Name: Organotypische Slice culturen om te studeren Oligodendrocyte Dynamics en Myelination (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-08-25T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 45 s
Description: Leer organotypische sliceculturen voor het bestuderen van oligodendrocyt-dynamiek en myelinisatie met behulp van hersen- en cerebellumsneden van muizen. Deze methode behoudt weefselarchitectuur en maakt tijdopnamebeeldvorming mogelijk.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dit werk werd gefinancierd door subsidies van de National Multiple Sclerosis Society (RG4179 aan A.N.), de National Institutes of Health (NIH R01NS073425 en R01NS074870 aan A.N.) en de National Science Foundation (A.N.). We danken Dr. Frank Kirchhoff (Universiteit van Saarland, Homburg Duitsland) voor het verstrekken van PLPDsRed transgene muizen. We danken Youfen Sun voor haar hulp bij het onderhouden van de transgene muizenkolonie.

OPMERKING: Alle dierlijke procedures worden volgens de richtlijnen en hebben door de Institutional Animal Care en gebruik Comite (IACUC) aan de Universiteit van Connecticut is goedgekeurd. LET OP: Voor deze experimenten constitutieve NG2cre 18 (JAX # 008533) en induceerbare NG2creER 16 (JAX # 008538) transgene muizen gekruist tot Z / EG 19 (JAX # 003920) of gtRosa26: YFP reporter 20 (JAX # 006148) lijnen respectievelijk werden gebruikt om beeld NG2 cellen en hun nageslacht. Om het beeld mature oligodendrocyten, PLPDsRed transgene muizen 21 werden gebruikt. Voor een constante overleving, kunnen segmenten worden geïsoleerd uit muizen tot postnatale dag 10 van zowel de voorhersenen en cerebellum. 1 Slice Voorbereiding <ol><li> In een cultuur kap, plaats weefselkweek inserts in zes putjes en voeg 1 ml slice kweekmedium (recept in reagentia sectie). Plaats de platen in de celkweek incubator bij 37 ° C met 5% CO 2 minstens 2 uur vóór dissectie. </li><li> Steriliseren alle gereedschappen en weefsel chopper met 70% ethanol. </li><li> Bubble dissectie buffer (recept reagentia punt) met 95% O2, 5% CO2 op ijs gedurende ten minste 15 minuten voor het begin van dissectie. </li><li> Verdoven muis pups door ze op ijs gedurende 5-10 minuten volgens de goedgekeurde dieren protocollen. Vast te stellen de juiste diepte van de anesthesie door te bevestigen dat de muizen niet reageren op de staart en teen knijpen. </li><li> Onthoofden dieren met behulp van een scherpe schaar volgende dierlijke protocollen. Verwijder snel de schedel over de voorhersenen en cerebellum door eerst een sagittale snede gevolgd door laterale incisie, met gesteriliseerde instrumenten. Knip craniale zenuwen van het ventrale oppervlak van de hersenen en kleine hersenen door voorzichtig rollen het weefsel aan de zijkant. </li><li> Plaats weefsel in een steriele 35 mm schotel met ijskoude geoxygeneerde dissectie buffer. </li><li> Met behulp van een scheermesje, verbreken het cerebellum en de voorhersenen. Maak dan een mid-sagittale cut through de voorhersenen en het cerebellum, het scheiden van de hemisferen. </li><li> Snijd 300 micrometer dikke coronale en sagittale delen van de voorhersenen en het cerebellum met een handmatige tissue chopper. OPMERKING: Een handmatige weefsel chopper maakt een snelle verwerking van dissectie tot cultuur incubatie zonder de noodzaak voor agarose inbedding. Een vibratome kan ook worden gebruikt zoals hiervoor beschreven 9. </li><li> Transfer gescheiden plakjes in vers borrelen koude dissectie buffer op ijs. </li><li> Gebruik kleine ontleden of wegen spatels om individuele secties te scheiden en over te brengen naar zes goed gerechten met cultuur inserts voorgeïncubeerde. </li><li> Overtollige buffer dissectie van het oppervlak van de kweek inzetstuk met een wegwerpbare pipet of P 200 pipet tip. Twee tot drie voorhersenen of drie cerebellaire schijfjes kan op de ene cultuur insert geplaatst worden. OPMERKING: Voor consistente resultaten met voorhersenen culturen, is het ideaal om plakjes te nemen verspreid over de voorste een derde van het corpus callosum(Figuur 1A) om zowel grijze en witte stof gebieden bestuderen in hetzelfde segment. Elk dier levert meestal 6 voorhersenen plakjes en 6 cerebellum plakjes. </li><li> Plaats de zes well platen in de incubator en vervang het segment medium met 1 ml medium slice 1 dag na slice voorbereiding en vervolgens om de dag tot slice fixatie. </li><li> Afhankelijk van het experiment gebruikt plakjes na 5-7 dagen kweek. Gebruik alleen schijven die transparant na de eerste paar dagen geworden en gooi die ongelijke ondoorzichtige gebieden hebben. OPMERKING: Ondoorzichtige regio&#39;s binnen schijfjes zijn zichtbaar met het blote oog en verschijnen als een klomp van donkere cellen