18 de maio de 2015
As amostras de sangue são úteis para avaliar biomarcadores de estados fisiológicos ou doenças in vivo. Aqui descrevemos a metodologia para coletar amostras de sangue da veia lateral da cauda no rato. Este método fornece amostras rápidas com o mínimo de dor e invasividade.
O objetivo geral deste procedimento é minimizar o estresse da coleta de sangue de ratos por amostragem através da veia lateral da cauda. Isso é feito primeiro restringindo o rato e aquecendo a cauda. Na segunda etapa, um cateter borboleta é inserido em uma das veias da cauda lateral dilatadas e, em seguida, o sangue é retirado na etapa final.
O cateter é removido e o fluxo sanguíneo do local da punção é interrompido. Em última análise, a amostragem de sangue da veia da cauda lateral causa estresse mínimo ao rato durante a coleta de sangue, reduzindo a influência da resposta aguda ao estresse na composição do sangue. As principais vantagens desta técnica sobre os métodos existentes, como a amputação da ponta da cauda sobre a amostragem da veia lateral da cauda, são muito menos angustiantes para o animal e permitem a repetição dentro da amostragem do sujeito.
O procedimento será demonstrado por dois membros do meu laboratório, Graham Lee, um pós-doutorado e Elia Harmatz, um técnico Para começar, conecte um cateter borboleta à seringa, mantendo a proteção da seringa sobre a agulha para proteger a ponta. Em seguida, retire um volume de heparina ligeiramente maior do que o volume de sangue que será coletado. Retire a seringa e encha-a com ar.
Recoloque a seringa no cateter e expulse todas as quantidades da solução de heparina do tubo, agulha e seringa. Em seguida, coloque o cateter e a seringa em uma superfície estéril. Agora, prenda rapidamente o rato em um pano limpo, cuidando para que as quatro patas e as patas traseiras estejam em uma posição confortável e que a respiração seja irrestrita.
Prenda o envoltório com fita adesiva. Em seguida, em uma superfície de trabalho sólida, peça a um assistente que contenha o rato com gentileza e firmeza pelo abdômen e pela base da cauda com a cauda pendurada na borda do balcão para obter a amostra de sangue. Em seguida, dilate os vasos sanguíneos da cauda em água a 42 graus Celsius por 40 a 50 segundos.
Em seguida, seque a cauda com uma toalha de papel e gire todo o corpo com a cauda para localizar a veia da cauda direita ou esquerda, lateral à artéria para sangramento. Direcione uma seção da veia na parte inferior da cauda e limpe a área com uma solução anti-séptica de clorexidina a 2%. Em seguida, retire o êmbolo da seringa de zero a aproximadamente 50 microlitros para criar pressão negativa na seringa e segure a cauda com cuidado e firmeza perto da ponta para manter a cauda reta durante a coleta da amostra.
Agora, insira lentamente o cateter na veia em um ângulo raso, a aproximadamente cinco centímetros da ponta da cauda. Quando a veia é penetrada, o sangue flui para dentro do cateter, retira lentamente o êmbolo da seringa para coletar o volume desejado a uma taxa constante de cerca de 20 microlitros por segundo. Para facilitar o fluxo sanguíneo, passe um dedo ao longo do comprimento da veia da base em direção à ponta da cauda, permanecendo a mais de dois centímetros da ponta da agulha inserida para ordenhar o sangue.
Se o sangue não puder ser coletado com sucesso do local inicial da penetração do cateter, reinsira a agulha mais acima na veia. Quando um volume de amostra adequado for coletado, desconecte e reconecte o cateter para liberar a pressão na seringa. Em seguida, retire a agulha da veia e aplique pressão brevemente no local de inserção para parar o sangramento quando o sangramento parar.
Limpe a área com solução anti-séptica e devolva o animal à sua gaiola de origem. Para processar a amostra de sangue, aspire o ar para garantir que nenhum sangue permaneça dentro da agulha do cateter e use uma tesoura para cortar o tubo do cateter logo acima da agulha. Remova a agulha, colete o plasma sanguíneo e expulse o sangue em tubos de microcentrífuga contendo EDTA.
Como anticoagulante. Agite suavemente o tubo para misturar o anticoagulante no sangue e, em seguida, coloque as amostras no gelo. Dentro de 10 minutos após a coleta, gire todo o sangue e elua o plasma, tomando cuidado para não perturbar as camadas de glóbulos vermelhos e brancos para coletar o soro sanguíneo.
Coloque o sangue em tubos de microcentrífuga sem anticoagulante em temperatura ambiente por até 30 minutos. Então, depois que o sangue coagular, gire os tubos de coleta em uma centrífuga refrigerada e elui o soro. Ambos os tipos de amostras podem ser usados imediatamente ou armazenados a menos 80 graus Celsius por até um ano.
O plasma sanguíneo coletado da veia lateral da cauda, conforme demonstrado, fornece uma amostra de plasma translúcida e de aparência amarela pálida. Se ocorrer hemólise, uma tonalidade vermelha será transmitida ao plasma. Uma resposta aguda ao estresse pode alterar rapidamente a composição de uma amostra de sangue.
Por exemplo, a concentração circulante de corticosterona aumenta acentuadamente dentro de 10 minutos após a exposição a um estressor, como neste experimento representativo. É importante, no entanto, que o baixo nível basal de corticosterona obtido por este método antes da exposição ao estressor revela que o procedimento de amostragem em si não é uma fonte significativa de estresse. Sugerimos que você pratique este procedimento em animais anestesiados até dominar a inserção da agulha e a coleta de sangue.
Então, uma vez dominada, a técnica pode ser concluída em cinco minutos se for executada corretamente. Ao realizar este procedimento, é importante lembrar de minimizar quaisquer fontes potenciais de estresse, como ruído ambiente, e concluir o procedimento o mais rápido possível.
Este artigo descreve um método para coleta de amostras de sangue da veia lateral da cauda de ratos, visando minimizar o estresse durante o procedimento. A técnica permite uma coleta rápida com dor e invasividade mínimas, tornando-a adequada para avaliação de biomarcadores in vivo.
Reliable blood sampling in preclinical rodent models is critical for accurate biomarker quantification and translational study design. The lateral tail vein technique minimizes stress-induced artifacts, supporting high-fidelity measurement of hormones, proteins, and metabolic factors. This approach enhances predictive confidence in early discovery and preclinical workflows by reducing biological variability linked to procedural stress.
This blood sampling method integrates into the early discovery, lead identification, and preclinical validation continuum by enabling accurate, repeatable biomarker measurement in rodent models.