Name: Formação Sinapse Inibitória em uma co-cultura-tipo que comportem GABAérgicos espinhosos médios neurônios e células HEK293 expressando estavelmente GABA A Receptores (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-11-14T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 51 s
Description: Aprenda a formar sinapses inibitórias GABAérgicas em co-cultura entre neurônios espinhosos médios embrionários e células HEK293 expressando receptores GABA A. Este método permite visualizar contatos sinápticos ativos por imunofluorescência e microscopia confocal.

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Nós gostaríamos de agradecer o apoio financeiro do MRC Reino Unido (G0800498). Gostaríamos também de agradecer ao professor JM Fritschy, da Universidade de Zurique, para a prestação do anticorpo GABA A -R específico da subunidade γ2 e Professor R. Harvey, UCL School of Pharmacy, para a prestação do pcDNA 3.1 (+) vetores de expressão contendo resistência a antibióticos genes para a produção de linhas celulares HEK293 transfectadas de forma estável.

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</ol>

Os autores declaram que não têm interesses financeiros concorrentes.

Apesar de este protocolo não é tecnicamente difícil de realizar, existem vários passos críticos que devem ser seguidos para alcançar os ensaios de co-cultura mais precisas e repetíveis. Em primeiro lugar, em cultura de neurônios espinhosos médios devem ser semeadas em uma densidade ideal. Se semeadas muito baixa densidade, neurónios tendem a desenvolver-se muito lentamente e sobrevivência é grandemente reduzida. Por outro lado, se semeadas muito densamente, os neurónios tendem a agregar o que compromete a análise de contactos com células HEK293. Em segundo lugar, é recomendado para expressar transitoriamente um repórter fluorescente, GFP ou mCherry em células HEK293 que expressam estavelmente Rs GABA A, antes da tecendo-os para a co-cultura. Isso permite que o reconhecimento confiável de células HEK293, que podem ser comprometidos por semelhança em forma e tamanho entre essas células e células glia raro sobreviver em culturas neuronais. Para alcançar a transfecção eficiente com GFP ou mCherry cDNA, as linhas celulares HEK293 tem que estar na fase de crescimento exponencial esemeadas a uma densidade adequada em placas de 6 poços. Semeadura escassa seguida de transfecção fará com que as células a crescer mal, enquanto que sobre-semeadura vai impedir as células de tomar-se o cDNA. Idealmente, as células devem ser semeadas de modo a que eles estão entre 70 - 90% confluentes no dia da transfecção. Em terceiro lugar, a transfecção deve ser optimizada para cada linha celular utilizada, como algumas linhas de células são mais sensíveis do que os outros. Isto é porque o GABA A expressão constitutiva em células HEK293 R reduz a sobrevivência celular e a capacidade das células para se recuperar após a transfecção. Além disso, a sobrevivência depende do tipo de Rs GABA A expressos em células HEK293, com algumas linhas de células sendo significativamente mais sensíveis do que os outros. A transfecção usando o reagente de lipossomas é um método ideal para a expressão de proteínas estranhas em linhas de células de crescimento rápido, proporcionando tanto a alta eficiência de transfecção e nível de expressão. No entanto, este reagente causa demasiados danos ao crescimento lento, linhas celulares, paraque usamos regularmente um reagente de transfecção não lipossomal. Este trabalha de uma maneira semelhante ao reagente lipossomal mas a quantidade de ADN necessário para a transfecção eficiente é significativamente reduzida. Isto permite uma maior sobrevivência celular (aproximadamente 80 - 90% em comparação com 60% utilizando reagente lipossómico) mas com menor eficiência de transfecção (60%). Por último, o número de controlo HEK293 ou α1 / β2 / γ2 HEK293 expressando células adicionadas às culturas neuronais tem de ser optimizado. Adicionando muito poucas células compromete a análise bem sucedida de contactos entre as células HEK293 e neurônios, porque eles se tornam muito raro. Por outro lado, a adição de muitas células HEK293 que provoca a morte celular neuronal dentro de poucas horas. Embrionárias culturas de neurônios espinhosos médios devem, idealmente, ser preparado usando tecido estriado dissecado de 15 anos de idade embrionária - 17. No entanto, acontece frequentemente que os embriões são ligeiramente mais jovens ou mais velhos do que a idade ideal. Neste caso, o número de neurônios semeadas em cultura vaiprecisa ser variada. Os tecidos que é mais jovem do que E15 podem precisar de ser semeadas a uma densidade ligeiramente mais baixa, ao passo que o tecido é mais velha do que E17 podem precisar de ser semeadas a uma densidade mais elevada, para permitir a sobrevivência celular óptimo. Além disso, o citosina-arabinósido (Ara-C) pode necessitar de ser adicionados a culturas mais velhas para evitar o crescimento de células da glia, a qual é mais abundante em tecidos mais velhos. Ao criar co-culturas, é importante para a chapa do número optimizado de HEK293 transfectadas ou α1 / β2 / γ2 células HEK293 que expressam, como mencionado acima. No entanto, pode ser necessário para determinar esta linha de células para cada indivíduo, por causa das diferenças na sua sobrevivência. Tipicamente, 30.000 células num volume máximo de 50 mL deve ser adicionada a cada poço de um prato de 24 poços, que já contém 500 ul de meio de cultura neuronal, como isso garante que o meio neuronal condicionado não é muito diluída, e que as condições dentro de cada bem permanecer relativamente constante, por exemplo, </em&gt; A concentração de factores de crescimento. A adição de volumes superiores a 50 ul a cada poço, em geral, matar os neurónios. Um dos principais inconvenientes da técnica de co-cultura é que as culturas neuronais são criados a partir de células dissociadas cultivadas como uma monocamada, o que significa que os neurónios foram removidos do seu microambiente normal e são incapazes de estabelecer a sua organização anatómica normal. Portanto, eles não têm as conexões apropriadas, insumos e moléculas secretadas a partir de outras células que podem influenciar as fases iniciais de desenvolvimento sinapse. Por exemplo, in vivo neurônios espinhosos médios são densamente inervados por entradas glutamatérgicos do outras regiões do cérebro 34 córtex, tálamo e, no entanto, em nossas culturas neuronais sinapses glutamatérgicos não fazem, porque essas entradas são danificados durante a dissecção do tecido estriado. Como a ausência de sinapses funcionais glutamatérgicos em neurônios espinhosos médios cultivadas affECTS sua capacidade de formar sinapses GABAérgicos uns com os outros e / ou células HEK293 expressando GABA A Rs permanece uma questão em aberto. Esta questão poderia ser facilmente tratadas pela cultura de neurônios espinhosos médios junto com os neurônios glutamatérgicos corticais permitindo-lhes formar sinapses funcionais 35 antes da adição de