onder fase contrast. Nadat de techniek beheerst, overleden ondoorzichtige segmenten zelden voorkomen, bij minder dan 1,5% van segmenten. </li></ol> 2 Time-lapse imaging van NG2 celdeling en Oligodendrocyte Differentiatie OPMERKING: Om time lapse imaging van NG2 cel proliferatie en differentiatie te voeren gebruiken we NG2cre: ZEG muizen 16die EGFP uitdrukken in NG2 cellen en hun nakomelingen (figuur 1C-E). Reporter expressie in deze lijn voldoende robuust om live beelden van GFP + cellen in plakken direct na het snijden gedurende een periode van ten minste vier weken verkrijgen. De duidelijkste beelden worden verkregen na de eerste verdunning periode van het deel, die optreedt gedurende de eerste 3-5 dagen in kweek. <ol><li> Gedurende het experiment houdt de plakken in een cel incubator bij 37 ° C en verwijderen slechts korte tijd (minder dan 15 minuten per segment), waarbij het deksel op de zes wells plaat tijdens beeldvorming. </li><li> Met behulp van een omgekeerde fluorescentiemicroscoop uitgerust met een digitale camera beelden opnemen op het eerste tijdstip met een 10X objectief. OPMERKING: De eerste keer punten zal verschillen per experiment en kan de dag waarop de schijfjes werden bereid of enig tijdstip na zijn. </li><li> Leg beelden van verschillende gebieden op tijdstip een in zowel grijze en witte stof gebieden van het segment. Opmerking the regio afgebeeld door specifieke oriëntatiepunten binnen het segment en in kaart brengen van het beeld locatie op een schema dat kan worden gebruikt voor verdere beeldvorming sessies. Handige oriëntatiepunten kunnen bestaan ​​randen van de plakjes en / of oriëntatie van witte stof traktaten. Afbeelding 4-8 locaties op elk plakje op elk tijdstip. </li><li> Leg volgende opnamen met een interval van 4-6 uur of behandeling NG2 celdeling en oligodendrocyt differentiatie, idealiter via 5-7 dagen. </li><li> Leg een laatste beeld van alle regio&#39;s en bevestig de plakjes onmiddellijk. Voeg 1 ml fixeermiddel (4% PFA met 0,1 M L-lysine 0,01 M natrium meta-perjodaat) aan de onderkant van de kweekinsert, voeg nog eens 1 ml bovenop de segmenten. Zorg ervoor dat u de fixerende direct spuiten op het schijfje als het kan los van het membraan. Fix het weefsel voor 30 min en verder te gaan met behulp van immunohistochemie ontwikkelingsstadium-specifieke markers zoals beschreven in paragraaf 4. </li><li> Was segmenten met 0,2 M natriumfosfaatbuffer 3 x 10 m. Indien nodig, opslag segmenten bij 4 ° C in 0,2 M natriumfosfaatbuffer gedurende 1-3 dagen voor immunokleuring maar idealiter kleuring voeren binnen 24 uur. Doorgaan met immunohistochemie zoals hieronder beschreven in punt 4 van het aandeel van de cellen die zijn gedifferentieerd in oligodendrocyten (figuur 2D-F) te bepalen. </li></ol> 3 Fate Mapping van NG2 cel Nageslacht Met behulp Inducible Reporter transgene muizen in Slice Culturen OPMERKING: Om het lot van NG2 cellen te volgen vanaf een bepaald tijdstip in de cultuur, induceerbare NG2creER: kan YFP transgene muizen worden gebruikt. <ol><li> Laten Cre recombinatie en reporter expressie door toevoeging van 100 nM 4OHT opgelost in ethanol aan het kweekmedium. OPMERKING: Reporter positieve cellen moeten verschijnen binnen 1-2 dagen bij een inductie efficiëntie van ~ 20-25% YFP- + NG2 + / NG2 + cellen en op dit tijdstip zullen allemaal cellen op de NG2 cel stadium (Figuur 2A-C) </li><li> Fix en was de snees op verschillende tijdstippen na diverse manipulaties (beschreven in secties 2.5 en 2.6). </li></ol> 4 Slice Immunohistochemistry <ol><li> Snijd de membranen met de plakjes bijgevoegde uit de inserts met behulp van een scalpel. </li><li> Transfer segmenten individuele putjes van een 24 wells plaat met fosfaat gebufferde zoutoplossing (PBS) met een set van pincet, verzorgen de samenstelling van het segment niet te verstoren bij het ophalen van het membraan. </li><li> Breng de segmenten een 24 wells plaat met blokkerende oplossing met 5% normaal geitenserum (NGS) en 0,1% Triton-X100 in PBS gedurende 1 uur. </li><li> Incubeer de segmenten in primaire antilichaam O / N in 5% NGS in PBS bij 4 ° C. Voor het identificeren van cellen in de NG2 cel stadium gebruiken antilichamen tegen NG2 en PDGFRα. Voor het identificeren van gedifferentieerde oligodendrocyten, maken gebruik van een antilichaam tegen het adenomateuze polyposis coli antigeen (APC; kloon CC1). </li><li> Op de tweede dag was plakjes in PBS 3 x15 min, daarna broeden in het voortgezet Antibosterft in 5% NGS in PBS gedurende 1 uur bij kamertemperatuur. Was plakjes in PBS 3 x15 min en monteren op dia&#39;s. Monteer met plakjes op en membraan waarmee de dia, zodat het membraan niet zal zijn tussen de doelstelling en het weefsel. </li></ol>

