Name: Medindo Anexo e Internalização do Vírus da Influenza A em células A549 por citometria de fluxo (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-11-04T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 25 s
Description: Aprenda a medir anexo e internalização do vírus da influenza A em células A549 por citometria de fluxo. Este protocolo utiliza ligação a frio e mudança de temperatura para quantificar interações virais.

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Este trabalho foi apoiado por uma bolsa da Fundação Swiss National Science (31003A_135278) à SST. MOP é o beneficiário de uma subvenção de doutorado do Fundo de Investigação AXA. Agradecemos Patricia Nigg para obter ajuda com o desenho da Figura 1.

Nota antes do início: Capa de Uso de fluxo laminar e biocontainment apropriado quando se trabalha com vírus vivo. Aqui, descrevemos as condições de crescimento adequadas para estirpe do vírus influenza cultura A / WSN / 33. Multiplicidade de infecção (MOI) de incubação e tempos podem variar dependendo da estirpe do vírus utilizado. 1. Preparação de biotinilada / WSN / 33 <ol><li> Semente de células para um balão T175 cm 2 utilizando Meio Eagle Modificado de Dulbecco (DMEM) suplementado com 10% FBS e 1% de penicilina-estreptomicina (Pen / Strep) Madin-Darby kindey canino (MDCK). As células de cultura a 37 ° C até cerca de 70% de confluência é atingido. </li><li> Antes de infecção, remover o meio e lava-se as células com solução salina tamponada com fosfato (PBS, pH7.0-7.3) pela adição de um grande volume suficiente para cobrir a monocamada de células. </li><li> Remover PBS e infectar as células com A / WSN / 33 com uma MOI de 10 -4. Dilui-se o vírus em PBS suplementado com 0,02 mg de Mg 2+, Ca 2+ de 0,01 mg &lt;/ sup&gt;, 0,3% de albumina de soro bovino (BSA), e 1% de Pen / Strep (infecção-PBS). Usar um inoculo de 4 ml para um balão T175 cm 2. </li><li> Incubar as células 1 h a 37 ° C. Remover por aspiração e inoculo de pipeta 10 ml de DMEM suplementado com 0,3% de BSA, 20 mM de HEPES, e 1% de Pen / Strep para o balão. </li><li> Incubar as células a 37 ° C durante cerca de 3 dias até o efeito citopático (ECP) é visível, e depois da colheita sobrenadante. CPE pode ser reconhecido como arredondamento das células, seguido por descolamento e morte das células 14. </li><li> Rotação sobrenadante a 450 xg durante 5 min para remover os detritos celulares. Transfira o sobrenadante para um novo tubo falcon e repita este passo mais uma vez. Descartar as pelotas. </li><li> Sobrenadantes de transferência para tubos de ultracentrífuga e sobrenadantes underlay com 5 ml de sacarose a 30% diluído em tampão NTE (Tris 10 mM [pH 7,4], NaCl 100 mM, EDTA 1 mM). Equilibrar os tubos antes de ultracentrifugação e encher-se com PBS para atingir um volume final de 30 ml. Spin supernates em 112.398 xg (correspondente a 25.000 rpm durante um rotor SW28) durante 90 minutos em uma ultracentrífuga. </li><li> Remova cuidadosamente o sobrenadante por pipetagem e mergulhar pellet vírus durante a noite a 4 ° C em 250 mL PBS. Ressuspender pellet pipetando cima e para baixo. Medir o teor de proteína do vírus purificado pelo ensaio de Bradford 15. </li><li> Usar um kit de biotinilação para gerar biotinilado A / WSN / 33. Siga as instruções do fabricante. </li><li> Em breve, adicionar a quantidade apropriada de biotina para o vírus purificado e incubar durante 2 horas em gelo. Transferir vírus para um tubo de ultracentrífuga e o tubo de enchimento se com PBS para atingir um volume final de 30 ml. Gire vírus a 112.389 xg durante 90 min em uma ultracentrífuga. Remover o sobrenadante por pipetagem e adicionar 250 ul de PBS. Soak pelete durante a noite a 4 ° C. Alíquotas e armazenar o vírus biotinilado armazenado a -80 ° C altura em que será estável durante pelo menos 24 meses. NOTA: Pode ser útil para determinar o título do biotinilado preparação de IAV por ensaio de placa padrão. No entanto, deve notar-se que o protocolo subsequente só irá medir partículas de vírus biotinilados. Restante partículas não biotiniladas devido à biotinilação incompleta irá contribuir para o título infeccioso por ensaio de placas, mas não para o sinal medido no ensaio de fixação / internalização. </li></ol> 2. Determinar a quantidade necessária