Name: Timectomia completo em ratos adultos com não-invasiva entubação endotraqueal (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-12-29T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 35 s
Description: Aprenda a realizar timectomia completa em ratos adultos com intubação endotraqueal não invasiva. Esta técnica minimiza complicações perioperatórias e permite avaliar a função de células T na ausência do timo.

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Este trabalho foi apoiado por AI101263 do National Institutes of Health (TVB) e por uma doação da The Hartwell Foundation (MLM). M.L.M. é membro do Duke Comprehensive Cancer Center.

NOTA: Todos os procedimentos experimentais que envolvam a utilização de ratos foram feitas de acordo com os protocolos aprovados pelo cuidado e uso Comitê da Universidade de Duke Animal. 1. Preparação da intubação traqueal Cannula <ol><li> Corte a ponta da agulha de um 2 polegadas 14 G angiocathether agulha com alicate de corte. </li><li> Comprima o lúmen da agulha fechado com alicate de bico. </li><li> Corte a parte comprimida para baixo à extremidade da porção de lúmen aberto com alicates de corte, e depois cortar as extremidades de ambos os lados da extremidade remanescente a 30 - 45 ° ângulo da borda da agulha. </li><li> Coloque a parte inferior 3 - 4 mm de comprimento da cânula para a área aberta do alicate deslizamento-conjunta rectas e puxar para cima até uma ligeira curva para cima foi formado no final. NOTA: Este irá facilitar a dirigir o cateter para dentro da traqueia (Figura 1). </li><li> Use lixa fina para alisar as arestas na extremidade da cânula. </li><li&gt; Devolva o instrumento rombo na tubulação angiocateter. Certifique-se de que o tubo é ligeiramente mais curto do que a agulha embotada. </li></ol> Procedimentos 2. Pré-cirúrgicos <ol><li> Configure o local para o procedimento, colocando um microscópio cirúrgico definido como aumento de 10x sobre a área de operação. </li><li> Coloque uma almofada de aquecimento na área de operação e cubra com um pano absorvente limpo. </li><li> Configurar um monitor de frequência cardíaca e oxigenação do sangue perto do campo cirúrgico. </li><li> Pesar o rato para sistemas baseados em peso medicação dosagem (por exemplo, a analgesia pós-operatória, os antibióticos, ou anticorpo linfócitos esgotando). NOTA: Típico ratos adultos pesam entre 350-450 g. </li><li> Sedar o rato vaporizado com 3% de isoflurano-O2 (3 L / min) usando uma câmara de indução ventilada para um sistema de eliminação de resíduos de gás anestésico contendo carvão activado. Permitir 5 min para a indução anestésica para fornecer anestesia profunda necessária para entubação endotraqueal. </li><li> Administrar carprofeno ou Meloxicane (4,4 mg / kg) por via subcutânea a ratos antes de prosseguir com a intubação e cirurgia. </li><li> Use cortador elétrico para fazer a barba do pescoço e peito do rato anestesiado antes da intubação. </li></ol> 3. Intubation <ol><li> Preparar a configuração intubação por fricção uma pequena quantidade de lubrificante (por exemplo, gel KY) na extremidade da cânula de intubação. Ligar o ventilador para iniciar o fluxo de gás através do tubo de isoflurano conector. </li><li> Transferir o rato para o aparelho de intubação e suspender o rato sobre a barra de metal por sua dentes incisivos superiores (Figura 2A). NOTA: Alguns aparelhos de intubação pode ser comprado online. O modelo mostrado aqui é caseiro usando uma folha de acrílico moldado em torno de seções de uma polegada pedaço 2 x 4 lombar usando um maçarico de butano, e reforços são presos com clorofórmio. O bar (ou fio de metal) é presa por fazer furos mais de fita adesiva colocados no side do acrílico para impedir uma fragmentação ou fissuras. </li><li> Trans-iluminar o pescoço do rato por posicionamento de uma fonte de luz de alta intensidade flexível 1 - 2 cm da superfície ventral do pescoço (Figura 2B). </li><li> Utilizar um par de fórceps estudante padrão normalizados para puxar a língua suavemente para cima e para o lado dos dentes de baixo. Aderência a língua entre o polegar eo dedo indicador de uma mão, enquanto coloca a superfície interior plana de um lado da pinça contra a extremidade inferior da língua. Pressione ventralmente para expor a epiglote e a abertura da laringe (Figura 2C). </li><li> Visualize as cordas vocais e orientar o arrebitado final, embotada da cânula de intubação anteriormente através da glote aberta na traquéia até o centro da angiocateter toca os incisivos. </li><li> Retirar o estilete metal, e conectar o tubo de anestesia para a abertura angiocateter para início da ventilação com isoflurano. NOTA: O flo típico de oxigêniotaxa de w para o ventilador é de 3 L / min, com 3% de isoflurano. <ol><li> Definir o ventilador a uma taxa de 60 respirações / min, em um modo de ventilador de volume controlado que atinge uma pressão de ~ 12 - 14 mmHg. Use uma pressão expiratória final positiva (PEEP) de 3 cm H 2 O. </li></ol></li><li> Observar a expansão da parede torácica bilateral em sincronia com o ventilador para assegurar a colocação adequada do tubo endotraqueal. </li><li> Aplicar recomenda-veterinário pomada para os olhos do rato para evitar o ressecamento e sob