<ol><li>Stoppini, L., Buchs, P. A., Muller, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+method+for+organotypic+cultures+of+nervous+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience+Methods%22%5BJournal%5D)">A simple method for organotypic cultures of nervous tissue.</a> Journal of Neuroscience Methods. 37 (2), (1991).</li>
<li>Gogolla, N., Galimberti, I., DePaola, V., Caroni, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+organotypic+hippocampal+slice+cultures+for+long-term+live+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">Preparation of organotypic hippocampal slice cultures for long-term live imaging.</a> Nature Protocols. 1 (3), 1165-1171 (2006).</li>
<li>Gähwiler, B. H., Capogna, M., Debanne, D., McKinney, R. A., Thompson, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organotypic+slice+cultures%3A+a+technique+has+come+of+age%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+Neurosciences%22%5BJournal%5D)">Organotypic slice cultures: a technique has come of age.</a> Trends in Neurosciences. 20 (10), 471-477 (1997).</li>
<li>Yamamoto, N., Kurotani, T., Toyama, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural+connections+between+the+lateral+geniculate+nucleus+and+visual+cortex+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Neural connections between the lateral geniculate nucleus and visual cortex in vitro.</a> Science. 245 (4914), 192-194 (1989).</li>
<li>Bahr, B. A., Kessler, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stable+maintenance+of+glutamate+receptors+and+other+synaptic+components+in+long-term+hippocampal+slices%5BTitle%5D)+AND+%22Hippocampus%22%5BJournal%5D)">Stable maintenance of glutamate receptors and other synaptic components in long-term hippocampal slices.</a> Hippocampus. 5 (5), 425-439 (1995).</li>
<li>Noctor, S. C., Flint, A. C., Weissman, T. A., Dammerman, R. S., Kriegstein, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neurons+derived+from+radial+glial+cells+establish+radial+units+in+neocortex%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Neurons derived from radial glial cells establish radial units in neocortex.</a> Nature. 409 (6821), 714-720 (2001).</li>
<li>Noctor, S. C., Martínez-Cerdeño, V., Ivic, L., Kriegstein, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cortical+neurons+arise+in+symmetric+and+asymmetric+division+zones+and+migrate+through+specific+phases%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Cortical neurons arise in symmetric and asymmetric division zones and migrate through specific phases.</a> Nature Neuroscience. 7 (2), (2004).</li>
<li>Kapfhammer, J. P., Gugger, O. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+analysis+of+purkinje+cell+dendritic+morphology+in+organotypic+slice+cultures%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments+JoVE%22%5BJournal%5D)">The analysis of purkinje cell dendritic morphology in organotypic slice cultures.</a> Journal of Visualized Experiments JoVE. (61), (2012).</li>
<li>Elias, L., Kriegstein, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organotypic+slice+culture+of+E18+rat+brains%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments+JoVE%22%5BJournal%5D)">Organotypic slice culture of E18 rat brains.</a> Journal of Visualized Experiments JoVE. (6), e235(2007).</li>
<li>Nishiyama, A., Komitova, M., Suzuki, R., Zhu, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polydendrocytes+%28NG2+cells%29%3A+multifunctional+cells+with+lineage+plasticity%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Polydendrocytes (NG2 cells): multifunctional cells with lineage plasticity.</a> Nature Reviews Neuroscience. 10 (1), 9-22 (2009).</li>
<li>Haber, M., Vautrin, S., Fry, E. J., Murai, K. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subtype-specific+oligodendrocyte+dynamics+in+organotypic+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Glia%22%5BJournal%5D)">Subtype-specific oligodendrocyte dynamics in organotypic culture.</a> Glia. 57 (9), 1000-1013 (2009).</li>
<li>Bin, J. M., Leong, S. Y., Bull, S. -J., Antel, J. P., Kennedy, T. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oligodendrocyte+precursor+cell+transplantation+into+organotypic+cerebellar+shiverer+slices%3A+a+model+to+study+myelination+and+myelin+maintenance%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+one%22%5BJournal%5D)">Oligodendrocyte precursor cell transplantation into organotypic cerebellar shiverer slices: a model to study myelination and myelin maintenance.</a> PloS one. 7 (7), (2012).</li>
<li>Birgbauer, E., Rao, T. S., Webb, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lysolecithin+induces+demyelination+in+vitro+in+a+cerebellar+slice+culture+system%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience+Research%22%5BJournal%5D)">Lysolecithin induces demyelination in vitro in a cerebellar slice culture system.</a> Journal of Neuroscience Research. 78 (2), 157-166 (2004).</li>
<li>Harrer, M. D., von Budingen, H. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live+imaging+of+remyelination+after+antibody-mediated+demyelination+in+an+ex+model+for+immune+mediated+CNS+damage%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Neurology%22%5BJournal%5D)">Live imaging of remyelination after antibody-mediated demyelination in an ex model for immune mediated CNS damage.</a> Experimental Neurology. 216 (2), 431-438 (2009).</li>
<li>Fancy, S. P. J., Harrington, E. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Axin2+as+regulatory+and+therapeutic+target+in+newborn+brain+injury+and+remyelination%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Axin2 as regulatory and therapeutic target in newborn brain injury and remyelination.</a> Nature Neuroscience. 14 (8), 1009-1016 (2011).</li>
<li>Zhu, X., Hill, R. A., Dietrich, D., Komitova, M., Suzuki, R., Nishiyama, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Age-dependent+fate+and+lineage+restriction+of+single+NG2+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Age-dependent fate and lineage restriction of single NG2 cells.</a> Development. 138 (4), 745-753 (2011).</li>
<li>Hill, R. A., Patel, K. D., Medved, J., Reiss, A. M., Nishiyama, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NG2+Cells+in+White+Matter+But+Not+Gray+Matter+Proliferate+in+Response+to+PDGF%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">NG2 Cells in White Matter But Not Gray Matter Proliferate in Response to PDGF.</a> Journal of Neuroscience. 33 (36), 14558-14566 (2013).</li>
<li>Zhu, X., Bergles, D. E., Nishiyama, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NG2+cells+generate+both+oligodendrocytes+and+gray+matter+astrocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">NG2 cells generate both oligodendrocytes and gray matter astrocytes.</a> Development. 135 (1), 145-157 (2008).</li>
<li>Novak, A., Guo, C., Yang, W., Nagy, A., Lobe, C. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Z%2FEG%2C+a+double+reporter+mouse+line+that+expresses+enhanced+green+fluorescent+protein+upon+Cre-mediated+excision%5BTitle%5D)+AND+%22Genesis%22%5BJournal%5D)">Z/EG, a double reporter mouse line that expresses enhanced green fluorescent protein upon Cre-mediated excision.</a> Genesis. 28 (3-4), 147-155 (2000).</li>