de Biotinilado Virus NOTA: Antes do ensaio de fixação / internalização é realizada, é importante para determinar a quantidade de vírus necessária para infectar biotinilado todas as células de uma amostra. <ol><li> Cultura e células A549 Trypsinize de acordo com as instruções do fabricante. Contar as células utilizando uma câmara de células. Pipeta células 200.000 A549 em FACS Deepwell tubos. Spin 3 min a 450 x g. Remover o sobrenadante e ressuspender o sedimento com 200 ul de PBS. Células arrefecer em gelo durante 10 min. </li><li> Prepare a 5 diluições em série do biotiestoque de vírus nylated em PBS-infecção. </li><li> Rotação tubos contendo as células a 4 ° C durante 3 min a 450 x g. Remover o sobrenadante e ressuspender pellet com 100 ul contendo vírus infecção-PBS. Como o uso de controle de infecção simulada-PBS sem vírus biotinilado. Incubar os tubos em gelo durante 1 hr. </li><li> Tubos de centrifugação a 4 ° C durante 3 min a 450 x g. Remover o sobrenadante e ressuspender o sedimento em 200 ul de PBS. Repita este passo mais uma vez. </li><li> Para a fixação, tubos de centrifugação a 4 ° C durante 3 min a 450 x g. Remover o sobrenadante e ressuspender o sedimento em 100 ul de 3,7% de paraformaldeído (PFA). Incubar durante 10 min à TA. Em seguida, repita o passo de lavagem descrito em 2.4). </li><li> Para permeabilização, tubos de centrifugação a 4 ° C durante 3 min a 450 x g. Remover o sobrenadante e ressuspender o sedimento em 100 ul de PBS contendo 0,5% de Triton X-100. Incubar durante 6 min à temperatura ambiente. Em seguida, repita o passo de lavagem descrito em 2.4). </li><li> Tubos de centrifugação a 4 ° C durante 3 min a 450 x g. Remover o sobrenadante e ressuspender pellet em 50 ul 2% BSA diluído em PBS contendo STV-Cy3. (Por favor, note que a concentração adequada de STV-Cy3 deve ser determinado antes do início do experimento Comece com uma concentração de 1:. 200 e teste de diluições de 2 vezes até 1:. 2400 Em nossas mãos, uma diluição de 1: 1000 provou para ser óptima.) </li><li> Incubar 1 hora no escuro à temperatura ambiente. Então, passo de lavagem de repetição descrito em 2.4, mas ressuspender o sedimento em 200 ul de BSA a 2% diluído em PBS. </li><li> Analisar amostras por citometria de fluxo 16. Porta na população Cy3 positivo. Escolha a concentração mais baixa de vírus biotinilado resultante do número máximo de células positivas Cy3 na população A549. </li></ol> 3. Determinar a quantidade necessária de Streptavidin NOTA: A eficiência de bloqueio o sinal obtido a partir do vírus extracelular determina o alcance de detecção do ensaio. Portanto, é importante para revogar o sinal STV-Cy3, tanto quanto possível. ºe quantidade necessária de STV necessário depende da quantidade de estoque de vírus biotinilado utilizado (determinado no ponto 2). <ol><li> Siga os passos 2,1-2,4, mas usar concentração de vírus determinado no ponto 2. </li><li> Preparar diluições em série de cinco vezes de STV diluídos em PBS contendo BSA a 2% e azida de sódio a 0,1%. </li><li> Tubos de centrifugação a 4 ° C durante 3 min a 450 x g. Remover o sobrenadante e ressuspender sedimento em 50 ul de diluição STV. Como o uso de controle simulado PBS contendo 2% de BSA e azida de sódio a 0,1%, sem STV. Incubar os tubos durante 30 min em gelo. Em seguida, repita o passo de lavagem descrito em 2.4. </li><li> Siga os passos 2,5-2,9. Para o ensaio de internalização, escolher a concentração mais baixa de STV resultando numa forte bloco do sinal de Cy3 (em comparação com a amostra na qual não estava presente STV). Para isso, a percentagem de células positivas com Cy3 ou a intensidade de fluorescência média do sinal de Cy3 pode ser usado. Idealmente, o sinal de Cy3 de amostras tratadas-STV deve ser o mais próximo do sinal de falsamente infectadascélulas possível. </li></ol> 4. Fixação / Interiorização Assay NOTA: Certifique-se de preparar todos os reagentes antes de iniciar o ensaio. Para os três grupos de controlo apresentados na seção de resultados (células infectadas simulados, células pré-tratadas neuraminidase e células azida de sódio tratados) pequenas alterações ao protocolo são obrigatórios. <ol><li> Preparar tubos de 16 poços profundos, cada um contendo 200.000 células A549. Ao lado do conjunto experimental que consiste