Name: Monitoramento da sistêmicas e hepática Hemodinâmica em Ratos (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-10-04T14:00:00.000+00:00
Duration: 16 min 9 s
Description: Aprenda a monitorar a hemodinâmica sistêmica e hepática em camundongos usando pressão arterial, pressão venosa central e fluxo portal. Este método permite avaliar funções fisiológicas com precisão em experimentos agudos.

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Esta pesquisa foi apoiada pelo Ministério Federal Alemão de Educação e Pesquisa (BMBF) financiado &quot;Rede Fígado Virtual&quot;. Eu gostaria de agradecer a Frank Schubert e Rene Gumpert do centro de mídia do Hospital Universitário de Jena por sua ajuda na produção do vídeo e criar a animação e Isabel Jank para a gravação do áudio.

Habitação e todos os procedimentos realizados estavam de acordo com o Animal Welfare alemão Legislação. 1 Sensores de Calibração (siga as instruções do fabricante para calibração dos sensores) 1.1) calibração Millar cateter. Pré-embeber a ponta do cateter em água estéril ou solução salina, durante 30 minutos, antes do equilíbrio (zero) e de calibração. <ol><li> Ligue o sensor Millar ao canal de amplificador millar1 ponte e insira a ponta do sensor Millar na coluna de água. </li><li> Defina o valor da coluna de água a 0 cmH 2 O. Na janela do software de análise de dados, escolha ponte amplificar e zerá-lo. O valor da linha de base 0 cm H 2 O pode ser configurado. </li><li> Defina o valor da coluna de água a 20 cmH 2 O. Executar análise de dados janela Progress Software, e parar. Escolha &quot;unidades&quot; na janela da ponte de ampliar, definir a linha de base de 0 a 20 cmH 2 O em conformidade. Ajuste a &quot;unidade&quot; para cmH &lt;sub&gt; 2 O. </li><li> Calibre o millar2 para medir CAP da mesma forma (conjunto de duas linhas de base 90 e 110 cmH 2 O). </li></ol> 1.2) calibração da sonda de fluxo de sangue <ol><li> Coloque a sonda em água deionizada. Ligue a sonda com sistema sonda de fluxo transônico. </li><li> Na janela do software de análise de dados, escolha Input amplificar a zero a sonda de fluxo. Ajuste as unidades. </li><li> Pressione o botão para &quot;canal de teste&quot; para coletar o sinal: se o sinal tem de 3-4 bares, isso significa que o sinal é bom. No caso de um bom sinal é adquirido, o processo pode ser continuado. </li><li> Pressione o botão para &quot;zero canal&quot; eo canal de escala para ver se o valor foi calibrado ou não. </li><li> Pressione o botão para &quot;canal de medida&quot; para a medição mais tarde. </li></ol> 2 Prepare o mouse para o procedimento cirúrgico <ol><li> Posicione o mouse em uma câmara de indução e anestesiar o mouse com 2% de isoflurano e0,3 ml / min de oxigênio. A operação pode ser realizada se a retirada reflexo toe-pitada de o rato está ausente. </li><li> Raspar a pele das regiões cirúrgicos, que incluem o pescoço esquerdo e abdômen. </li><li> Posicione o mouse sobre a mesa de operação e corrigi-lo usando fitas. Use vet pomada nos olhos para evitar o ressecamento durante o período de operação. </li><li> Coloque uma almofada de gaze sob o pescoço para a exposição ideal do campo de operação do pescoço. </li><li> Desinfetar o campo de operação e coloque gazes esterilizadas para cobrir o mouse apenas deixando o campo cirúrgico aberto. </li></ol> 3. Parâmetros Vitais Medição <ol><li> Insira as agulhas de ECG por via subcutânea nas patas de rato. </li><li> Colocar o sensor respiratório sob a parte traseira do rato. </li><li> Coloque a sonda de temperatura no reto do mouse. </li><li> Temperatura Record, ECG e freqüência respiratória do mouse no software de análise de dados. </li></ol> 4. Neck Operação para SMonitoramento Cardiovascular ystemic 4.1) dissecção navio <ol><li> Identificar a linha média do pescoço, ponto médio da clavícula, o ângulo da mandíbula. </li><li> Fazer uma incisão longitudinal, dois centímetros a partir do ângulo de mandíbula para o ponto do meio da clavícula, que é 0,5 centímetros para o lado esquerdo da linha média. </li><li> Dissecar a glândula submandibular, vire-o e cubra-a com gaze embebida de solução salina. </li><li> Identifique a veia jugular, dissecá-lo