Name: Geração de Integração Induced-livre Human células estaminais pluripotentes usando o cabelo derivado queratinócitos (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-08-20T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 36 s
Description: Aprenda a gerar células-tronco pluripotentes induzidas humanas livres de integração a partir de queratinócitos derivados de cabelo usando vetores episomais. Este método evita a integração gênica indesejável.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Os autores gostariam de agradecer a Harene Ranjithakumaran e Stacey Jackson pelo suporte técnico. Este trabalho foi apoiado em parte por doações do Conselho Nacional de Saúde e Pesquisa Médica (RCB Wong, A. Pébay), da Universidade de Melbourne (RCB Wong), Retina Australia (RCB Wong, SSC Hung, A. Pébay) e do Instituto de Pesquisa Oftálmica da Austrália (RCB Wong, SSC Hung, A. Pébay); Bolsa do Futuro do Conselho Australiano de Pesquisa (A. Pébay, FT140100047), Bolsa da Fundação Cranbourne (RCB Wong); financiamento interno dos Institutos Nacionais de Saúde (RCB Wong, SSC Hung) e suporte de infraestrutura operacional do governo de Victoria.

A coleta de amostra de cabelo humano de indivíduos requer aprovação ética pelo comitê de ética em pesquisa em humanos nas instituições de acolhimento e deve ser feito em conformidade com as diretrizes institucionais. 1. Isolamento de queratinócitos a partir de cabelo arrancado <ol><li> Descongelar solução Matriz Extracelular (ECM) (isto é, Matrigel) em gelo, O / N. </li><li> Usando pontas de pipetas pré-refrigerados, adicione 200 mL de solução de ECM 12 ml de meio DMEM / F12 refrigerados. Bata de uma placa de 12 poços com 1 ml de solução diluída de ECM para cada poço. Incubar a placa revestida O / N a 37 ° C. Lavar a placa revestida com o meio DMEM pré-aquecido / F12 antes da utilização. </li><li> Colete cabelo humano primário da cabeça do indivíduo, colocando os dedos perto da raiz do cabelo e arrancar o cabelo em um movimento rápido e suave. Verifique para confirmar que cada cabelo recolhido contém um folículo de cabelo intacto e determinar a fase de crescimento do cabelo under um microscópio de dissecação (Figura 1). <ol><li> Recolha 5-10 cabelos anágenos de cada indivíduo para extrair queratinócitos. Processo arrancado os cabelos tão rapidamente quanto possível para assegurar derivação bem sucedida de queratinócitos. Nota: A Figura 1 ilustra a morfologia de cabelos em diferentes fases do ciclo de crescimento. Os cabelos anágenos está em fase de crescimento, com uma camada exterior visível do epitélio em torno do comprimento do cabelo, conhecidas como as ORS. Por outro lado, o cabelo eflúvio representa cabelo na fase de repouso e não tem uma ORS visíveis, mas tem uma bola de clara de células que cobrem a raiz dos cabelos, conhecido como o bojo telógena. </li></ol></li><li> Coloque as amostras de cabelo para uma placa de Petri contendo 10 ml de mistura de antibióticos para lavar durante 5 min à TA. </li><li> Usando tesouras e pinças esterilizadas, cortar para fora do eixo de cabelo excessiva, deixando um fragmento de cabelo com um folículo de cabelo intacto e em torno de 0,5-1 cm de haste capilar. </li><li> Cuidadosamente transfer fragmento de um cabelo em cada poço da placa revestida com ECM usando uma pinça. </li><li> Usando uma pipeta de 1 ml, adicionar cerca de 3 gotas de KO substituição Serum (KSR) meio (~ 100-200 uL) com as amostras de cabelo. Nota: Mantenha os fragmentos de cabelo em estreito contacto com a superfície da placa para permitir a fixação e posterior crescimento de queratinócitos. Adição excessiva da mídia nesta etapa pode faz com que os fragmentos de cabelo a flutuar e diminui a chance de fixação de cabelo bem sucedida. </li><li> Incubar as amostras de cabelo em um 37 ° C incubadora com 5% de CO 2 e permitir que os folículos pilosos para anexar O / N. No dia seguinte, adicionar mais suavemente 3 gotas de meio KSR (~ 100-200 uL) para manter as amostras de cabelo húmido. </li><li> Observe as amostras de cabelo diariamente para confirmar que os folículos pilosos ter anexado com sucesso. Geralmente fixação dos folículos pilosos é evidente dentro de 1-3 dias. Pêlos grossos são geralmente mais fácil de anexar comparação com cabelos finos, como pêlos finos têm maiortendência a flutuar que retardam o processo de fixação. <ol><li> Uma vez que o cabelo se ligado à placa de revestimento, adicionar 500 uL de meio KSR para o poço. Tome cuidado extra ao adicionar a forma como amostras de cabelo pode não ter ligado com firmeza. A partir deste ponto, mudar de mídia a cada 2 dias. Nota: excrescências queratinócitos deve ser visível a partir da região do fragmento de SRO cabelo após 3-7 dias (Figura 2A-B). Permitir que os queratinócitos a crescer até 14 dias antes da passagem das células, como descrito na próxima seção. </li></ol></li></ol> 2. Manutenção e Passaging de queratinócitos <ol><li> Pré-revestimento de uma placa de 6 poços, utilizando o Kit de revestimento de matriz. Adicionar 680 ul de meio de diluição a partir do kit a cada poço, seguido de 6,8 ml de solução de revestimento de matriz. Agitar a placa para assegurar uma distribuição uniforme da solução de revestimento de matriz na placa. </li><li> Permitir que a placa revestida com a incubar durante 30 min à temperatura ambiente. Removera solução de revestimento de matriz antes do plaqueamento de queratinócitos. </li><li> Dissociar queratinócitos numa suspensão de células individuais com 500 ul de tripsina a 0,25% por poço durante 2-5 min a 37 ° C. Inactivar a tripsina com 500 ul de meio contendo soro (por exemplo, de Soro Fetal Bovino (FBS) meio) e juntar-se em um tubo de 15 mL estéril. Remover o fragmento de cabelo usando fórceps esterilizados. </li><li> Determinar o número de células recolhidas utilizando um hemocitómetro. </li><li> Centrifugar as células durante 3 minutos a 200 x g. Lavam-se as células com PBS e centrifugação repetida. Aspirar o PBS e ressuspender o sedimento de células em meio fresco de queratinócitos. </li><li> Placa de deslocamento 4 × 10 4 queratinócitos para um poço de placa revestida com ECM na presença de meio de queratinócitos. Manter os queratinócitos em uma temperatura de 37 ° C incubadora com 5% de CO 2 (Figura 2C). Mudança de mídia a cada dia e células de passagem quando a cultura é de aproximadamente 80% confluentes, which pode demorar cerca de 2-7 dias dependendo do número de passagens e taxa de proliferação dos queratinócitos. Os queratinócitos derivados deve ser expandido para gerar stocks congelados suficientes usando métodos