<li>Soriano, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generalized+lacZ+expression+with+the+ROSA26+Cre+reporter+strain%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Genetics%22%5BJournal%5D)">Generalized lacZ expression with the ROSA26 Cre reporter strain.</a> Nature Genetics. 21 (1), 70-71 (1999).</li>
<li>Hirrlinger, P. G., Scheller, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+reef+coral+fluorescent+proteins+in+the+central+nervous+system+of+transgenic+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+and+Cellular+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Expression of reef coral fluorescent proteins in the central nervous system of transgenic mice.</a> Molecular and Cellular Neuroscience. 30 (3), 291-303 (2005).</li>
<li>Nave, K. -A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myelination+and+support+of+axonal+integrity+by+glia%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Myelination and support of axonal integrity by glia.</a> Nature. 468 (7321), 244-252 (2010).</li>
<li>Rivers, L. E., Young, K. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PDGFRA%2FNG2+glia+generate+myelinating+oligodendrocytes+and+piriform+projection+neurons+in+adult+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">PDGFRA/NG2 glia generate myelinating oligodendrocytes and piriform projection neurons in adult mice.</a> Nature Neuroscience. 11 (12), 1392-1401 (2008).</li>
<li>Dimou, L., Simon, C., Kirchhoff, F., Takebayashi, H., Gotz, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Progeny+of+Olig2-expressing+progenitors+in+the+gray+and+white+matter+of+the+adult+mouse+cerebral+cortex%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Progeny of Olig2-expressing progenitors in the gray and white matter of the adult mouse cerebral cortex.</a> The Journal of Neuroscience. 28 (41), 10434-10442 (2008).</li>
<li>Kang, S. H., Fukaya, M., Yang, J. K., Rothstein, J. D., Bergles, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NG2%2B+CNS+glial+progenitors+remain+committed+to+the+oligodendrocyte+lineage+in+postnatal+life+and+following+neurodegeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">NG2+ CNS glial progenitors remain committed to the oligodendrocyte lineage in postnatal life and following neurodegeneration.</a> Neuron. 68 (4), 668-681 (2010).</li>
<li>Ioannidou, K., Anderson, K. I., Strachan, D., Edgar, J. M., Barnett, S. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Time-lapse+imaging+of+the+dynamics+of+CNS+glial-axonal+interactions+in+vitro+and+ex+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+one%22%5BJournal%5D)">Time-lapse imaging of the dynamics of CNS glial-axonal interactions in vitro and ex vivo.</a> PloS one. 7 (1), e30775(2012).</li>
<li>Ghoumari, A. M., Baulieu, E. E., Schumacher, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Progesterone+increases+oligodendroglial+cell+proliferation+in+rat+cerebellar+slice+cultures%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Progesterone increases oligodendroglial cell proliferation in rat cerebellar slice cultures.</a> Neuroscience. 135 (1), 47-58 (2005).</li>
<li>Azim, K., Butt, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((GSK3%CE%B2+negatively+regulates+oligodendrocyte+differentiation+and+myelination+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Glia%22%5BJournal%5D)">GSK3β negatively regulates oligodendrocyte differentiation and myelination in vivo.</a> Glia. 59 (4), 540-553 (2011).</li>
<li>Hussain, R., El-Etr, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Progesterone+and+nestorone+facilitate+axon+remyelination%3A+a+role+for+progesterone+receptors%5BTitle%5D)+AND+%22Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Progesterone and nestorone facilitate axon remyelination: a role for progesterone receptors.</a> Endocrinology. 152 (10), 3820-3831 (2011).</li>
<li>Pampaloni, F., Reynaud, E. G., Stelzer, E. H. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+third+dimension+bridges+the+gap+between+cell+culture+and+live+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews.+Molecular+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">The third dimension bridges the gap between cell culture and live tissue.</a> Nature Reviews. Molecular Cell Biology. 8 (10), 839-845 (2007).</li>
<li>Lubetzki, C., Demerens, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Even+in+culture%2C+oligodendrocytes+myelinate+solely+axons%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Even in culture, oligodendrocytes myelinate solely axons.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 90 (14), 6820-6824 (1993).</li>
<li>Demerens, C., Stankoff, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+myelination+in+the+central+nervous+system+by+electrical+activity%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Induction of myelination in the central nervous system by electrical activity.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 93 (18), 9887-9892 (1996).</li>
<li>Wood, P. M., Bunge, R. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evidence+that+sensory+axons+are+mitogenic+for+Schwann+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Evidence that sensory axons are mitogenic for Schwann cells.</a> Nature. 256 (5519), 662-664 (1975).</li>
<li>Stevens, B., Tanner, S., Fields, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Control+of+myelination+by+specific+patterns+of+neural+impulses%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Control of myelination by specific patterns of neural impulses.</a> The Journal of Neuroscience. 18 (22), 9303-9311 (1998).</li>
<li>Stevens, B., Porta, S., Haak, L. L., Gallo, V., Fields, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adenosine%3A+a+neuron-glial+transmitter+promoting+myelination+in+the+CNS+in+response+to+action+potentials%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Adenosine: a neuron-glial transmitter promoting myelination in the CNS in response to action potentials.</a> Neuron. 36 (5), 855-868 (2002).</li>
<li>Wake, H., Lee, P. R., Fields, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Control+of+local+protein+synthesis+and+initial+events+in+myelination+by+action+potentials%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Control of local protein synthesis and initial events in myelination by action potentials.</a> Science. 333 (6049), New York, N.Y 1647-1651 (2011).</li>
<li>Rosenberg, S. S., Kelland, E. E., Tokar, E., De la Torre, A. R., Chan, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+geometric+and+spatial+constraints+of+the+microenvironment+induce+oligodendrocyte+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">The geometric and spatial constraints of the microenvironment induce oligodendrocyte differentiation.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105 (38), 14662-14667 (2008).</li>
</ol>