e colocar três 6-0 fio de seda sob a veia para a ligação mais tarde e fixação. </li><li> Identificar o músculo esternocleidomastóideo, separá-lo do ventre superior do omo-hióideo e ventre posterior do músculo digástrico, e puxe-o com um afastador para facilitar a exposição da artéria carótida. </li><li> Dissecar a artéria carótida e colocar três 6-0 suturas de seda por baixo da artéria para ligação e fixação posterior. </li></ol> 4.2) a medição do fluxo sanguíneo da artéria carótida <ol><li> Coloque o transsoniquesondar em torno da artéria carótida, mantê-lo estável, e otimizar o contato usando gel de ultra-som ou soro fisiológico. </li><li> Grave velocidade do fluxo sanguíneo da artéria carótida, como indicado na tela pequena do dispositivo transsonique usando software de análise de dados </li><li> Remover a sonda depois de completar a medição </li></ol> 4.3) a medição da pressão da artéria carótida (PAC) <ol><li> Ligadura a extremidade distai da artéria carótida e fixar a sua extremidade proximal. </li><li> Coloque 2 suturas de fixação em torno da artéria carótida. Use 10-0 prolene para sutura estadia. </li><li> Fazer uma pequena incisão na parede anterior do recipiente. </li><li> Insira o cateter Millar e corrigi-lo com suturas pré-colocados. </li><li> Anote o CAP em software de análise de dados. </li></ol> 4.4) a medição do fluxo de sangue da veia jugular <ol><li> Levante a veia jugular e colocar a sonda de fluxo transônico para medir a taxa de fluxo. </li><li> Grave a vazão em software de análise de dados. </li></ol> 4.5) medida da pressão venosa central (PVC) <ol><li> Prender a extremidade proximal da veia jugular e ligar a extremidade distal. </li><li> Cortar uma pequena incisão utilizando microtesouras na parede anterior do recipiente. </li><li> Insira o cateter cheio de líquido e corrigi-lo com as linhas de sutura pré-colocados. </li><li> Registre a CVP em software de análise de dados. </li></ol> 5. Operação Abdominal para Aquisição de hepáticas Hemodinâmica 5.1) Identificação do navio <ol><li> Faça uma incisão transversal no abdômen. </li><li> Eventerate os intestinos para o lado esquerdo e cobrir com gaze molhada. </li><li> Identificar a veia cava inferior, veia portal, a artéria hepática comum e a artéria hepática adequada. </li><li> Abandonar algumas salina quente no abdômen e na superfície dos intestinos cada 5 min durante o processo de acompanhamento conjunto. </li></ol> 5.2) Quantificação do fluxo portal <ol><li> Dissecar a veia porta. </li><li> Coloque 6-0 seda sob a veia portal para facilitar a retirada da embarcação na colocação da sonda de fluxo. </li><li> Coloque a sonda de fluxo em torno transónico na veia porta e medir a taxa de fluxo de sangue. </li><li> Gravar a taxa de fluxo de sangue da veia porta. </li></ol> 5.3) A medição do fluxo da artéria hepática comum <ol><li> Dissecção da artéria hepática comum com cautela. </li><li> Inserir uma sutura de seda 6-0 à volta do vaso para facilitar o levantamento do recipiente. </li><li> Coloque a sonda de fluxo em torno da artéria. </li><li> Meça o seu fluxo sanguíneo e obter os dados. </li></ol> 5.4) A medição da pressão da veia porta (PVP) <ol><li> Escolha um ramo da veia mesentérica com poucos ramos laterais, que drena diretamente na veia portal. </li><li> Ligadura a extremidade distal da veia mesentérica seleccionado. Certifique-se de que a ligação está perto do tubo intestinal. Ligadura seus pequenos ramos </li><li> Coloque 2 fixing suturas usando 6-0 prolene ao redor da veia. O ponto-chave deste procedimento é evitar tocar a artéria mesentérica quando a ligadura da veia. </li><li> Prender a extremidade proximal da veia portal. </li><li> Coloque 2 suturas estadia utilizando 10-0 prolene. Alguns sangramento vai ocorrer uma vez que o fio de sutura permanência deve penetrar a parede vascular da veia mesentérica fina. </li><li> Fazer uma pequena incisão na veia utilizando um microtesoura obliquamente a um ângulo de 45 graus. </li><li> Insira o cateter Millar através da veia mesentérica na veia porta e corrigi-lo </li><li> Registre a pressão da veia porta. No final do procedimento, o sacrifício dos ratinhos por sangria sob anestesia. </li></ol>