de criopreservação lento de congelamento padrão 16. Nota: As condições de cultura descritas suporta a expansão da população homogénea de queratinócitos e com a morfologia típica de calçada (Figura 2C). Ocasionalmente, alguns queratinócitos diferenciadas, com morfologia de grande e plana e perderam potencial replicativo, pode ser observado na cultura. Caracterização de queratinócitos pode ser realizada por imunocoloração utilizando anticorpos contra citoqueratina 14, como previamente descrito 17. Linhas celulares de queratinócitos estabelecidas devem também ser testados para micoplasma após 1-3 passagens utilizando o kit disponível comercialmente. </li></ol> 3. Geração de hiPSCs de Queratinócitos Usando vectores epissomais <ol><li> Pré-revestimento de uma placa de 6 poços comGelatina a 0,1% (2 ml / poço). Permitir que a gelatina de revestimento durante pelo menos 20 min à temperatura ambiente. </li><li> Para o experimento de reprogramação, de uso queratinócitos não mais tarde do que a passagem 6. dissociar os queratinócitos em uma única suspensão de células com 1 ml de tripsina a 0,25% por poço, durante 2-5 min a 37 ° C. Inactivar a tripsina com 1 ml de meio contendo soro (por exemplo, meios de FBS) e recolher num tubo de 15 ml. </li><li> Centrifugar as células durante 3 min a 200 xg e ressuspender as células em meio de queratinócitos. Placa 1 × 10 × 10 5 -1,5 5 queratinócitos por cavidade em uma placa gelatinizado O / N. </li><li> No dia seguinte (dia 0), verifique a placa para garantir células são 50-60% confluentes. Nota: Se os queratinócitos são menos de ~ 50% confluentes eles podem não crescer bem após a transfecção. </li><li> No Dia 0, efectuar a transfecção dos vectores epissomais de reprogramação nos queratinócitos, usando uma proporção de reagente de transfecção de 8 ul a 2? G de DNA total de plasmídeo.<ol><li> Tirar 0,5 ug de cada um dos quatro plasmídeos (pCXLE-eGFP, pCXLE-hOct3 / 4-shP53F, pCXLE-HSK, pCXLE-Hul) e dilui-se em 100 ul de meio de soro reduzido (por exemplo, meio OPTI-MEM). Nota: O plasmídeo pCXLE-eGFP é usado para monitorar as eficiências de transfecção em queratinócitos e não é necessário para reprogramação. </li><li> Adicionar 8 mL de reagente de transfecção de ADN diluída. Misture sacudindo o tubo. Permitir que a mistura de reacção contendo o ADN para descansar sem perturbação à temperatura ambiente durante 15 min. </li><li> Substituir o meio de queratinócitos com meio fresco. </li><li> Adicionar cuidadosamente a mistura reaccional para a cultura de queratinócitos de ADN e incubar numa incubadora a 37 ° C com 5% de CO 2 durante 4 horas. Nota: Não é recomendado para executar prolongado transfecção O / N em queratinócitos como eles apresentam baixa sobrevivência pós-transfecção. </li><li> Depois de 4 horas após a transfecção, substituir o meio de queratinócitos com meio fresco. </li></ol></li><li> No Dia 1 (1 dia de pós-transinfecção), alterar a forma de queratinócitos e verificar a eficiência de transfecção pela estimativa da percentagem de células positivas eGFP sob um microscópio fluorescente. Tipicamente&gt; 60-70% de eficiência de transfecção é observado para queratinócitos primários usando esse protocolo. </li><li> No Dia 2, repetir a transfecção como descrito na etapa 3.5. Dois transfecções sucessivas seriam tipicamente atingir&gt; 90% de eficiência de transfecção. Cultura de queratinócitos geralmente atinge confluência até ao final do segundo transfecção. <ol><li> Prepare uma placa de 10 cm de fibroblastos de rato embrionárias (MEF) alimentador para cada reação reprogramação. Prepare alimentadores MEF mitoticamente inactivadas como descrito anteriormente 18. </li><li> Pré-revestimento de uma placa de 10 cm com 5 ml de gelatina a 0,1% durante pelo menos 20 min. Placa 4 × 10 6 MEF mitotically inativado por placa de 10 cm em meio FBS. Permitir que as células assentar e unir O / N em uma temperatura de 37 ° C incubadora com 5% de CO 2. </li></ol></li><li> No Dia 3, harcolete os queratinócitos com 0,25% de tripsina, tal como descrito no passo 3.2 e 3.3. Ressuspender as queratinócitos em meio KSR e placa 90% de queratinócitos a partir de um poço de uma placa de 6 poços num prato de 10 centímetros MEF alimentador com meio KSR. </li><li> A partir do dia 4 em diante, mudar o meio KSR todos os dias. <ol><li> Alternativamente após o Dia 18, substituir o meio de cultura a cada segundo dia. Nota: os queratinócitos não-reprogramado deixará de proliferar, enquanto colônias hiPSC com limite definido que se assemelham a células estaminais embrionárias humanas (hESCs) vão surgir a partir do dia 14-21. </li></ol></li><li> Isolar colônias hiPSC por dissecção manual a partir do dia 21 em diante. Evite colônias hiPSC que estão intimamente agrupadas e apenas escolher colônias hiPSC que estão claramente separados dos outros. Nota: colônias hiPSC pode ser pego mais cedo, mas a colônia com limites definidos pode não ser óbvio em momentos anteriores, dada a dimensão pequena colônia. Eficiências de reprogramação podem variar entre different queratinócitos do paciente, e também é influenciado por outros factores, tais como o número de passagens ou a taxa de proliferação de queratinócitos. <ol><li> Para dissecção manual das colônias hiPSC, use uma agulha de 26G para cortar colônias hiPSC sob um microscópio de dissecação. Cortar uma colónia hiPSC em pequenos pedaços ao redor de 300-600 uM de comprimento. Transferir os pedaços de uma colônia hiPSC em um novo alimentador de placas MEF (2,5 × 10 4 MEF / cm 2) para estabelecer uma linha clonal de hiPSCs. Inicialmente, a cultura de cada linha clonal hiPSC em um poço de uma placa de 12 poços ou de cultura de órgãos pratos, em seguida, expanda a 6 formato de placa bem. </li><li> Manter linhas clonais estabelecidos de hiPSCs em meio KSR sobre alimentadores MEF. Uma vez que a cultura atingir 70 - 80% de confluência com colónias hiPSC ~ 1,5 milímetros de diâmetro, hiPSCs passagem utilizando métodos padrão enzimáticas Passaging (Accutase, dispase ou colagenase IV) de acordo com as instruções do fabricante. </li></ol></li><li> Caracterizar linha hiPSC estabelecidos para confirmar pluripotência e sua capacidade de se diferenciar em células representativas das três camadas germinativas, in vitro e / ou in vivo 13,19. Além disso, linhas hiPSC Testar rotineiramente estabelecidos para micoplasma usando kits disponíveis comercialmente para garantir que eles são livres do patógeno. Rotineiramente monitorar estabilidade genômica de linhas hiPSC por cariótipo ou análise baseada em array variação do número de cópias (CNV). </li></ol>