células HEK293. Uma abordagem alternativa seria a de criar um sistema de modelo de co-cultura com base em culturas organotípicas de fatias, que mantêm a citoarquitetura alguns dos quais pode ser importante para a maturação e a formação de sinapses. No entanto, as culturas fatia organotypic ter neuropil densa e heterogênea que pode comprometer a análise realizada aqui. Outra desvantagem importante da utilização de ensaios de co-cultura é que o GABA Um Rs expressa na superfície de células HEK293 não são agrupados à medida que são em neurónios, embora isto não parece ser necessário para a formação de sinapses dada uma expressão bastante elevada superfície 30. Por exemplo, no rOdent cérebro e nas culturas do hipocampo, a α1 GABA A R subunidade é encontrado na maioria das sinapses GABAérgicos em todos os domínios pós-sinápticos de células piramidais. No entanto, o α2 está especificamente localizado em um subconjunto de sinapses no somata e dendritos, mas é altamente enriquecida no segmento axonal inicial, conforme revelado por microscopia de imunofluorescência e de electrões 36. Dado que a formação de sinapses nas co-culturas ainda pode ser detectado com segurança e analisados ​​30, isto sugere que a densidade de GABA A Rs na superfície celular de células HEK293 que pode ser semelhante a, ou até mesmo maior do que a densidade destes receptores dentro sináptica clusters em neurônios. Isto pode explicar, pelo menos em parte, porque as proteínas sinápticas de adesão, tais como neuroligin, densidade e proteínas, tais como pós-sinápticos gephyrin, não são necessárias para a formação de sinapses nas co-culturas, se os Rs apropriadamente montados GABA A estão presentes em quantidade suficiente densidade. Está bem documentado que Rs GABAA são estruturalmente e funcionalmente heterogéneas, e que a composição de subunidades do receptor determina a sua localização subcelular e propriedades farmacológicas. Por exemplo, a incorporação das duas subunidades é conhecido por ser um pré-requisito para a localização sináptica de Rs GABA A, enquanto a subunidade é quase exclusivamente presente em Rs extrasynaptic GABA A. Os receptores que incorporam apenas αβ combinações também são pensados ​​para ser predominantemente localizada para os domínios extrasynaptic 12- 14. Se esta especificidade é mantida no nosso sistema de co-cultura pode ser facilmente testada por transfecção transiente, 2 ou subunidade cDNAs em linhas de células HEK293 que expressam estavelmente subunidades α e β, antes de adicioná-los para culturas neuronais. As nossas experiências preliminares usando esta abordagem têm sugerido que os contactos sinápticos são prontamente formadas apenas na presença da subunidade 2, indicando que a especituais observada in vivo é susceptível de ser preservada in vitro (dados não mostrados). Além disso, Rs GABA A que incorporam diferentes subunidades α são seletivamente localizada contatos sinápticos formados com tipos específicos de neurônios pré-sinápticos. Por exemplo, no globo pálido, o Rs α1-GABA A são geralmente encontradas em striatopallidal (str-GP) e (GP-GP) palliopallidal sinapses, que estão localizados em regiões somáticas e dendritos dos neurónios espinhosos médios, respectivamente. Os Rs α3-GABA A estão localizados em regiões perisomatic de neurônios espinhosos médios e são contactados por colaterais axônio GP locais, enquanto os Rs α2-GABA A estão localizados em dendritos distais desses neurônios e contatou principalmente pelas entradas do striatum 32. Expressão de subunidades α específicos em diferentes tipos de sinapses e em diferentes compartimentos neuronais também foi demonstrada em outras áreas do cérebro, tais como Hippocampus 21 e neocórtex 18,20. Estes resultados levantam a questão sobre a forma como as sinapses inibitórias específicas são formadas no cérebro. Será que a adesão de um tipo específico de terminal pré-sináptico induzir a inserção de subtipos de receptores GABA A R específicos para os pontos de contacto? São os receptores traficadas para locais subcelulares específicas de acordo com a sua composição subunidade, onde sua inserção membrana plasmática é um pré-requisito para a adesão dos terminais axonais de origem específica? Até o momento, estas questões continuam sem resposta. O uso de reduzidas sistemas modelo tais como o sistema modelo de co-cultura, nos permitem começar a responder perguntas este complexo porque o sistema é facilmente adaptado a uma transfecção de construções de ADN e aplicação dos reagentes e, mais importante, é adequada para análise de imagem de células vivas 30. Assim, usando este sistema de modelo que pode começar a testar o papel de moléculas individuais, incluindo diferentes tipos de Rs GABA A, saben de estar presente em contatos sinápticos. Outra vantagem é que as sinapses neste formulário modelo de sistema rapidamente, dentro de minutos a horas, reduzindo a duração do experimento. Sistemas modelo de co-cultura Similar foram empregadas com sucesso no passado para rastrear as moléculas synaptogenic novos 27,37,38. A compreensão de como o sistema nervoso central desenvolve, amadurece e formas conexões entre os neurônios tão intricada para controle, por exemplo, o comportamento ou cognição, é de fundamental importância. Este objectivo distante só será conseguida por delinear os mecanismos moleculares que regulam os passos individuais de reconhecimento e comunicação célula-a-célula durante o desenvolvimento. Devido à enorme complexidade, os detalhes moleculares desses múltiplas interações celulares atualmente pode ser estudado com precisão apenas em sistemas reduzidos. No entanto, a capacidade de aumentar a complexidade destes sistemas expressando múltiplas combinações de proteínas e como estudareles interagem tem algumas vantagens em comparação com, por exemplo, abordagens genéticas de deleção. Isto é porque a interpretação exacta dos efeitos de uma única deleção do gene é muitas vezes comprometido por alterações associadas com mecanismos compensatórios mascarando os efeitos de lesões originais, particularmente no desenvolvimento do cérebro. A técnica de co-cultura, mas informativa simples aqui descrita permitiu uma descoberta do papel estrutural de GABA A Rs na formação de sinapses e abriu a possibilidade de se investigar como Rs GABA A e outras moléculas de adesão celular e / ou proteínas de matriz sinápticas interagem uns com os outros durante a sinaptogênese. Proteínas de matriz sinápticas são de particular interesse uma vez que elas tenham sido recentemente demonstrado desempenhar um papel chave na formação de sinapses glutamatérgicas 39. Continuação do desenvolvimento de modelos de co-cultura é importante porque eles têm o potencial de aumentar o nosso conhecimento dos mecanismos moleculares que norteiam o &#39;normal &amp;# 8217; o desenvolvimento do cérebro e, assim, aumentar a nossa compreensão de como esses mecanismos são alterados em muitas doenças do neurodesenvolvimento, como a epilepsia, esquizofrenia, transtornos do espectro do autismo e muitos outros.

