM. 23, 637-644 (2012).</li>
<li>Kenyon, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+plasticity+of+aging+insights+from+long-lived+mutants%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">The plasticity of aging insights from long-lived mutants.</a> Cell. 120, 449-460 (2005).</li>
<li>Vanfleteren, J. R., Braeckman, B. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+of+life+span+determination+in+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiology+of+aging%22%5BJournal%5D)">Mechanisms of life span determination in Caenorhabditis elegans.</a> Neurobiology of aging. 20, 487-502 (1999).</li>
<li>Poole, R. J., Bashllari, E., Cochella, L., Flowers, E. B., Hobert, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Genome-Wide+RNAi+Screen+for+Factors+Involved+in+Neuronal+Specification+in+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+genetics%22%5BJournal%5D)">A Genome-Wide RNAi Screen for Factors Involved in Neuronal Specification in Caenorhabditis elegans.</a> PLoS genetics. 7, e1002109(2011).</li>
<li>Stiernagle, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Maintenance+of+C+elegans+WormBook+the+online+review+of+C%5BTitle%5D)+AND+%22elegans+biology%22%5BJournal%5D)">Maintenance of C elegans WormBook the online review of C.</a> elegans biology. , 1-11 (2006).</li>
<li>Win, M. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Validated+Liquid+Culture+Monitoring+System+for+Lifespan+Extension+of+Caenorhabditis+elegans+through+Genetic+and+Dietary+Manipulations%5BTitle%5D)+AND+%22Aging+and+disease%22%5BJournal%5D)">Validated Liquid Culture Monitoring System for Lifespan Extension of Caenorhabditis elegans through Genetic and Dietary Manipulations.</a> Aging and disease. 4, 178-185 (2013).</li>
<li>Clegg, E. D., LaPenotiere, H. F., French, D. Y., Szilagyi, M. Use of CeHR Axenic Medium for Exposure and Gene Expression Studies. East Coast Worm Meeting. , (2002).</li>
<li>Severance, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome-wide+analysis+reveals+novel+genes+essential+for+heme+homeostasis+in+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+genetics%22%5BJournal%5D)">Genome-wide analysis reveals novel genes essential for heme homeostasis in Caenorhabditis elegans.</a> PLoS genetics. 6, e1001044(2010).</li>
<li>Rajagopal, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Haem+homeostasis+is+regulated+by+the+conserved+and+concerted+functions+of+HRG-1+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Haem homeostasis is regulated by the conserved and concerted functions of HRG-1 proteins.</a> Nature. 453, 1127-1131 (2008).</li>
<li>Nass, R., Hamza, I. Chapter 1 Unit 1 9. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aNass%2C+R+%22The+nematode+C.+elegans+as+an+animal+model+to+explore+toxicology+in+vivo%3A+solid+and+axenic+growth+culture+conditions+and+compound+exposure+parameters.+Current+protocols+in+toxicology+editorial+board%2C+Mahin+D.+Maines%22">The nematode C. elegans as an animal model to explore toxicology in vivo: solid and axenic growth culture conditions and compound exposure parameters. Current protocols in toxicology editorial board, Mahin D. Maines</a>. , (2007).</li>
<li>Schweinsberg, P. J., Grant, B. D. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((elegans+gene+transformation+by+microparticle+bombardment+WormBook+the+online+review+of+C%5BTitle%5D)+AND+%22elegans+biology%22%5BJournal%5D)">elegans gene transformation by microparticle bombardment WormBook the online review of C.</a> elegans biology. , 1-10 (2013).</li>
<li>Rao, A. U., Carta, L. K., Lesuisse, E., Hamza, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lack+of+heme+synthesis+in+a+free-living+eukaryote%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Lack of heme synthesis in a free-living eukaryote.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 102, 4270-4275 (2005).</li>
<li>Szewczyk, N. J., Kozak, E., Conley, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemically+defined+medium+and+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+biotechnology%22%5BJournal%5D)">Chemically defined medium and Caenorhabditis elegans.</a> BMC biotechnology. 3, 19(2003).</li>
<li>Szewczyk, N. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Delayed+development+and+lifespan+extension+as+features+of+metabolic+lifestyle+alteration+in+C+elegans+under+dietary+restriction%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+experimental+biology%22%5BJournal%5D)">Delayed development and lifespan extension as features of metabolic lifestyle alteration in C elegans under dietary restriction.</a> The Journal of experimental biology. 209, 4129-4139 (2006).</li>
<li>White, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((HRG1+is+essential+for+heme+transport+from+the+phagolysosome+of+macrophages+during+erythrophagocytosis%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+metabolism%22%5BJournal%5D)">HRG1 is essential for heme transport from the phagolysosome of macrophages during erythrophagocytosis.</a> Cell metabolism. 17, 261-270 (2013).</li>
<li>Chen, C., Samuel, T. K., Sinclair, J., Dailey, H. A., Hamza, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+intercellular+heme-trafficking+protein+delivers+maternal+heme+to+the+embryo+during+development+in+C+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">An intercellular heme-trafficking protein delivers maternal heme to the embryo during development in C elegans.</a> Cell. 145, 720-731 (2011).</li>
<li>Praitis, V., Casey, E., Collar, D., Austin, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Creation+of+low-copy+integrated+transgenic+lines+in+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">Creation of low-copy integrated transgenic lines in Caenorhabditis elegans.</a> Genetics. 157, 1217-1226 (2001).</li>
<li>Berezikov, E., Bargmann, C. I., Plasterk, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Homologous+gene+targeting+in+Caenorhabditis+elegans+by+biolistic+transformation%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+acids+research%22%5BJournal%5D)">Homologous gene targeting in Caenorhabditis elegans by biolistic transformation.</a> Nucleic acids research. 32, e40(2004).</li>
<li>Semple, J. I., Biondini, L., Lehner, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generating+transgenic+nematodes+by+bombardment+and+antibiotic+selection%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">Generating transgenic nematodes by bombardment and antibiotic selection.</a> Nature Methods. 9, 118-119 (2012).</li>
</ol>