anestesia. </li><li> Aplicar veterinário pomada nos olhos do rato para evitar a secura e sob anestesia. </li><li> Prenda o tubo endotraqueal para a cabeça do rato com uma tira de fita de tecido. Garanta uma ligação sólida entre o tubo endotraqueal e a tubulação ingresso anestésico. </li><li> Fixe a oxigenação do sangue e monitor cardíaco para o pé do rato e iniciar o monitoramento. Confirme anesthetization adequada ao confirmar que não há reação ao quee-pinch. </li></ol> 4. Thoracotomy e Timectomia <ol><li> Siga técnica asséptica padrão para a totalidade do processo. <ol><li> Limpe a área e operacional a mesa de trabalho e desinfectar com uma solução de etanol a 70%. </li><li> Use luvas cirúrgicas estéreis durante o procedimento, e autoclave todos os instrumentos e materiais utilizados durante o procedimento. </li><li> Aplicar providone-iodo para a área de todo o peito e deixe-a secar. Em seguida, limpar a superfície da pele com etanol a 70% em gaze. Cubra o rato com filme plástico transparente cortar um buraco para expor o campo operatório estéril. </li></ol></li><li> Identificar fúrcula na região torácica superior. Faça uma incisão na linha média 2 centímetros através da pele a partir 2-3 mm acima da fúrcula e estendendo-se distalmente linha média ao longo do esterno com uma tesoura Shea atraumáticas. </li><li> Realize uma sternotomy 1,5 centímetros mediana de fúrcula novamente usando uma tesoura Shea atraumáticas. KEEP da borda inferior das tesouras apenas por baixo do esterno e avançar lentamente. </li><li> Insira um pequeno afastador Alm logo abaixo do esterno separadas e aberto para revelar o pré-traqueal músculos cinta (esterno e músculos esternotireóideo). Separe os músculos cinta pré-traqueais usando uma pinça Graefe contundentes. NOTA: Neste ponto, a traqueia pode ser visto, o tubo de intubação e deve ser visualizada no interior da traqueia. </li><li> Coloque os dentes do pequeno afastador Alm debaixo dos músculos cinta separadas e esterno. Abra o retractor para expor a face superior do timo. </li><li> Use uma pinça Dumont finas para libertar as arestas laterais do tecido do timo e expor os lóbulos inferiores do timo. </li><li> Puxe o timo suavemente superiormente para o local da incisão aberta, tendo o cuidado de evitar o contacto com as veias cavas, subclávia e carótida vasos superiores, e para minimizar a interrupção do revestimento pleural delicado entre o timo e os pulmões. </li><li> Como tele thymic vasos são dissecados e revelou, usar micro-tesoura para dividi-los. Use um cotonete para manter a pressão sobre os vasos para hemostasia, se necessário. </li><li> Entregar os lobos do timo mais baixos na incisão e, em seguida, lisar acentuadamente os anexos posteriores. Retire o timo intacta e inspecione cuidadosamente o timo removido para quaisquer seções desaparecidas. Nota: Pequenas linfonodos torácicos pode ser visualizado em torno do timo e são muitas vezes difíceis de diferenciar de tecido do timo. Estes serão os nós redondas discretas com uma aparência semelhante a tecido tímico, mas não será em continuidade com o timo. </li><li> Retire o afastador Alm e fechar os músculos esterno hioideo e sternothyoid com dois interrompido 5-0 Maxon. </li><li> Aplique 2 gotas de aplicação de cola grau cirúrgico através das suturas para selar o mediastino sob ventilação com pressão positiva. NOTA: Isto irá diminuir a incidência de pneumotórax e hematoma. </li><li> Feche a sternum com dois interrompido fio de seda 4-0 em uma agulha de corte. Insira a agulha através de espaços entre as costelas, tendo o cuidado para guiar a agulha logo abaixo do esterno para evitar a camada muscular subjacente. </li><li> Fechar a camada de pele com uma sutura de nylon 4-0 execução. Descontinuar o isoflurano neste momento para encurtar o período de recuperação da anestesia pós-operatória. </li><li> Limpe o local da incisão e pele circundante com gaze embebida em soro fisiológico. </li><li> Aplique várias gotas de bupivicaína (0,25%) para a anestesia local, seguido por 1 - 2 gotas de cola de cianoacrilato sobre a incisão para selar a incisão. </li><li> Continuar a ventilar até o rato mostra sinais de esforço respiratório independente e começa a se mover suas extremidades. Extubação o rato e permitir que ele se recuperar sob observação em uma jaula colocada sobre uma almofada de aquecimento. </li><li> Administrar Buprenorfina (0,01-0,05 mg / kg) por via subcutânea ao rato imediatamente no pós-operatório e repetir a cada 8-12 horas para 48 horas post-operatório (normalmente 5 doses no total). Aos 24 e 48 horas de pós-operatório, administrar Carprofen ou Meloxicane (4,4 mg / kg) por via subcutânea (3 doses totais, incluindo a dose pré-operatório). </li><li> Continue a acompanhar até que o rato está se movendo ao redor da gaiola. Em quaisquer sinais de desconforto respiratório, realizar re-intubação e re-exploração do peito. <ol><li> Não deixe um animal sem supervisão até que ele recuperou a consciência suficiente para manter decúbito esternal. </li><li> Não devolva um animal que passou por uma cirurgia para a companhia de outros animais até que esteja totalmente recuperado. </li></ol></li><li> Retirar as suturas da camada da pele uma semana de pós-operatório. </li></ol>