<ol><li>Takahashi, K., Yamanaka, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+pluripotent+stem+cells+from+mouse+embryonic+and+adult+fibroblast+cultures+by+defined+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors.</a> Cell. 126, 663-676 (2006).</li>
<li>Takahashi, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+pluripotent+stem+cells+from+adult+human+fibroblasts+by+defined+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors.</a> Cell. 131, 861-872 (2007).</li>
<li>Yu, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induced+pluripotent+stem+cell+lines+derived+from+human+somatic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Induced pluripotent stem cell lines derived from human somatic cells.</a> Science. 318, 1917-1920 (2007).</li>
<li>Okita, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+more+efficient+method+to+generate+integration-free+human+iPS+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">A more efficient method to generate integration-free human iPS cells.</a> Nat Methods. 8, 409-412 (2011).</li>
<li>Park, I. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reprogramming+of+human+somatic+cells+to+pluripotency+with+defined+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Reprogramming of human somatic cells to pluripotency with defined factors.</a> Nature. 451, U141-U141 (2008).</li>
<li>Okita, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+efficient+nonviral+method+to+generate+integration-free+human-induced+pluripotent+stem+cells+from+cord+blood+and+peripheral+blood+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">An efficient nonviral method to generate integration-free human-induced pluripotent stem cells from cord blood and peripheral blood cells.</a> Stem Cells. 31, 458-466 (2013).</li>
<li>Dowey, S. N., Huang, X., Chou, B. K., Ye, Z., Cheng, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+integration-free+human+induced+pluripotent+stem+cells+from+postnatal+blood+mononuclear+cells+by+plasmid+vector+expression%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Generation of integration-free human induced pluripotent stem cells from postnatal blood mononuclear cells by plasmid vector expression.</a> Nat Protoc. 7, 2013-2021 (2012).</li>
<li>Zhou, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+induced+pluripotent+stem+cells+from+urine%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Soc+Nephrol%22%5BJournal%5D)">Generation of induced pluripotent stem cells from urine.</a> J Am Soc Nephrol. 22, 1221-1228 (2011).</li>
<li>Aasen, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+and+rapid+generation+of+induced+pluripotent+stem+cells+from+human+keratinocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Efficient and rapid generation of induced pluripotent stem cells from human keratinocytes.</a> Nat Biotechnol. 26, 1276-1284 (2008).</li>
<li>Peters, A., Zambidis, E. Chapter 16. Generation of nonviral integration-free induced pluripotent stem cells from plucked human hair follicles. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPeters%2C+A+%22Human+Embryonic+and+Induced+Pluripotent+Stem+Cells%3A+Lineage-Specific+Differentiation+Protocols.Springer+Protocols+Handbooks%22">Human Embryonic and Induced Pluripotent Stem Cells: Lineage-Specific Differentiation Protocols.Springer Protocols Handbooks</a>. Ye, K., Jin, S. , Springer. 203-227 (2012).</li>
<li>Fuchs, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Scratching+the+surface+of+skin+development%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Scratching the surface of skin development.</a> Nature. 445, 834-842 (2007).</li>
<li>Limat, A., Noser, F. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Serial+cultivation+of+single+keratinocytes+from+the+outer+root+sheath+of+human+scalp+hair+follicles%5BTitle%5D)+AND+%22J+Invest+Dermatol%22%5BJournal%5D)">Serial cultivation of single keratinocytes from the outer root sheath of human scalp hair follicles.</a> J Invest Dermatol. 87, 485-488 (1986).</li>
<li>Piao, Y., Hung, S. S., Lim, S. Y., Wong, R. C., Ko, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+generation+of+integration-free+human+induced+pluripotent+stem+cells+from+keratinocytes+by+simple+transfection+of+episomal+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells+Transl+Med%22%5BJournal%5D)">Efficient generation of integration-free human induced pluripotent stem cells from keratinocytes by simple transfection of episomal vectors.</a> Stem Cells Transl Med. 3, 787-791 (2014).</li>
<li>Higgins, C. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reprogramming+of+human+hair+follicle+dermal+papilla+cells+into+induced+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Invest+Dermatol%22%5BJournal%5D)">Reprogramming of human hair follicle dermal papilla cells into induced pluripotent stem cells.</a> J Invest Dermatol. 132, 1725-1727 (2012).</li>
<li>Muchkaeva, I. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+iPS+Cells+from+Human+Hair+Follice+Dermal+Papilla+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+naturae%22%5BJournal%5D)">Generation of iPS Cells from Human Hair Follice Dermal Papilla Cells.</a> Acta naturae. 6, 45-53 (2014).</li>
<li>Naaldijk, Y., Friedrich-Stockigt, A., Sethe, S., Stolzing, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+different+cooling+rates+for+fibroblast+and+keratinocyte+cryopreservation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Tissue+Eng+Regen%22%5BJournal%5D)">Comparison of different cooling rates for fibroblast and keratinocyte cryopreservation.</a> J Tissue Eng Regen. , (2013).</li>
<li>Sporl, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Real-time+monitoring+of+membrane+cholesterol+reveals+new+insights+into+epidermal+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Invest+Dermatol%22%5BJournal%5D)">Real-time monitoring of membrane cholesterol reveals new insights into epidermal differentiation.</a> J Invest Dermatol. 130, 1268-1278 (2010).</li>
<li>Conner, D. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+embryo+fibroblast+%28MEF%29+feeder+cell+preparation%5BTitle%5D)+AND+%22Current+protocols+in+molecular+biology%22%5BJournal%5D)">Mouse embryo fibroblast (MEF) feeder cell preparation.</a> Current protocols in molecular biology. Ausubel, F. N., et al. 23, Unit 23 22(2001).</li>
<li>Pebay, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Essential+roles+of+sphingosine-1-phosphate+and+platelet-derived+growth+factor+in+the+maintenance+of+human+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Essential roles of sphingosine-1-phosphate and platelet-derived growth factor in the maintenance of human embryonic stem cells.</a> Stem Cells. 23, 1541-1548 (2005).</li>
<li>Myung, P., Ito, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dissecting+the+bulge+in+hair+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Invest%22%5BJournal%5D)">Dissecting the bulge in hair regeneration.</a> J Clin Invest. 122, 448-454 (2012).</li>
<li>Alonso, L., Fuchs, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+hair+cycle%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">The hair cycle.</a> J Cell Sci. 119, 391-393 (2006).</li>
<li>Robinton, D. A., Daley, G. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+promise+of+induced+pluripotent+stem+cells+in+research+and+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">The promise of induced pluripotent stem cells in research and therapy.</a> Nature. 481, 295-305 (2012).</li>
<li>Soares, F. A., Sheldon, M., Rao, M., Mummery, C., Vallier, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((International+coordination+of+large-scale+human+induced+pluripotent+stem+cell+initiatives%3A+Wellcome+Trust+and+ISSCR+workshops+white+paper%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+cell+reports%22%5BJournal%5D)">International coordination of large-scale human induced pluripotent stem cell initiatives: Wellcome Trust and ISSCR workshops white paper.</a> Stem cell reports. 3, 931-939 (2014).</li>
<li>McKernan, R., Watt, F. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((What+is+the+point+of+large-scale+collections+of+human+induced+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">What is the point of large-scale collections of human induced pluripotent stem cells.</a> Nat Biotechnol. 31, 875-877 (2013).</li>
<li>Utikal, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immortalization+eliminates+a+roadblock+during+cellular+reprogramming+into+iPS+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Immortalization eliminates a roadblock during cellular reprogramming into iPS cells.</a> Nature. 460, U1145-U1112 (2009).</li>
<li>Xu, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Proliferation+rate+of+somatic+cells+affects+reprogramming+efficiency%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Proliferation rate of somatic cells affects reprogramming efficiency.</a> J Biol Chem. 288, 9767-9778 (2013).</li>
<li>Liu, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Late+passage+human+fibroblasts+induced+to+pluripotency+are+capable+of+directed+neuronal+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Transplant%22%5BJournal%5D)">Late passage human fibroblasts induced to pluripotency are capable of directed neuronal differentiation.</a> Cell Transplant. 20, 193-203 (2011).</li>
<li>Huallachain, M., Karczewski, K. J., Weissman, S. M., Urban, A. E., Snyder, M. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extensive+genetic+variation+in+somatic+human+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Extensive genetic variation in somatic human tissues.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 109, 18018-18023 (2012).</li>
<li>Abyzov, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Somatic+copy+number+mosaicism+in+human+skin+revealed+by+induced+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Somatic copy number mosaicism in human skin revealed by induced pluripotent stem cells.</a> Nature. 492, 438-442 (2012).</li>
</ol>