Os autores declaram que não há concorrentes interesses financeiros ou conflitos de interesses.

Neste protocolo, apresentamos uma mCeHR mídia modificado axênica líquido que permite a rápida C. geração elegans com a produção de um grande número de vermes. Esta mídia mostra várias vantagens como os vermes são cultivados sem contaminar E. coli ou subprodutos de bactérias e pode ser explorada em estudos nutricionais e toxicológicos. O uso de E. coli ou outras bactérias em tais estudos tem vários inconvenientes. Por exemplo, o crescimento das bactérias podem mudar, sob várias condiçõ...

O nematóide do solo, Caenorhabditis elegans, é um poderoso organismo modelo utilizado em inúmeros estudos da genética à toxicologia. Como resultado do seu tamanho 1 mm de tempo de geração rápida de quatro dias, a facilidade de cultivo, e um grande número da progenitura, estes nemátodos têm sido utilizados num certo número de telas genéticos e farmacológicos 1, 2. Pesquisadores tirar proveito deste worm para identificar moléculas e vias conservadas em sistemas de vertebrados. Estas vias incluem sinais de morte celular, as vias de envelhecimento e metabolismo, e o sistema nervoso 3-6. Além disso, a transparência da C. elegans permite a geração de linhas transgénicas usando repórteres de proteínas fluorescentes, que podem ser visualizadas directamente para analisar os padrões de expressão de genes e localização de proteínas. Em muitos estudos desse nematóide é cultivado em uma superfície à base de agar sólido usando nematóide meio de crescimento placas (NGM) ou lculturas iquid semeada com Escherichia coli como uma fonte de alimento 7,8. Estas fontes alimentares bacterianas podem confundir estudos bioquímicos e toxicológicos com a interferência de bactérias subprodutos que afetam a interpretação dos resultados. A fim de evitar estes efeitos combinados, C. elegans podem ser cultivadas num meio líquido axênicos que é desprovido de bactérias como uma fonte de alimento. Usando essa mídia, cultivadas com sucesso milhões de vermes altamente sincronizadas para muitos padrão C. protocolos elegans, incluindo a análise de microarray de genes diferencialmente regulados em C. elegans expostas a diferentes concentrações de heme e a produção de vermes transgénicas usando bombardeamento de genes. Esta mídia é quimicamente definidos e modificados a partir de uma receita original formulada pelo Dr. Eric Clegg 9. Utilizando este suporte mCeHR, identificámos com sucesso genes envolvidos na homeostase do heme, que se refere a genes que respondem a heme (hrg s) 10, o qual farianão ter sido possível em condições de crescimento normais que utilizam placas de agar semeadas com E. NGM coli. Neste protocolo, descrevemos o procedimento para a introdução e manutenção de C. elegans crescidos em E. coli para o mCeHR axênica e utilizar este método para obter um grande número de vermes para a produção transgénica C. linhas elegans utilizando micropartículas bombardeio. Nós também apresentamos estudos que mostram a utilidade de usar mídia axênicos para determinar a exigência nutricional de C. elegans utilizando heme como um exemplo. Estes estudos mostram que o uso de meios de comunicação mCeHR permite o crescimento rápido de um grande número de C. elegans para muitas aplicações a jusante utilizados por pesquisadores verme.

