Name: Thermal Imaging para estudo de estresse não-invasiva em aves Unrestrained (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-11-06T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 7 s
Description: Aprenda a usar termografia infravermelha para avaliar respostas agudas de estresse em aves silvestres não contidas. Este método não invasivo monitora mudanças de temperatura periocular em Cyanistes caeruleus.

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Este trabalho foi apoiado por uma bolsa de projeto BBSRC para DMcK, DMcC e RGN (BB/K002775/1) e uma bolsa de doutorado [para JP, BB/J013854/1]. Reconhecemos com gratidão os conselhos fantásticos sobre equipamentos técnicos e técnicas de campo que recebemos ao longo do projeto de Nozrat Mirzai (Unidade de Bioeletrônica da Universidade de Glasgow), Ross McLeod e Matthew Clavey (ThermalVision Research), bem como da SCENE por todo o apoio logístico ao trabalho de campo. Também gostaríamos de agradecer a Debbie Kelton, da Veracity, por fornecer generosamente o equipamento usado para alimentar a câmera termográfica em campo.

Declaração de Ética: O trabalho envolveu um método de armadilhagem de rotina de vida livre de pequenos pássaros aprovados pela British Trust for Ornithology eo protocolo de captura provocando um estresse leve na ave foi levada a cabo ao abrigo de licenças UK Home Office. 1. Set-up para filmagens <ol><li> Criar uma filmagem set-up onde as aves são incentivados a se posicionar na frente da câmera (Figura 1). O pássaro entra no set-up através de um buraco em uma parede final e tem acesso a comida perto da parede de extremidade oposta. </li><li> A fim de habituar as aves para o set-up, proporcionar uma alimentação adequada (por exemplo, grãos de amendoim) no alimentador de várias semanas antes da gravação. Além de prestação de alimentos, deixe o set-up sem serem incomodados. Durante este período, colocar um tripé manequim em frente do alimentador para permitir que as aves também habituar à câmara. </li><li> No dia da gravação, reduzir o availabilidade de grãos de amendoim no set-up através da remoção de todos os restantes alimentos a partir do alimentador e substituí-lo com comida contida em um recipiente transparente com apenas um pequeno buraco no centro na parte superior através do qual as aves podem acessar a comida. Posicionar este recipiente de alimento no centro da gaiola na extremidade oposta ao orifício de entrada. </li><li> Coloque um pequeno quadrado preto de fita isolante de emissividade conhecida ao do tegumento natural em um dos cantos da malha da caixa para que apareça em todas as imagens. Fixar a fita de isolamento preto para um termopar ligado a um registador de temperatura que regista a temperatura da fita de isolamento preto com uma resolução de 0,1 ° C a cada 1 segundo. </li><li> Coloque a câmara de imagem térmica 50 cm a partir do centro da armadilha de caixa, de modo que toda a caixa se encaixa dentro do campo de visão da câmara, e aves que se alimentam a partir do recipiente claro irá ser posicionada na zona da câmara de foco. Ligue a câmara a um computador portátil, configure a câmera<html> para gravar imagens em, em média, de 7,5 quadros por segundo (com um carimbo de tempo), e enviar imagens para o disco rígido do laptop para ser salvo lá. </li><li> Anexar uma linha de pesca para a porta rotativa do set-up e estendê-lo para uma posição onde o experimentador está escondido da vista dos pássaros, mas o set-up ainda pode ser observado - cerca de 20 m do set-up. </li></ol> 2. As filmagens de Resposta de Pássaro para um Estresse Agudo Mild <ol><li> Uma vez que um pássaro entra na caixa de alimentação, deixe a ave sem ser perturbado na caixa de cerca de 5 segundos. </li><li> Puxe a linha de pesca após o pássaro tinha gasto cerca de 5 segundos na caixa para fechar a caixa de alimentação. Tome cuidado para que a ave ainda está na extremidade da caixa, a fim de minimizar o risco de lesões para o pássaro. </li><li> Abordar imediatamente a caixa de alimentação e ficar imóvel por trás da câmera por cerca de 3 min. Em seguida, recuperar o pássaro da caixa e deixá-lo ir. </li></ol>&quot;&gt; 3. Extração de Eye-região Temperatura de imagens térmicas <ol><li> Extrair temperatura máxima de cada quadro. Nota: A temperatura máxima foi praticamente sempre gravada de dentro da região em torno do olho, delimitada pela pele exposta do anel periophthalmic (Figura 2), e é daqui em diante referida como temperatura de olho-região. <ol><li> Na Termografia Análise Software com o botão direito na imagem, &quot;adicionar&quot; um novo enredo para o máximo de imagem. Em seguida, clique direito sobre o enredo que exporta