De auteurs verklaren dat ze geen concurrerende financiële belangen hebben

Myelination in het centrale zenuwstelsel is essentieel voor efficiënte neuronale communicatie en axonaal overleving 22. NG2 cellen continu genereren myeliniserende oligodendrocyten in de volwassenheid met behoud van een bevolking in de meeste gebieden van de hersenen 16,23 - 25. Sommige genetische en moleculaire mechanismen tot regeling van de differentiatie van deze cellen zijn beschreven, maar er is nog veel te ontdekken. Organotypische slice culturen zijn een handig hulpmiddel om deze mechanisme...

Organoytpic slice cultures van het centrale zenuwstelsel zijn uitermate bruikbaar voor het bestuderen neuron en gliale celbiologie in een semiintact systeem 1 te zijn - 4. Deze culturen zijn relatief eenvoudig vast te stellen en te behouden vele voordelen van primaire gedissocieerde celculturen, zoals manipulatie van de extracellulaire omgeving en gemakkelijke toegang voor herhaalde langdurige live cell imaging en elektrofysiologische opnames 5-9. Bovendien slice cultures onderhouden 3-dimensionele tissue cytoarchitecture, regionale neurale verbindingen en meest belangrijke celtypen aanwezig zijn in het systeem. Deze eigenschappen maken deze culturen een uniek en handig systeem om enkele cel gedrag en fysiologie met cellulaire en milieu-interacties te onderzoeken. NG2 cellen een populatie van gliale cellen in het centrale zenuwstelsel die blijven prolifereren en genereren myelinating oligodendrocyten tijdens de embryonale en postnatale ontwikkeling 10. Zij zijn uitgebreid bestudeerd in gedissocieerde primaire celculturen en recente ontwikkeling van transgene muizen lijnen met NG2 celspecifieke expressie van fluorescerende eiwitten heeft vergemakkelijkt in vivo lot mapping en elektrofysiologische opnames in acute slice preparaten. Zelfs met deze studies is er weinig bekend over de temporele dynamiek van NG2 celproliferatie en oligodendrocyt differentiatie. Hoewel gedissocieerde celkweek op grote schaal gebruikt voor de relatieve faciliteit farmacologische en genetische manipulaties, is het niet geschikt voor het ondervragen functionele verschillen van deze cellen in verschillende hersengebieden bijzonder wanneer het wenselijk is om de context van de cellulaire micro-omgeving behouden. Plak culturen een eenvoudig alternatief dat vatbaar is voor farmacologische manipulaties en zijn gebruikt voor oligodendrocyten myelinisatie 11,12 onderzoeken cellular reactie na lysolecithine (LPC) of antilichamen geïnduceerde demyelinisatie 13,14 en inductie van remyelinisatie via farmacologische behandeling 15. Werkwijze onderzoeken en live imaging en vast weefsel (of postfixatie) analyse van NG2 celproliferatie en oligodendrocyt differentiatie in organotypische slice culturen uit zowel de voorhersenen en cerebellum beschreven. Dit is een krachtige methode die gebruikt kan worden om de cel lot van NG2 enkelvoudige cellen te bestuderen na splitsing 16 en regio- en leeftijdsafhankelijke verschillen groeifactor geïnduceerde celproliferatie NG2 17 ontdekken. Deze relatief eenvoudige techniek breed toegankelijk verder te onderzoeken cel intrinsieke en / of ecologische mechanismen reguleren van de fysiologie van deze gliacellen en hun respons op neuronale activiteit of myelinebeschadiging.