<table><tbody><tr><td>MgCl2&#8226; 6H2O</td><td>Sigma</td><td>M-2393</td><td></td></tr><tr><td>Citrato de sódio</td><td>Sigma</td><td>S-4641</td><td></td></tr><tr><td>Citrato de potássio monohidratado</td><td>Sigma</td><td>P-1722</td><td></td></tr><tr><td>CuCl2&#8226; 2H2O</td><td>Fisher</td><td>C455-500</td><td></td></tr><tr><td>MnCl2&#8226; 4H2O</td><td>Fisher</td><td>M87-100</td><td></td></tr><tr><td>ZnCl2</td><td>Sigma</td><td>Z-0152</td><td></td></tr><tr><td>Fe(NH4)2(SO4)2&#8226; 6H2O</td><td>Sigma</td><td>F-1018</td><td></td></tr><tr><td>CaCl2&#8226; 2H2O</td><td>Fisher</td><td>C70-500</td><td></td></tr><tr><td>Adenosina 5-monofosfato, sal de sódio</td><td>Sigma</td><td>A-1752</td><td></td></tr><tr><td>Citidina 5-fosfato</td><td>Sigma</td><td>C-1006</td><td></td></tr><tr><td>Guanosina 2' - e 3' -monofosfato</td><td>Sigma</td><td>G-8002</td><td></td></tr><tr><td>Uridina 5-fosfato, sal dissódico</td><td>Sigma</td><td>U-6375</td><td></td></tr><tr><td>Timina</td><td>Sigma</td><td>T0376</td><td></td></tr><tr><td>N-Acetilglucosamina</td><td>Sigma</td><td>A3286</td><td></td></tr><tr><td>DL-Alanina</td><td>Fisher</td><td>S25648&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Ácido p-aminobenzóico</td><td>Sigma</td><td>A-9878</td><td></td></tr><tr><td>Biotina</td><td>Sigma</td><td>B-4639</td><td></td></tr><tr><td>Cianocobalamina (B-12)</td> <td>Sigma</td><td>V-2876</td><td></td></tr><tr><td>Folinato (Ca)</td> <td>Sigma</td><td>F-7878</td><td></td></tr><tr><td>Niacina</td><td>Sigma</td><td>N-0761</td><td></td></tr><tr><td>Niacinamida</td><td>Sigma</td><td>N-3376</td><td></td></tr><tr><td>Panteteína</td><td>Sigma</td><td>P-2125</td><td></td></tr><tr><td>Pantotenato (Ca)</td> <td>Sigma</td><td>P-6292</td><td></td></tr><tr><td>Ácido Pteroilglutâmico (Ácido Fólico)</td> <td>ACRCS</td><td>21663-0100</td><td></td></tr><tr><td>Piridoxal 5'-fosfato</td><td>Sigma</td><td>P-3657</td><td></td></tr><tr><td>Piridoximina 2HCl</td><td>Sigma</td><td>P-9158</td><td></td></tr><tr><td>Piridoxina HCl</td><td>Sigma</td><td>P-6280</td><td></td></tr><tr><td>Riboflavina 5-PO4(Na)</td><td>Sigma</td><td>R-7774</td><td></td></tr><tr><td>Tiamina HCl</td><td>Sigma</td><td>T-1270</td><td></td></tr><tr><td>DL-6,8-Ácido Tióctico</td><td>Sigma</td><td>T-1395</td><td></td></tr><tr><td>KH2PO4</td><td>Sigma</td><td>P-5379</td><td></td></tr><tr><td>Citrato de colina di-ácido</td><td>Sigma</td><td>C-2004</td><td></td></tr><tr><td>myo-Inositol</td><td>Sigma</td><td>I-5125</td><td></td></tr><tr><td>D-Glicose</td><td>Sigma</td><td>G-7520</td><td></td></tr><tr><td>Hidrolisado enzimático de lactalbumina</td><td>Sigma</td><td>L-9010</td><td></td></tr><tr><td>Infusão de coração cerebral</td><td>BD</td><td>211065</td><td></td></tr><tr><td>cloreto de hemina</td><td>Frontier Scientific</td><td>H651-9</td><td></td></tr><tr><td>HEPES, sal de sódio</td><td>Sigma</td><td>H-3784</td><td></td></tr><tr><td>Colesterol</td><td>J.T. Baker</td><td>F676-05</td><td></td></tr><tr><td>MEM Aminoácidos Não Essenciais</td><td>Invitrogen</td><td>11140-076</td><td></td></tr><tr><td>MEM Solução de Aminoácidos</td><td>Invitrogen</td><td>11130-051</td><td></td></tr><tr><td>Sal de sódio de ácido nalidíxico</td><td>Sigma</td><td>N4382</td><td></td></tr><tr><td>Cloridrato de Tetraciclina</td><td>MP Biomedicals</td><td>2194542</td><td></td></tr><tr><td>Sistema de Entrega Biolística</td><td>BioRad</td><td>165-2257</td><td></td></tr><tr><td>Partículas de ouro (Au Powder)&nbsp;</td><td>&nbsp; Sistemas materiais eletrônicos ferro</td><td>6420 2504, JZP01010KM</td><td></td></tr><tr><td>ou</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>partículas de ouro 1,0 &mu; m</td><td>BioRad</td><td>&nbsp; 165-2263</td><td></td></tr></tbody></table>