os dados (temperatura olho-região e do tempo o quadro foi levado) para um arquivo CSV. </li></ol></li><li> Excluir a partir do arquivo CSV todas as linhas de quadros onde o olho-região do pássaro não era visível. </li><li> Traçar temperatura máxima contra o tempo em I 27, aponta identificar manualmente onde picos de temperatura&gt; 0,2 ºC entre duas leituras sucessivas quando a membrana nictitante foi puxado sobre o olho (piscando) e pontos com baixos valores de Outside a gama de temperaturas de corpo para as aves 28 (ou seja, quando olho-região era visível, mas através do movimento borrado para vários quadros) e, em seguida, remover as linhas relevantes do arquivo de dados CSV produzido durante o passo 3.1. </li><li> Medir a temperatura ambiente. <ol><li> Faça o download dos dados (tempo e temperatura logger) do registrador de temperatura em um computador e exportação em uma planilha. </li><li> Para obter a temperatura ambiente a partir da imagem térmica, na imagem térmica Software Análise desenhar um quadrado sobre a fita isolante preta que cobria a sonda de temperatura logger, em seguida, clique direito sobre o quadrado e escolha &quot;Adicionar novo enredo&quot; para a temperatura média do quadrado. </li><li> Em seguida, clique direito que a trama, para exportar os dados (de tempo e temperatura IRT) para um arquivo CSV. Mesclar a série temporal de dois temperatura resultante de logger de temperatura e combinando imagem térmica para o tempo em uma planilha. </li></ol></li><li> Corrigir olho-região temperature contra a temperatura ambiente. Exportar a planilha criada no passo 3.4 para o arquivo CSV de harmonização para o tempo. Para cada temperatura olho-região retido adicionar a diferença entre o registrador de temperatura e os valores de temperatura derivada de imagens térmicas (logger de temperatura - temperatura IRT), medida ao mesmo tempo. </li><li> Realizar automático de filtragem para remover baixos valores menos precisos olho-região de temperatura utilizando o algoritmo de busca de pico (veja Suplementar arquivo de código) para extrair os pontos mais altos (e, portanto, mais precisos) nos dados automaticamente. Nota: O algoritmo de busca de pico reorganiza os dados de temperatura para um vector com uma largura definida pelo utilizador (extensão), extensão recomendada = 3, extraindo o valor central em linhas em que os números de ambos os lados são mais baixos, ou seja, os picos. </li><li> Use interpolação linear para fechar as lacunas deixadas por sequências quando nenhum pico foi extraído, e quando olho-região não era visível. Use o comando na.approx (zoo pacote v1.7-11 em R 27) para dar um valor único de temperatura por segundo para cada indivíduo. </li><li> No ficheiro de dados CVS, adicionar um valor de 0,2 para cada temperatura de olho-região para corrigir o efeito de tomar as imagens através de uma malha. Nota: Os testes mostraram que quando um corpo negro, aquecida para aproximar temperatura corporal média ave de ~ 41 ºC na sua fase ativa 28, foi fotografada através da janela de malha com o mesmo tamanho de malha, usado nas filmagens set-up, as temperaturas registradas por a câmera de imagem térmica em áreas não obscurecidas pelos fios foram de 0,2 ºC inferiores aos valores obtidos sem a malha interveniente (diferença média = -0,2 ºC ± 0,085 SD, n = 30, faixa de temperatura de corpo negro = 41,6-42,5 ºC). Nota: Este é o factor de correcção específico para as condições deste estudo e é susceptível de variar com o instrumento faz, eo tipo ea largura da malha entre o animal ea câmera, e em cada situação precisa ser estabelecido para o spcondições de estudo ecific. </li><li> Das temperaturas olho-região máxima registrada desde antes da caixa foi fechada selecionar o valor mais elevado, que constituirão a temperatura olho-região da linha de base da ave sem ser perturbado. Adicionar esta temperatura olho-região da linha de base como uma nova coluna para o arquivo CVS (baseline). Em seguida, subtrair o valor da linha de base de cada retido valor máximo da temperatura olho-região, gerando uma nova coluna no arquivo de dados CVS. Nota: Este novo valor agora expressar a resposta da ave ao estresse agudo leve como desvio de sua temperatura basal sem serem incomodados. </li><li> Traçar os desvios da temperatura máxima olho-região a partir da temperatura olho-região da linha de base de todos os indivíduos a partir de depois de a armadilha foi fechada usando o comando ggplot (pacote ggplot2 v1.0.0 em R 27). Gerar bootstrap intervalos de confiança de 95% usando o mean_cl_boot opção (pacote ggplot2 v1.0.0 em R 27). Para mais detalhes consulte o arquivo Código Suplementar. </li&gt; </ol>

