-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PT

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pt_BR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Science Education
Advanced Biology
Imageamento de cálcio em neurônios
Video Quiz
Imageamento de cálcio em neurônios
JoVE Science Education
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Science Education Neuroscience
Calcium Imaging in Neurons

1.3: Imageamento de cálcio em neurônios

97,195 Views
08:43 min
April 30, 2023
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

Os íons de cálcio desempenham um papel integral na função dos neurônios: eles agem como sinais intracelulares que podem obter respostas como expressão genética alterada e liberação de neurotransmissores de vesículas sinápticas. Dentro da célula, a concentração de cálcio é altamente dinâmica devido à presença de bombas que transportam seletivamente esses íons em resposta a uma variedade de sinais. A imagem de cálcio aproveita o fluxo de cálcio intracelular para visualizar diretamente a sinalização de cálcio em neurônios vivos.

Este vídeo começa com uma visão geral dos reagentes-chave usados para esta técnica, conhecidos como corantes indicadores de cálcio. A discussão inclui uma introdução ao corante comumente utilizado Fura-2 e alguns princípios básicos por trás de como funcionam indicadores de cálcio ratiométrico e não-ratiométrico. Em seguida, é apresentado um típico experimento de imagem de cálcio, desde o preparo das células e corante até a captura e análise das imagens fluorescentes. Finalmente, são fornecidas várias aplicações experimentais de imagem de cálcio, como o estudo da atividade da rede neuronal e do processamento sensorial.

Procedure

A imagem de cálcio é uma técnica extremamente útil para investigar a variedade de papéis que os íons de cálcio têm no funcionamento dos neurônios. Íons de cálcio geram uma infinidade de sinais intracelulares que controlam funções-chave, como a liberação de neurotransmissores de vesículas sinápticas. Os métodos de imagem de cálcio permitem a medição direta do fluxo dinâmico de cálcio dentro dos neurônios e do tecido neuronal. Este vídeo fornece uma visão geral de como os corantes indicadores de cálcio funcionam, como um experimento de imagem de cálcio é concluído e, finalmente, discute algumas das aplicações desta técnica.

Primeiro, vamos rever os princípios bioquímicos dos corantes indicadores de cálcio.

Os corantes indicadores de cálcio são moléculas de quenteador modificadas, como a Fura-2, que são compostas por dois componentes principais. O primeiro é o sítio quelaador que liga cálcio de forma seletiva. O segundo é um local fluorescente que emite luz em um comprimento de onda específico quando iluminado por um comprimento de onda excitação de luz ultravioleta.

A ligação do cálcio ao corante altera suas propriedades de fluorescência, o que fornece uma maneira de quantificar as alterações na concentração de cálcio, que é representada aqui pela diferença de intensidade fluorescente emitida por este neurônio em dois diferentes comprimentos de onda de excitação.

A maioria dos corantes indicadores de cálcio são ainda modificados para permitir que eles cruzem prontamente a membrana celular e são introduzidos na solução de banho com os neurônios ou injetados no tecido cerebral para estudos em animais inteiros.

Alguns corantes têm dupla excitação ou propriedades de emissão dupla, dependendo se o cálcio está ou não vinculado. Tome-se, por exemplo, o corante Fura-2, que tem um comprimento de onda de excitação diferente quando o cálcio está ligado versus quando não é. Tomando a razão da intensidade de emissão nos dois comprimentos de onda de excitação, uma estimativa muito mais precisa da concentração de cálcio pode ser feita.

A dupla excitação ou corantes de emissão, como a Fura-2, são chamados de indicadores de cálcio ratiométricos. Corantes não-ratiométricos que têm comprimentos de onda de excitação e emissão únicos existem. No entanto, eles são mais suscetíveis ao fotobleaching, que é o enfraquecimento ou perda de fluorescência com exposição prolongada à luz.

Um passo fundamental antes de usar um corante em um experimento é calibrar as medidas de fluorescência retiradas do corante com soluções de concentrações de cálcio conhecidas. Isso permitirá que os cientistas estimem com precisão as concentrações intracelulares de cálcio com base nas intensidades de emissão medidas durante os experimentos.

Agora que aprendemos como os indicadores de cálcio funcionam, vamos explorar como imaginar o fluxo de cálcio em neurônios banhados.