GABA é um dos primeiros neurotransmissores encontrados no cérebro embrionário, que precede o mais abundante neurotransmissor excitatório glutamato 1. Durante o desenvolvimento, GABA despolariza e excita neurônios imaturos, desempenhando um papel fundamental na regulação da proliferação celular, migração e formação de redes neuronais sem induzir excitotoxicidade. No cérebro adulto, o potencial de inversão para os canais dos receptores GABA A é deslocado para potenciais mais negativos, devido a uma diminuição na concentração intracelular de cloreto. Este efeito é causado por sobre-regulação do cloreto de potássio-co-transportador (KCC2), que transporta cloreto de fora da célula, e, em paralelo, a regulação negativa do transportador-potássio-cloreto de sódio (NKCC1), que tem 2 o efeito oposto. No cérebro, o GABA liga-se principalmente aos receptores GABA A, quer B ou GABA para mediar rápido ou lento inibição sináptica, respectivaly. Rs GABA A são uma classe de receptores também conhecidos como ionotrópica heteropentamérica ou canais iônicos Cys de circuito fechado por ligante. Duas moléculas de GABA são necessários para a activação do receptor, que é permeável aos iões cloreto e, em menor grau, os iões de bicarbonato. O aumento na condutância do cloreto diminui a eficácia de despolarização, eventos excitatórios na activação do neurónio pós-sináptico 3. Diversidade estrutural dos Rs GABA A tem sido reconhecida como um fator chave na determinação da sua vasta gama de propriedades funcionais e farmacológicas. Rs nativo GABA A são hetero-pentâmeros compostas por subunidades com múltiplas isoformas classificadas como: α (1-6), β (1-3), γ (1-3), δ, ε, π θ e 3, com um comum topologia transmembranar compreendendo um grande domínio N-terminal extracelular, quatro domínios transmembranares (TMS), e um grande domínio intracelular TMs entre 3 e 4 4. Oβ3 e γ2 subunidades são essenciais para a inibição sináptica e sobrevivência do organismo, porque ratinhos portadores de deleção genética destas subunidades morrer após o nascimento 5,6. Em contraste, as isoformas individuais de α subunidade são importantes para a função das conexões sinápticas específicas no cérebro associada com diferentes comportamentos, tais como a ansiedade, sedação, excitação, e outros, mas não são, individualmente, essencial para a vida 7-9. Rs GABA A são os principais locais de ação para uma variedade de drogas com sedativo potente, hipnóticos, ansiolíticos e efeitos anticonvulsivantes, tais como benzodiazepínicos, barbitúricos, neuroesteróides e anestésicos 7,10,11. Rs Synaptic GABAA normalmente contêm uma subunidade γ2, duas subunidades β (mais comumente β2 ou β3) e duas subunidades α (α1, α2, α3 ou α5) 12,13. A classe predominante dos receptores extra-sináptica contém a subunidade δ em combinaçãocom duas subunidades α (α4 ou α6) e duas subunidades β (β2 ou β3 14). Localização subcelular de GABA A Rs para axónios, os dendritos ou soma, e inserção na membrana do plasma são dependentes da presença de β-subunidades 15,16. No entanto, a incorporação selectiva de diferentes subtipos de receptores GABA A R em tipos diferentes de sinapses se correlaciona bem com a presença de subunidades α específicos (α1, α2, α3 ou α5) 7,17,18. É importante ressaltar que a eliminação de α1 ou α2 subunidade em ratos provoca alterações ultra-estruturais em sinapses inibitórias 19. Isto sugere que o GABA A RS si pode desempenhar um papel direto na regulação formação de sinapses. As evidências indicam que o desenvolvimento GABAérgica sinapse é precisamente uma sequência coordenada de eventos, nos quais ambos os alvos neuronais contactado por diferentes tipos de axónios e os receptores inibitórios que são agrupadas emcada classe de sinapse inibitória são seletivos e funcionalmente sintonizados 17,20-22. Este princípio fundamental de especificidade nas sinapses GABAérgicos levanta a questão de como os parceiros de pré e pós-sinápticos reconhecer uns aos outros durante o início de contatos sinápticos. Os ensaios in vitro de co-cultura foram aplicadas com sucesso para estudar alguns dos mecanismos de formação de sinapses e para testar o papel de proteínas que atravessam a fenda sináptica individuais neste processo. Uma das trans-sinápticos combinações de proteínas comuns interagindo que funcionam bi-direcional para mediar a formação de sinapses e maturação, são o neurexinas (Nrxns) e neuroligins (NLS). Nrxns são proteínas pré-sinápticas que apresentam splicing alternativo dentro de seus domínios de proteínas de ligação do hormônio laminina-neurexin sexo, dando origem a muitas isoformas diferentes 23. Enquanto o Nrxns também interagir com outras proteínas, NLS são pensados ​​para ser seu pa pós-sináptica onipresentertners 24. Juntas, estas proteínas contribuem para manter as membranas pré-sinápticas e pós-sinápticos em estreita e rígida aposição 25. As duas isoformas mais abundantes são NL-1 e NL-2, que estão presentes em excitatórios e inibitórios sinapses, respectivamente 26. Um dos primeiros sistemas de modelo de co-cultura, concebidos para investigar interacções proteína trans-sinápticos, empregues diferentes tipos de células não-neuronais, linhas de células imortais mais comumente, tais como rim embrionário humano (HEK) 293, a sobre-expresso NL- 2. Quando estas células foram cultivadas com neurónios pontine, foi observada uma acumulação de proteínas pré-sinápticos em estreita proximidade com a superfície das células HEK, indicando a formação de contactos de sinapses semelhante. A adição de β-solúvel neurexin a estes co-culturas inibiu a formação de contatos, o que sugere que as interações trans-sinápticas entre Nrxns e NLS são necessários para a formação de contacto sináptico 27. Além disso, a expressão transientede β-neuroxinas em células COS (C V-1 (símia) em O rigin, e que transporta o material genético S V40) co-cultivadas com glutamatérgica dissociada do hipocampo e neurónios GABAérgicos expressão induzida do gephryin proteína pós-sináptica de GABA A e R subunidades γ2 e α2 nos pontos de contato entre esses dois tipos de células 28. Outro exemplo de um modelo de co-cultura utilizado para estudar a formação de sinapses envolvidos células HEK293, transitoriamente transfectadas com as subunidades do receptor GABA A R α2 / β3 / γ2 e NL-2, e uma população mista de neurónios hipotalâmicos 29. Este estudo concluiu que a expressão de NL-2 é uma exigência absoluta para a formação de sinapses inibitórias. Α1 No entanto, no estudo recente de co-cultura, estavelmente transfectadas / β2 / γ2 GABA A Rs em células HEK293 foram encontrados para ser suficiente para induzir as sinapses funcionais quando co-cultivadas com med GABAérgicosneurônios espinhosos ium, sem a necessidade de proteínas adicionais de adesão trans-sinápticos ou pós-sinápticos. No entanto, foi observado um aumento de destaque na formação e força sinapse quando NL-2 foi co-expressa com GABA A Rs 30. Isto indica que este sistema de modelo de co-cultura tem vantagens sobre os sistemas de modelos anteriormente descritos, com mais evidência um aumento da sensibilidade e fiabilidade da detecção de contacto sináptico. Dois factores importantes que contribuem para a melhoria global na detecção de contactos sinápticos são: i) A utilização de linhas de células estavelmente transfectadas HEK293 com expressão elevada e consistente de R subunidades GABA A na superfície de células individuais. Essa consistência facilita as comparações quantitativas entre diferentes condições de co-cultura. ii) A utilização de uma população pura de neurónios GABAérgicos espinhosas meio cultivado a partir do corpo estriado embrionário 31 remove as ambiguidades e as complicações resultantes da utilização de populações mistas neuronais e alows, por exemplo, a selecção de um dos tipos de receptores GABA A pós-sinápticos R mais apropriados que podem ser comparados uns com os outros durante a formação de sinapses. Formação de sinapses é pensado para envolver muitos sinais trans-sinápticos dentro complexos de adesão celular pré e pós-sinápticos. Devido à natureza bi-direccional de sinalização sináptica e os números absolutos de moléculas de adesão celular, é difícil identificar os principais componentes envolvidos na formação de sinapses. Assim, a transfecção de uma única proteína de adesão da célula para uma célula não-neuronal (neste caso, os dois alvos pós-sinápticos mais prevalentes para GABAérgicos neurónios espinhosos médios in vivo, α1 / β2 / ou γ2 α1 / β3 / γ2 GABA A Rs 32) grandemente reduz a complexidade de sinais de trans-sináptica disponíveis na superfície pós-sináptico e permite a análise quantitativa rigorosa da eficácia da presente proteína para promover a formação de sinapses.