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Os autores declaram que não têm interesses financeiros concorrentes.

O objetivo deste artigo é descrever a metodologia necessária para medir as mudanças na temperatura da pele de um animal de vida livre em resposta a um estressor agudo. Este estudo demonstrou que variações bruscas de temperatura da pele associadas a uma resposta de estresse agudo em aves selvagens podem ser capturados de forma não invasiva usando IRT. Este procedimento envolveu cinco etapas importantes (1) Projeto de campo apropriado set-up usando um sistema de imagens térmicas altamente portátil, (2) a medição da temperatura basal, (3) a aplicação de um fator de estresse leve envolvendo capturar o pássaro no set-up, (4) post hoc de amostragem de temperatura olho-região e (5) a calibração de dados de temperatura extraídos automatizado. A metodologia aqui descrita foi aplicada à captura de tetas azul selvagem. Temperaturas olho-região de linha de base representativos podem ser capturados em tão pouco quanto 5 seg. O tempo estimado necessário para gravar um pássaro no campo foi de cerca de 1 hora, com mais uma hora necessária para processar a3 min sequência de vídeo térmica. Coletando bons dados sobre a temperatura de um animal pele requer imagens térmicas de alta qualidade. Câmeras de imagem térmica só diferem fundamentalmente das câmeras de luz visível em termos de comprimento de onda da radiação eletromagnética que eles detectam e, assim, muitos dos conceitos que se aplicam em fotografia (por exemplo, campo de visão, profundidade de campo) também se aplicam em termografia. Tal como comumente praticada por fotógrafos de vida selvagem, qualquer local que um animal Visitas previsivelmente, onde naturais (por exemplo, locais de nidificação) ou artificiais (por exemplo, alimentadores), poderia ser utilizado para a recolha de imagens térmicas. Atrair animais para a câmera ao invés de tentar segui-los embora seu habitat tem a vantagem de nos permitir configurar a câmera com antecedência, para coletar imagem de alta qualidade com o mínimo de perturbação, logo que o animal vem na vista. No entanto, com esta abordagem, é vital para examinar ou conta para os efeitos doNesse contexto específico de medição sobre o estresse ou a temperatura da pele. Por exemplo, aqui, as aves foram medidos em um contexto de alimentação, e comida foi usada para atrair ativamente mamas azuis para o set-up. Pesquisa sobre galinhas sugere que experiências positivas agudas, como a antecipação e consumo de uma recompensa alimentar em um ensaio de aprendizagem associativa pode temperatura olho também inferior 29. Como tal, &quot;níveis basais&quot; de indivíduos que entram este conjunto particular up pode ser influenciada pela associação desse ato com a recompensa. Esta possibilidade justifica investigação adicional, embora, se presente, é de esperar que aumentar a gota a partir dos níveis de base já observada. Além disso, a termogénese ocorre com a digestão dos alimentos, embora não se espera que os efeitos específicos de alimentos consumida durante a medição da linha de base para elevar significativamente a temperatura dentro do período de 3 min 30 aprisionamento. Esta limitação considerado, medindo todos os animais comno mesmo contexto também é uma grande força desta abordagem. Os resultados representativos mostraram que houve uma grande variação na temperatura olho-região entre particulares perante o estressor agudo foi aplicado (baseline temperatura olho-região). A variação da temperatura da linha de base do olho (coeficiente de variação = 3,9%) pode ser em parte devido a um erro de medição ou um reflexo verdadeiro do diferenças entre-indivíduo. O período da câmara IRT registada a temperatura da fita de isolamento preto ao longo de 5 segundos quando a temperatura da fita não se alterou, o coeficiente de variação médio era de 0,26% (intervalo de 0,08% a 0,59%). Apesar de erro de medição é provável que seja maior numa ave movê-lo, no entanto, indicam que a maior parte desta variação de temperatura olho-região de linha de base é, de facto entre indivíduos. A noção de relativamente pequeno erro de medição sobre as aves que se deslocam é ainda apoiada pela alta repetibilidade de temperatura olho-região mais de 20 segundos durante as medições da linha de base ( <strong&gt; Figura 3). Ao controlar de contexto, podemos garantir que todas as aves estavam envolvidos na mesma atividade. Nós também podemos minimizar contribuições ambientais no momento da medição para entre-se variações na temperatura da pele, por exemplo, garantindo que a localidade é protegido da radiação incidente de confusão que, por imagem térmica, levam a uma sobrestimação da temperatura da superfície do animal . Isto pode ser feito com o trabalho na sombra ou por máscaras colocadas estrategicamente, incluindo plásticos mais transparentes que bloqueiam comprimentos de onda infra-vermelho. O protocolo aqui apresentado mostra uma configuração simples que poderia ser facilmente aplicada à situação de invernada mamas azuis. A tit azul foi filmado enquanto em uma caixa de alimentação com um telhado sólido que evitar a exposição à luz solar directa. Esta configuração também pode ser aplicado a muitos outros passeriformes que regularmente vêm para alimentadores artificiais em certas épocas do ano. Como melharucos azuis são comparativamente pequenos animais, elesprecisam ser filmado close-up para capturar um bom nível de detalhe. Tal como acontece com câmeras fotográficas, ficando perto do assunto - tanto em termos de distância real, e ampliação - reduz drasticamente a profundidade de campo. Para que as aves tão grande quanto possível no campo de visão requerido a partir de filmar los distância mínima de focagem da câmara, que neste caso foi de 500 mm e profundidade de campo reduzida a 40 mm. Portanto, todos os recursos das filmagens set-up devem ser concebidos para incentivar os animais para mostrar a sua cabeça dentro da zona relativamente estreita de foco da câmera particular usado. Em resposta a um estressor aguda leve bem estabelecida a um animal que esperávamos rápidas mudanças no padrão de fluxo sanguíneo, a partir da periferia para o centro via vasoconstrição simpaticamente mediada que reduz a temperatura da pele 17. A região periorbital foi escolhido como este fornecida a única região do corpo que foi não isolada e é associados com uma rica rede entrelaçar de pequenos vasos sanguíneos, o ophthalmicum rete que pode afetar a perda de calor a partir do olho 31. A taxa de quadros rápido da técnica videoing térmica era capaz de mostrar uma queda na temperatura do olho-região de aproximadamente 2 ° C em 10 segundos, seguido por um subsequente aumento da temperatura a menos de 0,5 ° C de linha de base dentro de 3 min. Embora arrefecimento periférico em resposta ao stress moderado foi gravado anteriormente em cerca de 1 min intervalos 17,26, 32, a técnica aqui mostrou que a queda máxima de temperatura podem ser extremamente rápido. Com resolução de tempo inferior a magnitude desse efeito pode ser desperdiçada. Isto pode ser importante quando se compara as diferenças na resposta ao stress de diferentes indivíduos. A re-aquecimento da ave depois da &quot;luta ou fuga&quot; resposta rápida não retornou ao nível de base como a ave permaneceu dentro da caixa que indica que a ave permaneceu fisiologicamente estressado. As aves foram libertaçãod do experimental set-up após um ponto de corte escolhido arbitrariamente de cerca de 3 min para minimizar o período de retenção de um animal de vida livre. No entanto, no futuro, os ensaios podem ter de ser superior para gravar a