a cultura caenorhabditis elegans em axenic liquid media e criação de transgênicos worms por bombardeamento com micropartículas

Culturing Caenorhabditis elegans in Axenic Liquid Media and Creation of Transgenic Worms by Microparticle Bombardment

Neste protocolo, apresentamos os materiais necessários, bem como o procedimento para a tomada de C modificado. Legans e habituação e de reprodução da mídia (mCeHR). Além disso, as etapas para expor e aclimatação C. elegans crescidos em E. coli para axênica meios líquidos são descritos. Finalmente, experimentos a jusante que utilizam axênica C. elegans ilustrar os benefícios deste procedimento. A capacidade de analisar e determinar C. elegans exigência nutricional foi ilustrada pelo crescimento N2 tipo selvagem vermes em meio líquido axênicos com concentrações variadas de heme. Este procedimento pode ser replicado com outros nutrientes para determinar a concentração óptima para o crescimento e desenvolvimento de sem-fim ou, para determinar os efeitos toxicológicos de tratamentos com drogas. Os efeitos da concentração do heme variadas sobre o crescimento de tipo selvagem vermes foram determinados por meio de observação microscópica qualitativa e quantificando tele número de vermes que cresciam em cada concentração de heme. Além disso, o efeito de concentrações variadas de nutrientes pode ser ensaiada utilizando vermes que expressam sensores fluorescentes que respondem a alterações nos teores de nutrientes de interesse. Além disso, um grande número de vermes foram facilmente produzida para a geração de C. elegans transgénicos utilizando bombardeamento com micropartículas.

Cultivar C. elegans em axênicos ajudas meio líquido na determinação de nutrientes que são necessários por vermes, sem a interferência de metabólitos secundários produzidos por E. coli. Vermes de tipo selvagem N2 aclimatar a mídia mCeHR dentro de três gerações e mostrar um crescimento comparável a vermes cultivadas em placas bacterianas NGM. Na verdade, esses vermes se tornar grávida dentro de 4 dias, em comparação com 3,5 dias para vermes cultivadas em OP50 bactérias. Uma v...

