Um modelo de rato de Fibrilação Ventricular e Reanimação por Técnica de tórax fechado convencional

O objetivo geral deste procedimento é obter informações sobre a fisiopatologia da parada cardíaca e explorar novas estratégias de ressuscitação. Isso é feito primeiro instrumentando cirurgicamente o animal para medir vários parâmetros fisiológicos que são coletados em um sistema de aquisição de dados para posterior análise off-line, a parada cardíaca é produzida por fibrilação ventricular ou fv eletricamente induzida. Para esta etapa, um fio G pré-curvado é inserido na veia jugular externa direita e avançado para o ventrículo direito, possibilitando a entrega de uma corrente elétrica para a indução da fv.

Após oito minutos de FV, a compressão torácica não tratada é iniciada usando um dispositivo de pistão, aumentando gradualmente a profundidade de compressão enquanto move o animal para uma posição de pistão que produz a pressão diastólica aórtica mais alta. Após oito minutos de compressão torácica, a desfibrilação é tentada aplicando choques elétricos no animal. Os animais que são ressuscitados com sucesso são monitorados para avaliar os efeitos das intervenções de ressuscitação na pós-ressuscitação, na função hemodinâmica e metabólica e na sobrevida.

Embora esse método possa fornecer informações sobre novas estratégias de ressuscitação, também pode ser útil para explorar os mecanismos subjacentes pelos quais as terapias funcionam no nível celular por meio da análise de tecidos e avaliação do marcador circulante. O modelo vermelho de parada cardíaca e ressuscitação que você verá hoje foi desenvolvido em 1988 por Irene Bonta e meu mentor, o professor Max Harry Wilde. O modelo tem sido amplamente utilizado em todo o mundo e acreditamos que a representação visual do modelo será útil para os cientistas.

Estudantes interessados no campo da ressuscitação cardiopulmonar, Este modelo de rato de ressuscitação torácica fechada com parada cardíaca pode ser útil para aprofundar nossa compreensão da fisiopatologia da parada cardíaca e o desenvolvimento de novas abordagens de ressuscitação Para facilitar o avanço do cateter PE 25 na aorta torácica descendente, comece fazendo uma incisão de dois centímetros na área inguinal direita de um rato adulto anestesiado em um ângulo de 90 graus em relação ao seu sulco. Em seguida, use um par de hemostáticos para embotar, dissecar o tecido conjuntivo circundante, expondo os vasos femorais e o nervo use uma pinça de microdissecção curva para expor a bainha vascular ao redor dos vasos. Em seguida, viaje com pinças de microdissecção sob a veia e o nervo da artéria femoral e apoie-os em um ângulo de 90 graus em relação aos vasos quando os vasos e o nervo estiverem apoiados.

Use outro par de pinças de microdissecção curvas para separar a artéria do nervo e da veia com um comprimento de cerca de um centímetro. Uma vez separados, insira uma ligadura distal e uma proximal sob os vasos. Use um nó de cirurgião para apertar firmemente a ligadura distal, seguido por dois nós únicos.

Aperte a ligadura proximal com um nó de cirurgião solto. Em seguida, faça uma pequena incisão no vaso próximo à ligadura distal em um ângulo de 60 graus em relação ao vaso com uma tesoura de microdissecção cortando aproximadamente um quarto da área da seção transversal. Em seguida, insira uma agulha de calibre 22 com uma ponta embotada e dobrada em um ângulo de 70 graus na abertura do vaso enquanto puxa suavemente a ligadura distal com os hemostáticos para estabilizar o vaso.

Agora levante a agulha introdutora suavemente para expor o lúmen e guie o cateter PE 25 sob o introdutor, removendo a agulha. Uma vez inserida a ponta do cateter, avance o cateter até a marca de oito centímetros para posicionar sua ponta na aorta torácica descendente e, em seguida, aperte a ligadura proximal adicionando dois nós simples adicionais que prendem o cateter ao vaso. Esta foto do pescoço exibe uma veia jugular externa direita previamente canulada para expor a traqueia.

Em seguida, use hemostáticos para expandir a incisão em direção à linha média e, em seguida, use os hemostáticos para embotar ainda mais, dissecar as seções hióide esternal, tireóide esternal e mastóide dos músculos cefálicos CTO. Use um espalhador de tecido para manter a exposição da traqueia. Em seguida, puxe a língua para esticar as vias aéreas com um avanço firme.