resposta completa temperatura até que a temperatura do olho-região do animal regressou ao nível da linha de base, se logisticamente possível. Este novo protocolo que envolve uma série de imagens coletadas antes e após o estressor foi aplicado agora permite estudo detalhado da dinâmica da resposta ao estresse agudo, e as comparações de múltiplos pontos temporais entre animais individuais. Repetindo este julgamento dentro de indivíduos com mais diferentes épocas do ano ou condições ambientais podem permitir que os efeitos do ambiente sobre a linha de base ou temperatura pós-aguda da pele estresse a ser desembaraçada, como um possível caminho para avaliação do estresse crônico também. . A temperatura da pele de um pássaro é dependente não só sobre a produção eo calor metabólicoo fluxo de sangue, mas também na troca de calor da radiação solar, velocidade do vento e molhando 25. Isso impede piso molhado e ventoso de gravações termográficas precisos. A temperatura olho-região gravado por uma câmera de imagem térmica pode, às vezes, quer ser subestimada (erro negativo) ou superestimado (erro positivo). Erro positivo substancial exigiria entrada de energia, mas isso foi evitado pelo pássaro na caixa de alimentação que está sendo protegido do sol. Uma outra fonte de erro positivo incluídos quando o pássaro piscou. Ocasionalmente, a ave puxa brevemente sua membrana nictitante sobre o olho-região e, uma vez que é armazenada internamente a uma temperatura mais próxima da do corpo do núcleo, piscando dá uma leitura anormalmente alta temperatura quando se cobre o globo ocular. Isto é, no entanto, facilmente detectada, uma vez que deixa uma assinatura muito marcado e o quadro afectado pode ser removido. A principal razão para um erro negativo em nossos registros foi borrão de movimento. Qualquer movimento rápido demais para ser capturado sharply pela taxa de quadros da câmera confunde os dados capturados a partir do pequeno olho-região quente da imagem com a da área (motion blur) legal circundante, resultando em uma subestimação da temperatura olho-região. Assim, após a remoção de erros positivos isso faz com que a temperatura máxima medida de olho-região a medição mais precisa e uma filtragem automática utilizando o comando picos função remove as menos prováveis ​​valores mais baixos de temperaturas máximas olho-região. Além disso, como a radiação infravermelha é absorvida pelo vapor de água, a temperatura da superfície gravada será influenciado pela humidade relativa do meio ambiente. Isso pode ser explicado pela introdução da temperatura do ar, umidade relativa e distância para o objeto em análise de imagem térmica software de análise. No entanto, uma abordagem mais precisa e eficiente (como aqui realizada) é a de incluir um corpo de referência de temperatura conhecida e emissividade dentro do campo de visão. No nosso caso, este foium quadrado preto de fita isolante com uma emissividade de 0,97, que é aproximadamente equivalente ao do tegumento naturais 33. Isto permite calibrar a temperatura olho-região usando a diferença entre os valores reais e térmicos de temperatura derivada de imagiologia medidos para a fita de isolamento. A temperatura da superfície do corpo negro pode então ser usado para calibrar as imagens continuamente durante todo o período de medição. Graças aos avanços tecnológicos no desenvolvimento das câmeras térmicas podem agora ser implementados como pequenas câmeras leves, capazes de coletar muitos quadros por segundo durante longos períodos de tempo. Apesar de imagem térmica é uma técnica amplamente utilizada na pesquisa aviária 25, o tamanho ea despesa de sistemas de imagens térmicas têm restringido seu uso em estado selvagem. Neste estudo, o sistema foi altamente portátil, custa aproximadamente. £ 6.000 e vídeo térmica fornecida alta resolução capaz de forma não invasiva a captura te precisasdados mperatura de animais de vida livre, sem a necessidade de lidar com aves. Gravação em múltiplos quadros por segundo permite medições de alta resolução séries temporais de temperatura periférica e, portanto, oferece a possibilidade de explorar a dinâmica da resposta ao estresse agudo. Isto é difícil de conseguir com a amostra de glicocorticóide convencional, que é limitada pelo número de amostras que podem ser tomadas dentro de um período de tempo. Aqui nós ter extraído uma série temporal de temperatura olho-região com um intervalo de 1 segundo, o que foi suficiente para demonstrar a resposta da temperatura olho-região a um estressor agudo (captura), mas de alta resolução temporal, também seria possível. A acumulação de um grande número de imagens, no entanto, requer um certo nível de automatização na extracção de informação a partir das imagens. O protocolo descreve um processo semi-automatizado simples para extrair a temperatura máxima a partir de cada imagem. Fomos capazes de fazer isso como a região de interesse, o olho-region, sempre foi o local mais quente na imagem. Análise poderia ser mais problemático se regiões de interesse são mais complexas e podem exigir projetado software de reconhecimento de padrões (por exemplo, 34). Neste estudo alguma filtragem manual foi necessário para situações em que a temperatura olho-região estava acima ou abaixo do estimado, mas estes foram facilmente detectados, mas é claro que ainda automação é desejável. As medições de refrigeração periférica induzida pelo estresse por imagem térmica oferece uma adição valiosa para outras medidas fisiológicas de estresse e o aspecto não-invasiva desta técnica é altamente vantajoso para futuros estudos envolvendo animais em cativeiro e selvagens. Capturando a resposta completa stress, a termografia infravermelha claramente tem um grande potencial como uma ferramenta para avaliação do estresse. Para tornar-se uma alternativa não-invasiva para hormonal estabelecida e ensaios de temperatura do núcleo, porém, será necessário cross-validate entre estas medidas edeterminar se a temperatura da pele mostra a mesma proporcionalidade com intensidade estressor, ou seja, a extensão da resposta à temperatura da pele pode reflectir a força do estressor. Pesquisas futuras devem também abordar se a temperatura da pele capta estresse crônico. Enquanto SIH em resposta a um estressor agudo deverá ser transitória, a exposição recorrente a estressores agudos físicas ou psicológicas podem gerar elevação crônica da temperatura corporal 35,36. Se vasoconstrição contínua contribui para esta elevação do núcleo não foi testado explicitamente. No entanto, estudos correlatos sobre os seres humanos que sofrem de doenças relacionadas com o estresse crônico mostram reduzidas temperaturas de dedo 37. Um atributo final para explorar é valência: a capacidade de distinguir positivo de eventos negativos. Análises hormonais não pode distinguir valência 5, com níveis de glucocorticóides que aparecem para refletir o nível de excitação ao invés de estresse especificamente. Pesquisa sobre pente temperamentoature em galinhas domésticas expostas a estímulos aversivos e positivas sugerem a temperatura da pele pode ser semelhante semelhante a excitação geral 22,29. No entanto, nos seres humanos, diferentes estados emocionais provocam mudanças regional específico, temperatura da pele, por exemplo, o aquecimento e arrefecimento periorbital bochecha quando assustado 38, mas no geral a diminuição da temperatura da pele quando rindo 39. As comparações entre diferentes regiões pode ainda revelar o estado emocional. Usando as recomendações estabelecidas neste artigo, será possível abordar todas estas perguntas, e validar a temperatura da pele como um marcador não-invasivo de stress.