Os autores não têm conflito de interesses.

Geração de hiPSCs específicos do paciente oferece uma abordagem única para estudar patogênese nos tipos de células doentes in vitro, e também fornece uma plataforma para a triagem de drogas para identificar novas moléculas que podem resgatar os fenótipos da doença. Esta abordagem de modelagem doença usando hiPSCs tem produzido resultados promissores para uma variedade de doenças, incluindo a síndrome de QT longo, doença de Huntington, doença de Parkinson e esclerose lateral amiotrófica 22. Várias ini...

A descoberta de humanos induzida por células estaminais pluripotentes (hiPSCs) revolucionou o campo da medicina regenerativa, proporcionando um método viável para a produção de células estaminais específicos do paciente 1-3. hiPSCs ter sido gerado com êxito a partir de vários tipos de células somáticas, incluindo fibroblastos, células hematopoiéticas 4,5 6,7, células epiteliais renais de urina 8 e queratinócitos 9,10. Até à data, os fibroblastos da pele e células hematopoiéticas representam as fontes de células mais comumente utilizados para gerar iPSCs específicos do paciente. Indiscutivelmente, isso se deve ao fato de que as biópsias de pele e coleta de sangue são procedimentos médicos de rotina e grandes biobancos de sangue ou de pele amostras de pacientes foram estabelecidos em muitos países. Em contraste com as células sanguíneas e de fibroblastos da pele que requerem métodos de extracção invasiva, queratinócitos representam um tipo de células facilmente acessíveis para a geração hiPSC. Keratinocytes são células epiteliais rico em queratina que formam a barreira epidérmica exterior da pele e são também encontrados em unhas e cabelo 11. Em particular, os queratinócitos podem ser encontrados na bainha externa da raiz (ORS) dos folículos pilosos, uma camada celular externa que cobria o eixo do cabelo, juntamente com a bainha radicular interna (IRS), células (12, Figura 1). Como coleta de cabelo é um procedimento simples, que não requer a assistência de pessoal médico, ele fornece uma oportunidade para os pacientes de recolher e enviar suas próprias amostras de cabelo para laboratórios, o que facilitaria muito a recolha de amostras de doentes para a geração de hiPSC. Queratinócitos epidérmicos também têm uma maior eficiência de reprogramação e cinética de reprogramação mais rápidas em comparação com fibroblastos, a adição às vantagens da utilização de queratinócitos como as células de partida para a geração de hiPSC 9,13. Além disso, hiPSCs também pode ser gerado usando outras populações de células dentro do folículo piloso,incluindo as células de papila dérmicas localizadas na base do folículo piloso 14,15. Relatórios anteriores de geração iPSC usando células derivadas de cabelo muitas vezes utilizam métodos de reprogramação retrovirais ou à base de lentivírus 9,14,15. No entanto, estes métodos virais introduzir integração genómica indesejável de transgenes estranhos durante a reprogramação. Em comparação, a utilização de vectores epissomais representa um método viável reprogramação, não-viral para gerar iPSCs livre de integração 4. Nós já desenvolveu um método simples, eficaz e não-viral para reprogramar eficiente queratinócitos em hiPSCs usando vetores epissomais 13. Aqui nós fornecemos um protocolo detalhado para a geração de hiPSCs derivado de queratinócitos, incluindo a derivação de queratinócitos a partir de cabelo arrancado, de expansão e de manutenção dos queratinócitos e reprogramação subsequente para gerar hiPSCs.

<table><tbody><tr><td>Mistura de antibióticos:&nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>250 ng/ml Anfotericina B Antimicótica B</td><td>Sigma</td><td>A2942-20ml</td><td>A mistura de antibióticos é composta em PBS.&nbsp;</td></tr><tr><td>1X Penicilina/Estreptomicina</td><td>Invitrogen</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>PBS (-)</td><td>Invitrogen</td><td>14190-144</td><td></td></tr><tr><td>Knockout Serum Replacement (KSR) médio:&nbsp;</td><td></td><td></td><td>O meio KSR é filtrado usando Stericup (Millipore, #SCGPU05RE) antes do uso. O bFGF é adicionado fresco ao meio antes do uso.