em 4 tubos, há 3 condições de controle, cada um exigindo 4 tubos: células falsamente infectadas, neuraminidase (NA) -pretreated células e células tratadas com azida de sódio. Cada grupo é composto por 4 tubos rotulados como &#39;0 min&#39;, &#39;0 min + STV&#39;, &#39;30 minutos &#39;, &#39;30 min + STV&#39;. </li><li> Tubos de centrifugação a 4 ° C durante 3 min a 450 x g. Remover o sobrenadante e ressuspender o sedimento em 200 ul de PBS. </li><li> Tubos de centrifugação a 4 ° C a 450 x g. Remover o sobrenadante e ressuspender pellet em 200 ul de DMEM contendo 0,3% de BSA, HEPES 20 mM e 1% de penicilina-estreptomicina (meio de incubação). Incubar durante 30 min a 37 ° C. NOTA: Para o controlo de neuraminidase: Utilização neuraminidase bacteriana (por exemplo sialidase a partir de Vibrio cholera) a uma concentração de 200 mU / ml diluído em meio de incubação para ressuspender as células. </li><li> Tubos de centrifugação a 4 ° C durante 3 min a 450 x g. Remover o sobrenadante e ressuspender o sedimento em 200 ul de PBS. Repetir este passo mais uma vez, em seguida, os tubos frescos para baixo sobre o gelo durante 10 min. </li><li> Tubos de centrifugação a 4 ° C durante 3 min a 450 x g. Remover o sobrenadante e ressuspender pellet em 100 ul biotinilados vírus (use a concentração de vírus determinado no ponto 2 diluída em infecção-PBS). Incubar 1 hora em gelo. Em seguida, repita o passo de lavagem descrito em 2.4. NOTA: Para o mock-infectados controle: Use infecção-PBS sem vírus. Para o controlo de azida de sódio: A utilização de vírus diluída em PBS-infecção suplementado com azida de sódio a 0,1%. </li><li> Prócessamento das amostras após a infecção em gelo: <ol><li> Para as amostras &#39;0&#39; mínimo, siga o passo 2.5 e armazenar amostras a 4 ° C até que as outras amostras são fixos. </li><li> Para a &#39;0 min + STV »amostras, tubos de centrifugação a 4 ° C durante 3 min a 450 x g. Remover o sobrenadante e ressuspender o pellet em 50 ul STV (utilizar a concentração determinada no ponto 3) diluídos em PBS contendo BSA a 2% e azida de sódio a 0,1% (para evitar a internalização durante o manuseamento da amostra). Incubar 30 minutos em gelo. Siga o passo 2,4-2,5 e armazenar amostras a 4 ° C. </li><li> Para as amostras &#39;30 min &#39;, tubos de centrifugação a 4 ° C durante 3 min a 450 x g. Remover o sobrenadante e ressuspender o sedimento em 200 ul de PBS contendo BSA a 2%. Incubar 30 min a 37 ° C. Siga o passo 2,4-2,5 e armazenar amostras a 4 ° C. NOTA: Para o controle de azida de sódio: Utilização PBS suplementado com BSA a 2% e azida de sódio a 0,1% para os 30 min de incubação a 37 ° C. </li><li> Para o &#39;30 min + amostras STV &#39;girar tubos a 4 ° C durante 3 min a 450 x g. Remover o sobrenadante e ressuspender o sedimento em 200 ul de PBS contendo BSA a 2%. Incubar 30 min a 37 ° C. Em seguida, os tubos de centrifugação a 4 ° C durante 3 min a 450 x g. Remover o sobrenadante e ressuspender o pellet em 50 ul STV (utilizar a concentração determinada no ponto 3) diluídos em PBS contendo BSA a 2% e azida de sódio a 0,1% (para evitar a internalização durante o manuseamento da amostra). Incubar 30 minutos em gelo. Siga o passo 2,4-2,5 e armazenar amostras a 4 ° C. NOTA: Para o controle de azida de sódio: Utilização PBS suplementado com BSA a 2% e azida de sódio a 0,1% para os 30 min de incubação a 37 ° C. </li></ol></li><li> Siga os passos 2,6-2,8 e analisar amostras por citometria de fluxo. Determinar a percentagem de células positivas Cy3 em cada amostra. </li><li> Calcula-se a percentagem em anexo vírus e a quantidade relativa de vírus internalizado. <ol><li> Para calcular a quantidade de vírus anexado, use a percentagem de Cy3-positive células fechadas ou a intensidade de fluorescência média do sinal de Cy3. Para efeitos de comparação, não tratadas para definir células de 100% (Figura 4B). NOTA: O percentual do vírus ligado é descrita pela amostra &quot;0 minutos&quot;. </li><li> Para calcular a quantidade de vírus internalizado, levar a razão entre a &quot;30 min + STV&quot; amostra ao &quot;30 minutos&quot; de amostra (Figura 5B). NOTA: Como mencionado acima, a percentagem de células positivas fechado Cy3 ou a intensidade de fluorescência média do sinal de Cy3 pode ser usado. </li></ol></li></ol>