<table><tbody><tr><td>DMEM (Dulbecco's Modified Eagle Medium)</td><td>Life Technologies</td><td>11960-044</td><td>Quente em banho-maria a 37 &graus; C antes de usar</td></tr><tr><td>L-Glutamina</td><td>Life Technologies</td><td>25030-024</td><td></td></tr><tr><td>Penicilina/Estreptomicina</td><td>Life Technologies</td><td>15070-063</td><td>Perigo: irritante</td></tr><tr><td>FBS (Soro Fetal Bovino)</td><td>Life Technologies</td><td>10106-169</td><td></td></tr><tr><td>Neuralbasal</td><td>Life Technologies</td><td>21103-049</td><td>Quente em banho-maria a 37 &graus; C antes de usar</td></tr><tr><td>Suplemento B27</td><td>Life Technologies</td><td>17504-044</td><td></td></tr><tr><td>Glicose</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G8769</td><td></td></tr><tr><td>HBSS (10X)</td><td>Life Technologies</td><td>14180-046</td><td></td></tr><tr><td>HEPES (1M)</td><td>Life Technologies</td><td>15630-056</td><td></td></tr><tr><td>PBS (1X)</td><td>Life Technologies</td><td>10010-031</td><td></td></tr><tr><td>pcDNA 3.1(+) Vetor de Expressão de Mamíferos (Seleção Genética)</td><td>Life Technologies</td><td>V790-20</td><td></td></tr><tr><td>pcDNA 3.1(+) Vetor de Expressão de Mamíferos (seleção de zeocina)</td><td>Life Technologies</td><td>V860-20</td><td></td></tr><tr><td>pcDNA 3.1(+) Vetor de Expressão de Mamíferos (seleção de higromicina)</td><td>Life Technologies</td><td>V870-20</td><td></td></tr><tr><td>HEK&alpha estável; 1&beta; 2&gama; 2 linhas</td><td>Sanofi-Synthelabo, Paris</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Poli-D-lisina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P1149</td><td></td></tr><tr><td>G418 sal dissulfato (Geneticina)</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>G5013</td><td>Perigo: irritante</td></tr><tr><td>Fleomicina D1 (Zeocina)</td> <td>Life Technologies</td><td>R25001</td><td></td></tr><tr><td>Higromicina B</td><td>Life Technologies</td><td>10687-010</td><td>Perigo: tóxico, irritante e corrosivo</td></tr><tr><td>Trypsin-EDTA</td><td>Life Technologies</td><td>25300-054</td><td>Quente em banho-maria a 37 &deg; C antes de usar. Perigo: irritante.</td></tr><tr><td>Poli-L-lisina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P6282</td><td></td></tr><tr><td>Laminin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L2020</td><td></td></tr><tr><td>100 &mu; m Filtro de células de nylon</td><td>VWR</td><td>734-0004</td><td></td></tr><tr><td>Citosina &beta;-D-arabinofuranosídeo (Ara-C)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C1768</td><td>Perigo:</td></tr><tr><td>Agente quelante irritante (Versene)</td><td>Life Technologies</td><td>15040-033</td><td></td></tr><tr><td>Reagente de transfecção lipossomal (Lipofectamina LTX) com reagente tampão de transfecção lipossomal (reagente PLUS).</td><td>Life Technologies</td><td>15338-100</td><td>Método alternativo de transfecção: Reagente Effectene</td></tr><tr><td>Reagente de transfecção não lipossomal (Reagente Effectene)</td><td>Qiagen</td><td>301425</td><td></td></tr><tr><td>Meio sérico reduzido (Opti-MEM)</td><td>Life Technologies</td><td>11058-021</td><td></td></tr><tr><td>Anticorpo anti-sinaptotagmina de camundongo conjugado ao Cy5</td><td>Synaptic Systems</td><td>105311C5</td><td></td></tr><tr><td>Neurobasal A</td><td>Life Technologies</td><td>10888-022</td><td></td></tr><tr><td>Cloreto de Sódio (NaCl)</td><td>VWR</td><td>27810.364</td><td></td></tr><tr><td>Glicina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G1726</td><td></td></tr><tr><td>BSA (Albumina de Soro Bovino)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A3294</td><td></td></tr><tr><td>Porquinho da Índia anti-gama; 2 Anticorpo do receptor GABAA</td><td>Prof. Jean Marc Fritschy</td><td>N/A</td> <td>(Instituto de Zurique, Suíça) Fritschy, JM e Mohler, H. J. Comp. Neurol. 359 (1), 154-194 (1995).</td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Promega</td><td>H5141</td><td></td></tr><tr><td>Camundongo anti-glutamato descarboxilase (GAD) 65 anticorpo</td><td>Merck Millipore</td><td>MAB351</td><td></td></tr><tr><td>Anticorpo anti-sinapsina de camundongo</td><td>Sistemas sinápticos</td><td>106-011</td><td></td></tr><tr><td>Camundongo anti-&beta; 2/3 anticorpo (BD17)</td><td>Merck Millipore</td><td>MAB341</td><td></td></tr><tr><td>Coelho anti-alfa; 1 anticorpo do receptor GABAA</td><td>Professor Anne Stephenson</td><td>N/A</td> <td>(UCL School of Pharmacy, Londres) FA Stephenson et al. J. Comp. Neurol. 416 (2), 158-172</td></tr><tr><td>Cabra anti-cobaia conjugada ao anticorpo Cy5</td><td>Merck Millipore</td><td>AP1085</td><td></td></tr><tr><td>Cabra anti-camundongo Alexa Fluor 488 anticorpo</td><td>Merck Millipore</td><td>AP124S</td><td></td></tr><tr><td>Anticorpo anti-rato de cabra Alexa Fluor 405</td><td>Life Technologies</td><td>A31553</td><td></td></tr><tr><td>Anticorpo anti-rato de cabra Alexa Fluor 555</td><td>Life Technologies</td><td>A21422</td><td></td></tr><tr><td>Anticorpo anti-coelho de cabra Alexa Fluor 488</td><td>Life Technologies</td><td>A11008</td><td></td></tr><tr><td>Reagente de montagem (Prolongar ouro)</td><td>Life Technologies</td><td>P36930</td><td>Uso em temperatura ambiente</td></tr></tbody></table>

