7 de março de 2015
Os adipócitos maduros podem representar uma fonte abundante de células-tronco por meio da desdiferenciação, o que leva a uma população homogênea de células semelhantes a fibroblastos. A digestão da colagenase é usada para isolar adipócitos maduros da gordura humana. O objetivo do nosso protocolo é obter células de gordura multipotentes e desdiferenciadas a partir de adipócitos humanos maduros.
Os depósitos maduros têm a capacidade de se diferenciarem em células precursoras in vitro. Isso é conseguido por meio do cultivo em selo, uma técnica na qual células maduras são cultivadas em um frasco completamente preenchido com meio de cultura e mantido em posição invertida. As células flutuantes aderem ao frasco e alteram sua morfologia, passando de uma célula redonda rica em lipídios para uma célula alongada semelhante a um fibroblasto. Homogêneo.
Populações de células alongadas podem ser obtidas e tratadas após o recebimento de amostras de tecido no laboratório. Pese os tecidos adiposos, dependendo do número de adipócitos necessários, e coloque um volume apropriado da amostra em um tubo de 50 ml. Após a digestão, espera-se obter aproximadamente 1 milhão de células por grama de tecido.
Culturas em teto são realizadas com 500.000 células por frasco de 25 centímetros e 50.000 células para cada poço de uma placa de seis poços, adicionando tampão KRH em trabalho suplementado com colagenase, picando o tecido com tesoura e incubando a preparação a 37 graus Celsius por 45 minutos. Durante a incubação, prepare o conjunto de tubos e seringa. Despeje a solução translúcida através de uma malha de náilon em um béquer de plástico com pinça.
Esfregue a preparação celular através da malha e lave com cinco ml do tampão KRH em trabalho delicadamente. Transfira a suspensão celular filtrada para um tubo de 50 ml com conjunto de tubo e seringa. Deixe os adipócitos maduros repousar por aproximadamente 10 minutos.
As células atingirão o topo do tampão por flutuação. Aspire lentamente o tampão a partir da parte inferior. Usando uma seringa e tubo, adicione 20 ml de tampão KRH em trabalho para lavar.
Repita os passos de lavagem duas vezes. Colete o tampão para levar a suspensão de adipócitos a um volume final de cinco ml e prossiga para contagem das células utilizando um hemocitômetro, encha um frasco T 25 até três quartos de seu volume com D-M-E-M-F 12 suplementado com 20% de soro de bezerro, transfira 500.000 adipócitos maduros para o frasco. Complete o volume do frasco com meio e remova as bolhas de ar da superfície superior.
Parafuse uma tampa inventada no frasco. Incube o frasco de cabeça para baixo por uma semana em uma incubadora de cultura celular com 5% de dióxido de carbono. Evite movimentar o frasco, pois as bolhas remanescentes podem interferir na aderência celular.
Coloque uma lamínula na parte inferior dos poços. Adicione o bucha plástica no poço e preencha o poço com oito ml de meio. Certifique-se de que não haja bolhas.
Coloque uma lamínula sobre o bujão, deixando um espaço para inserir a ponteira da pipeta. Colete 50.000 células e injete-as posicionando a ponteira entre a lamínula e o bujão. Incube a placa em uma incubadora de cultura celular com 5% de dióxido de carbono por uma semana ou menos.
Dependendo do desenho do experimento, são necessários pelo menos três dias para que as células adiram à lamínula em uma placa diferente. Inverta as lamínulas em dois mls de meio. Em culturas contínuas, as lamínulas podem então ser fixadas em formalina para experimentos de imunofluorescência ou para extrações de D-N-A-R-N-A e Proteína.
A desdiferenciação de adipócitos maduros causa grandes alterações na morfologia celular. Durante esse processo, os adipócitos perdem seu fenótipo e reduzem a expressão de transcritos normalmente associados à sua função de armazenamento de lipídios. Esta imagem de imunofluorescência representa células adiposas em diversos estágios de desdiferenciação.
As células com morfologia arredondada ainda expressam FABP4, um marcador de adipócito maduro, enquanto as células alongadas não o expressam mais, com base na literatura. Células adiposas diferenciadas, frequentemente chamadas de células adiposas D, podem ser obtidas de pacientes jovens, idosos, magros ou com base OB. Sua capacidade de cultura de longo prazo e sua comprovada multipotência.
Gosto também do seu potencial para engenharia de tecidos e terapia celular. Elas podem representar um novo modelo para a investigação específica da fisiologia de adipócitos.
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Este estudo explora a desdiferenciação de adipócitos maduros em células-tronco multpotentes. Ao utilizar técnicas de digestão com colagenase e cultivo com selo, os pesquisadores podem isolar e cultivar essas células para obter uma população homogênea de células semelhantes a fibroblastos.
A dediferenciação de adipócitos maduros em células-tronco pluripotentes oferece uma nova fonte para aplicações em medicina regenerativa e engenharia de tecidos. Essa abordagem permite a caracterização específica de depósitos de função adipocitária e propriedades metabólicas, apoiando a validação de alvos em pesquisas sobre doenças metabólicas. O método fornece uma plataforma escalável para a geração de células semelhantes a fibroblastos com comprovada pluripotência, facilitando o desenvolvimento de modelos pré-clínicos e a redução de riscos mecanicistas na descoberta de terapias focadas em adipócitos.
O método se integra ao continuum de descoberta, desde a validação inicial do alvo até a identificação de compostos líderes e estudos pré-clínicos, especialmente para programas de doenças metabólicas e medicina regenerativa.