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</ol>

Os autores não têm nada a divulgar.

O presente protocolo para thymectomy completa fornece uma abordagem minimamente invasiva com um fecho de incisão de três camadas com aplicação de cola cirúrgica projetado para minimizar as complicações. A remoção completa do timo foi demonstrado pela perda de células T naive e por IHC coloração do tecido linfóide do mediastino para citoqueratina. O procedimento de thymectomy rato adulto tem sido complicada por taxas de mortalidade variando de 1,5 - 20% devido a complicações peri-operatórias,...

Desde o início da década de 1960, o timo foi reconhecido o papel crítico no desenvolvimento da tolerância imunológica central. Roedor timectomia provou ser um processo essencial para definir o papel do timo na diferenciação de linfócitos, a auto-tolerância, e imunotolerância na definição de transplante aloenxerto e metástase do tumor. A remoção do timo do rato permite a estudos que envolvem a depleção de células T ou a transferência adoptiva de populações de células T definidos, sem o reaparecimento de células T naive nativas. Timectomias em roedores neonatais pode ser realizada utilizando uma técnica de sucção com resultados fiáveis ​​1. Em ratos adultos, esta técnica está associada com uma taxa de mortalidade de 20% e, frequentemente, resulta em uma timectomia 2 incompleta. Para alcançar consistentemente thymectomy completo em ratos adultos, é necessária a exposição aberta do mediastino por esternotomia mediana. No entanto, esteprocedimento está associada a complicações que incluem lesão traqueal, hemorragia e pneumotórax levando a uma taxa global de mortalidade variando 1,5-6% 2- 4. Ao longo das duas últimas décadas melhorias nas técnicas de timectomia diminuíram complicações perioperatórias e melhoraram as taxas de sobrevivência. A entubação endotraqueal permitindo a ventilação com pressão positiva diminuiu as taxas de pneumotórax 5. Métodos de intubação anteriormente descrito gama de exposição aberta ao traquéia para métodos menos invasivos, utilizando a visualização direta das cordas vocais. As complicações associadas ao procedimento de intubação traqueal incluem lesão, a ruptura das cordas vocais, intubação esofágica não intencional, e hemorragia decorrente da punção cardíaca ou laceração da veia cava superior. Além disso, a proximidade dos lobos do timo mais baixos para o revestimento pleural podem resultar em pneumotórax. Aqui nós descrevemos uma técnica dethymectomy através de um minimamente invasiva dois centímetros da pele incisão na sequência de um método simples de entubação endotraqueal usando um angiocateter embotados-end e iluminação traqueal transcutânea. O thymectomy envolve um 1,5 centímetros sternotomy e um encerramento de três camadas com aplicação de cola cirúrgica para selar o mediastino e minimizar a incidência de hemorragia e complicações respiratórias. Este método resulta de forma fiável, timectomia completa, como evidenciado pelo desaparecimento das células T ingénuas CD4 + e CD8 + a seguir a timectomia e a ausência de tecido do timo de coloração IHC. Tempos operatórios e mortalidade peri-processual são mantidos a um mínimo.