formação sinapse inibitória em uma co-cultura-tipo que comportem gabaérgicos espinhosos médios neurônios e células hek293 expressando estavelmente gaba a receptores

Inhibitory Synapse Formation in a Co-culture Model Incorporating GABAergic Medium Spiny Neurons and HEK293 Cells Stably Expressing GABAA Receptors

Os neurônios inibitórios atuam no sistema nervoso central para regular a dinâmica e a coordenação espaço-temporal das redes neuronais. O GABA (ácido γ-aminobutírico) é o neurotransmissor inibitório predominante no cérebro. É liberado dos terminais pré-sinápticos de neurônios inibitórios dentro de junções intercelulares altamente especializadas conhecidas como sinapses, onde se liga aos receptores GABAA (GABAARs) presentes na membrana plasmática dos neurônios pós-sinápticos receptores de sinapses. A ativação desses canais iônicos dependentes de GABA leva ao influxo de cloreto, resultando em alterações no potencial pós-sináptico que diminuem a probabilidade de que esses neurônios gerem potenciais de ação. 
Durante o desenvolvimento, diversos tipos de neurônios inibitórios com características morfológicas, eletrofisiológicas e neuroquímicas distintas têm a capacidade de reconhecer seus neurônios-alvo e formar sinapses que incorporam subtipos específicos de GABAARs. Este princípio de inervação seletiva de alvos neuronais levanta a questão de como os parceiros sinápticos apropriados se identificam. 
Para elucidar os mecanismos moleculares subjacentes, foi estabelecido um novo sistema modelo de co-cultura in vitro, no qual neurônios GABAérgicos espinhosos médios, uma população altamente homogênea de neurônios isolados do estriado embrionário, foram cultivados com linhagens celulares HEK293 transfectadas de forma estável que expressam diferentes GABAASubtipos R. As sinapses se formam de forma rápida, eficiente e seletiva neste sistema e são facilmente acessíveis para quantificação. Nossos resultados indicam que vários subtipos de GABAAR diferem em sua capacidade de promover a formação de sinapses, sugerindo que esse sistema modelo in vitro reduzido pode ser usado para reproduzir, pelo menos em parte, as condições in vivo necessárias para o reconhecimento dos parceiros sinápticos apropriados e a formação de sinapses específicas. Aqui, os protocolos para cultivar os neurônios espinhosos médios e gerar linhas de células HEK293 que expressam GABAARs são descritos pela primeira vez, seguidos por instruções detalhadas sobre como combinar esses dois tipos de células em co-cultura e analisar a formação de contatos sinápticos.