</td></tr><tr><td>Reposição de soro knockout de 20% (KSR)</td> <td>Invitrogen</td><td>10828-028</td><td></td></tr><tr><td>DMEM/F12 com glutamax</td><td>Invitrogen</td><td>10565-042</td><td></td></tr><tr><td>1&times; Aminoácido não essencial MEM</td><td>Invitrogen</td><td>11140-050</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp; 0,5 vezes; Penicilina/Estreptomicina</td><td>Invitrogen</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp; 0,1 mM de &beta;-mercaptoetanol</td><td>Invitrogen</td><td>21985</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp; bFGF (10 ng/ml, adicionado fresco)</td>Meio de queratinócitos <td>Millipore</td><td>GF003</td><td></td></tr><tr><td>:&nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>&nbsp; EpiLife com 60&nbsp; &micro; M Cálcio</td><td>Invitrogen</td><td>M-EPI-500-CA</td><td></td></tr><tr><td>1&times; Suplemento de crescimento de queratinócitos humanos (HKGS)</td><td>Invitrogen</td><td>S-001-5</td><td></td></tr><tr><td>Fetal Bovine Serum (FBS) medium:&nbsp;</td><td></td><td></td><td>O meio FBS é filtrado usando Stericup (Millipore, #SCGPU05RE) antes do uso.</td></tr><tr><td>10% de soro fetal bovino (FBS)</td> <td>Invitrogen</td><td>26140079</td><td></td></tr><tr><td>DMEM&nbsp;</td><td>Invitrogen</td><td>11995-073</td><td></td></tr><tr><td>0.5x Penicilina/Estreptomicina</td><td>Invitrogen</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>2 mM L-glutamina</td><td>Invitrogen</td><td>25030</td><td></td></tr><tr><td>0.25% tripsina-EDTA</td><td>Invitrogen</td><td>25200-056</td><td></td></tr><tr><td>Matriz Extracelular (ECM):</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Matrigel</td><td>Corning&nbsp;</td><td>354234</td><td>Estoque e loja da Aliquota Matrigel em -80&deg; C seguinte fabricante» s instruções. A concentração de estoque de Matrigel varia ligeiramente de lote para lote (~ 9mg / ml). Recomendamos o uso de 200&micro; l matrigel para revestir uma placa de 12 poços (~150&micro; g/poço).&nbsp;</td></tr><tr><td>Kit de Matriz de Revestimento&nbsp;</td><td>Plasmídeos Invitrogen</td><td>R-011-K</td><td></td></tr><tr><td>:&nbsp;</td><td></td><td></td><td>Observe que o pCXLE-eGFP é usado apenas para monitorar a eficiência da transfecção e não é necessário para reprogramação.</td></tr><tr><td>-&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; pCXLE-eGFP</td><td>Addgene</td><td>27082</td><td></td></tr><tr><td>-&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; pCXLE-hOct3/4-shP53F</td><td>Addgene</td><td>27077</td><td></td></tr><tr><td>-&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; pCXLE-hSK</td><td>Addgene</td><td>27078</td><td></td></tr><tr><td>-&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; pCXLE-hUL</td><td>Addgene</td><td>27080</td><td></td></tr><tr><td>Reagente de transfecção Fugene HD</td><td>Promega</td><td>E231B</td><td></td></tr><tr><td>Gelatina (de pele suína)</td> <td>Sigma</td><td>G1890</td><td>Compõem 0,1% de gelatina em água destilada. Autoclave antes do uso.&nbsp;</td></tr><tr><td>Meio sérico reduzido: OPTI-MEM</td><td>Invitrogen</td><td>31985062</td><td></td></tr><tr><td>Accutase</td><td>Sigma</td><td>A6964-100ml</td><td></td></tr><tr><td>O alimentador</td><td></td><td></td> de fibroblastos embrionários de camundongo (<td>MEF) MEF pode ser inativado pelo tratamento com mitomicina C ou irradiação, conforme descrito anteriormente 16.</td></tr><tr><td>Agulha 26G</td><td>Terumo</td><td>NN2613R</td><td></td></tr><tr><td>placa de 6 poços (tratada para cultura de tecidos)</td><td>BD Biosciences</td><td>353046</td><td></td></tr><tr><td>placa de 12 poços (tratada para cultura de tecidos)</td><td>BD Biosciences</td><td>353043 placa de</td><td></td></tr><tr><td>10 cm (tratada para cultura de tecidos)</td><td>BD Biosciences</td><td>353003</td><td></td></tr><tr><td>Dispase</td><td>Invitrogen</td><td>17105-041</td><td>Use a 10 mg/ml</td></tr><tr><td>Collagenase IV</td><td>Invitrogen</td><td>17104-019</td><td>Use a 1 mg/ml</td></tr><tr><td>de anticorpo TRA-160</td><td>Millipore</td><td>MAB4360</td><td>Use a 5 &micro; g/ml</td></tr><tr><td>OCT4 anticorpo</td><td>Santa Cruz</td><td>SC-5279</td><td>Uso em 5 &micro; g/ml</td></tr><tr><td>anticorpo NANOG</td><td>R& D Systems</td><td>AF1997</td><td>Use em 10 &micro; g/ml</td></tr><tr><td>Kit de detecção MycoAlert</td><td>Lonza</td><td>LT07-418</td><td></td></tr></tbody></table>