<table><tbody><tr>Angiocateter <td></td><td></td><td></td>de <td>2 polegadas 14 G</td></tr><tr><td>Microscópio cirúrgico</td><td>Zeiss</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Almofada</td><td></td><td></td><td></td>de aquecimento</tr><tr><td>Monitor de frequência cardíaca e oxigenação sanguínea para roedores com sensores de pé</td><td>Aparelho Harvard</td><td>ST1 72-8010, ST1 72-8098 (sensor de pé de rato)</td><td></td></tr> <tr><td>Aparelho de intubação (plástico com barra de metal na parte superior)</td><td></td><td></td><td>Ver Figura 2</td></tr>Sistema <tr><td>de anestesia para pequenos animais com caixa de indução, tanque de isoflurano e tanque de O2</td><td>Harvard Apparatus</td><td>ST1 72-6420</td><td></td></tr><tr><td>Ventilador para pequenos animais com tubulação</td><td>CWE</td><td>12-02000 (ventilador) e 12-04000 (conjunto de válvula externa para camundongos/ratos)</td><td></td></tr><tr><td>Iluminador de fibra óptica de alta intensidade</td><td>Dolan Jenner</td><td>EEG 2823M</td><td></td></tr><tr><td>Pinça de padrão padrão do aluno</td><td>Ferramentas de Belas Ciências</td><td>91100-16</td><td></td></tr><tr><td>Tesoura reta fina</td><td>Ferramentas de Ciências Finas</td><td>14060-09</td><td></td></tr><tr><td>Tesoura de karité de ponta romba</td><td>Ferramentas de Ciências Finas</td><td>14105-12</td><td></td></tr><tr><td>Afastador de Alm Pequeno (para esterno)</td> <td>Ferramentas de Ciências Finas</td><td>17008-07</td><td></td></tr><tr><td>Pinça de Graefe sem corte</td><td>Ferramentas de Ciências Finas</td><td>11050-10</td><td></td></tr><tr><td>Pinça Dumont Fine</td><td>Ferramentas de Ciências Finas</td><td>11254-20</td><td></td></tr><tr><td>5-0 Suturas Maxon</td><td>Ethicon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>4-0 Suturas de seda (com agulha cortante)</td><td>Sutura de nylon Ethicon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>6-0</td><td>Cola</td> de cianoacrilato Ethicon <td></td><td></td></tr><tr><td>(Endermil)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Gel de lubrificação</td><td>Akorn Animal Saúde</td><td>NDC 17478-162-35</td><td></td></tr></tbody></table>

timectomia completo em ratos adultos com não-invasiva entubação endotraqueal

Complete Thymectomy in Adult Rats with Non-invasive Endotracheal Intubation

Timectomia em roedores neonatais é um procedimento estabelecido e confiável para estudos imunológicos. No entanto, em ratos adultos, complicações de hemorragia e pneumotórax de ruptura pleural pode resultar numa taxa de mortalidade significativa. Este protocolo é um método simples de thymectomy rato que utiliza um mini-esternotomia e entubação endotraqueal. Intubação é realizado com um método não-invasivo e de fácil reprodução e permite a ventilação com pressão positiva para evitar pneumotórax e uma via aérea controlada que permite tempo suficiente para a dissecção timo cuidado para minimizar a interrupção pleural. A 1,5 centímetros incisão esternal diminui o contato com os vasos do mediastino e pleura, enquanto ainda fornece a visualização completa do timo. Após a exposição do mediastino, o timo é removido por dissecção romba sob ampliação. O espaço pleural é então selado por fecho de sutura dos músculos pré-traqueal, seguido pela aplicação de cola cirúrgica. Otórax é então fechada por sutura de encerramento do esterno, seguido por fecho de sutura da pele. Todos os timectomias estavam completos como evidenciado pela imuno-histoquímica (IHQ) coloração de tecidos do mediastino, e ausência de células T naive por citometria de fluxo, e que o processo tinha uma taxa de sobrevivência de 96%. Esse método é apropriado quando a timectomia completa com o mínimo de complicações é desejado para mais estudos imunológicos em ratos atímicos adultos.