Comece preparando o indicador de cálcio de corante de escolha, como o Fura-2, e misturando-o com soluções fisiológicas adicionais. Vórtice a solução para garantir a mistura adequada. Uma vez misturado suficientemente transferir em um prato. Agora coloque o deslizamento de tampa com os neurônios cultivados no prato com a solução de corante. Em seguida, incubar os neurônios no escuro para o tempo necessário na temperatura apropriada, que neste caso é de 30 minutos a 37 °C. Após o período de incubação, transfira o deslizamento para um prato sem o corante.

O próximo passo é montar o deslizamento de cobertura na câmara de imagem do microscópio. Uma vez montado, conecte a linha de entrada do sistema de perfusão e encha lentamente a câmara. Fixar a câmara no estágio do microscópio e instalar as linhas de perfusão de saída, garantindo o fluxo contínuo em todo o sistema de perfusão.

Agora que o estágio do microscópio está pronto, leve os neurônios ao foco usando luz visível. Teste o corante iluminando as células em comprimentos de onda de 340 e 380 nm. Lembre-se que com o Fura-2, os neurônios não ativados devem emitir mais luz quando excitados por 380 nm, já que o cálcio não está ligado.

Em seguida, ajuste as configurações da câmera para otimizar o alcance dinâmico antes de iniciar o experimento. Colete uma imagem em cada comprimento de onda e use a região de interesse ou ferramenta ROI para medir a intensidade de fundo em cada comprimento de onda. Insira os valores de fundo no software de controle para que possam ser subtraídos de imagens subsequentes.

Uma vez concluída a configuração inicial, escolha os cinco campos de exibição que devem ser visualizados para o experimento e salve as coordenadas no software de controle. Durante o experimento, o estágio automatizado se move para um campo, coleta uma proporção da intensidade do campo em comprimentos de onda de 340 e 380 nm, e passa para o próximo campo até que todos os campos sejam coletados.

Em alguns experimentos, um agente farmacológico é adicionado ao fluido de perfusão que causa alterações nos níveis de cálcio intracelular. Uma solução de potássio alto, que despolariza os neurônios, pode fazer com que a concentração intracelular de cálcio aumente como mostrado nesta série de imagens de lapso de tempo e serve como um bom controle positivo. Uma vez concluída a coleta de dados, proceda à análise.

Para analisar os resultados, selecione regiões de interesse que incluam neurônios ou partes de neurônios usando o software. Em seguida, use o software para medir a proporção de imagens de intensidademétrica de ambos os comprimentos de onda em cada ROI em todas as imagens coletadas. Com essas informações, pode ser feita uma avaliação quantitativa das alterações nas concentrações intracelulares de cálcio ao longo do tempo.

Agora que você tem uma compreensão de como a imagem de cálcio nos neurônios é alcançada, vamos olhar para algumas das maneiras que este método valioso é aplicado em pesquisas hoje.

Em primeiro lugar, a imagem de cálcio é usada para investigar como o fluxo de cálcio intracelular fluxua em relação à atividade neural.

Neste estudo, os neurônios individuais foram preenchidos com um corante indicador de cálcio enquanto estavam registrados com grampo de remendo. O controle preciso do potencial de membrana habilitado pela técnica de grampo de remendo fornece uma visão da dinâmica do fluxo de cálcio.

A imagem de cálcio permite que os pesquisadores investiguem a atividade de rede altamente síncronica dos neurônios.

Aqui, neurocientistas usaram imagens de cálcio para avaliar o sinal fluorescente de 40 neurônios. Com essas informações, podem ser determinadas propriedades da rede, como propagação de sinais e correlações neurais.

A dinâmica do cálcio também pode revelar como os neurônios processam sinais do mundo exterior, como cheiros.

Neste experimento, os órgãos de sensoriamento de feromônio extraídos de um nariz de rato foram cultivados na cultura. Os neurônios dentro do tecido foram incubados com Fura-2 e imageados enquanto eram apresentados com odores como urina ou feromônios purificados. Manipulando a expressão de proteínas receptoras odorantas em neurônios olfativos, é possível visualizar diretamente como uma única proteína influencia a capacidade de uma célula responder a cheiros únicos.

Você acabou de assistir a introdução do JoVE à imagem de cálcio em neurônios. Neste vídeo, discutimos as propriedades por trás da técnica e revisamos um experimento típico.

Dado os muitos papéis importantes do cálcio, a imagem de cálcio continuará sendo uma ferramenta vital na compreensão dos neurônios e como eles interagem uns com os outros.

Obrigado por assistir!