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</ol>

Os autores não têm nada a divulgar.

Nosso protocolo descreve uma maneira fácil de medir fixação e interiorização do vírus por citometria de fluxo. Ele permite a utilização de vírus do tipo selvagem marcado que imita de perto mais infecções por vírus em comparação com a utilização de partículas do tipo vírus (VLP). Enquanto nosso protocolo foi optimizado para medir a fixação e internalização de IAV que pode ser facilmente adaptada para outros vírus. Além disso, como a citometria de fluxo é utilizada para leitura, co-colorações pode ser facilmente adicionad...

A entrada do vírus influenza A (IAV) é um processo multi-etapas que começa com a ligação do vírus a receptores na membrana plasmática das células alvo 1. O receptor para IAV é ácido siálico que está presente em uma grande variedade de glicoproteínas e glicolípidos. A hemaglutinina (HA) de IAV proteína que está presente no envelope viral se liga ao ácido siálico e assim medeia a ligação das partículas virais na membrana plasmática das células alvo 2. O vírus entra nas células através de endocitose mediada por clatrina, mas também as vias de entrada alternativos, tais como macropinocitose, foram descritos 3-6. A interacção entre o HA e o ácido siálico parece ser suficiente para mediar os dois, a ligação e internalização de disparo de partículas virais 7. No entanto, os receptores de entrada alternativos foram propostos e seus papéis na entrada IAV estão sendo investigados 1,8,9. Curatualmente, são feitos esforços para identificar os fatores do hospedeiro que estão envolvidos no ciclo de vida viral com o objectivo de desenvolver terapias antivirais novos urgentemente necessários 10-12. A entrada do vírus seria um passo favorável para o direcionamento de crescimento IAV, a fim de bloquear a infecção viral em seu ponto mínimo. Medindo diferentes fases de entrada é um desafio IAV experimentalmente como geralmente grandes quantidades de vírus são necessárias para detectar o vírus de entrada. Além disso, a gama de detecção de mudanças na entrada do vírus é única linear devido à falta de replicação viral. Isso ressalta a necessidade de ensaios com alta sensibilidade. O ensaio apresentamos aqui permite a detecção de vírus ligados à superfície da célula, bem como a detecção de vírus internalizado em relação à quantidade total de vírus associados a células. A utilização de vírus de tipo selvagem biotinilado permite a medição conveniente através de coloração com a STV-Cy3 e leitura por citometria de fluxo. Vírus Biotinilado é frio-limite para celulars para permitir a ligação, mas impedir a internalização de partículas virais. As células podem ser fixadas, permeabilizadas e coradas com STV-Cy3 para medir vírus anexado. O sinal de viriões extracelulares, podem ser ligados revogada se um passo de bloqueamento é aplicada antes da fixação, em que as células são incubadas com estreptavidina não marcado (STV). Numa etapa seguinte, a seguir à fixação dos IAV biotinilado, a temperatura é deslocada para 37 ° C e internalização de partículas virais é permitido tomar lugar. Partículas internalizadas são protegidos de se ligar de STV permitindo assim a discriminação entre os vírus extra e intracelulares. Por condição experimental, são necessários quatro amostras: &#39;0 min&#39;: A primeira amostra, denominada &quot;0 min &#39;, é medir vírus do resfriado-bound na superfície da célula. &#39;+ 0 min STV&#39;: A segunda amostra, rotulado &#39;0 min + STV&#39;, dá a intensidade do sinal da linha de base do experimento. Vírus anexado é bloqueado sagacidadeh STV e o sinal após coloração com STV-Cy3 deve ser muito menor em comparação com a amostra &quot;0 minutos&quot;. Min &#39;30 &#39;: A terceira amostra, &#39;30 min&#39; contém em anexo e internalizado do vírus devido à mudança de temperatura para 37 ° C durante 30 min. &#39;30 Min + STV &#39;: A quarta amostra, &#39;30 min + STV&#39; medidas a fração intracelular do vírus. O passo de bloqueamento STV é aplicado após o período de incubação de 30 min. Como resultado, as partículas virais na superfície celular estão ligados por STV deixando somente vírus internalizados disponível para coloração com STV-Cy3. A quantidade relativa de vírus internalizado pode ser calculado como a razão entre vírus internalizado (medido na &#39;30 min + STV &#39;amostra) dividida pela quantidade total de vírus (descrito pela min &#39;30&#39; amostra). Como controlos sugerimos que incluem células não infectadas. O sinal seguinte STV-Cy3 coloração de células falsamente infectadas dá ao fundoresultante do protocolo de coloração. Um controlo para IAV fixação é o pré-tratamento das células com neuraminidase bacteriana (NA). NA cliva off ácido siálico de glicoproteínas celulares, removendo-se assim os receptores de ligação da superfície da célula. A azida de sódio (SA) é um potente inibidor metabólico e, desse modo bloqueia a endocitose 13. As células tratadas com azida de sódio deve ser positiva para a ligação do vírus, mas negativo para a internalização.