O protocolo para este neurónio-HEK293 sistema modelo de co-cultura de células foi afinado para permitir a sobrevivência celular óptimo. Neste sistema, a formação de contactos de sinapses-like e sua análise baseia-se na expressão estável e consistente de todas as três subunidades do receptor GABA A que R montar em um receptor funcional. Por conseguinte, é importante o uso de análise imunocitoquímica de teste para a expressão da subunidade na superfície da célula HEK293 antes de adicioná-los para culturas neuronais. Nestas experiências, a expressão de superfície da célula de α1, β2 e subunidades γ2 (Figura 1A), ou α1, β3 e γ2 subunidades (Figura 1B), foi detectada usando anticorpos específicos para a subunidade que se ligam aos epitopos extracelulares destas subunidades. Foi demonstrado um elevado grau de co-localização entre estas subunidades na superfície da HEK293. Depois de confirmar a expressão de superfície e de co-localização de GABA AR subunidades em HEK293 células, co-culturas foram preparadas utilizando HEK293 células que expressam subunidades α1 / β2 / γ2 GABA A e R neurônios espinhosos médios cultivadas por 14 dias (14 dias in vitro (DIV)). As células em co-cultura foram incubadas durante 24 h, fixadas e analisadas usando imunocitoquímica e microscopia confocal. Análise de contatos indicaram que GABAergic terminais do axônio GAD65 positivo formado apenas contatos esporádicos com o controle de células HEK293 (Figura 2A, 2B). O número de contatos detectados em 4 horas foi de 7,3 ± 0,9 por célula HEK293, e este número foi reduzido para 5,5 ± 0,5 conexões (média ± EPM) por célula HEK293 em 24 horas após a adição de células HEK293 aos neurônios cultivados. Em contraste, os terminais GAD65 positivas axônio GABAergic formado numerosos contactos sinapse-like com células HEK293 expressando Rs GABA A. O número de contatos obtidos em 4 h após a adição de células HEK293 foi de 28,3 ± 4,7 por célula HEK293, e esse número foi de novo aumentod para 52,1 ± 6,3 (média ± SEM) por célula HEK293 às 24 h em co-cultura (Figura 2A, 2B). Para determinar se esses contatos sinapse-like foram 'ativo', ou seja, apoiada liberação do transmissor vesicular, uma específica de domínio anti-synaptotagmin vesícula-luminal anticorpo Cy5 conjugado foi adicionado ao meio de co-cultura após 23 horas de incubação. Este anticorpo é apenas incorporados em terminais nervosos pré-sinápticos, quando se forma um poro entre o lúmen das vesículas sinápticas e o fluido extracelular na fenda sináptica durante a libertação de neurotransmissores. Após a libertação, o poro fechado, deixando a sinaptotagmina anticorpo fluorescente Cy5-conjugado ligado a sinaptotagmina dentro da vesícula. Desta forma, apenas as vesículas que participam activamente na libertação de neurotransmissores são marcados com o anticorpo. Nesses experimentos poucos ou nenhuns contactos entre o controle HEK293 células e os terminais dos neurônios espinhosos médios eram "active &amp; #8217; como mostrado pela falta de co-localização entre o pré-sináptico GAD65 / fluorescência e sinaptotagmina mCherry fluorescência em células HEK293 (Figura 3A). Em contraste, foram formados vários contactos «activos» entre os terminais dos neurónios espinhosos médios e α1 / β2 / γ2-expressando células HEK293, como revelado por um elevado grau de co-localização entre GAD65 / sinaptotagmina e mCherry, expresso especificamente em células HEK293 ( A Figura 3B). Α1 Para testar se um diferente subtipo de receptores GABA A R também pode promover a formação de sinapses semelhante in vitro, que foram co-cultivadas / β3 / γ2 expressando células HEK293 com neurónios espinhosos médios. Mais uma vez, controle HEK293 raramente recebeu contatos com terminais pré-sinápticos sinapsina positivo atingindo 10,8 ± 0,48 contatos por celular HEK293 após 24 horas em co-cultura (Figura 4A esquerda, 4B) (± SEM média). No entanto, células HEK293 expressandoα1 / β3 / γ2 forma GABA A Rs significativamente mais contatos sinapse-like com terminais pré-sinápticos sinapsina-positivo de neurônios espinhosos médios atingindo 25,3 ± 0,27 (média ± SEM) contatos por celular HEK293 após 24 horas em co-cultura (Figura 4A direito, 4B). Isto indica que α1 / β3 / γ2 GABA A Rs expressa em células HEK293 que também são capazes de promover a formação de contacto sináptico, ainda que a sua potência é inferior à potência de α1 / β2 / Rs-γ2 contendo GABA A. Estas experiências indicam que o sistema de modelo de co-cultura desenvolvida no nosso laboratório permite a análise quantitativa da formação de contacto sináptico in vitro, bem como a avaliação da eficácia dos diferentes subtipos de Rs GABA A neste processo. Estas experiências demonstram ainda que Rs GABA A, além de serem componentes críticos de sinapses funcionais GABAérgicos, pode desempenhar um papel fundamentalno processo de reconhecimento e de formação de contactos sinápticos entre neurónios inibitórios e as células neuronais alvo adequadas, de forma independente de outras proteínas de adesão sinápticos. <img alt="A Figura 1" fo:content-width="6in" src="/files/ftp_upload/52115/52115fig1highres.jpg" width="600"> Figura 1. A análise de expressão de receptores GABA A R α1 imunocitoquímica / β2 / ou γ2 α1 / β3 / γ2 em linhas celulares estáveis ​​HEK293. Os anticorpos que reconhecem os domínios extracelulares dos receptores GABA A subunidades R foram usadas para receptores de etiquetas expressas na superfície da célula. ( A) A linha de células HEK293 expressando α1 (Alexa Fluor 488), β2 (Alexa Fluor 555) e γ2 (Cy5) em níveis elevados. (B) linha celular HEK293 expressando α1 (Alexa Fluor 488), β2 (Alexa Fluor 555) e γ2 (Cy5)subunidades em níveis elevados. Barra de escala:. 10 mm <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52115/52115fig1highres.jpg" target="_blank">Por favor, clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a> <img alt="A Figura 2" fo:content-width="6in" src="/files/ftp_upload/52115/52115fig2highres.jpg" width="600"> Figura 2. GABAergic neurônios espinhosos médios formar contatos sinapse-like com α1 / β2 / γ2- células que expressam HEK293 em co-cultura. (A) A microscopia por fluorescência de terminais pré-sinápticos com anticorpos anti-GAD65 (em verde) e as células HEK293 com mCherry (em vermelho, à esquerda) ou o GABA A R γ2 subunidade (em azul, à direita), revelou pontos de co-localização entre estes marcadores que indicam a formação de contatos sinapse semelhante após 4 ou 24 horas em co-cultura. Barra de escala:. 10 mm (B) Análise quantitativa de co-como sinapse ntacts. As células HEK293 foram identificados com base na sua forma, conforme revelado por DIC imagiologia e / ou expressão mCherry, e o número de contactos entre GAD-65 pontos lacrimais positiva (verde) e na superfície das células HEK293 foi contado por olho óptico em cada secção de um série Z-pilha (8-10) por célula utilizando o software de imagem, e expressa como o número de contactos / célula. O gráfico mostra o número de contatos entre os neurônios espinhosos médios e controle HEK293 células (cinza claro) ou α1 / β2 células / γ2-HEK293 (preto) após 4 e 24 horas de co-cultura (média ± SEM, n = 8 em cada condição de dois experimentos independentes). Esta figura foi modificada de Fuchs et al. (2013) 30. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52115/52115fig2highres.jpg" target="_blank">Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a> ad / 52115 / 52115fig3highres.jpg "width =" 600 "/&gt; Rs Figura 3. GABA A promover a formação de contatos sinápticos ativos. Imunomarcação de contatos sinapse-like formados após 24 horas de co-cultura entre os terminais dos neurônios espinhosos médios positivos para GAD65 (Alexa Fluor 405 ciano) e (a) de controle de células HEK293, ou (B) / β2 / γ2 células HEK293-α1, ambos transfectadas transitoriamente com a construção mCherry (vermelho). Contactos activos são identificados por co-localização específica entre o domínio luminal vesícula anticorpo anti-sinaptotagmina (Cy5) e anticorpo específico de GAD65 tanto em terminais pré-sinápticos, e mCherry expressos em células HEK293. Barra de escala:. 10 mm <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52115/52115fig3highres.jpg" target="_blank">Por favor, clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a> igura 4 "fo: content-width =" "src =" 6 pol / files / ftp_upload / 52115 / 52115fig4highres.jpg "width =" 600 "/&gt; Figura 4. GABAergic neurônios espinhosos médios formar contatos sinapse-like com α1 / β3 / subunidade γ2- expressar HEK293 células em co-cultura. (A) A microscopia por fluorescência de terminais pré-sinápticos com anti-sinapsina I anticorpos (em verde), e controle de células HEK293 (à esquerda), ou α1 / β3 / γ2 expressando células HEK293, tanto transitoriamente transfectadas com mCherry (em vermelho), revelou pontos de co-localização entre estes marcadores que indicam a formação de contactos de sinapses semelhante após 24 h em co-cultura. Barra de escala: 10 um (B). A análise quantitativa de contatos sinapse-like. As células HEK293 foram identificados por expressão mCherry, e o número de contactos entre sinapsina I-positiva pontos lacrimais (a verde) e a superfície de células HEK293 que foi contada por olho óptico em cada secção de uma série Z-pilha (8 - 10) por célula usando software de imagem, e expressa como o número de contactos / célula. O gráfico mostra o número de contatos entre os neurônios espinhosos médios e controle HEK293 células (cinza claro) ou α1 / β3 células / γ2-HEK293 (preto) após 24 horas de co-cultura (média ± SEM, n = 8-12 células cada condição, a partir de dois experimentos independentes). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52115/52115fig4highres.jpg" target="_blank">Por favor, clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>

