9 de junho de 2015
O eletrorretinograma (ERG) é um potencial elétrico gerado pela retina em resposta à luz. Este artigo descreve como usar o ERG para avaliar a função retiniana, em ratos adaptados ao escuro, e como ele pode ser usado para avaliar uma intervenção neuroprotetora, no presente caso o pré-condicionamento isquêmico remoto.
O objetivo geral deste procedimento é testar a função visual em ratos com lesão luminosa normal e isquêmica remota pré-condicionados e lesão leve usando o ERG e, assim, demonstrando os efeitos protetores da isquemia remota de membros na retina. Isso é feito primeiro escurecendo, adaptando os ratos por 12 horas. O segundo passo é registrar o ERG adaptado ao escuro da linha de base usando estímulos de luz LED e um amplificador digital.
Em seguida, sujeite os ratos a um estresse retiniano, expondo-o a uma luz contínua e brilhante. A etapa final é comparar as gravações de ERG dos ratos com danos causados pela luz e aqueles pré-condicionados com isquemia remota do membro, e medir as respostas dos fotorreceptores vistas na onda A e as respostas internas da retina vistas na onda B. Em última análise, o ERG adaptado ao escuro é usado para avaliar a função visual escotópica.
Portanto, este método pode fornecer informações sobre a neuroproteção remota baseada na isquemia. Também pode ser aplicado a outras formas de lesão da retina e testes farmacológicos de doenças, e para a triagem de animais com defeitos visuais. Para iniciar este procedimento, adapte o rato no escuro por 12 horas e, em seguida, anestesieste-o com a injeção de coquetel de cetamina xilazina.
Quando o animal estiver inconsciente, verifique a profundidade da anestesia beliscando levemente o pé para garantir que a resposta reflexa esteja ausente. Em seguida, aplique uma gota de atropina e uma gota de metano de proximidade em sua córnea. Corte em linha preta de 10 centímetros de comprimento.
Em seguida, faça um laço com o fio e deslize o laço sobre o equador do olho, tricotando levemente apertado para puxar o globo ocular ligeiramente para a frente e manter a córnea afastada da pálpebra. Em seguida, aplique colírio carmer nas córneas. Posicione o rato na cama absorvente em cima da plataforma aquecida com a cabeça colocada na abertura do ganzfeld.
Em seguida, insira a sonda de temperatura interna no reto para garantir que a temperatura corporal seja mantida em 37 graus Celsius e prenda a sonda de temperatura na posição prendendo seu cordão na cauda do rato. Em seguida, insira o eletrodo de referência por via subcutânea no membro posterior. Coloque o eletrodo negativo firmemente na boca para evitar que o eletrodo escorregue para fora da boca.
Fixe o cabo de conexão em uma superfície estável. Em seguida, posicione o eletrodo positivo sobre o centro da córnea e certifique-se de que o eletrodo toque a córnea suavemente usando um manipulador microm. Uma vez que os eletrodos estejam no lugar, cubra o orifício configurado, incluindo o ganzfeld e o animal com um material opaco para preservar a adaptação ao escuro.
No software de aquisição. Defina dois kilohertz como taxa de amostragem com cinco milissegundos para amostragem pré-coleta e um tempo de coleta de 100 a 1000 milissegundos. Em seguida, defina os filtros passa-banda para um a 1000 hertz e certifique-se de que a amostragem seja acionada por um período de 100 milissegundos após um flash.
Agora, verifique a linha de base da gravação. Deve estar livre de ruídos estranhos, mas mostrar o ruído do amplificador e a oscilação respiratória. Em seguida, execute um flash de teste.
Esta é uma forma de onda típica de ERG em resposta ao flash de teste. Quando terminar, deixe o animal se readaptar ao escuro por 10 minutos. Em seguida, verifique novamente a linha de base para obter um sinal estável.
Posteriormente, inicie a gravação Ao final da sessão de gravação, verifique a estabilidade da temperatura corporal do animal. Remova os eletrodos e reaplique o polímero cármero nas córneas. Depois, permita que o animal se recupere em uma almofada térmica até que esteja totalmente móvel e ativo antes de retornar ao alojamento do animal.
Esta figura mostra a medição de uma onda e onda B de um ERG adaptado ao escuro. O traço mostrado aqui é registrado da córnea de um olho escuro adaptado a um flash de luz brilhante dado no momento mostrado como T zero. A amplitude de uma onda é medida desde a linha de base até o primeiro vale.
A amplitude da onda B é medida a partir do vale da onda A até o pico positivo seguinte. A latência é medida a partir do artefato de estímulo até o ponto de interesse no traço, como o vale da onda A. O sinal ERG dominado bruto aumenta com o aumento do estímulo luminoso.
Uma onda torna-se aparente em aproximadamente 0,4 logs de segundos de candela escotópica por metro quadrado, e o paradigma de flash duplo tem sido usado para separar o sinal ERG misto em respostas de cone e bastonete. Uma vez dominado. Esta técnica pode ser feita em 30 minutos.
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Este estudo utiliza o eletrorretinograma (ERG) para avaliar a função retinal em ratos adaptados à escuridão. Examina especificamente os efeitos neuroprotetores do pré-condicionamento isquêmico remoto nas respostas retinianas após estresse induzido por luz.
Electroretinogram (ERG) assessment in rodent models enables quantitative evaluation of retinal function and neuroprotective interventions, supporting early-stage target validation in ophthalmic drug discovery. The protocol's ability to distinguish rod and cone responses and measure functional outcomes after remote limb ischemic preconditioning provides predictive confidence for mechanistic de-risking and translational continuity. This approach is directly relevant for portfolio triage and prioritization of neuroprotective strategies in preclinical pipelines.
The ERG protocol integrates from early discovery through preclinical validation, supporting hypothesis testing, mechanistic de-risking, and quantitative assessment of neuroprotective interventions.