Este procedimento foi realizado em ratos Lewis adultos (n = 26). O tempo médio de operação foi de 15 ± 3 min. Não houve mortalidade intra-operatória. O tempo de intubação média - de colocação de rato em cima do aparelho de intubação para o estabelecimento da ventilação - foi de 45 ± 5 segundos. 24 ratos tiveram uma recuperação completa da operação, sem evidência de dificuldades respiratórias ou hemorragia através dia de pós-operatório (DPO) 14. Um rato desenvolvido dificuldade respiratória em POD 4 e foram submetidos a ...

A timectomia com roedores é uma técnica valiosa na pesquisa imunológica. Aqui, é descrito um protocolo para timectomia completa em ratos adultos usando uma miniesternotomia juntamente com intubação não invasiva e ventilação com pressão positiva para minimizar a morbidade e mortalidade perioperatórias.

Timectomia completo em ratos adultos com não-invasiva entubação endotraqueal

Thymectomy in neonatal rodents is an established and reliable procedure for immunological studies. However, in adult rats, complications of hemorrhage and ...

O objetivo geral deste procedimento é avaliar a função das células T na ausência do timo. Isso é feito primeiro intubando o rato e depois abrindo o tórax para expor o timo. Em seguida, o timo é dissecado dos tecidos circundantes e a hemostasia é obtida na etapa final.A incisão é fechada em camadas. Em última análise, a população de células mononucleares do sangue periférico pode ser avaliada por análise citométrica de fluxo, mas a presença de células T virgens na ausência de função do timo. As principais vantagens desta técnica em relação aos métodos existentes de timectomia são que, com esta técnica, a via aérea é controlada por um tubo de intubação simples.O tamanho da incisão esternal é minimizado. A ventilação com pressão positiva com peep previne o pneumotórax e as taxas de mortalidade são minimizadas. Demonstrando o procedimento estaremos eu e Toria Reell, uma estudante de medicina do quarto ano da Duke University para o meu laboratório.Para preparar a cânula de intubação traqueal, primeiro use um alicate de corte para remover a extremidade da agulha de uma agulha de cateter angio de calibre forçado de duas polegadas. Aperte o lúmen da agulha fechado com um alicate de bico fino e, em seguida, use o alicate de corte para remover a seção de aperto até a borda da parte aberta do lúmen. Em seguida, corte as bordas em ambos os lados da extremidade restante em um ângulo de 30 a 45 graus em relação à borda da agulha e coloque os três a quatro milímetros inferiores da cânula na área aberta de um alicate de junta deslizante reta.Puxe para cima até formar uma ligeira curva para cima e use uma lixa fina para alisar as bordas na extremidade da cânula. Em seguida, retorne o instrumento embotado para o tubo do cateter de angio, certificando-se de que o tubo seja ligeiramente mais curto do que a agulha embotada. Antes de iniciar o procedimento, esfregue uma pequena quantidade de lubrificante na extremidade da cânula de intubação e, em seguida, ligue o ventilador para iniciar o fluxo de gás flúor isof através da tubulação do conector.Depois de confirmar a sedação por pinça do dedo do pé, transfira o animal para o aparelho de incubação. Suspenda o rato na barra de metal pelos dentes incisivos superiores e posicione uma fonte de luz flexível de alta intensidade a um a dois centímetros da superfície ventral do pescoço. Em seguida, use um par de pinças de padrão padrão de estudante para puxar a língua suavemente para cima e para o lado dos dentes inferiores.Em seguida, segure a língua entre o polegar e o indicador de uma mão enquanto usa a superfície interna plana de um pino da pinça. Pressionar a extremidade inferior da língua ventralmente, expondo o epigloss e a abertura da laringe. Visualize as cordas vocais e, em seguida, guie a extremidade embotada da cânula de intubação para cima anteriormente através do brilho aberto até a traqueia até que o centro do cateter angioscópico toque os incisivos.Agora remova o estilete de metal e conecte o tubo de anestesia à abertura do cateter de angio. Para iniciar a ventilação com flúor, ajuste o ventilador para configurações de controle de pressão com uma pressão de 12 a 14 milímetros de mercúrio a uma taxa de 60 respirações por minuto e use uma pressão expiratória final positiva de três centímetros de água. Aplique o olho