Transcript

A imagem de cálcio é uma técnica extremamente útil para investigar a variedade de papéis que os íons de cálcio têm no funcionamento dos neurônios. Os íons de cálcio geram uma infinidade de sinais intracelulares que controlam funções-chave, como a liberação de neurotransmissores das vesículas sinápticas. Os métodos de imagem de cálcio permitem a medição direta do fluxo dinâmico de cálcio dentro dos neurônios e do tecido neuronal. Este vídeo fornece uma visão geral de como os corantes indicadores de cálcio funcionam, como um experimento de imagem de cálcio é concluído e, finalmente, discute algumas das aplicações dessa técnica.

Primeiro, vamos revisar os princípios bioquímicos dos corantes indicadores de cálcio.

Os corantes indicadores de cálcio são moléculas quelantes modificadas, como o Fura-2, que são compostas por dois componentes principais. O primeiro é o local quelante que se liga ao cálcio de forma seletiva. O segundo é um local fluorescente que emite luz em um comprimento de onda específico quando iluminado por um comprimento de onda de excitação de luz ultravioleta.

A ligação do cálcio ao corante altera suas propriedades de fluorescência, o que fornece uma maneira de quantificar as mudanças na concentração de cálcio, que é representada aqui pela diferença na intensidade fluorescente emitida por esse neurônio em dois comprimentos de onda de excitação diferentes.

A maioria dos corantes indicadores de cálcio é modificada para permitir que eles atravessem prontamente a membrana celular e são introduzidos na solução do banho com os neurônios ou injetados no tecido cerebral para estudos com animais inteiros.

Alguns corantes têm propriedades de excitação dupla ou emissão dupla, dependendo se o cálcio está ou não ligado. Tomemos, por exemplo, o corante Fura-2, que tem um comprimento de onda de excitação diferente quando o cálcio está ligado e quando não está. Tomando a razão da intensidade de emissão nos dois comprimentos de onda de excitação, uma estimativa muito mais precisa da concentração de cálcio pode ser feita.

Corantes de excitação dupla ou emissão, como o Fura-2, são chamados de indicadores raciométricos de cálcio. Existem corantes não raciométricos que possuem comprimentos de onda de excitação e emissão únicos. No entanto, eles são mais suscetíveis ao fotobranqueamento, que é o enfraquecimento ou perda de fluorescência com a exposição prolongada à luz.

Um passo fundamental antes de usar um corante em um experimento é calibrar as medições de fluorescência feitas do corante com soluções de concentrações de cálcio conhecidas. Isso permitirá que os cientistas estimem com precisão as concentrações de cálcio intracelular com base nas intensidades de emissão medidas durante os experimentos.

Agora que aprendemos como funcionam os indicadores de cálcio, vamos explorar como obter imagens do fluxo de cálcio em neurônios revestidos.

Comece preparando o corante indicador de cálcio de sua escolha, como Fura-2, e misturando-o com soluções fisiológicas adicionais. Vortex a solução para garantir a mistura adequada. Depois de suficientemente misturado, transfira para um prato. Agora coloque a lamínula com os neurônios cultivados no prato com a solução de corante. Em seguida, incube os neurônios no escuro pelo tempo necessário na temperatura apropriada, que neste caso é de 30 minutos a 37 °C. Após o período de incubação, transfira a lamínula para um prato sem o corante.

O próximo passo é montar a lamínula na câmara de imagem do microscópio. Uma vez montado, conecte a linha de entrada do sistema de perfusão e encha lentamente a câmara. Prenda a câmara ao estágio do microscópio e instale as linhas de perfusão de saída, garantindo um fluxo contínuo em todo o sistema de perfusão.

Agora que o estágio do microscópio está pronto, coloque os neurônios em foco usando luz visível. Teste o corante iluminando as células nos comprimentos de onda de 340 e 380 nm. Lembre-se de que, com o Fura-2, os neurônios não ativados devem emitir mais luz quando excitados por 380 nm, pois o cálcio não está ligado.

Em seguida, ajuste as configurações da câmera para otimizar a faixa dinâmica antes de iniciar o experimento. Colete uma imagem em cada comprimento de onda e use a região de interesse ou a ferramenta ROI para medir a intensidade do plano de fundo em cada comprimento de onda. Insira os valores de fundo no software de controle para que possam ser subtraídos das imagens subsequentes.

Quando a configuração inicial estiver concluída, escolha os cinco ou mais campos de visão que devem ser fotografados para o experimento e salve as coordenadas no software de controle. Durante o experimento, o estágio automatizado se move para um campo, coleta uma proporção da intensidade do campo em comprimentos de onda de 340 e 380 nm e passa para o próximo campo até que todos os campos sejam coletados.