C. elegans é normalmente cultivadas em placas de agar sólido ou em meio líquido semeadas com E. coli. Para evitar subprodutos bacterianos de confundir os estudos toxicológicos e nutricionais, utilizamos um meio líquido axênico, CEHR, para crescer e sincronizar um grande número de vermes para uma gama de aplicações a jusante.

A cultura Caenorhabditis elegans Em Axenic Liquid Media e Criação de transgênicos Worms por bombardeamento com micropartículas

In this protocol, we present the required materials, and the procedure for making modified&#160;C. elegans&#160;Habituation and Reproduction media ...

O objetivo geral deste procedimento é introduzir e aumentar a elegância do mar em meios líquidos CENIC para inúmeras aplicações a jusante. Isso é feito primeiro branqueando vermes graves de placas de ágar famintas. A segunda etapa do procedimento é transferir os óvulos liberados para o MCHR com antibióticos e permitir que eles se desenvolvam até o estágio grave, o que pode levar de sete a 10 dias.O terceiro passo é branquear as sepulturas e permitir que elas se desenvolvam uma segunda vez até o estágio de sepultura sem antibióticos adicionais. A etapa final é sincronizar os vermes Axe e utilizá-los para estudos nutricionais que examinam o crescimento e o desenvolvimento dos vermes. Em última análise, os resultados mostram que a elegância selvagem do tipo C cresce bem em meios líquidos de machado e o meio M-C-E-H-R pode ser utilizado para examinar as necessidades nutricionais dos vermes sem subprodutos bacterianos.A principal vantagem dessa técnica sobre os métodos existentes, como o cultivo de vermes em placas de ágar ou em meio líquido com bactérias, é que os efeitos de elementos nutricionais ou toxinas podem ser testados sem confundir os subprodutos bacterianos. Geralmente, os indivíduos novos neste método terão dificuldades devido à preparação do meio e à adaptação inicial dos vermes ao meio líquido EMIC. Este procedimento descreve a preparação de meios líquidos M-C-E-H-R-A que permitem que a elegância C cresça sem uma fonte de alimento bacteriano.Usando uma técnica rigorosamente estéril sob um capô, misture os componentes do M-C-E-H-R na seguinte ordem. Comece com colina, citrato de ácido diacínico e siga com a vitamina e o fator de crescimento. Misture o mioacetol, o cloreto humano e, por último, adicione água DI Filtre a mistura M-C-E-H-R através de um filtro de 0,22 mícron com sucção.Em seguida, na seguinte ordem, adicione o ácido nucléico, misture a mistura mineral, lact, albumina, hidrolisado, aminoácidos essenciais, aminoácidos não essenciais, fosfato de potássio, deg, pilha de glicose, sal de sódio e água DI. Agora filtre a mistura novamente com sucção. Após a filtragem, adicione colesterol ao meio e verifique o pH de uma alíquota do meio.O pH deve estar entre seis e 6,5. Se a solução foi feita corretamente, adicione um volume de 20% do leite pasteurizado ao meio M-C-E-H-R usando uma técnica escrupulosa e estéril. Armazene a mídia a quatro graus Celsius.Tenha pronto 10 placas NGM de 60 milímetros cheias de vermes GR que consumiram a maior parte do OP 50 E coli disponível. Enxágue esses vermes em um tubo cônico de 50 mililitros. Usando cinco mililitros de tampão M nove por placa, deixe os vermes assentarem e, em seguida, remova cuidadosamente o sobrenadante.Repita isso, enxágue mais duas vezes adicionando M nove tampão, permitindo que os vermes assentem e removendo o sobrenadante, em seguida, adicione seis volumes de cloreto de sódio normal 0,1 ao agregado de vermes agora em comparação com a suspensão de vermes, prepare uma mistura de um volume de cinco hidróxido de sódio normal e dois volumes de alvejante fresco. Solução Alvejar os vermes adicionando esta mistura à suspensão. Em seguida, o vórtice, a mistura até que os vermes graves sejam dissolvidos e apenas os ovos permaneçam na suspensão.Isso leva entre cinco e 10 minutos. Use microscopia de contraste de fase com uma objetiva de 10 x para monitorar essa reação no tubo. Uma vez isolados os ovos, pelete-os a 800 G por 45 segundos e a quatro graus Celsius, aspire