Os mecanismos moleculares que coordenam a formação de sinapses inibitórias GABAergic durante a ontogenia são em grande parte desconhecidos. Para estudar estes processos, temos desenvolvido um sistema modelo de co-cultura que incorpora embrionárias neurónios GABAérgicos espinhoso meio de cultura em conjunto com o rim embrionário humano 293 (HEK293) transfectadas estavelmente células que expressam receptores GABA A funcionais.

Formação Sinapse Inibitória em uma co-cultura-tipo que comportem GABAérgicos espinhosos médios neurônios e células HEK293 expressando estavelmente GABA A Receptores

Inhibitory neurons act in the central nervous system to regulate the dynamics and spatio-temporal co-ordination of neuronal networks. GABA ...

O objetivo deste procedimento é estabelecer coculturas entre neurônios embrionários de espinha média e células HEC 2 9 3 expressando de forma estável os receptores GABA A para estudar os mecanismos moleculares que revestem a formação de sinapses GABAérgicas in vitro. Isso é feito dissecando primeiro o stri AUM de E 16 a 17 embriões de ratos ou camundongos. Na segunda etapa, as células stri AAL são revestidas em lamínulas.Em uma placa de 24 poços próxima HEC 2 9 3 células que expressam de forma estável os receptores GABA A são transfectadas com um indicador fluorescente M cereja. Na etapa final, as células transfectadas são co-cultivadas com os neurônios espinhosos médios em 14 dias in vitro por 24 horas antes da fixação. Em última análise, a formação das sinapses entre os dois subconjuntos celulares pode ser visualizada por imunofluorescência e microscopia confocal.As implicações desta técnica se estendem para a terapia de muitos distúrbios neurológicos, pois as sinapses GABAérgicas coordenam a atividade das células neuronais e são responsáveis por muitos elementos estruturais e funcionais fundamentais dos circuitos neuronais no sistema nervoso central. Antes de iniciar o experimento, incubar durante a noite lamínulas revestidas de poliol lisina de 13 milímetros. Em uma placa de 24 poços, a 37 graus Celsius e 5% de dióxido de carbono com umidade no dia seguinte, aspire o excesso de poliol lisina e lave as lamínulas com duas lavagens de dez segundos e duas de cinco minutos em água estéril.Em seguida, incubar as lamínulas durante a noite em laminina nas mesmas condições no dia do experimento. Primeiro coloque uma rata grávida em decúbito dorsal em uma almofada de dissecção desinfetada com etanol. Em seguida, aperte a pele com uma pinça e corte ao redor do abdômen através do músculo da pele e do peritônio para revelar os órgãos internos e o útero.Em seguida, extraia os embriões embrionários do dia 16 a 17 do útero e coloque-os em uma placa de Petri contendo PBS resfriado. Transfira os embriões para a capela de fluxo laminar para capitar as cabeças em uma nova placa de Petri com HBSS resfriado e, em seguida, use uma pinça curva e reta para dissecar cada um dos cérebros. Colete os cérebros em uma nova placa de Petri contendo HBSS resfriado.E então, para cada cérebro, separe os dois hemisférios cerebrais e remova cuidadosamente as meninges. Em seguida, corte ao longo da linha do hipocampo e retire o córtex para revelar o estriado. Uma estrutura branca saciada na parte anterior do hemisfério disseca o estrato com muito cuidado para evitar a inclusão de tecido do espartilho e coloca em uma nova placa de Petri.Contendo HBSS resfriado Corte o ator em pedaços muito pequenos de um a dois milímetros usando a pinça curva. Em seguida, use uma pipeta de macarrão polido a fogo para transferir o tecido para um tubo de centrífuga estéril de 15 mililitros. Reduza o volume da suspensão de tecido para um total de um mililitro e pipete a solução mais quatro a seis vezes biopolir a ponta da pipeta para aproximadamente 30% de seu diâmetro original para tricotar a solução de mais quatro vezes quando a solução parecer homogênea construída para a pasta celular através de um filtro de nylon de 100 micrômetros em um tubo de centrífuga estéril de 50 mililitros.Então, depois de contar a placa sete vezes 10 elevado à potência de quatro células em 500 microlitros de cultura neuronal, potência média bem em uma placa de cultura de tecidos de 24 poços. Agite o poço da esquerda para a direita e, em seguida, incube as células por 14 dias, conforme descrito no protocolo de texto que acompanha. Aspirar o meio de cultura celular e lavar cada poço duas vezes brevemente com PBS para separar as células da placa de seis poços.Adicione a solução de tripsina EDTA a cada poço e incube a 37 graus Celsius e 5% de dióxido de carbono com umidade por cinco minutos para interromper a reação e extinguir a inserção, adicione um mililitro de meio de cultura de células a cada poço e transfira o conteúdo para um tubo de centrífuga de 15 mililitros e centrifugue as células a 440 vezes G por cinco minutos à temperatura ambiente, Remova o supinado e ressuspenda totalmente o pellet em 500 microlitros de cultura neuronal. Meio pipetando para cima e para baixo suavemente após a contagem de sementes, três vezes 10 elevado a quatro células por poço na placa de cultura de tecidos de 24 poços contendo os neurônios e agite a placa para dispersar as células. Incube as coculturas a 37 graus Celsius em uma atmosfera umidificada de 5% de dióxido de carbono por 24 horas.Nessas imagens, a expressão da superfície celular das subunidades alfa um, beta dois e gama dois GABA AR ou das subunidades alfa um, beta três e gama dois GABA AR foi observada com alto grau de colocalização nas células HC 2 93. Aqui. A análise dos contatos célula a célula entre as células HC 2 93 e as células neuronais em 14 dias in vitro indica que os terminais do axônio GABAérgico GAD 65 positivos formam apenas contatos esporádicos com as células HEC 2 9 3 de controle em comparação com os numerosos contatos semelhantes a sinapses formados entre as células HEC 2 93 expressando o alfa, beta dois gama, dois receptores GABAA. Nesses experimentos, apenas as vesículas ativamente envolvidas na liberação do neurotransmissor foram marcadas com a visão de anticorpo antis synap toin.Se algum dos contatos entre as células HEC 2 9 3 de controle e os terminais dos neurônios médios estivesse ativo. Isso é ilustrado pela falta de colocalização entre a fluorescência pré-sináptica da teína GAD 65 e a fluorescência mCherry dentro das células HEC 2 93. Em contraste, muitos contatos ativos foram formados entre os terminais dos neurônios de ligação dos meios e o receptor alfa um, beta dois gama dois gabaa expressando células HEC 2 93, conforme revelado por um alto grau de colocalização entre a sinape GAD 65 Taman e a fluorescência da cereja M expressa especificamente nas células HEC 2 93.Nessas imagens finais, as células HEC 2 93 expressando de forma estável um subtipo diferente de GABA AR foram co-cultivadas com neurônios espinhosos médios. A análise demonstra numerosos contatos semelhantes a sinapses formados entre sinapses em um GABAérgico positivo atua nos terminais e alfa um B dois três gama dois expressando células HEC 2 9 3 após 24 horas. Em co-cultura, Esta técnica tem o potencial de abrir caminho para pesquisadores no campo da neurociência molecular explorarem o papel de várias moléculas de adesão sináptica envolvidas na formação de sinapses GABAérgicas.