Em alguns experimentos, um agente farmacológico é adicionado ao fluido de perfusão que causa alterações nos níveis de cálcio intracelular. Uma solução com alto teor de potássio, que despolariza os neurônios, pode fazer com que a concentração de cálcio intracelular aumente, como mostrado nesta série de imagens de lapso de tempo, e serve como um bom controle positivo. Assim que a coleta de dados for concluída, prossiga para a análise.

Para analisar os resultados, selecione regiões de interesse que incluam neurônios ou partes de neurônios usando o software. Em seguida, use o software para medir as informações de intensidade raciométrica da imagem de ambos os comprimentos de onda em cada ROI em todas as imagens coletadas. Com essas informações, pode-se fazer uma avaliação quantitativa das mudanças nas concentrações intracelulares de cálcio ao longo do tempo.

Agora que você tem uma compreensão de como a imagem de cálcio nos neurônios é alcançada, vejamos algumas das maneiras pelas quais esse método valioso é aplicado na pesquisa hoje.

Em primeiro lugar, a imagem de cálcio é usada para investigar como o cálcio intracelular flui em relação à atividade neural.

Neste estudo, neurônios individuais foram preenchidos com um corante indicador de cálcio enquanto eram registrados no patch-clamp. O controle preciso do potencial de membrana habilitado pela técnica patch-clamp fornece informações sobre a dinâmica do fluxo de cálcio.

A imagem de cálcio permite que os pesquisadores investiguem a atividade de rede altamente síncrona dos neurônios.

Aqui, os neurocientistas usaram imagens de cálcio para avaliar o sinal fluorescente de 40 neurônios. Com essas informações, as propriedades da rede, como propagação de sinal e correlações neurais, podem ser determinadas.

A dinâmica do cálcio também pode revelar como os neurônios processam sinais do mundo exterior, como cheiros.

Neste experimento, órgãos sensíveis a feromônios extraídos de um nariz de camundongo foram cultivados em cultura. Os neurônios dentro do tecido foram incubados com Fura-2 e fotografados enquanto eram apresentados a odores como urina ou feromônios purificados. Ao manipular a expressão de proteínas receptoras de odor em neurônios olfativos, é possível visualizar diretamente como uma única proteína influencia a capacidade de uma célula de responder a cheiros únicos.

Você acabou de assistir a introdução de JoVE à imagem de cálcio em neurônios. Neste vídeo, discutimos as propriedades por trás da técnica e revisamos um experimento típico.

Dado o papel importante do cálcio, a imagem do cálcio continuará sendo uma ferramenta vital na compreensão dos neurônios e como eles interagem uns com os outros.

Obrigado por assistir!

Explore More Videos

Valor vazio emissão

Related Videos

Uma Introdução à Neurofisiologia

Uma Introdução à Neurofisiologia

Neuroscience

98.1K Visualizações

Eletrofisiologia do Patch Clamp

Eletrofisiologia do Patch Clamp

Neuroscience

98.0K Visualizações

Uma Introdução à Neuroanatomia

Uma Introdução à Neuroanatomia

Neuroscience

64.5K Visualizações

Cirurgia Estereotáxica em Roedores

Cirurgia Estereotáxica em Roedores

Neuroscience

154.1K Visualizações

Coloração histológica do tecido neural

Coloração histológica do tecido neural

Neuroscience

160.0K Visualizações

Uma Introdução à Neurociência Comportamental

Uma Introdução à Neurociência Comportamental

Neuroscience

48.2K Visualizações

O labirinto aquático de Morris

O labirinto aquático de Morris

Neuroscience

53.6K Visualizações

fMRI: Ressonância Magnética Funcional

fMRI: Ressonância Magnética Funcional

Neuroscience

60.2K Visualizações

Uma Introdução à Neurociência Celular e Molecular

Uma Introdução à Neurociência Celular e Molecular

Neuroscience

75.5K Visualizações

Culturas Neuronais Primárias

Culturas Neuronais Primárias

Neuroscience

68.4K Visualizações

Métodos de Transfecção Neuronal

Métodos de Transfecção Neuronal

Neuroscience

16.6K Visualizações

Cultura de explante de tecido neural

Cultura de explante de tecido neural

Neuroscience

23.7K Visualizações

Eletroporação Murina <i>In Utero</i>

Eletroporação Murina <i>In Utero</i>

Neuroscience

21.5K Visualizações

Uma Introdução à Neurobiologia do Desenvolvimento

Uma Introdução à Neurobiologia do Desenvolvimento

Neuroscience

41.2K Visualizações

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code