O stress é um conceito central na biologia, descrevendo a resposta de emergência de um organismo em resposta a um desafio ambiental tentativa de restaurar a homeostase 1,2. Sob estresse, glicemia, ácidos graxos e os teores de aminoácidos, frequência cardíaca, frequência respiratória e taxa metabólica tudo aumento, e sangue é desviado da periferia para os órgãos centrais 2. Este padrão genérico de alterações fisiológicas prepara o animal a ser capaz de responder rapidamente e de forma adaptativa a uma série de problemas sociais e fisiológicas. Embora reconhecendo e compreendendo o estresse está no coração de ambos investigação pura e aplicada animal, avaliar o estresse em animais desenfreado permanece um desafio. Um marcador amplamente utilizado fisiológica do stress é o aumento nos níveis de hormonas glucocorticóides, como o cortisol e corticosterona 1,2 circulante. A grande vantagem desta abordagem é que as suas concentrações aumentam in proporção de estressores intensidade, permitindo que o estresse de ser quantificado. No entanto, os glicocorticóides não são hormônios &#39;stress&#39; em si, mas mobilizadores de lojas de energia 2. Como tal, os níveis de glucocorticóides também mudar com os requisitos de energia, hora do dia, da idade e estado reprodutivo 3,4, bem como na resposta a situações aparentemente positivos, tais como oportunidade de acoplamento 5. Níveis de glucocorticóides, portanto, devem ser interpretados com cautela e dentro de um contexto. Medição da resposta glucocorticóide ao estresse agudo também tem algumas limitações. Um estressor aguda desencadeia uma resposta dinâmica dos níveis de glucocorticóides inicialmente crescente e, subsequentemente, voltar a um nível de linha de base de 1,2. Amostras de glucocorticóides são normalmente obtidas de forma invasiva, por meio de amostragem de sangue, que é um estressor em si mesmo e, portanto, pode afetar os níveis de glicocorticóides medidos 6. Além disso os níveis de glucocorticóides só pode ser medido em um ou muito pouco tempo points, que pode não capturar variação nos níveis de pico e tempo de resposta ou duração, limitando nossa capacidade de analisar a mudança através do tempo da resposta ao estresse dinâmico dentro dos indivíduos. Métodos não-invasivos de amostragem hormonal, como a partir de fezes 7, pêlos ou penas 8, medir os níveis de glicocorticóides médios durante uma escala de tempo mais longo, de dias ou meses, embora útil para estudar estressores crônicos, não são aplicáveis ​​ao estudo de estresse agudo . Como até mesmo os melhores métodos estabelecidos oferecem apenas uma perspectiva limitada sobre a variação em estresse agudo entre os indivíduos, há uma necessidade de uma metodologia alternativa em medições de estresse fisiológico. Como a resposta ao stress envolve uma série de efeitos fisiológicos, há outros candidatos que poderiam indicar o stress. Entre outros, simpaticamente vasoconstrição mediada por canais de sangue a partir da periferia para o centro do corpo. Esta concentração de sangue e, portanto, calor, juntamente com várias formass de termogênese induzida pelo estresse, aquece o núcleo 9. Como tal, o aquecimento central, denominado hipertermia induzida por stress (SIH) também tem sido utilizada como um marcador de stress agudo em Pharmaceutical Research 10. SIH tipicamente eleva a temperatura corporal por 0,5-1,5 ° C no prazo de 10-15 min de um estressor agudo 10. É um fenômeno relativamente bem documentado que um estressor experimental comumente aplicado de captura e manipulação de um animal pode elevar a temperatura corporal central em uma variedade de mamíferos e aves 11 - 17. É importante ressaltar que SIH correlaciona-se com outros indicadores estabelecidos de estresse, tais como freqüência cardíaca 18, os níveis de glicocorticóides 19 e comportamento 20,21. E, assim como os níveis de glucocorticóides, temperatura central foi linearmente relacionado com o nível de estresse em algumas espécies 22. No entanto, como com a amostragem de sangue, a medição da temperatura do núcleo é invasiva, em si, o que requer a inserçãoR implantação de uma sonda de 10. Temperatura do núcleo basal aumenta gradualmente cada vez que a manipulação ou sonda de inserção de indução de estresse deve ser repetido 23. Recentes desenvolvimentos no equipamento de gravação de temperatura que permitem acessar dados remotamente pode fornecer uma solução, pelo menos para animais de grande porte 24. Dentro do mesmo mecanismo que gera SIH, no entanto, encontra-se ainda um outro marcador de potencial o stress: a vasoconstrição periférica, que se move no sangue, e com ele o calor, para o núcleo arrefece simultaneamente a pele 17. Ao contrário de temperatura de núcleo, temperatura da pele pode ser medida totalmente não-invasiva, por termografia infravermelha (IRT). IRT converte a radiação infravermelha emitida a partir da superfície de um objecto para a temperatura de 25. Como a superfície de um animal normalmente tem alguns remendos a partir do qual a temperatura da pele podem ser derivadas diretamente, ele requer acesso a pele naturalmente exposto (por exemplo, área em torno de tele olho) ou a criação de um patch nua por aparar pêlos ou penas. De acesso fornecido a uma área exposta adequada da pele e o animal pode ser guardado no campo de visão da câmara, câmaras de IRT pode ser usado para recolher as medições de temperatura da pele contínuas remotamente, possivelmente permitindo que a resposta completa temperatura a ser filmado e comparadas entre indivíduos . Embora já tenha sido demonstrado em galinhas que a superfície temperatura responde à grave estresse 26, a novidade deste estudo é que ele mede a temperatura do corpo de superfície de animais selvagens em uma resolução mais fina temporais do que estudos anteriores e também mostra que a queda de temperatura da pele esperado pode ser detectada no campo onde a temperatura, umidade e tempo são variáveis. O objetivo deste artigo é descrever a metodologia necessária para medir a temperatura da pele de um animal sem restrições usando imagens térmicas. Nós usamos captura para induzir um estresse agudo leve em vida livre mamas azul (caeruleus de Cyanistes, Linnaeus 1758 </em&gt;) e descrevem como capturar imagens adequado, analisar as imagens e processar os dados para produzir curvas de resposta de temperatura em função do tempo demonstram que um arrefecimento significativo da temperatura da pele das aves em resposta ao estressor leve. Isso pode proporcionar um método alternativo valioso para avaliar o estresse em animais selvagens e em cativeiro úteis para uma ampla gama de pesquisadores de ecologistas, biólogos da conservação e fisiologistas para pesquisadores de bem-estar animal. O estudo foi realizado no período entre 17 de Dezembro de 2013 e 4 de Janeiro de 2014, em um carvalho decíduo (Quercus spp.) Floresta no Centro Escocês de Ecologia e Meio Ambiente Natural (CENA), da Universidade de Glasgow na costa oriental de Loch Lomond, centro-oeste da Escócia (56.13 ° N, 4,13 ° W). O protocolo envolve três etapas principais: (1) Criação de condições adequadas sob as quais a captura de imagens térmicas de um animal livre-variando, (2) applying de um estressor agudo, tendo um vídeo térmico, e (3) a extracção e processamento de dados a partir das imagens térmicas que podem então ser utilizados para caracterizar a resposta do animal ao estressor aguda. No nosso caso, atraiu a-viver livre passerine, o tit azul a uma caixa de alimentação (filmando set-up), onde foram otimizadas as condições de captura de imagem térmica, e depois aplicado um esforço de captura fechando a caixa de alimentação remotamente quando o pássaro estava dentro . A descrição de captura de imagem térmica e de extracção de dados é específico para o equipamento foi utilizado, e pode variar entre sistemas de imagens térmicas. O processamento de dados é descrito usando um software open-source.