o sobrenadante e lave o pellet duas vezes em 10 mililitros de água estéril no exaustor, repita a centrifugação e aspiração para esses enxágues.Em seguida, ressuspenda o pellet de ovo com meio M-C-E-H-R e transfira os ovos liberados para um frasco de cultura de tecidos. Adicionar 100 microgramas por mililitro de tetraciclina aos ovos no balão. Esta etapa deve ser realizada em uma capela de fluxo laminar.Usando técnicas rigorosamente estéreis, transfira as culturas líquidas para uma incubadora de 20 graus Celsius e cultive-as em uma plataforma orbital. Shaker a 70 RPM monitora o desenvolvimento de vermes diariamente. Após sete a 10 dias, o verme deve se desenvolver para o estágio Ravi, transferir os vermes para um tubo cônico e pellet-los a 800 G por cinco minutos a quatro graus Celsius em um rotor de caçamba oscilante.Depois de aspirar o sobrenadante, ressuspenda o pellet de verme em um volume de cloreto de sódio 0,1 molar e deixe os vermes assentarem no gelo por cinco minutos. Agora, repita o procedimento de branqueamento mencionado acima e cultive os ovos no meio líquido cênico. Como antes, é essencial que técnicas estéreis sejam utilizadas ao cultivar os vermes aliados.Evitar o uso de antibióticos garante que as culturas de elegância do mar estejam realmente livres de bactérias contaminantes. Quando o processo de cultura é repetido, a segunda geração emite a tetraciclina do meio. Neste ponto, as culturas sincronizadas podem ser preparadas para sincronização.Adicione 10 mililitros de tampão M nine aos ovos liberados após o branqueamento dos vermes GR e deixe-os eclodir durante a noite a 20 graus Celsius em uma plataforma orbital. Agite no dia seguinte, pelete as larvas a 800 G por cinco minutos e ressuspenda as larvas L one. Em 10 mililitros de M-C-E-H-R, transfira a suspensão para um frasco de 25 centímetros quadrados e cresça-os até sua densidade máxima.Verificar o crescimento dos vermes a cada poucos dias é necessário para garantir que os vermes não fiquem muito lotados e esgotem os nutrientes disponíveis no meio. Para armazenar uma cultura de vermes axen, suspenda novamente um pellet de vermes em 0,5 mililitros de tampão S em frascos de armazenamento, adicione um volume de tampão S com 30% de glicerol. Em seguida, transfira os frascos para 80 graus Celsius negativos, seguido de armazenamento de longo prazo em nitrogênio líquido para descongelar os vermes incubar o frasco a 37 graus Celsius até que quase todo o gelo derreta, o que leva cerca de dois minutos.Em seguida, sob condições estéreis, transfira-os de volta para o meio M-C-E-H-R. Uma vantagem do uso do M-C-E-H-R foi observada em estudos que examinam a necessidade exata de nutrientes no desenvolvimento do verme. Os vermes foram cultivados em M-C-E-H-R suplementado com quantidades crescentes de heme para determinar níveis baixos e tóxicos de heme.Além disso, uma cepa repórter inversamente responsiva ao heme foi utilizada para avaliar indiretamente o status do heme dos vermes em uma faixa menor de concentrações. Esses vermes cultivados em quatro heme micromolar mostraram alta fluorescência, indicando que os vermes estavam em um ambiente de baixo heme. Quando a concentração de heme foi aumentada para oito micromolares, a expressão de GFP diminuiu.Quando a concentração de heme foi aumentada para 10 micromolares, os vermes mostraram muito pouca expressão de GFP e a 20 micromolares de heme, eles não mostraram expressão de GFP. Ao tentar este procedimento, é importante lembrar de usar técnicas escrupulosamente estéreis para garantir que as culturas sejam êmicas e evitar a contaminação bacteriana. Depois de assistir a este vídeo, você deve ser capaz de fazer com que a MCEHR estabeleça e mantenha culturas de elegância do mar xenex que podem ser utilizadas para um grande número de aplicações, que exigem um grande número de elegância do mar.

culturing-caenorhabditis-elegans-axenic-liquid-media-creation

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Este vídeo demonstra a técnica de microinjeção no gônadas de C. elegans para criar animais transgênicos.