<ol><li>Albuszies, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+increased+cardiac+output+on+hepatic+and+intestinal+microcirculatory+blood+flow%2C+oxygenation%2C+and+metabolism+in+hyperdynamic+murine+septic+shock%5BTitle%5D)+AND+%22Crit+Care+Med%22%5BJournal%5D)">Effect of increased cardiac output on hepatic and intestinal microcirculatory blood flow, oxygenation, and metabolism in hyperdynamic murine septic shock.</a> Crit Care Med. 33 (10), 2332-2338 (2005).</li>
<li>Bernhard, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phosphatidylcholine+molecular+species+in+lung+surfactant%3A+composition+in+relation+to+respiratory+rate+and+lung+development%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Respir.+Cell+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Phosphatidylcholine molecular species in lung surfactant: composition in relation to respiratory rate and lung development.</a> Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 25 (6), 725-731 (2001).</li>
<li>Cheever, A. W., Warren, K. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Portal+vein+ligation+in+mice%3A+portal+hypertension%2C+collateral+circulation%2C+and+blood+flow%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Portal vein ligation in mice: portal hypertension, collateral circulation, and blood flow.</a> 18, 405-407 (1963).</li>
<li>Costa, G., Aguiar, B. G., Coelho, P. M., Cunha-Melo, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((On+the+increase+of+portal+pressure+during+the+acute+and+chronic+phases+of+murine+schistosomiasis+mansoni+and+its+reversibility+after+treatment+with+oxamniquine%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Trop%22%5BJournal%5D)">On the increase of portal pressure during the acute and chronic phases of murine schistosomiasis mansoni and its reversibility after treatment with oxamniquine.</a> Acta Trop. 89 (1), 13-16 (2003).</li>
<li>Cui, S., Shibamoto, T., Zhang, W., Takano, H., Kurata, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Venous+resistance+increases+during+rat+anaphylactic+shock%5BTitle%5D)+AND+%22Shock%22%5BJournal%5D)">Venous resistance increases during rat anaphylactic shock.</a> Shock. 29 (6), 733-739 (2008).</li>
<li>Geerts, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+three+research+models+of+portal+hypertension+in+mice%3A+macroscopic%2C+histological+and+portal+pressure+evaluation%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+J.+Exp.+Pathol%22%5BJournal%5D)">Comparison of three research models of portal hypertension in mice: macroscopic, histological and portal pressure evaluation.</a> Int. J. Exp. Pathol. 89 (4), 251-263 (2008).</li>
<li>Huang, H., Deng, M., Jin, H., Dirsch, O., Dahmen, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intraoperative+vital+and+haemodynamic+monitoring+using+an+integrated+multiple-channel+monitor+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim%22%5BJournal%5D)">Intraoperative vital and haemodynamic monitoring using an integrated multiple-channel monitor in rats.</a> Lab Anim. 44 (3), 254-263 (2010).</li>
<li>Krege, J. H., Hodgin, J. B., Hagaman, J. R., Smithies, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+noninvasive+computerized+tail-cuff+system+for+measuring+blood+pressure+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Hypertension%22%5BJournal%5D)">A noninvasive computerized tail-cuff system for measuring blood pressure in mice.</a> Hypertension. 25 (5), 1111-1115 (1995).</li>
<li>Kuga, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+and+local+autoregulation+of+cerebrovascular+blood+flow%3A+a+deep-brain+imaging+study+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Physiol.%22%5BJournal%5D)">Rapid and local autoregulation of cerebrovascular blood flow: a deep-brain imaging study in the mouse.</a> J. Physiol.. 587 (Pt 4), 745-752 (2009).</li>
<li>Muraki, T., Strain Kato, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((difference+in+the+effects+of+morphine+on+the+rectal+temperature+and+respiratory+rate+in+male+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Psychopharmacology+%28Berl%29%22%5BJournal%5D)">difference in the effects of morphine on the rectal temperature and respiratory rate in male mice.</a> Psychopharmacology (Berl). 89 (1), 60-64 (1986).</li>
<li>Nielsen, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Left+ventricular+volume+measurement+in+mice+by+conductance+catheter%3A+evaluation+and+optimization+of+calibration%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol+Heart+Circ.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Left ventricular volume measurement in mice by conductance catheter: evaluation and optimization of calibration.</a> Am. J. Physiol Heart Circ. Physiol. 293 (1), H534-H540 (2007).</li>
<li>Sakamoto, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improvement+of+portal+hypertension+and+hepatic+blood+flow+in+cirrhotic+rats+by+oestrogen%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+J.+Clin.+Invest%22%5BJournal%5D)">Improvement of portal hypertension and hepatic blood flow in cirrhotic rats by oestrogen.</a> Eur. J. Clin. Invest. 35 (3), 220-225 (2005).</li>
<li>Reverter, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+deep+sedation+on+the+accuracy+of+hepatic+and+portal+venous+pressure+measurements+in+patients+with+cirrhosis%5BTitle%5D)+AND+%22Liver+Int%22%5BJournal%5D)">Impact of deep sedation on the accuracy of hepatic and portal venous pressure measurements in patients with cirrhosis.</a> Liver Int. 34 (1), 16-25 (2014).</li>
</ol>