geração de integração induced-livre human células estaminais pluripotentes usando o cabelo derivado queratinócitos

Generation of Integration-free Human Induced Pluripotent Stem Cells Using Hair-derived Keratinocytes

Avanços recentes na reprogramação nos permitem transformar células somáticas em células-tronco pluripotentes induzidas por humanos (hiPSCs). A modelagem da doença usando hiPSCs específicas do paciente permite o estudo do mecanismo subjacente à patogênese, fornecendo também uma plataforma para o desenvolvimento de triagem de medicamentos in vitro e terapia gênica para melhorar as opções de tratamento. O potencial promissor dos hiPSCs para a medicina regenerativa também é evidente no número crescente de publicações (>7000) sobre iPSCs nos últimos anos. Vários tipos de células de linhagens distintas têm sido usados com sucesso para a geração de hiPSC, incluindo fibroblastos da pele, células hematopoiéticas e queratinócitos epidérmicos. Embora biópsias de pele e coleta de sangue sejam rotineiramente realizadas em muitos laboratórios como fonte de células somáticas para a geração de hiPSCs, a coleta e subsequente derivação de queratinócitos capilares são menos comumente usadas. Os queratinócitos derivados do cabelo representam uma abordagem não invasiva para obter amostras de células dos pacientes. Aqui descrevemos um método simples e não invasivo para a derivação de queratinócitos de cabelos arrancados. Também fornecemos instruções para manutenção de queratinócitos e subsequente reprogramação para gerar hiPSC livre de integração usando vetores epissómicos.

O cabelo passa por três fases diferentes do ciclo de crescimento: anágena (fase de crescimento), catágena (fase de regressão) e telógena (na fase de repouso) 20,21. O folículo piloso anágena contém várias camadas de epitélio; essas camadas incluem os ORS, IRS e do eixo do cabelo (Figura 1). Cabelos anágenos eventualmente sofre a transição para a fase catágena, que é marcado por apoptose das ORS e rescisão de diferenciação eixo do cabelo. Finalmente, a transição de cabelo catagen à fase telóge...

Este manuscrito fornece um procedimento passo a passo para a derivação e manutenção de queratinócitos humanos a partir de cabelos arrancados e subsequente geração de células-tronco pluripotentes induzidas por humanos livres de integração (hiPSCs) por vetores epissómicos.

Geração de Integração Induced-livre Human células estaminais pluripotentes usando o cabelo derivado queratinócitos

Recent advances in reprogramming allow us to turn somatic cells into human induced pluripotent stem cells (hiPSCs). Disease modeling using ...