<table><tbody><tr><td>Câmera de Imagem Térmica</td><td>FLIR</td><td>A65 (f=25 mm)</td><td>Compacta (106 x 40 x 43 mm) e de baixo custo</td></tr><tr><td>Software de Análise de Imagem Térmica</td><td>FLIR</td><td>ResearchIR v3.4</td><td>Permite gravação de vídeo térmico de alta velocidade e análise de padrão térmico</td></tr><tr><td>Registrador de temperatura Registradores</td> de <td>dados Gemini</td><td>Tinytag Talk 2 TK-4023-PK</td><td>Monitores de -40 a +125 &#176; C usando a sonda de temperatura que acompanha</td></tr></tbody></table>

thermal imaging para estudo de estresse não-invasiva em aves unrestrained

Thermal Imaging to Study Stress Non-invasively in Unrestrained Birds

Estresse, um conceito central na biologia, descreve um conjunto de respostas de emergência para os desafios. Entre outras respostas, estresse leva a uma alteração no fluxo sanguíneo que resulte num fluxo líquido de sangue para os órgãos principais e um aumento na temperatura central. Este hipertermia induzida pelo stress é utilizado para avaliar o stress. No entanto, a medição da temperatura do núcleo é invasivo. Como o fluxo de sangue é redireccionada para o núcleo, a periferia do corpo pode arrefecer. Este documento descreve um protocolo onde a temperatura corporal periférica é medida de forma não invasiva em mamas azuis selvagens (Cyanistes caeruleus), utilizando a termografia infravermelha. No campo, criamos um set-up trazer os pássaros para uma posição ideal na frente da câmera usando uma caixa de iscas. A câmera tira uma gravação de vídeo térmico curto da ave sem ser perturbado antes de aplicar um fator de estresse leve (fechar a caixa e, portanto, capturar o pássaro), e da resposta do pássaro a ser preso é gravado. A pele nua de olho-região é azona mais quente na imagem. Isto permite uma extração automática da temperatura máxima do olho-região de cada quadro de imagem, seguido por outras medidas de filtragem de dados manual removendo as fontes mais comuns de erros (borrão de movimento, piscando). Este protocolo prevê uma série temporal de temperatura olho-região com uma resolução temporal fina que nos permite estudar a dinâmica da resposta ao estresse de forma não invasiva. Mais trabalho precisa de demonstrar a utilidade do método para avaliar o stress, por exemplo, para investigar se a resposta de temperatura do olho-região é proporcional à força do estressor. Se isso pode ser confirmado, ele irá fornecer um método alternativo valiosa de avaliação do estresse em animais e será útil para uma vasta gama de pesquisadores de ecologistas, biólogos da conservação, fisiologistas para pesquisadores de bem-estar animal.

Os resultados de 9 tetas azul de vida livre são apresentados que ilustram a informação que pode ser obtida a partir de imagens térmicas e demonstram que o sinal predito de stress na temperatura olho-região da ave pode ser detectada em animais livres na natureza. Cada ave foi filmado por uma média de 5,1 ± 0,9 seg (n = 9) antes que a caixa &#39;porta estava fechada. Isto permitiu o cálculo da temperatura olho-região da ave sem ser perturbado (temperatura basal) para que todas as medidas subseqüentes podem ser referidos. Em testes realizados em 20 seg videoclipes térmica de mamas azuis não perturbadas que chegam e alimentação dentro de uma armadilha (n = 9 aves diferentes das utilizadas para a aplicação de um fator de estresse leve), correlações de r&gt; 0,7 foram encontrados a existir entre o máximo temperatura olho-região gravado durante os primeiros 5 segundos, ea máxima registrada no primeiro 10, 15 e 20 segundos (Figura 3). Isso foi interpretado como indicando que o va máximalue registrados nos poucos segundos iniciais após a entrada armadilha era representativa do nível de longo prazo, ea temperatura média olho-região durante aproximadamente 5 segundos imediatamente anterior encerramento caixa foram utilizados como valor de referência. As mamas azuis nesta amostra tinha uma temperatura olho-região basal médio de 38,4 ± 0,5 ° C (média ± SE) e variou 35,8-39,9 ° C (n = 9). Uma vez que a ave alimentados durante 5 segundos para permitir o cálculo da temperatura olho-região de linha de base, a caixa de porta foi fechada pelo experimentador. Todas as aves notado o fechamento do caixa como evidenciado por seus vôos tentativa de fuga. Após o fecho da armadilha, a temperatura do olho-região caiu rapidamente e chegou a uma temperatura mínima de olho-região ~ 1,3 ° C abaixo da temperatura da linha de base após 10 seg ~ (Figura 4). A Figura 4 mostra a curva composta com base no máximo ocular temperatura região de todos os nove indivíduos médios para cada segundo. Como ocalendário ea magnitude da queda de temperatura olho-região varia entre os indivíduos das máscaras curva composta a verdadeira extensão da resposta de temperatura. A queda de temperatura média calculada para cada indivíduo é separado de 2,0 ± 0,2 ° C e o ponto mais baixo é alcançada após 9,4 ± 2,8 segundos (média ± EP). A partir de então, a temperatura olho-região voltou gradualmente aos temperatura olho-região da linha de base sobre a seguinte 2-3 min, mas não chegou a atingir a linha de base até o final do julgamento. <img alt="figura 1" src="/files/ftp_upload/53184/53184fig1.jpg" /> Figura 1. A arena filmagens. O set-up no campo foi concebida para atrair as aves para o campo de visão da câmara, onde um estressor aguda ligeira podia ser aplicado, utilizando uma caixa de alimentação. O set-up consistiu de um 25 por 14 cm e 16,5 cm de altura construído a partir da caixa de madeira compensada, com um painel frontal da tela de arame galvanizado com uma abertura size de 1 por 2,5 centímetros. A malha permite que a radiação infravermelha para passar, fazendo o possível para filmar aves, enquanto dentro do set-up. Malha de arame foi escolhido, como o vidro ea maioria dos plásticos não transmitem radiação infravermelha. Um buraco de 60 mm de diâmetro foi cortado na parede extremidade esquerda para permitir pássaro entrar no set-up e ter acesso à comida colocado na extremidade direita da caixa. A sonda de temperatura logger imprensado entre dois quadrados de fita isolante preta (marcado pela seta preta) está ligado ao canto superior direito do painel frontal para gravar uma temperatura de referência. O estressor aguda leve é ​​aplicado para a ave no interior, fechando a caixa. Puxando uma linha de pesca ligado a uma porta rotativa no orifício de entrada do experimentador permitidos para fechar a caixa, quando uma ave está dentro. A câmara de imagem térmica ajustada na frente da armadilha registra toda a seqüência de eventos. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53184/53184fig1large.jpg" target="_blank">Por favor clique aqui para ver uma versão maior o</a>esta figura f. <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/53184/53184fig2.jpg" /> Figura 2. Imagem térmica de um melharuco azul. A maioria do corpo de um passeriforme é bem isolado por penas (ou, em menor medida por escalas de perna), mas a pele ao redor dos olhos é exposto e irradia mais calor em circunstâncias normais, e é cercado por tegumento refrigerador ou o fundo. Isso é mostrado nesta imagem térmica pela cor amarela (temperatura mais elevada) em torno do olho, a laranja, vermelho, roxo e azul significar temperaturas mais frias e mais frias. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53184/53184fig2large.jpg" target="_blank">Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a> <img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/53184/53184fig3.jpg" /> Figura 3. As estimativas de temperatura de linha de base medidos óver diferentes períodos de tempo. Os coeficientes de correlação entre a temperatura máxima registrada na primeira 1-8 sec de um clipe eo &#39;média dos máximos&#39; dentro de 0,5º do maior valor registrado para o primeiro 10, 15 e 20 segundos do clipe (representado por linhas vermelhas, azuis e verdes, respectivamente). Todos os grampos foram 20 s de duração (n = 9). Durante a análise inicial usando um conjunto de dados maior, uma série de dos meios de os máximos &quot;foram calculados a partir de apenas um valor, e deu o mesmo valor para rho em todas as comparações. Estes clipes foram retirados da análise, deixando apenas aqueles em que as médias foram calculadas a partir de mais de 3 medições. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53184/53184fig3large.jpg" target="_blank">Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a> <img alt="Figura 4" src="/files/ftp_upload/53184/53184fig4.jpg" /> Figura 4. Respostada temperatura olho-região para trapping. Há um sinal muito claro e pronunciado da armadilhagem reflete na mudança de temperatura, olho-região ao longo do tempo. Para comparação entre os indivíduos que variam em sua temperatura inicial, a temperatura do olho-região residual, como a diferença da temperatura real e de temperatura de linha de base do indivíduo, é representada no eixo vertical. Esta é traçada em função do tempo com o fecho da armadilha definido como 0 e a ave removido da armadilha após 3 min. A linha vermelha mostra a temperatura média residual ea faixa cinzenta representa o intervalo de confiança de 95%. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53184/53184fig4large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>