Os autores declaram que não têm interesses financeiros concorrentes.

Monitoramento da hemodinâmica hepática é uma importante ferramenta de hepatologia e cirurgia hepatobiliar. Aquisição de dados hemodinâmicos hepáticas ajuda a caracterizar o efeito de procedimentos hepatobiliares sobre o sistema circulatório. Aquisição de dados hemodinâmicos hepáticas também são necessárias para estudar o efeito de drogas que afetam a pressão portal e do fluxo portal, por exemplo, conforme a necessidade de estudos que avaliem drogas vasoativas. Apesar do pequeno tama...

O objetivo geral deste vídeo foi demonstrar um procedimento de monitoramento em tempo real para a aquisição de parâmetros hemodinâmicos sistêmicos e hepáticas. A justificativa para o desenvolvimento deste processo é a sua grande valor para intervenções experimentais em camundongos que exigem a obtenção de parâmetros hemodinâmicos sistêmicos e hepáticas. O procedimento pode ser aplicado a animais naive e, durante ou após um determinado intervenção cirúrgica experimental hepato-biliares, tais como a hepatectomia parcial, a ligadura da veia porta e o transplante de fígado. Aquisição de dados hemodinâmicos hepática em roedores requer o procedimento invasivo proposto. Perfusão hepática não podem ser obtidas de forma não invasiva. No entanto, existem alternativas para a aquisição da pressão arterial sistêmica. Técnicas de monitoramento, tais como a técnica de cauda manguito 8 foram utilizados para a aquisição da pressão arterial em ratos e camundongos. A técnica da palmada na cauda pode ser aplicado em conscianimais OUs. Ao medir a pressão arterial, o animal precisa ser colocado e fixado em uma posição desconfortável específico. No manual do aparelho tail-cuff, o fabricante afirma que os ratos podem ficar nervosos, o que pode diminuir a circulação na cauda. Sob esta circunstância, a pressão arterial periférica adquirida na cauda pode ser muito menor do que a pressão arterial central. O processo de acompanhamento completo foi realizado com um monitor de múltiplos canais integrado com uma série de sensores para aquisição de dados. A pressão sanguínea foi obtida por inserção de um cateter dentro do respectivo recipiente após a dissecação cuidadosa microcirúrgico e exposição ao microscópio. A taxa de fluxo foi medido colocando uma sonda de fluxo em torno de cada recipiente transónico. Já registramos um procedimento de controlo intra-operatória semelhante em ratos, resultando em uma ampla série de dados hemodinâmicos fisiológicos comparáveis ​​Single dados relatados de outros grupos 7. Por isso consideramos este procedimento para representar uma boa base para adaptá-lo para o mouse, uma espécie de 10 vezes menor do que o rato. A diferença fundamental para o processo de rato é o uso de cateteres de Millar para adquirir os dados da pressão arterial, em vez de um sistema de cateter à base de fluido. Dados de fluxo também foram adquiridos com sondas de fluxo transônico, apenas muito menores do que para os vasos de ratos correspondentes. Devido ao pequeno tamanho do animal, a instrumentação dos ratos é tecnicamente desafiador, mas viável. Uma vez que a instrumentação é completada, a aquisição de dados e análise de dados de vida primária é simples, uma vez que um ficheiro de configuração predefinida pode ser utilizado. O ficheiro de configuração tem de ser definida, uma vez no início de uma série de experiências e pode ser armazenada e utilizada para todas as experiências subsequentes. Até agora foi aplicado este procedimento para avaliar os efeitos hemodinâmicos hepáticas em experimentos agudos. Medimos CAP e PVP antes e imediatamente após hepatectomia parcial de 70% (PH) e de aperto / experiências de fixação de. Nós presa do ligamento hepato-duodenal do lobo direito que representa 20% da massa de fígado, seguido por breve (5min) de aperto da mediana e lobo lateral esquerdo que representa 90% do total da massa do fígado. De-aperto começou com a abertura da pinça do lobo direito seguido de libertar a mediana e lobo lateral esquerdo. Pinçamento máxima foi inferior a 10 min.