<table><tbody><tr><td colspan="4">Slice Culture Medium</td></tr><tr><td>Minimum Essential Medium</td><td>Invitrogen</td><td>11090</td><td>50%</td></tr><tr><td>Hank&rsquo;s Balanced Salt Solution</td><td>Invitrogen</td><td>14175</td><td>25%</td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H-4034</td><td>25mM</td></tr><tr><td>L-Glutamine</td><td>Invitrogen</td><td>25030</td><td>1mM</td></tr><tr><td>Insulin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>I6634</td><td>1mg/L</td></tr><tr><td>Ascorbic Acid</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A-0278</td><td>0.4mM</td></tr><tr><td>Horse Serum</td><td>Hyclone</td><td>SH30074.03</td><td>25%</td></tr><tr><td colspan="4">Titrate to pH 7.22 with NaOH, filter with bottle top filter, and store at 4 degrees Celsius</td></tr><tr><td colspan="4">Dissection Buffer</td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S3014</td><td>124mM</td></tr><tr><td>KCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P5405</td><td>3.004mM</td></tr><tr><td>KH2PO4</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P5655</td><td>1.25mM</td></tr><tr><td>MgSO4 (anhydrous)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M7506</td><td>4.004mM</td></tr><tr><td>CaCl2 2H2O</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C7902</td><td>2mM</td></tr><tr><td>NaHCO3</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S5761</td><td>26mM</td></tr><tr><td>D-(+)-Glucose</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G7021</td><td>10mM</td></tr><tr><td>Ascorbic Acid</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A-0278</td><td>2.0mM</td></tr><tr><td>Adenosine</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A4036</td><td>0.075mM</td></tr><tr><td colspan="4">Filter with bottle top filter and store at 4 degrees Celsius, oxygenate with 95%O2 5%CO2 before use</td></tr><tr><td colspan="4">Other Reagents and Supplies</td></tr><tr><td>4-hydroxy tamoxifen (4OHT)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H7904</td><td>100nM</td></tr><tr><td>Paraformaldehyde (PFA)</td><td>EM Sciences</td><td>19200</td><td>4%</td></tr><tr><td>L-Lysine</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L-6027</td><td>0.1M</td></tr><tr><td>Sodium Metaperiodate</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S-1878</td><td>0.01M</td></tr><tr><td>Rabbit anti NG2 antibody</td><td>Chemicon (Millipore)</td><td>AB5320</td><td>1:500</td></tr><tr><td>Mouse anti CC1 antibody</td><td>Calbiochem (Millipore)</td><td>OP80</td><td>1:200</td></tr><tr><td>Mouse anti Ki67 antibody</td><td>Vision Biosystems</td><td>NCL-Ki67-MM1</td><td>1:300</td></tr><tr><td>Mouse anti NeuN antibody</td><td>Chemicon (Millipore)</td><td>MAB377</td><td>1:500</td></tr><tr><td>Species specific secondary antibodies</td><td>Jackson Immunoresearch</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Normal Goat Serum (NGS)</td><td></td><td></td><td>5%</td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td></td><td></td><td>0.10%</td></tr><tr><td>Mounting medium with DAPI</td><td>Vector Labs</td><td>H-1200</td><td></td></tr><tr><td>Millicell culture membrane inserts 0.45&mu;m pore size</td><td>Fisher Scientific</td><td>PICM03050</td><td></td></tr><tr><td>Bottle top filters</td><td>Fisher Scientific</td><td>09-740-25E</td><td></td></tr><tr><td>Ethanol</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>95% O2 5% CO2 gas mix</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Phosphate Buffered Saline (PBS)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sterile six well plates</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dissecting (hippocampal) or weighing spatulas</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Manual or automatic tissue chopper</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Razor blades</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Disposable transfer pipettes</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>35mm and 60mm sterile Petri dishes</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Stereomicroscope</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Inverted Phase Microscope</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Laminar Flow Hood</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tissue Culture Incubator</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Inverted Fluorescence Microcope</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

organotypische slice culturen om te studeren oligodendrocyte dynamics en myelination

Organotypic Slice Cultures to Study Oligodendrocyte Dynamics and Myelination

NG2 expressie brengende cellen (polydendrocytes, oligodendrocyt precursor cellen) zijn de vierde grote gliale celpopulatie in het centrale zenuwstelsel. Tijdens de embryonale en postnatale ontwikkeling ze actief verspreiden en genereren myeliniserende oligodendrocyten. Deze cellen zijn vaak onderzocht bij primaire los culturen, neuron cocultures, en in vaste weefsel. Met vrijgekomen transgene muizenlijnen snede kweeksystemen kunnen worden gebruikt om de proliferatie en differentiatie van oligodendrocyt afkomstcellen onderzoeken zowel grijze en witte stof gebieden van de voorhersenen en cerebellum. Plak culturen worden bereid uit vroege postnatale muizen en in kweek gehouden gedurende 1 maand. Deze segmenten kunnen meerdere malen worden afgebeeld in de kweekperiode cellulaire gedrag en interacties te onderzoeken. Deze methode maakt visualisatie van NG2 celdeling en de stappen die leiden tot oligodendrocyte differentiatie, terwijl waardoor een gedetailleerde analyse van de regio-afhankelijkent NG2 cel en oligodendrocyte functionele heterogeniteit. Dit is een techniek die kan worden gebruikt om de intrinsieke en extrinsieke signalen beïnvloeden deze cellen in de tijd in een cellulaire omgeving die lijkt op die in vivo onderzoeken.

Voorbeelden van representatieve gegevens worden hieronder gegeven die zijn verkregen met behulp van slice culturen van zowel de voorhersenen en het cerebellum van P8 NG2cre: ZEG, NG2creER: YFP en PLPDsRed transgene muis lijnen. NG2 cellen kunnen worden afgebeeld op dagen voorhersenen en cerebellum segmenten (Figuur 1B-D, Video 1) en het fenotype van deze cellen kan worden bepaald na fixatie en immunokleuring met NG2 en CC1 antilichamen (figuur 1E). Naast leven imaging kan celproliferati...

Een techniek om NG2-cellen en oligodendrocyten te bestuderen met behulp van een slice-kweeksysteem van de voorhersenen en het cerebellum wordt beschreven. Deze methode maakt onderzoek van de dynamica van proliferatie en differentiatie van cellen binnen de oligodendrocytlijn mogelijk, waarbij de extracellulaire omgeving gemakkelijk kan worden gemanipuleerd terwijl de weefselcytoarchitectuur behouden blijft.

Organotypische Slice culturen om te studeren Oligodendrocyte Dynamics en Myelination

NG2 expressing cells (polydendrocytes, oligodendrocyte precursor cells) are the fourth major glial cell population in the central nervous system. During ...