O objetivo geral deste procedimento é gerar células-tronco pluripotentes induzidas humanas utilizando queratinócitos derivados de cabelo. Isso é realizado primeiramente isolando cabelos de um doador. O segundo passo consiste em semear os cabelos para facilitar o crescimento externo de queratinócitos.Em seguida, os queratinócitos são mantidos e expandidos in vitro. O passo final consiste em reprogramar os queratinócitos em células-tronco pluripotentes induzidas humanas utilizando um método de reprogramação episomal. Por fim, as células IPS humanas podem ser isoladas e caracterizadas por meio de imunohistoquímica para demonstrar a expressão de marcadores pluripotentes.A vantagem geral deste método em relação aos métodos existentes, como os métodos retrovirais ou lentivirais, é que, ao utilizar fatores episomais, evitamos a inserção indesejável de transgenes no genoma das células-tronco geradas. Comece descongelando um frasco de solução de matriz extracelular no gelo durante a noite. Na manhã seguinte, use ponteiras pré-resfriadas para adicionar 200 microlitros da solução a 12 mililitros de meio DMEM/F12 resfriado.Adicione um mililitro da solução diluída de matriz extracelular a cada poço de uma placa de 12 poços e incube a placa durante a noite a 37 graus Celsius para revestir os poços com a matriz. Em seguida, colete cabelo humano primário da cabeça do doador colocando os dedos próximos à raiz do cabelo e puxando o fio com um movimento rápido e suave.Verifique se cada fio coletado contém um folículo piloso intacto. Coloque o folículo sob um microscópio estereoscópico e determine a fase de crescimento de cada fio. Colete de cinco a dez fios com antígenos de cada indivíduo para extrair a queratina. A fase do antígeno, ao contrário da fase T, contém múltiplas camadas de epitélio. Coloque as amostras de cabelo em uma placa de Petri contendo 10 mililitros de uma mistura de antibióticos durante cinco minutos e, em seguida, lave-as em PBS por cinco minutos à temperatura ambiente. Em seguida, segure o cabelo com pinça estéril e use uma tesoura estéril para cortar o excesso da haste capilar, deixando um fragmento de cabelo com um folículo piloso intacto e cerca de 0,5 a um centímetro de haste capilar.Transfira cuidadosamente um fragmento de cabelo para cada poço da placa revestida com matriz extracelular. Usando a pinça estéril, adicione aproximadamente 100 a 200 microlitros de substituto sérico. Adicione o meio gota a gota em cada poço contendo as amostras de cabelo.Em seguida, coloque a placa no incubador e deixe os folículos aderirem durante a noite a 37 graus Celsius e 5% de dióxido de carbono no dia seguinte. Adicione cuidadosamente mais 100 a 200 microlitros de substituto sérico, meio gota a gota, para manter as amostras de cabelo úmidas. Verifique as amostras de cabelo diariamente para confirmar que os folículos capilares aderiram com sucesso à placa.Uma vez fixado, adicione cuidadosamente mais 500 microlitros de meio ao poço. Troque o meio a cada dois dias. Revesta uma placa de seis poços com colágeno.Utilize um tipo com um pré-tratamento, como um kit de matriz de revestimento, adicionando 680 microlitros do meio de diluição do kit em cada poço, seguido por 6,8 microlitros da solução de matriz de revestimento. Agite suavemente a placa para garantir um revestimento uniforme. Deixe a placa revestida incubando por 30 minutos à temperatura ambiente antes do plaqueamento dos queratinócitos.Remova a solução de revestimento, dissocie os queratinócitos em cultura em uma suspensão de células isoladas adicionando 500 microlitros de tripsina 0,25% por poço e incube as placas por dois a cinco minutos a 37 graus Celsius. Assim que as células se soltarem da placa, inative a tripsina com 500 microlitros de meio contendo soro e colete as células em um tubo estéril de 15 mililitros. Remova o fragmento de cabelo usando pinças esterilizadas, faça um pellet das células e depois ressuspenda.Suspenda-os em meio fresco de crescimento de queratinócitos e plaque 40.000 queratinócitos em um poço de uma placa revestida com colágeno na presença do meio para queratinócitos. Troque o meio diariamente e subcultive as células quando a cultura atingir cerca de 80% de confluência. Revesta uma placa de seis poços com gelatina adicionando dois mililitros de uma solução de 0,1% de gelatina em cada poço e deixe a gelatina recobrir por pelo menos 20 minutos à temperatura ambiente. Enquanto isso, dissocie queratinócitos com passagem seis ou inferior em uma suspensão de células individuais adicionando um mililitro de tripsina 0,25% por poço e incubando as células por dois a cinco minutos.A 37 graus Celsius, inative a tripsina com um mililitro de meio contendo soro e colete as células em um tubo de 15 mililitros. Faça o pellet das células e ressuspenda-as em meio para queratinócitos. Em seguida, plaque de 100.000 a 150.000 queratinócitos por poço em uma placa de seis poços gelatinizada e incube-as durante a noite. No dia seguinte, dia zero, verifique a placa para garantir que as células estejam com confluência de 50 a 60%.Realize uma transfeção dos vetores episomais de reprogramação em queratinócitos utilizando uma proporção de oito microlitros de reagente de transfeção para dois microgramas de DNA plasmidial total, conforme descrito no protocolo textual complementar. No dia seguinte, dia um, troque o meio dos queratinócitos e verifique a eficiência de transfeção estimando a porcentagem de células positivas para a proteína verde fluorescente em um microscópio de fluorescência. Espera-se uma eficiência de transfeção entre 60 e 70% no dia dois.Repita a transfeção para aumentar a eficiência de transfeção para mais de 90%. Em seguida, recubra um prato de 10 centímetros com cinco mililitros de gelatina 0,1% por pelo menos 20 minutos. Plaque 4 milhões de células alimentadoras inativadas mitoticamente por prato de 10 centímetros em meio FBS conforme descrito em Conrad et al. e deixe as células sedimentarem e aderirem durante a noite em um incubador a 37 °C com 5% de dióxido de carbono no terceiro dia. Recolha os queratinócitos transfectados conforme mostrado anteriormente e ressuspenda-os em meio KSR para placa.90% dos queratinócitos de um dos poços em um prato de 10 centímetros preparado com células alimentadoras e cubra-os com KSR. Isole colônias de células-tronco pluripotentes induzidas humanas por dissecação manual a partir do dia 21. Evite colônias que estejam agrupadas próximas umas das outras e selecione apenas colônias claramente separadas das demais.Para a dissecação manual, utilize uma agulha de 26 gauge para cortar as colônias em pequenos fragmentos com cerca de 300 a 600 micrômetros de comprimento sob um microscópio estereoscópico. Transfira os fragmentos de uma colônia para uma nova placa com camada de alimentação de MEF para estabelecer uma linhagem clonal de células-tronco pluripotentes induzidas humanas. Quando a cultura atingir 70 a 80% de confluência, com colônias de células-tronco pluripotentes induzidas humanas com cerca de 1,5 milímetro de diâmetro, realize a passagem das células utilizando métodos enzimáticos padrão de dissociação, como Accutase, tripsina ou colagenase.Quatro, de acordo com as instruções do fabricante. Ao seguir este protocolo, recobrimentos podem ser observados já três dias após a fixação dos pelos e continuarão a proliferar. Os queratinócitos mostrados aqui foram repicados para uma nova placa e essas células podem ser mantidas por múltiplos subcultivos.Esta imagem mostra uma colônia típica de células-tronco pluripotentes induzidas humanas derivadas de queratinócitos. Após 32 dias de reprogramação, alguma diferenciação pode ocorrer no centro da colônia de células-tronco pluripotentes induzidas humanas. Após serem selecionadas manualmente, as células derivadas geralmente exibem uma alta razão entre núcleo e citoplasma e uma borda de colônia bem definida.Eles também expressam uma série de marcadores de pluripotência, como OCT4, Nanog e TRA-1-60. Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como extrair queratinócitos do cabelo e reprogramá-los em células-tronco pluripotentes induzidas humanas.