<table><tbody><tr><td>PowerLab 16/30&nbsp;</td><td>ADInstruments</td><td>PL3516</td><td></td></tr><tr><td>Amplificador de Ponte Quádrupla</td><td>ADInstruments</td><td>FE224</td><td>Amplificador&nbsp;</td></tr><tr><td>Animal Bio Amp</td><td>ADInstruments</td><td>FE136</td><td></td></tr><tr><td>Eletrodos de Agulha para FE136 (3 pk)</td><td>ADInstruments</td><td>MLA1213</td><td></td></tr><tr><td>Módulo de Medidor de Vazão Perivascular</td><td>Transônico</td><td>TS420</td><td></td></tr><tr><td>Sonda de Fluxo MA0.5PSB/MA1PSB</td><td>Transônico</td><td>MA0.5PSB/MA1PSB</td><td></td></tr><tr><td>SPR-1000 Cateter de Pressão de Mouse Instrumentos</td><td>Millar</td><td>841-0001</td><td></td></tr><tr><td>cateter cheio de fluido&nbsp;</td><td>Terumo</td><td>SR+DU2619PX</td><td>26G, 0,64&vezes; Tesoura micro de 19mm</td></tr><tr><td></td><td>F&middot; S&middot; L</td><td>No. 14058-09</td><td></td></tr><tr><td>micro serrefine</td><td>F&middot; S&middot; L</td><td>No.18055-05</td><td></td></tr><tr><td>Aplicador de micro grampos</td><td>F&middot; S&middot; L</td><td>No. 18057-14</td><td></td></tr><tr><td>Micro fórceps retos</td><td>F&middot; S&middot; L</td><td>No. 00632-11</td><td></td></tr><tr><td>Micro fórceps curvo</td><td>F&middot; S&middot; L</td><td>No. 00649-11</td><td></td></tr><tr><td>porta-agulha</td><td>F&middot; S&middot; L</td><td>No. 12061-01</td><td></td></tr><tr><td>6-0 ethicon de seda</td> 6-0 <td>ethicon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>de prolene</td> 7-0 <td>ethicon</td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td>de prolene</td></tr><tr><td>10-0 ethicon</td><td></td><td></td><td></td>de prolene</tr><tr><td>Dispositivo de corte de cauda&nbsp;</td><td>Kent Scientific</td><td></td><td>www.kentscientific.com</td></tr><tr><td>LabChart7</td><td>ADInstruments</td><td></td><td>software de análise de dados&nbsp;</td></tr></tbody></table>