Geração de transgênicos Estável C. elegans Usando microinjeção

Worms transgênicos são comumente usados...

Geração de transgênicos C. elegans Por biobalística Transformação

Este vídeo descreve os princípios por trás do tratamento com RNAi em C. elegans e demonstra um protocolo para derrubar o lin-35 em uma cepa de verme transgênico.

Plaqueamento de RNAi para alimentação de C. elegans: uma técnica para induzir a expressão de dsRNA alvo em E. coli

Nós descrevemos métodos para estudar aspectos da amylopathies do...

A<em&gt; Caenorhabditis elegans</em&gt; Sistema Modelo para Estudo Amylopathy

Descrevemos aqui um protocolo revisto para a cultura em grande escala de embrionário C. elegans células. Embryonic C. elegans células cultivadas in vitro utilizando este método, parece diferenciar e recapitular a expressão de genes de uma forma específica de célula. As técnicas que necessitem de acesso directo para as células ou o isolamento de tipos específicos de células a partir de outros tecidos podem ser aplicadas em C. elegans células cultivadas.

Um Método para o cultivo embrionário<em&gt; C. elegans</em&gt; Células

Este protocolo descreve um procedimento rápido e de baixo consumo de material para a integração de matrizes extracromossômicas transgênicas no genoma de Caenorhabditis elegans usando irradiação ultravioleta (UV). Além disso, este protocolo é particularmente adequado para linhas transgênicas que transmitem matrizes extracromossômicas em alta taxa.

Um protocolo rápido para integrar matrizes extracromossômicas com alta taxa de transmissão no genoma de C. elegans

Este protocolo descreve como estudar processos celulares durante a conversão de destino célula em Caenorhabditis elegans in vivo. Usar animais transgénicos, permitindo que o calor-choque orientada por promotor superexpressão do factor de transcrição destino indutor de neurônio-1 e mediada por RNAi depleção da cromatina-regulação fator LIN-53 células germinativas para reprogramação do neurônio pode ser observado na vivo.<br...

Aplicação de RNAi e calor-choque-induzida expressão de fator de transcrição para reprogramar as células germinativas de neurônios em c. elegans

O nematode geneticamente tratável Caenorhabditis elegans pode ser usado como um modelo simples e barato para a descoberta de drogas. Descrito aqui é um protocolo para identificar terapêutica anticancerígenas que inibem a sinalização a jusante das proteínas RAS e EGFR.

Identificação de Inibidores EGFR e RAS utilizando elegans caenorhabditis

Os nematoides entomopatômicos vivem em simbiose com bactérias e, juntos, infectam com sucesso insetos, minando seu sistema imunológico inato. Para promover pesquisas com base genética na infecção por nematoides, são descritos métodos de manutenção e manipulação genética de nematoides entomopatômicos.

Culturing e Geneticamente Manipulação Nematodes Entomopatômicos

Este protocolo descreve uma interrupção de 96 poços de caenorhabditis colonizada individualmente elegans após paralisia fria e branqueamento superficial para remover bactérias externas. A suspensão resultante é emplacada em placas de ágar para permitir quantificação precisa e média de carga bacteriana em um grande número de vermes individuais.

Usando dados de verme único para quantificar a heterogeneidade em Interações elegans-bacterianas de Caenorhabditis

Aqui, apresentamos um protocolo para cultura de isolados de nematoides individuais em meio sólido para rastreamento de parâmetros fisiológicos ao longo da vida e quantificação de fluorescência. Este sistema de cultura inclui uma barreira de ácido palmítico ao redor de poços de verme único para evitar a fuga de animais, permitindo o uso de intervenções aversivas, incluindo bactérias patogênicas e estressores químicos.

Cultura de Longo Prazo de Caenorhabditis elegans Individuais em Meio Sólido para Monitoramento Longitudinal de Fluorescência e Intervenções Aversivas

Aprenda a cultivar Caenorhabditis elegans em meio líquido axênico CeHR para estudos nutricionais sem interferência bacteriana. Este método permite sincronizar populações de vermes e investigar necessidades nutricionais com precisão em biologia do desenvolvimento.

A cultura Caenorhabditis elegans Em Axenic Liquid Media e Criação de transgênicos Worms por bombardeamento com micropartículas

Explorar mais vídeos