<table><tbody><tr><td>DMEM</td><td>Life Technologies</td><td>41966-052</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>Life Technologies</td><td>10270-106</td><td></td></tr><tr><td>Penicilina-Estreptomicina</td><td>Life Technologies</td><td>15140-163</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Life Technologies</td><td>14190-169&nbsp; &nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>BSA</td><td>VWR Calbiochem</td><td>126579</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Life Technologies</td><td>15630-100</td><td></td></tr><tr><td>D-Sacarose</td><td>Fluka</td><td>84100</td><td></td></tr><tr><td>TRIS</td><td>Biosolve BV</td><td>20092391</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>3680</td><td></td></tr><tr><td>EZ-LINK NHS-SS-BIOTIN kit</td><td>Fisher Scientific</td><td><a href="https://extranet.fisher.co.uk/insight2_ch/getProduct.do?productCode=W9971E">W9971E&nbsp; </a></td><td></td></tr><tr><td>Bio Rad Protein Bio Assay</td><td>Bio Rad</td><td>500-0006</td><td></td></tr><tr><td>tubos de poço profundo (microtubos de 1,2 ml)</td><td>Milian</td><td>82 00 001</td><td></td></tr><tr><td>PFA</td><td>&nbsp; Lucerna chem&nbsp; Ciências de microscopia eletrônica</td><td>15710</td><td></td></tr><tr><td>tubos de ultracentrífuga</td><td>Hemotec HmbH</td><td>253070</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Fluka</td><td>93420</td><td></td></tr><tr><td>STV-Cy3</td><td>Life Technologies</td><td>43-4315</td><td></td></tr><tr><td>STV</td><td>Life Technologies</td><td>43-4302</td><td></td></tr><tr><td>azida sódica</td><td>Fluka</td><td>71290</td><td></td></tr><tr><td>neuraminidase bacteriana / sialidase</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>N6514-1UN</td><td></td></tr></tbody></table>

medindo anexo e internalização do vírus da influenza a em células a549 por citometria de fluxo

Measuring Attachment and Internalization of Influenza A Virus in A549 Cells by Flow Cytometry

