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Medicine
Minimal procedimento cirúrgico invasivo de induzir Infarto do Miocárdio em Ratos
Minimal procedimento cirúrgico invasivo de induzir Infarto do Miocárdio em Ratos
JoVE Journal
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JoVE Journal Medicine
Minimal Invasive Surgical Procedure of Inducing Myocardial Infarction in Mice

Minimal procedimento cirúrgico invasivo de induzir Infarto do Miocárdio em Ratos

Full Text
28,685 Views
09:05 min
May 4, 2015

DOI: 10.3791/52197-v

Adelina Curaj1, Sakine Simsekyilmaz1, Mareike Staudt1, Elisa Liehn1

1Institute for Molecular Cardiovascular Research,RWTH Aachen University, Germany

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Um modelo altamente reprodutível para infarto do miocárdio em camundongos com manipulações minimamente invasivas é descrito. O modelo pode ser facilmente executado, resultando em alta reprodutibilidade e taxa de sobrevida. Assim, o modelo descrito reduzirá o número de animais necessários conforme solicitado pelo princípio 3R (Substituição, Refinamento e Redução).

O objetivo geral deste procedimento é induzir um infarto do miocárdio altamente reprodutível em camundongos com manipulações minimamente invasivas. Isso é obtido por intubação sob um microscópio estéreo para controlar a posição da cânula de intubação durante o procedimento. Na segunda etapa, é feita uma discreta incisão lateral esquerda entre as costelas para abrir a cavidade torácica e facilitar a cicatrização rápida.

A ligadura da artéria coronária descendente esquerda é então colocada de acordo com a manipulação apropriada a jusante. Em última análise, o tamanho e a forma do infarto podem ser avaliados por análise imuno-histomorfométrica padrão. As principais vantagens desta técnica dos métodos existentes são que é minimamente invasiva, altamente reprodutível e de fácil execução, permitindo que pesquisadores com experiência mínima com um método possam aplicá-la em modelos de pequenos animais.

Geralmente, indivíduos novos neste método terão dificuldades porque o tamanho do coração do camundongo requer alta precisão de manipulação. Durante a microcirurgia. Comece colocando um macho anestesiado de oito a 10 semanas de idade, C 57 BL seis camundongos do tipo selvagem na posição supina em uma mesa de cirurgia aquecida.

Depois de confirmar o nível adequado de sedação por pinça do dedo do pé, aplique pomada para os olhos no animal e use uma pequena navalha para remover os pelos da área ventral do pescoço e a metade esquerda do tórax desinfete a pele com etanol 70% e derme de ninhada. Em seguida, faça uma pequena incisão mediana de 0,5 centímetro no centro do pescoço. Uma vez sob a pele, passe um par de pinças curvas estéreis pelos dois corpos gordurosos para facilitar a visualização da traqueia através do músculo de cobertura.

Com um microscópio estereoscópico, introduza a cânula de intubação por via oral na traqueia. A cânula deve ser observada através do tecido transparente. Depois de confirmar a colocação adequada do instrumento, conecte a cânula ao ventilador de pequenos animais e ajuste as configurações de ventilação para um volume corrente entre 100 e 150 microlitros e uma frequência respiratória entre 100 e 150 aspirações por minuto para induzir um infarto do miocárdio.

Em seguida, faça uma incisão com menos de 0,5 centímetros de comprimento na pele entre o processo xifóide e o Xi esquerdo.Em seguida, usando uma pinça, separe a camada muscular das costelas subjacentes para um infarto crônico. Faça uma incisão no quinto espaço intercostal para um modelo de isquemia e reperfusão. Faça a incisão no quarto espaço intercostal.

Em seguida, coloque afastadores na incisão para abrir a cavidade torácica e visualizar o coração. Em seguida, remova cuidadosamente o pericárdio para evitar processos fibróticos excessivos e visualize a artéria coronária descendente esquerda como o vaso vermelho claro profundamente posicionado. Para o modelo de infarto crônico, coloque uma ligadura no meio do lado ventral do coração entre o oráculo e o ápice usando a artéria coronária descendente esquerda como referência.