Het algemene doel van deze procedure is om proliferatie en differentiatie van oligodendrocyte-lijncellen in een omgeving te onderzoeken die nauw aansluit bij wat in vivo wordt aangetroffen. Dit wordt bereikt door eerst plakculturen te bereiden van vier hersenen en cerebellum van vroeg postnataal transgene muizen. Enkele cellen in de plakken worden vervolgens gedurende perioden van uren tot dagen gefotografeerd om de cellulaire dynamica van hun proliferatie en differentiatie te visualiseren.Na het beeldvormen wordt post hoc immunohistochemistry van de cellen gebruikt om verschillende cellulaire kenmerken te bepalen. Uiteindelijk kunnen de resultaten de dynamica van celproliferatie en -differentiatie onder normale omstandigheden en na farmacologische of genetische manipulatie tonen. Het grote voordeel van deze techniek boven bestaande methoden zoals gedissocieerde koolstof, culturen van neuronen en liga incyte lijncellen is dat plakculturen manipulatie van de acellulaire omgeving mogelijk maken met behoud van de weefselcyto architectuur.Alle dierproeven volgen de richtlijnen en zijn goedgekeurd door het institutionele Animal Care and Use Committee aan de Universiteit van Connecticut ten minste twee uur voor de dissectie. Bereid weefselkweekinserts in zesputjesplaatjes voor ieder. We voegen een milliliter plakcultuurmedium toe, en brengen vervolgens de platen naar de cellencultuurincubator bij 37 graden Celsius met 5% koolzuurgas minstens 15 minuten voorafgaand aan de dissectie.Plaats de dissectiebuffer op ijs en begin het te laten borrelen met 95% zuurstof, 5% koolzuurgas. Zorg er ook voor dat alle gereedschappen en de weefselchopper gesteriliseerd zijn met 70% ethanol. Breng het weefsel over naar een steriele 35 millimeter schaal met ijskoud geoxygeneerd dissectiebuffer.Gebruik vervolgens een scheermes om het cerebellum en voorhersenen te doorknippen met een snede door het voorhersenen en cerebellum die de hemisferen scheidt. Gebruik nu de handmatige chopper om 300 micron dikke coronale en sagittale secties van de vier hersenen en cerebellum te maken. Elk dier levert meestal zes vierhersenenplakken en zes cerebellumplakken op.Idealiter worden plakken genomen die het voorste derde deel van het corpus callosum beslaan om zowel grijze als witte stofgebieden in dezelfde plak te bestuderen. Breng de gescheiden plakken over in vers geborrelde koude dissectiebuffer op ijs in de buffer, met behulp van een kleine dissectie- of weegspatels. Scheid de individuele secties en breng ze over naar voor incubatie.Zesputjesplaatjes met kweekinserts. Twee tot drie plakken kunnen op één cultuur worden geplaatst. Gebruik een pipet om overtollig dissectiebuffer van het oppervlak van de cultuur te verwijderen.Breng de plakken over naar de incubator totdat ze vastzitten. Het plakmedium moet een dag na plakbereiding worden vervangen en vervolgens om de andere dag tot plakfixatie zoals vermeld in het protocol. Afhankelijk van het experiment, gebruik de plakken na vijf tot zeven dagen.In cultuur. Gebruik alleen de plakken die na de eerste paar dagen transparant worden en gooi degenen weg die ongelijkmatige ondoorzichtige gebieden hebben die met het blote oog zichtbaar zijn. Onder fasecontrast verschijnen deze ondoorzichtige gebieden als een klomp donkere cellen.Als het correct wordt uitgevoerd, treden dode ondoorzichtige gebieden voor niet meer dan één tot 5% van de plakken op. Om time-lapse beeldvorming van NG twee celproliferatie en -differentiatie uit te voeren, gebruik drie tot vijf dagen oude plakken van muizen die EGFP in NG twee cellen tot expressie brengen. Laat de slides niet langer dan 15 minuten onder 37 graden Celsius komen.Per beeldsessie, houd de plaat gesloten, gebruik de 10 x objectief van een omgekeerde fluorescentiemicroscoop om beelden vast te leggen op het eerste tijdstip van de cultuur. Beeld vier tot acht locaties op elke plak afkomstig van zowel grijze als witte stofgebieden van de plak.Beeld ook nuttige herkenningspunten zoals de randen van de plakken, specifieke cellen of oriëntatie van witte stofbanen af voor herplaatsing. Het vorige tijdstipbeeld kan worden gebruikt als referentiebeeld tijdens herplaatsing voor NG twee celdeling en oligodendrocytedifferentiatie. Leg elke vier tot zes uur beelden vast gedurende idealiter vijf tot zeven dagen.Als de induceerbare marker NG twee cre, ER YFP wordt gebruikt, induceer reporterexpressie met behulp van kweekmedium met 100 nanomolair. Vier hydroxy tamoxifen opgelost in ethanol. Reporteractiviteit zou binnen één tot twee dagen moeten verschijnen. Voor fixatie, voeg een milliliter fixeermiddel toe aan de bodem van de cultuur.Breng het binnen en voeg nog een milliliter toe bovenop de plakken. Spuit het fixeermiddel niet direct op de plakken of ze kunnen losraken. Fixeer het weefsel gedurende 30 minuten bij vier graden Celsius en gebruik vervolgens een scalpel.Snij de membranen met de plakken eraan los. Gebruik pincetten om de plakken voorzichtig over te brengen naar afzonderlijke putjes van een 24-putjesplaat beladen met PBS. Breng vervolgens de plakken over naar een tweede 24-putjesplaat beladen met blokkeeroplossing bevattende 5% normaal geitenserum en 0,1% tritton X 100 in PBS.Laat ze een uur in de blokkeeroplossing incuberen bij kamertemperatuur. Zodra geblokkeerd, verplaats de plakken naar een plaat beladen met primaire antilichamen in PBS met 5% NGS. Laat ze een nacht incuberen bij vier graden Celsius de volgende dag.Was de plakken in PBS. Bewerk vervolgens de plakken met secundaire antilichamen in PBS met 5% NGS. Laat de incubatie een uur op kamertemperatuur duren.Volg dit met nog drie wasbeurten in PBS zoals eerder en monteer de plakken met de membraan naar de schuif toe, zodat deze niet tussen het objectief en het weefsel komt. Om de temporele dynamica van oligodendrocytedifferentiatie te analyseren, werden beelden van NG twee celdeling verkregen uit plakculturen van het voorhersenen van P acht NG twee creeg transgene muizen gedurende meerdere dagen, werden tijdsreeksen genomen gedurende 122 uur. Het fenotype van de gedeelde cellen werd bepaald met NG twee en CC één antilichamen.Celproliferatie werd