Cânula traqueal de cinco F montada em um estilete com a ponta apontando para cima, buscando entrar nas vias aéreas superiores, cordas vocais e traqueia. A intubação traqueal bem-sucedida pode então ser confirmada pelo reconhecimento da forma de onda capnográfica característica. Antes de iniciar o protocolo de parada cardíaca e ressuscitação, meça o débito cardíaco e as várias pressões para verificar a estabilidade hemodinâmica.

Uma vez registrados os valores basais, retirar a torneira de parada de três vias do cateter de poliuretano de três F inserido na veia jugular externa direita do animal e avançar a ponta mais macia do fio G, aproximadamente sete centímetros. Buscando entrar no ventrículo direito enquanto monitora o ECG e a pressão aórtica. Em seguida, ligue o gerador CA de 60 hertz e aumente gradualmente a corrente enquanto monitora a pressão aórtica.

Mantenha a corrente por três minutos e a intensidade após dois minutos. Desligue a corrente após três minutos e remova o fio-guia. Volte a tapar o cateter jugular com uma torneira de paragem de três vias e retire a agulha de massa.

Depois de permitir que a FV continue espontaneamente pela duração desejada, ligue o ventilador e aumente gradualmente a profundidade de compressão de zero a 10 milímetros. Durante o primeiro minuto de compressão torácica, mova o animal ligeiramente para o lado e sroc. Procurar encontrar uma posição que produza a maior pressão diastólica aórtica para uma determinada profundidade de compressão.

Em seguida, continue aumentando a profundidade de compressão durante o segundo minuto até que uma pressão diastólica aórtica alvo seja alcançada. Mantenha as compressões torácicas pela duração desejada antes de tentar a desfibrilação. Imediatamente antes de completar as compressões torácicas, aplique gel condutor em uma pá de desfibrilação personalizada para ratos de um desfibrilador de forma de onda bifásica disponível comercialmente e carregue o desfibrilador.

Em seguida, interrompa a compressão torácica e, após verificar se o coração permanece em FV pela leitura do ECG, aplique um choque elétrico de cinco joules na parede torácica. Observe o retorno de um ECG eletricamente organizado com pulsos aórticos e uma pressão aórtica média maior ou igual a 25 milímetros. Mercúrio. Se a pressão aórtica média for inferior a 25 milímetros, o mercúrio retoma as compressões torácicas por mais 30 a 60 segundos, independentemente do ritmo elétrico.

Determine o resultado da ressuscitação na conclusão dos ciclos de compressão de desfibrilação de acordo com o fluxograma. Em seguida, aumente a taxa de ventilação de 25 para 60 por minuto após o retorno da circulação espontânea, diminuindo a fração inspirada de oxigênio de 1,0 para 0,5 Após 15 minutos de circulação espontânea, finalmente monitore o animal até que ele esteja completamente recuperado. Usando este protocolo, foi demonstrado que os inibidores da isoforma um do trocador de hidrogênio de sódio IDE e um V 4 4 5 4 B permitiram o desenvolvimento de uma pressão diastólica aórtica predefinida com menor profundidade de compressão torácica, produzindo uma maior relação pressão de perfusão coronariana em relação à profundidade pós-ressuscitação.

Ambos os compostos melhoraram a disfunção miocárdica, mas a sobrevida foi maior com Carri ride, conforme ilustrado na figura, sugerindo que o IDE é um inibidor da isoforma um do trocador de hidrogênio de sódio mais eficaz do que um VE para ressuscitação de parada cardíaca. Neste modelo de rato, Uma vez dominado, a instrumentação cirúrgica pode ser concluída em 90 minutos. Após este procedimento, o sangue pode ser coletado para medições de marcadores de órgãos e órgãos Lesão no coração pode ser colhido para análise molecular.

Depois de assistir a este vídeo, você terá uma boa compreensão de como induzir quando acionar a fibrilação no vermelho, como realizar efetivamente a ressuscitação torácica próxima, como restabelecer a atividade cardíaca e identificar variáveis a serem monitoradas para garantir o sucesso do experimento.