monitoramento da sistêmicas e hepática hemodinâmica em ratos

Monitoring of Systemic and Hepatic Hemodynamic Parameters in Mice

O uso de modelos de ratos na pesquisa experimental é de enorme importância para o estudo da fisiologia hepática e distúrbios fisiopatológicos. No entanto, devido ao pequeno tamanho do rato, detalhes técnicos do processo de monitorização intra-operatória adequada para o mouse raramente foram descritas. Anteriormente nós relatamos um procedimento de controlo para obter parâmetros hemodinâmicos para ratos. Agora, nós adaptamos o procedimento para adquirir os parâmetros hemodinâmicos sistêmicos e hepática em ratos, uma espécie dez vezes menor do que os ratos. Este filme demonstra a instrumentação dos animais, bem como o processo de aquisição de dados necessária para avaliar a hemodinâmica sistémica e hepática em ratos. Os parâmetros vitais, incluindo a temperatura corporal, freqüência respiratória e freqüência cardíaca foram registradas durante todo o procedimento. Parâmetros hemodinâmicos sistêmicos consistem de pressão da artéria carótida (PAC) e da pressão venosa central (PVC). Parâmetros de perfusão hepática incluem v portalein pressão (PVP), a taxa de fluxo portal, bem como a taxa de fluxo da artéria hepática comum (tabela 1). Instrumentação e aquisição de dados para registrar os valores normais foi concluída no prazo de 1,5 h. Parâmetros hemodinâmicos sistêmicos e hepáticas permaneceram dentro da normalidade durante este procedimento. Este procedimento é desafiador, mas viável. Nós já aplicou este procedimento para avaliar a hemodinâmica hepática em ratos normais, bem como durante a 70% hepatectomia parcial e no lobo hepático aperto experimentos. A média de PVP após a ressecção (n = 20), foi de 11,41 ± 2,94 cmH 2 O que foi significativamente maior (P &lt;0,05) do que antes da ressecção (6,87 ± 2,39 cmH 2 O). Os resultados do lobo hepático aperto experimento indicou que este procedimento de fiscalização é sensível e adequado para detectar pequenas mudanças na pressão portal e taxa de fluxo portal. Em conclusão, este procedimento é confiável nas mãos de um micro-cirurgião experiente, mas deve ser limitado a experiments onde os ratos são absolutamente necessárias.

Os parâmetros vitais dos ratos, como freqüência respiratória e freqüência cardíaca são, obviamente, muito maior do que em ratos. A média da pressão arterial sistêmica e da pressão da veia jugular são semelhantes aos valores de ratos e até mesmo semelhantes aos dados humanos. Dados hemodinâmicos hepáticos são obviamente diferentes. Obtivemos os valores normais das 8 camundongos. Fluxo portal em ratos normais variou entre 1,6-2,3 ml / min. O fluxo na artéria hepática comum variou entre 0,10 e ...

Este filme demonstra como adquirir hemodinâmica sistêmica e hepática em ratos. Todo o monitoramento inclui a aquisição de parâmetros vitais, pressão arterial sistêmica, pressão venosa central, a taxa de fluxo da artéria hepática comum, e pressão da veia porta, bem como a taxa de fluxo portal em camundongos.

Monitoramento da sistêmicas e hepática Hemodinâmica em Ratos

The use of mouse models in experimental research is of enormous importance for the study of hepatic physiology and pathophysiological disturbances. ...

Neste filme, o procedimento de monitoramento da hemodinâmica sistêmica e hepática e camundongos é demonstrado. O monitoramento inclui a aquisição de parâmetros vitais, pressão arterial sistêmica, pressão venosa central, pressão da veia porta, bem como a taxa de fluxo portal em camundongos. O que é necessário para o procedimento de monitoramento completo é um computador com gráfico de laboratório sete, um microscópio estéreo e uma máquina de anestesia e um sistema DI.Componentes Um sistema DI. Os componentes incluem tempo de trânsito, perivascular, medidor de vazão, laboratório de potência e ponte quádrupla. Para aquisição de dados, também precisamos de temperatura e condicionador de sinal de ECG para registro, temperatura diretiva e frequência cardíaca.Aqui estão os instrumentos de que precisamos. Os materiais de sutura de que precisamos são seis seda zero, seis zero prolina, sete zero prolina, 10 zero prolina. Este é o sensor de temperatura, sensor de ECG e sensor respiratório.Esta é a sonda de fluxo sanguíneo, MA um PSB para medir a taxa de fluxo da veia porta. Esta é a sonda de fluxo sanguíneo, MA 0,5 PSB para medir a taxa de fluxo da artéria comum do corpo, artéria carótida e v

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O ecocardiograma transtorácico oferece um método não invasivo para a avaliação da função cardíaca em camundongos. A combinação de ultra-som Doppler e modalidades podem ser usadas para obter medições dimensionais do coração eo fluxo sangüíneo intracardíaco, que juntos fornecem uma avaliação da pressão arterial sistólica cardíaca diastólica e desempenho.