Em seguida, para obter o infarto transmural anterior e posterior, use uma sutura de seda zero sete para ligar os dois ramos da artéria. Para o modelo de isquemia e reperfusão, colocar a ligadura sob o oráculo e sobre um tubo de silicone e o corpo principal da artéria coronária descendente esquerda. Durante o período de isquemia, coloque suturas temporais nas costelas, umedecendo as suturas com uma compressa para evitar o ressecamento do tecido.

Em seguida, após a isquemia, remova o tubo de silicone e corte a sutura com uma pequena tesoura para visualizar a reperfusão. Após induzir o infarto, encha o tórax com solução salina isotônica quente para eliminar o ar residual. Em seguida, feche o tórax com 3 0 6 suturas, posicionando as suturas mediais em um ângulo de 90 graus para garantir um fechamento selado das costelas.

Feche a camada muscular com duas suturas, seguidas de fechamento da pele com três a quatro suturas, conforme necessário. Em seguida, desconecte a cânula de intubação do ventilador para permitir a marcação espontânea da respiração do camundongo para posterior identificação e coloque o animal sob uma lâmpada vermelha até que ele acorde. Para analisar os dados de infarto do miocárdio, monitore regularmente a fração de ejeção, o encurtamento fracionário, o débito cardíaco e as dimensões cardíacas por ecocardio.

No ponto final do experimento, abra a cavidade torácica e excise o coração. Coloque o lenço de papel em PBS estéril para lavagem extensiva. Então, uma vez que todo o sangue tenha sido removido, pare o coração em diástole com uma solução saturada de cloreto de potássio e fixe o tecido em 10% de formalina durante a noite.

Incorpore a seção fina do tecido cardíaco em parafina, posicionando a ponta do coração na parte inferior do bloco de montagem para permitir a secção transversal do tecido. Em seguida, colete 20 seções seriais de cinco mícrons, descartando os próximos 300 mícrons. Continue a coletar seções de 25 mícrons a cada 300 mícrons até que o nível da válvula mitral seja atingido.

Em seguida, use a coloração de uma etapa de Mori para medir o tamanho do infarto do tecido para realizar a coloração TTC. Reconstrua a ligadura e use uma cânula aórtica para perfundir o coração com 200 microlitros de solução azul de Evans a 1% e congele o coração em um pequeno saco plástico a 20 graus Celsius negativos sem lavar. Após duas horas, use um bisturi afiado para colher cinco seções transversais do tecido e incube as seções por 10 a 15 minutos.

Em solução TTC a 37 graus Celsius de acordo com as instruções do fabricante. Após mais 10 minutos de fixação em formalina a 10%, transfira as seções para lâminas de microscópio de vidro. Para análise histológica.

Dependendo do modelo usado, o tamanho do infarto será diferente. O modelo de infarto crônico induz um infarto transmural circular do ápice, enquanto o modelo de isquemia reperfusão induz uma parede média fina em todo o coração. Para analisar o efeito direto do infarto na viabilidade cardíaca, a coloração TTC com azul de Evans pode ser usada para revelar o miocárdio saudável não afetado pela isquemia em azul, o miocárdio viável de risco dentro da área isquêmica em vermelho e o tecido morto em branco.

Normalmente, o tamanho do infarto é expresso como uma porcentagem da área de risco para os maoris. A coloração em uma etapa permite a medição da cicatriz madura resultante do processo de remodelação com as áreas ventriculares saudáveis infartadas e vermelhas analisadas na primeira seção de cada nível do tecido cardíaco adquirido antes da valva mitral. O infarto de todos os cortes é então expresso como uma porcentagem do volume total do ventrículo esquerdo.

Procedimentos convencionais de coloração também podem ser realizados, por exemplo, nessas imagens. A coloração para CD 31 e actina de músculo liso foi usada para revelar a presença de angiogênese e miofibroblastos no tecido infartado, respectivamente. Use coloração fluorescente dupla para identificar as diferentes moléculas-alvo na área do infarto, pois nenhuma autofluorescência é observada na ausência de cardiomiócitos.

Uma vez dominada, essa técnica pode ser concluída em 25, 30 minutos se for executada corretamente. O controle suficiente da dor é necessário para garantir alta reprodutibilidade Após este procedimento. Outras análises funcionais podem ser realizadas, como medições intraventriculares, de pressão, ultrassom ou pulmão cardíaco isolado.

Fim da perfusão.

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