Existe uma necessidade para uma avaliação não-invasiva do stress. Este documento descreve um protocolo simples usando imagens térmicas para detectar uma resposta significativa na temperatura olho-região em mamas azuis selvagens a um estressor agudo leve.

Thermal Imaging para estudo de estresse não-invasiva em aves Unrestrained

Stress, a central concept in biology, describes a suite of emergency responses to challenges. Among other responses, stress leads to a change in blood ...

O objetivo geral do seguinte método é avaliar se um animal livre responde a um estressor agudo imediato utilizando imagem térmica, sem a necessidade de manipular o animal. Isso é conseguido atraindo-se um pássaro selvagem para a frente de uma câmera térmica. Como segundo passo, o pássaro entra voluntariamente em um comedouro em forma de caixa, onde a temperatura de referência da pele ao redor do olho do pássaro é registrada por meio de um vídeo térmico.Em seguida, o alimentador de caixa é fechado atrás da ave que atua como agente estressor, e a temperatura da pele ao redor do olho da ave é registrada novamente. Por fim, as alterações na temperatura da pele entre a linha de base e o fechamento do alimentador de caixa podem ser comparadas para determinar se o animal apresenta uma resposta ao estresse provocado pelo agente externo. As principais vantagens dessa técnica em relação aos métodos existentes, como a medição de hormônios do estresse, são que ela é não invasiva, pode ser realizada em animais não contidos e pode inclusive demonstrar a dinâmica da resposta fisiológica ao estresse.Este método pode ajudar a responder perguntas fundamentais nas áreas de ecologia, conservação, biologia e bem-estar animal, como por exemplo se os animais experimentam estresse. Comece criando uma montagem para filmagem na qual as aves sejam estimuladas a se posicionar diante da câmera. A ave entra na montagem por um orifício em uma das paredes laterais e tem acesso a alimento próximo à parede oposta.Para habituar as aves à montagem, forneça um alimento adequado ao comedouro durante várias semanas antes da gravação. Durante este período, posicione um tripé de teste na frente do comedouro para permitir que as aves se acostumem também com a câmera. No dia da gravação, encha um recipiente transparente, que tenha um pequeno orifício no centro da parte superior, com o mesmo alimento que estava no comedouro.Em seguida, coloque o recipiente no alimentador e fixe a sonda de temperatura com um pequeno quadrado de fita isolante preta de emissividade conhecida em um dos cantos da caixa, de modo que ela apareça em todas as imagens registradas. Depois, conecte um termopar ligado a um registrador de temperatura para gravar a temperatura da fita preta com resolução de 0,1 grau Celsius a cada segundo ao laptop. Em seguida, posicione a câmera de imagem térmica a 50 centímetros do centro da caixa de alimentação e conecte a câmera ao laptop.Configure a câmera para gravar as imagens com uma média de 7,5 quadros por segundo com carimbo de data/hora e para salvar as imagens no disco rígido do computador. Em seguida, prenda um fio de pesca à porta giratória do equipamento e posicione o equipamento a cerca de 20 metros de distância, onde o experimentador ficará escondido da vista das aves, mas com o equipamento ainda visível. Assim que uma ave entrar na caixa de alimentação, deixe o animal em paz na caixa por aproximadamente cinco segundos.Em seguida, puxe o fio de pesca para fechar a caixa de alimentação, tomando cuidado para que a ave ainda esteja na extremidade oposta da caixa, minimizando assim o risco de lesão à ave assim que a caixa de alimentação for fechada. Aproxime-se da montagem e permaneça imóvel atrás da câmera por aproximadamente três minutos. Depois, retire a ave da caixa e solte-a.Para extrair a temperatura máxima da região ocular de cada quadro, abra o software de análise de imagem térmica e clique duas vezes no vídeo de interesse. Em seguida, adicione um novo gráfico para o valor máximo da imagem e clique com o botão direito no gráfico para exportar a temperatura da região I e o tempo do quadro para um arquivo CSV. Exclua todas as linhas dos quadros em que a região I do pássaro não estava visível no arquivo CSV.Repita para os pontos com valores baixos fora da faixa normal de temperatura corporal do pássaro. Esses dados permitirão a identificação manual de picos de temperatura superiores a 0,2 graus Celsius entre duas leituras sucessivas durante as quais a membrana nictitante foi puxada sobre o olho. Para medir a temperatura ambiente.Baixe os dados de tempo e temperatura do registrador de temperatura e exporte-os para uma planilha. Em seguida, no software de análise de imagem térmica, desenhe um quadrado sobre a fita isolante preta que cobre a sonda do registrador de temperatura. Clique com o botão direito do mouse sobre o quadrado e selecione Adicionar novo gráfico para obter a temperatura média do quadrado. Clique com o botão direito do