Ecocardiografia transtorácica em Ratos

O objetivo deste protocolo é avaliar a pressão arterial sistêmica em camundongos conscientes em movimento livre usando dispositivos de radiotelemetria implantáveis.

Longo prazo medição de pressão arterial em ratos movimentando-se livremente utilizar telemetria

A hemorragia descontrolada, uma importante causa de mortalidade entre os pacientes com trauma, pode ser modelada utilizando uma laceração hepática padrão em um modelo murino. Este modelo resulta em perda de sangue consistente, sobrevivência e permite o teste de agentes hemostáticos. Este artigo fornece o processo passo a passo para executar este modelo valioso.

Choque hemorrágico não controlado modelado via laceração hepática em ratos com monitorização hemodinâmica em tempo real

Aqui descrevemos um protocolo detalhado para medição invasiva dos parâmetros hemodinâmicos, incluindo pressão portal, fluxo sanguíneo esplâncnico e hemodinâmica sistêmica para caracterizar a síndrome de hipertensão portal em ratos.

Caracterização hemodinâmica invasiva da síndrome hipertensiva-Portal em ratos cirrose

Aqui nós descrevemos e comparamos duas posições para obter a vista apical da quatro-câmara nos ratos. Essas posições possibilitam a quantificação da função ventricular direita, proporcionam resultados comparáveis e podem ser utilizadas alternadamente.

Mensuração ecocardiográfica dos parâmetros diastólicos do ventrículo direito no mouse

Aqui, apresentamos um protocolo para realizar uma avaliação hemodinâmica invasiva do ventrículo direito e artéria pulmonar em camundongos usando uma abordagem de cirurgia de caixa aberta.

Avaliação Hemodinâmica Invasiva para o Sistema Ventricular Direito e hipertensão arterial pulmonar induzida por hipóxia em camundongos

Este protocolo fornece um procedimento passo-a-passo para a execução da administração de múltiplas doses intravenosas em bolus e monitorização hemodinâmica invasiva em camundongos. Os investigadores podem usar esse protocolo para futura triagem terapêutica de compostos para hipertensão arterial pulmonar.

Dosagem Múltipla em Bolus Intravenoso e Avaliação Hemodinâmica Invasiva em Modelo de Hipertensão Arterial Pulmonar em Camundongos Induzida por Hipóxia

A pulsatilidade do hormônio luteinizante (LH) é uma característica da função reprodutiva. Descrevemos um protocolo para ativação remota de populações neuronais específicas ligado à coleta de sangue automatizada seriada. Esta técnica permite modulação hormonal cronometrada, multiplexação e minimização dos efeitos de manipulação sobre os níveis de LH em animais conscientes, em movimento livre e não perturbados.

Ativação Neuronal Remota Acoplada à Coleta Automatizada de Sangue para Induzir e Medir o Hormônio Luteinizante Circulante em Camundongos

A ultrassonografia Doppler ultrarrápida (UFUS) com alta resolução espacial (100 μm) e sensibilidade representa uma modalidade de imagem não invasiva adequada para obter uma visão qualitativa abrangente da vasculatura hepática. O UFUS também facilita as medições quantitativas da microvasculatura, com o objetivo de melhorar nossa compreensão dos mecanismos das doenças vasculares.

Imagem e quantificação da vasculatura hepática de camundongos usando ultrassom Doppler ultrarrápido

A perda do reflexo de endireitamento serviu durante muito tempo como um substituto do comportamento padrão para a inconsciência, também chamado de hipnose, em animais de laboratório. As alterações na sensibilidade do anestésico volátil decorrentes de intervenções farmacológicas pode ser detectado com um sistema de avaliação controlada cuidadosamente de alto rendimento, que pode ser adaptado para a entrega de qualquer terapêutico inalado.

Avaliar as alterações na volátil Geral Anestésica Sensibilidade de Ratos após intervenção farmacológica local ou sistêmica

Aprenda a monitorar a hemodinâmica sistêmica e hepática em camundongos usando pressão arterial, pressão venosa central e fluxo portal. Este método permite avaliar funções fisiológicas com precisão em experimentos agudos.

Monitoramento da sistêmicas e hepática Hemodinâmica em Ratos

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