5 de outubro de 2014
A migração celular é um fenómeno biológico que está envolvido numa variedade de parâmetros fisiológicos, tais como a cicatrização de feridas e de respostas imunes, e processos patofisiológicos, como o cancro. O ensaio de migração matriz 3D-colagénio é um instrumento versátil para analisar as propriedades migratórias de diferentes tipos de células dentro de um ambiente fisiológico semelhante a 3D.
O objetivo geral deste procedimento é analisar o comportamento migratório das células dentro do ambiente tridimensional. Primeiro, incorpore as células de interesse em uma rede de colágeno tridimensional. Em seguida, registre o movimento das células por microscopia de vídeo com lapso de tempo em seguida, delineie os parâmetros de migração por rastreamento celular assistido por computador e analise os dados de rastreamento de células usando um aplicativo de software de planilha.
Em última análise, este método pode ser usado para investigar quais fatores e vias de transdução de sinal regulam a migração de células cancerígenas ou células normais como leucócitos, linfócitos e células-tronco no contexto do câncer. Portanto, o conhecimento da migração celular, fatores moduladores e vias de transecção de sinal associadas podem ser úteis para o desenvolvimento de novas estratégias terapêuticas para prejudicar a migração de células tumorais e a disseminação metastática. Para as câmaras de migração, escove rapidamente duas camadas de cera de parafina derretida, mistura de vaselina no meio de uma lâmina de vidro, adicione uma tampa, deslize e sele com duas camadas de cera de parafina, mistura de vaselina.
Em seguida, coloque as câmaras de migração na posição vertical em um rack para tubos de reação de 1,5 mililitro. Adicione 20 microlitros da suspensão celular para a suspensão de colágeno. Combine 50 microlitros de 10 XMEM e 27 microlitros de solução de bicarbonato de sódio a 7,5% misture bem.
Em seguida, adicione 375 microlitros de suspensão de colágeno líquido e misture bem para obter uma cor roxa clara, indicando um pH de 7,5. Agora adicione 100 microlitros da suspensão final de colágeno a 50 microlitros da suspensão celular e misture bem, observando o início da fibra de colágeno. Polimerização. Em pH 7,5, transfira a mistura para as câmaras de migração.
Bata suavemente na câmara de migração para distribuir igualmente a mistura de células de suspensão de colágeno na parte inferior da câmara da cadeia de migração. Coloque as câmaras de migração na posição vertical na prateleira e incube por 30 minutos. Quando a rede de colágeno polimerizada estiver ligeiramente turva, mas ainda com uma cor roxa clara, encha as câmaras de migração com o meio apropriado e sele a câmara de migração com cera de parafina.
Mistura de vaselina. Ajuste o aquecedor da platina do microscópio para 37 graus Celsius usando uma ampliação de 10 x na câmara de migração. Concentre aproximadamente 50 células ou mais no campo de visão.
Grave a migração celular no modo de lapso de tempo usando um aplicativo de software de vigilância por vídeo com várias câmeras. Salve os filmes de migração de células em um formato de arquivo apropriado. Vincule os arquivos de filme de migração de célula a um banco de dados contendo informações de suporte, como tipo de célula e condições experimentais.
Em seguida, analise os filmes de migração celular usando um aplicativo de software de rastreamento de células apropriado para uma análise imparcial. Selecione aleatoriamente as células para análise sem saber se as células são migratórias ativas no total, determine cerca de 60 coordenadas XY por célula em um experimento típico de migração celular. Em caso de divisão celular, escolha aleatoriamente uma célula-filha para seguir no rastreamento.
Analise os dados de rastreamento de células usando um aplicativo de software apropriado, como um programa de planilha, para calcular a distância total que uma célula migrou. Multiplique a soma dos valores numéricos de pixel por um fator de correção para conversão em mícrons. Defina as células que migraram menos do que o limite de 25 mícrons como células que não se movem e substitua os valores numéricos por uma vírgula.
Em seguida, calcule a atividade locomotora como uma porcentagem de células da população de células rastreadas que se moveram entre dois pontos de tempo. Além disso, calcule o tempo de movimento ativo como uma porcentagem do tempo total que uma célula migrou em relação ao período de tempo do período de observação. Em seguida, calcule a significância estatística usando o teste U de man Whitney e exiba os dados de migração celular.
Um arquivo de dados de rastreamento de célula típico se assemelha a uma tabela em que cada coluna representa uma célula rastreada. As linhas contêm as informações posicionais sobre o movimento da célula. Ao longo do tempo, o comportamento locomotor das células pode ser caracterizado pela atividade locomotora média da população celular analisada e também pelo tempo de movimento ativo.
Este exemplo mostra as atividades migratórias de 120 células de quatro experimentos independentes. Cada losango indica que uma célula se moveu entre pelo menos dois pontos de tempo. As linhas cinzas diferenciam as células móveis e não móveis.
O parâmetro da atividade locomotiva pode ser exibido como um diagrama XY ou um gráfico de caixa. Para visualizar a dinâmica da população de células analisada, um histograma mostra efetivamente o tempo ativo dessas mesmas células. Esta análise do comportamento migratório das linhagens celulares de câncer de mama MDA HER2 e M-D-A-N-E-O indica que ambas as linhagens celulares exibiram atividade locomotora espontânea semelhante.
O parâmetro tempo ativo revelou um número ligeiramente maior de células M-D-A-H-E-R em movimento espontâneo em comparação com as células de câncer de mama M-D-A-N-O. A estimulação com 100 nanogramas por mililitro de EGF resultou em um aumento significativo da atividade migratória do MDA HER2, medido pelo número de células em movimento e pelo tempo de movimento ativo. Curiosamente, as células M-D-A-N-E-O migraram em resposta à estimulação do EGF e exibiram um tratamento de padrão ativo no tempo deslocado com o inibidor da fosfolipase c gama um uc 3 1 22 reduziu a migração espontânea e induzida por EGF de M-D-E-E-R dois e MDAN.
Células EEO. A análise do parâmetro tempo ativo revelou que o tratamento de células MDAN EEO com dois micromolares de U 7 3 1 2 2 resultou em uma atividade locomotora acentuadamente diminuída, atribuída principalmente a um aumento da quantidade de células imóveis. Uma vez dominada, a migração de linfócitos e leucócitos para um colágeno tridimensional pode ser registrada em cerca de duas horas, onde as células tumorais são registradas durante a noite.
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Este artigo discute a análise da migração celular dentro de uma matriz tridimensional de colágeno, um aspecto crucial de diversos processos fisiológicos e patológicos. O método permite a investigação de fatores que influenciam o movimento celular, particularmente na pesquisa sobre câncer.
A análise da migração celular em uma matriz tridimensional de colágeno fisiologicamente relevante fornece confiança preditiva na validação de alvos ao revelar como fatores pró-migratórios e inibidores modulam o comportamento locomotor. Esta abordagem auxilia na redução de riscos mecanicistas em pipelines de oncologia e imunologia ao quantificar parâmetros de migração que se correlacionam com o potencial metastático e o tráfego de células imunes. O método permite decisões baseadas em dados de avançar ou não avançar já nos estágios iniciais da descoberta, ao associar perturbações moleculares a respostas funcionais de migração.
O ensaio de migração em colágeno 3D insere-se no continuum de descoberta, desde a verificação da hipótese do alvo até a identificação de compostos líderes, fornecendo leituras funcionais que interligam ensaios bioquímicos e triagem fenotípica.