mouse no gráfico para exportar os dados como um arquivo CSV.Carregue os três arquivos CSV. Temperatura máxima da região I do vídeo térmico, temperatura do isolamento preto e da fita do vídeo térmico e temperatura do ar do registrador de temperatura para o R. Em seguida, combine os três arquivos. Calcule a diferença entre a temperatura da fita de cancelamento preta do vídeo térmico e a temperatura do ar do registrador de temperatura.Em seguida, faça a correção nos dados de temperatura ocular não calibrados, gerando uma temperatura máxima da região ocular calibrada para cada quadro. Depois, adicione um valor de 0,2 a cada temperatura da região ocular para corrigir o efeito da aquisição das imagens através de uma malha. Em seguida, utilizando o algoritmo de busca de pico, extraia os pontos mais altos e mais precisos dos dados, realizando automaticamente uma filtragem automatizada para remover quaisquer valores de temperatura da região ocular menos precisos e baixos.Padronize o momento da resposta da temperatura ocular entre indivíduos subtraindo a duração do período de linha de base em segundos, tornando zero segundos o ponto em que a armadilha fechou. Em seguida, padronize a duração de cada série temporal individual a partir das temperaturas máximas registradas na região ocular antes de o compartimento ser fechado. Selecione o valor mais alto, que constituirá a temperatura de linha de base da região ocular do pássaro não perturbado.Em seguida, padronize os dados de temperatura entre os indivíduos subtraindo a temperatura basal, ou seja, a temperatura mais alta medida durante o período anterior ao fechamento da porta da armadilha, das temperaturas absolutas, utilizando interpolação linear. Feche as lacunas deixadas pelas sequências em que nenhum pico foi extraído e em que a região dos olhos não estava visível, resultando em um único valor de temperatura por segundo para cada indivíduo. Por fim, utilize os comandos R existentes para plotar os desvios na temperatura máxima da região dos olhos em relação à temperatura basal da região dos olhos de todos os indivíduos após o fechamento da armadilha, juntamente com os intervalos de confiança bootstrapped de 95%.A pele exposta ao redor do olho de um enes apresenta uma cor amarela na imagem térmica, indicando a temperatura mais alta da região corporal. As cores laranja, vermelha, roxa e azul observadas no restante da área corporal indicam graus progressivos de temperaturas mais baixas em testes realizados com 22º clipes de vídeo térmico de bisos-azuis livres e não perturbados chegando e se alimentando na montagem do comedouro; como acabou de ser demonstrado, foram encontradas correlações de R maiores que 0,7 entre a temperatura máxima da região ocular registrada durante os primeiros cinco segundos. Neste experimento, após o fechamento do comedouro, a temperatura da região ocular diminuiu nos primeiros 10 segundos, atingindo uma temperatura mínima na região I de aproximadamente 1,3 graus Celsius abaixo da temperatura basal.A queda média de temperatura calculada para cada indivíduo separadamente foi de 2,0 mais ou menos 0,2 graus Celsius, atingindo o ponto mais baixo após 9,4 mais ou menos 2,8 segundos. Ao longo dos próximos dois a três minutos, a região ocular e a temperatura aumentaram gradualmente de volta em direção à região ocular basal e à temperatura basal, sem terem alcançado o valor basal ao final do ensaio. Ao tentar realizar este procedimento, é importante lembrar-se disso.Só pode ser usado para determinar se o animal está sob estresse ou não. Será necessário realizar mais estudos para avaliar se este método também pode medir o nível de estresse do animal. Nosso método pode demonstrar a resposta ao estresse agudo, ou seja, a estresses imediatos; os trabalhos futuros do nosso laboratório irão focar na resposta a estresses persistentes e crônicos.

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neurociência

Uma técnica cirúrgica para implante de transmissores de telemetria disponíveis comercialmente utilizado para a medição contínua de biopotencial (um ECG), freqüência cardíaca, temperatura corporal e atividade locomotora em ratos movimentando-se livremente é mostrado. Recomendações e protocolos para cuidados pós-operatórios e alívio da dor, melhorar a recuperação, bem estar e taxa de sobrevivência também são apresentados.

Implantação de Transmissores de radiotelemetria Cedendo Dados sobre ECG, freqüência cardíaca, temperatura corporal e atividade em camundongos de laboratório de movimento livre

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Neste relatório em vídeo, mostramos a aplicação da Cerenkov Luminescence Imaging (CLI) para tecido adiposo marrom interescapular em camundongos sob condições ativadas e deprimidas.

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Não restrição EEG Radiotelemetria: Epidural e Deep intracerebral estereotáxica EEG Colocação de eletrodos

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