em um rato adulto sedado Depois de observar a expansão bilateral da parede torácica, para garantir a colocação adequada do cateter, prenda o tubo endotraqueal com uma tira de fita adesiva.Em seguida, conecte o monitor de oxigenação sanguínea e frequência cardíaca ao pé do rato e inicie o monitoramento para remover o timo. Primeiro esterilize a pele aplicando iodopovidona em todo o peito do animal. Quando o iodo estiver seco, limpe a superfície da pele com uma gaze embebida em etanol a 70%.Em seguida, cubra o rato com filme plástico transparente, cortando um orifício para expor o campo cirúrgico estéril e, em seguida, identifique a incisura supraesternal na região torácica superior. Faça uma incisão na linha média de dois centímetros através da pele com um bisturi começando distalmente e estendendo-se proximalmente ao longo do esterno até dois a três milímetros acima do entalhe. Em seguida, realizar uma esternotomia mediana parcial de 1,5 centímetro, partindo da incisura supraesternal, usando uma tesoura de karité de ponta romba.Em seguida, use uma pinça de enxerto rombo para separar os músculos da cinta pré-traqueal. Neste ponto, a traqueia pode ser vista e o cateter endotraqueal deve ser visualizado em seu interior. Coloque as pontas de um pequeno afastador ALM sob os músculos da cinta e o esterno separados e, em seguida, abra o afastador para expor o aspecto superior do timo.Use uma pinça de dumont fina para liberar as bordas laterais do tecido do timo e expor os lobos tímicos inferiores. Em seguida, puxe o timo suave e superiormente para o local da incisão aberta, tomando cuidado para evitar os tecidos circundantes. Se necessário, obtenha hemostasia mantendo a pressão em qualquer área de sangramento com um cotonete estéril.Agora entregue os lobos tímicos inferiores na incisão e alise bruscamente as inserções posteriores usando fórceps e microtesouras. Em seguida, remova o timo intacto e inspecione-o cuidadosamente em busca de seções ausentes. Agora, remova o afastador ALM e oponha os músculos da cinta com duas suturas interrompidas de cinco maxons zero.Em seguida, aplique duas gotas de adesivo tecidual de cianoacrilato de grau cirúrgico nas suturas. Oponha-se ao esterno usando suturas de seda 2 4 0 colocadas através dos espaços entre as costelas logo abaixo do esterno para evitar a camada muscular subjacente. Em seguida, use uma sutura de náilon quatro zero para fechar a camada da pele e, em seguida, interrompa o isof flúor.Para encurtar o período de recuperação pós-anestésica pós-operatória, limpe o local da incisão e a pele ao redor com solução salina, úmida e gaze, seguida de várias gotas de bupivacaína para anestesia local e uma a duas gotas de cola de cianoacrilato para selar. A incisão continua a ventilar. Depois que o flúor isof for desligado até que o rato mostre sinais de respiração independente, extube o animal e permita que ele se recupere totalmente sob observação cuidadosa em uma gaiola colocada em uma almofada de aquecimento.Neste experimento, o tecido torácico foi examinado por imuno-histoquímica para coloração de citoqueratina e hematina eosina, revelando uma coloração nuclear mais densa do tecido tímico excisado por h e d, e um padrão rendado característico pela coloração de citoqueratina, permitindo a diferenciação do tecido tímico, por exemplo, dos linfonodos torácicos. Amostras de sangue periférico obtidas dos ratos eutanasiados em quatro semanas foram então analisadas quanto à depleção persistente de células T virgens. Como esperado, os ratos ThermaCo mantêm suas contagens gerais de células T em comparação com os ratos controle, mas demonstraram uma perda de suas populações virgens de células T CD quatro e CD oito.Depois de assistir a este vídeo, você deve ter uma boa compreensão de como intubar um rato com segurança e rapidez, dissecar e remover o timo e fechar o mediastino e a incisão de forma a minimizar quaisquer complicações pós-operatórias.

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Imunologia e Infecção

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A roedor pneumonectomia esquerda é uma técnica valiosa na investigação de hipertensão pulmonar. Aqui, apresentamos um protocolo para descrever o procedimento de pneumonectomia de rato e cuidados pós-operatórios para garantir mínima morbidade e mortalidade.

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