generation-integration-free-human-induced-pluripotent-stem-cells

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Biologia do Desenvolvimento

Nós demonstramos o protocolo para a geração de células-tronco pluripotentes induzidas a partir de células somáticas humanas usando lentivírus mediada entrega dos fatores humanos Oct4, Sox2, Nanog e Lin28. Pluripotência foi confirmado pela morfologia e pela presença de tronco embrionárias (ES) de células específicas marcadores.

Geração de células-tronco pluripotentes induzidas pela reprogramação fibroblastos humanos com o Lentivirus TF Stemgent Humanos Set

O protocolo a seguir fornece instruções para a adaptação humana tronco pluripotentes induzidas (iPS) células para alimentação livre de cultura usando completa KnockOut Feeder livre de substituição de soro médio (KSR-FF). Uma vez adaptado, instruções para a manutenção contínua também são fornecidos.

Alimentador livre adaptação, Cultura e Passaging de células iPS humanas usando Completa KnockOut Alimentador-Free substituição Serum Médio

Este protocolo descreve o procedimento detalhado para a criopreservação de células iPS humanas no meio de criopreservação KnockOut SR e recuperação destas células em completa KnockOut Feeder SR Free (KSR-FF) médio ou alimentação baseada em médias KnockOut SR.

Criopreservação e recuperação das células humanas iPS usando KnockOut Completa Feeder livre de substituição de soro Médio

Este artigo apresenta um protocolo robusto para isolamento e cultura de células da crista neural-tronco de folículos capilares humanos.

Isolamento e Cultura de células da crista neural-tronco de folículos capilares humanos

Células-tronco pluripotentes induzidas (iPSCs) representam uma fonte de tecidos específicos do paciente para aplicações clínicas e de pesquisa básica. Aqui, apresentamos um protocolo detalhado para reprogramar células humanas mononucleares do sangue periférico (PBMNCs) obtidos a partir de crostas inflamatórias congelados em iPSCs virais-livre usando não-integração plasmídeos epissomais.

Geração de pluripotentes induzidas a partir de células-tronco Congelado Buffy Coats usando não-integração epissomais Plasmids

Este protocolo descreve um método detalhado para a geração eficiente de iPSCs livres de integração a partir de células sanguíneas periféricas adultas humanas. Com o uso de quatro vetores epissómicos baseados em oriP/EBNA para expressar os fatores de reprogramação, KLF4, MYC, BCL-XL ou OCT4 e SOX2, milhares de colônias de iPSC podem ser obtidas a partir de 1 mL de sangue periférico.

Geração de Integração-livres induzidas células-tronco pluripotentes a partir de células mononucleares de sangue periférico humano Usando epissï¿½ica Vectors

A derivação robusta das células do tronco pluripotente humano induzido (hiPS) foi conseguida utilizando a reprogramação mediada por vetores de vírus Sendai não-integrante (SeV) de fibroblastos dérmicos. A manutenção da célula hiPS e a expansão clonal foram realizadas usando condições de cultura sem xeno e quimicamente definidas com matriz de laminina humana recombinante 521 (LN-521) e meio Essential E8 (E8).

Derivação livre de integração de células-tronco pluripotentes induzidas por seres humanos com Laminin 521 Matrix

Propomos um protocolo que mostra como diferenciar pluripotentes induzidas células-tronco derivadas de queratinócitos e fibroblastos e gerar uma pele 3D organoides, usando estes queratinócitos e fibroblastos. Este protocolo contém uma etapa adicional de gerar um modelo de ratos humanizados. A técnica aqui apresentada vai melhorar pesquisa dermatológica.

Geração de organoides pele 3D do cordão hemoderivados induzida por células-tronco pluripotentes

Apresentamos aqui um protocolo para a diferenciação de células-tronco pluripotentes induzidas humanas em cada derivado do somite (Miótomo, sclerotome, dermátomo e syndetome) em condições quimicamente definidas, que tem aplicações em modelagem de doenças futuras e terapias baseadas em células em cirurgia ortopédica.

Na geração de Vitro do Somite derivados de humanos induzida por células tronco pluripotentes

A reprogramação celular requer a introdução de genes-chave, que regulam e mantêm o estado celular pluripotente. O protocolo descrito permite a formação de células-tronco pluripotentes induzidas (iPSCs) colônias de fibroblastos dérmicos humanos sem métodos virais/integradores, mas usando RNAs não modificados (NM-RNAs) combinados com fatores de evasão imunológica reduzindo os mecanismos de defesa celular.

Isolamento de fibroblastos dérmicos humanos adultos da pele abdominal e geração de células-tronco pluripotentes induzidas usando um método não integrador

Este protocolo descreve um método para produzir organoides da pele contendo folículos pilosos a partir de células-tronco pluripotentes induzidas por humanos usando um sistema de cultura de interface ar-líquido planar e fisiologicamente relevante para replicar a arquitetura e a função da pele.

Geração de organoides de pele planar com pêlos derivados de células-tronco pluripotentes induzidas por humanos usando um sistema de cultura de interface ar-líquido

Aprenda a gerar células-tronco pluripotentes induzidas humanas livres de integração a partir de queratinócitos derivados de cabelo usando vetores episomais. Este método evita a integração gênica indesejável.

Geração de Integração Induced-livre Human células estaminais pluripotentes usando o cabelo derivado queratinócitos

Explorar mais vídeos