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Neuroscience

Neurociência

Nós desenvolvemos um romance de vários compartimentos neurônio plataforma microssistema co-cultura para a investigação in vitro a interação do SNC axônio glia. A plataforma é capaz de realizar até seis experimentos independentes em paralelo e foi fabricado usando um recém-desenvolvido macro / micro método de fabricação híbrida.

Um compartimento Multi-glia do SNC Neuron-Co-cultura plataforma microfluídica

Aqui demonstramos a utilização do corante fluorescente Alexa acoplado a α-bungarotoxina para medir GABA A localização do receptor de superfície e endocitose em neurónios do hipocampo. Através da utilização de construções que ostentam uma marca curta extracelular que se liga α-bungarotoxina, análise de proteína da membrana plasmática do tráfico endocítica pode ser alcançado.

Usando um α-Bungarotoxina Binding Tag Site para Estudar GABA um receptor de membrana Localização e Tráfico

Este protocolo descreve a co-cultura neurônio-astrócito indireta para análise compartimentada das interações neurônio-glia.

A indireta Neuron-astrócitos Coculture Ensaio: An<em&gt; In Vitro</em&gt; Set-up para a investigação detalhada da Relação Neuron-glia

Aqui, apresentamos os protocolos para descobrir compostos ativos nos receptores GABAA , partir de ligação para a fisiologia e farmacologia.

Métodos para a descoberta de novos compostos modulando um Receptor do ácido gama - aminobutírico tipo uma neurotransmissão

Neste protocolo, nosso objetivo é descrever um método reprodutível para os neurônios de células-tronco derivadas de pluripotentes humanas combinando dissociado e astrócitos juntos em 3D sphere cocultures, mantendo estas esferas em condições de flutuação livre e, posteriormente medindo a atividade sináptica circuito das esferas com immunoanalysis e gravações de matriz multielectrode.

Modelagem de microcircuito sináptica com Cocultures 3D de astrócitos e neurônios de células-tronco pluripotentes humanas

Este protocolo descreve um método baseado classificação da pilha para a purificação e a cultura de neurônios gabaergic ou glutamatérgico fluorescentes do neocórtex e do hipocampo de ratos ou de ratos pós-natal.

Cultura de células primárias de neurônios Gabaérgicos ou glutamatérgicos purificados estabelecidos através da triagem de células ativadas por fluorescência

Aqui, apresentamos uma abordagem simples usando meios de cultura específicos que permitem o estabelecimento de culturas enriquecidas com neurônios e astrócitos, ou culturas neuron-glia do córtex embrionário, com alto rendimento e reprodutibilidade.

Um modelo de cultura celular para estudar o papel das interações neurônio-glia na isquemia

Aqui, descrevemos um protocolo para estudar quantitativamente a montagem e estrutura dos segmentos iniciais de axônio (AIS) de neurônios hipocampais que carecem de AIS pré-montada devido à ausência de um anquilírin-G gigante.

Uso de neurônios hipocampais primários para estudar a montagem de segmentos iniciais de Axon

Descrevemos um método para diferenciar astrócitos e neurônios derivados pluripotentes induzidos por humanos da medula espinhal e sua co-cultura para registro eletrofisiológico.

Estabelecimento de uma plataforma eletrofisiológica para modelagem da ELA com astrócitos e neurônios derivados de células-tronco pluripotentes humanas regionalmente específicas

Um estoque congelado pronto para uso de neurônios é uma ferramenta poderosa para avaliar as funções sinápticas. Aqui, apresentamos uma cultura primária fácil de baixa densidade a partir de estoque congelado usando uma placa de 96 poços.

Cultura Primária de Baixa Densidade Fácil e Reprodutível usando Estoque Congelado de Neurônios Embrionários do Hipocampo

Este estudo apresenta uma estrutura multiescala, abrangendo desde o DNA até a função da proteína e o comportamento neural. Ele apresenta uma nova abordagem para investigar mutações patogênicas previstas na subunidade do receptor GABAA , levantando a hipótese de que mutações epileptogênicas e mutações proximais, previstas como patogênicas, podem produzir efeitos semelhantes no modelo de neurônio piramidal CA1.

Identificação e classificação de variantes missense da subunidade do receptor GABAA específicas da posição para seu papel nos neurônios piramidais do hipocampo

Aprenda a formar sinapses inibitórias GABAérgicas em co-cultura entre neurônios espinhosos médios embrionários e células HEK293 expressando receptores GABA A. Este método permite visualizar contatos sinápticos ativos por imunofluorescência e microscopia confocal.

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Formação Sinapse Inibitória em uma co-cultura-tipo que comportem GABAérgicos espinhosos médios neurônios e células HEK293 expressando estavelmente GABA_A Receptores

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