organotypic-slice-cultures-to-study-oligodendrocyte-dynamics

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neurowetenschap

Dit is een protocol voor te bereiden en een neocorticale slice voorbereiding handhaven organotypische cultuur voor het maken van elektrische opnames van piramidale neuronen.

Hele Cell Opnemen van een organotypische Slice Voorbereiding van de neocortex

This video demonstrates an ex vivo technique to induce brain cell death mediated through cytotoxic CD8+ T cells. Upon obtaining brain slices, activated oligodendrocyte-directed CD8+ T cells are transferred onto the slices to target the myelin sheath and oligodendrocytes. Post-incubation, the damage to myelin and neuronal death can be assessed histologically in the regions of interest.

An Ex Vivo Technique to Induce Neuronal Death via Oligodendrocyte-Specific CD8+ T Cells

Source: Kennedy, L. H., et. al. Visualization and Live Imaging of Oligodendrocyte Organelles in Organotypic Brain Slices Using Adeno-associated Virus and Confocal Microscopy. J. Vis. Exp. (2017)This video demonstrates the imaging of oligodendrocyte mitochondria in organotypic mouse brain slices. The slice is placed inside a bath chamber with continuous fluid circulation and controlled temperature. After setting up various parameters of the confocal microscope, time-lapse images of mitochondria...

Confocal Imaging of Mitochondrial Movement within Oligodendrocytes in Organotypic Brain Slice Cultures

Om mechanismen van demyelinisatie en neuronale apoptose in corticale laesies van inflammatoire demyeliniserende aandoeningen aan te pakken, worden verschillende diermodellen gebruikt. We beschrijven hier een ex vivo benadering door gebruik te maken van oligodendrocyten-specifieke CD8+ T-cellen op herfsneden, wat resulteert in oligodendrogliale en neuronale dood. Potentiële toepassingen en beperkingen van het model worden besproken.

Een Ex vivo Model van een Oligodendrocyte gericht T-Cell Attack in Acute Brain Slices

Hier beschrijven we een techniek voor het bestuderen van de hippocampus postnatale neurogenese met de organotypische slice cultuur techniek. Deze werkwijze maakt in vitro manipulatie van volwassen neurogenese en maakt de directe toepassing van farmacologische middelen aan de gekweekte hippocampus.

Organotypische Slice Culturen voor Studies van Postnatale Neurogenese

Organotypic hippocampal segment culturen (OHSC) vormen een in vitro model dat de in vivo situatie heel goed simuleert. Hier beschrijven we een op vibratome gebaseerde verbeterd snijden protocol om te verkrijgen van hoge kwaliteit segmenten voor gebruik bij de beoordeling van het neuroprotectieve potentieel van nieuwe stoffen of het biologisch gedrag van de tumorcellen.

Organotypic Hippocampal Slice culturen als een Model voor de studie neuroprotectie en invasiviteit van tumorcellen

Myelinating oligodendrocyten bevorderen snelle actiepotentiaal propagatie en neuronale overleving. Hier beschreven is een protocol voor Oligodendrocyt-specifieke expressie van fluorescente proteïnen in organotypic hersenen segmenten met latere time-lapse beeldvorming. Verder is wordt een eenvoudige procedure voor het visualiseren van onbevlekt myeline gepresenteerd.

Visualisatie en Live beeldvorming van Oligodendrocyte organellen in Organotypic hersenen plakjes met behulp van Adeno-associated Virus en confocale microscopie

Hier presenteren we een methode ter voorbereiding organotypic segment culturen van muis cerebellum en myelineschede kleuring door immunohistochemistry geschikt voor onderzoek naar mechanismen van myelinisering en remyelination in het centrale zenuwstelsel.

Voorbereiding en immunokleuring van Myelinating Organotypic cerebellaire segment culturen

Een ex vivo slice assay maakt het mogelijk om de zenuw uitgroei van de Oculomotor in real-time te laten afbeelen. Segmenten worden gegenereerd door het insluiten van E 10.5 ISLMN: GFP embryo's in agarose, snijden op een vibratome, en groeien in een podium-top incubator. De rol van Axon guidance trajecten wordt beoordeeld door remmers toe te voegen aan de cultuur media.

Ex vivo Oculomotor segment cultuur van embryonale GFP-uitdrukken van muizen voor timelapse-beeldvorming van Oculomotor zenuw uitgroei

Hierin tonen we een efficiënte methode voor de zuivering van oligodendrocyten en de productie van oligodendrocyte-geconditioneerde medium dat kan worden gebruikt voor co-cultuur experimenten.

Generatie oligodendrocyten en oligodendrocyte-geconditioneerde medium voor co-cultuurexperimenten

Leer organotypische sliceculturen voor het bestuderen van oligodendrocyt-dynamiek en myelinisatie met behulp van hersen- en cerebellumsneden van muizen. Deze methode behoudt weefselarchitectuur en maakt tijdopnamebeeldvorming mogelijk.

Organotypische Slice culturen om te studeren Oligodendrocyte Dynamics en Myelination

Meer video's verkennen