A ligação às células-alvo seguida de internalização são os primeiros passos do ciclo de vida do vírus influenza A (IAV). Fornecemos aqui um protocolo detalhado para medir as mudanças relativas na quantidade de partículas virais que se ligam às células A549, uma linha de células epiteliais do pulmão humano, bem como na quantidade de partículas que são internalizadas na célula. Usamos vírus biotinilados que podem ser facilmente detectados após a coloração com estreptavidina marcada com Cy3 (STV-Cy3). Descrevemos o crescimento, purificação e biotinilação de A/WSN/33, uma cepa de laboratório IAV amplamente utilizada. As partículas de IAV biotiniladas ligadas a frio nas células A549 são coradas com STV-Cy3 e medidas usando citometria de fluxo. Para investigar a absorção de partículas virais, o vírus ligado ao frio pode se internalizar a 37 ° C. Para diferenciar entre partículas virais externas e internalizadas, uma etapa de bloqueio é aplicada: pontos de ligação livres na biotina do vírus ligado na superfície celular são ligados por estreptavidina não marcada (STV). A permeabilização celular subsequente e a coloração com STV-Cy3 permitem a detecção de partículas virais internalizadas. Apresentamos um cálculo para determinar a quantidade relativa de vírus internalizado. Este ensaio é adequado para medir os efeitos de tratamentos medicamentosos ou outras manipulações na ligação ou internalização do IAV.

Um desenho que descreve as quatro condições experimentais diferentes é mostrada na Figura 1 Os resultados de uma experiência representativa são apresentados nas Figuras 2 -. 5. Na amostra &quot;0 minutos&quot;, vírus biotinilado é ligado a frio para células alvo que podem ser visualizadas através de coloração STV-Cy3 (Figuras 1 e 2). Quando um passo de bloqueio (no &quot;0 min + STV&quot; amostra) é apl...

Apresentamos um protocolo que descreve um método semiquantitativo para medir tanto a ligação do vírus influenza A às células A549, quanto a internalização de partículas virais nas células-alvo por citometria de fluxo.

Medindo Anexo e Internalização do Vírus da Influenza A em células A549 por citometria de fluxo

Attachment to target cells followed by internalization are the very first steps of the life cycle of influenza A virus (IAV). We provide here a detailed ...

O objetivo geral deste procedimento é medir a adesão e a internalização de partículas virais de influenza A em células epiteliais pulmonares A549. Isso é realizado inicialmente por meio da ligação a frio do vírus influenza A às células A549, o que permite a adesão, mas impede a captação das partículas virais.Em seguida, permite-se a internalização do vírus elevando a temperatura para 37 graus Celsius. Então, realiza-se uma etapa de bloqueio na qual o strp Aden não marcado se liga à superfície celular. Os vírus ligados são identificados para diferenciar partículas virais aderidas das internalizadas.Por fim, o vírus biotinilado associado à célula é incubado com estreptavidina marcada com CY três e a citometria de fluxo é utilizada para detectar os vírus corados. Em última análise, calcula-se a quantidade relativa de vírus aderidos e internalizados. Embora este método possa fornecer informações sobre a quantidade relativa de influenza, um vírus que se liga e internaliza em células 5 0 9.Também pode ser aplicado a outros sistemas utilizando linhagens celulares diferentes ou outros vírus. Após gerar o vírus biotinilado e determinar as quantidades necessárias do vírus marcado, estreptavidina e SI três estreptavidina marcada de acordo com o protocolo descrito no texto, prepare quatro tubos de poço profundo, cada um contendo 200.000 células A549. Rotule os tubos como zero minuto, zero minuto mais STV, 30 minutos e 30 minutos mais STV. Em seguida, centrifugue os tubos.Remova o sobrenadante e use 200 microlitros de PBS para ressuspender os pellets. Em seguida, após centrifugar os tubos novamente, use 200 microlitros de um meio de crescimento padrão 5 49 para ressuspender as células, incube a 37 graus Celsius por 30 minutos. Após a incubação, centrifugue as amostras e ressuspender os pellets em 200 microlitros de PBS. Após repetir a lavagem mais uma vez, resfrie os tubos em gelo por 10 minutos. Quando os tubos estiverem resfriados, centrifugue novamente e use 100 microlitros de vírus biotinilado diluído em PBS de infecção para ressuspender os pellets. Após incubação em gelo por uma hora, repita a centrifugação e lave com PBS duas vezes, processando as amostras seguintes em paralelo tanto quanto possível para as amostras de tempo zero.Após centrifugar, utilize 100 microlitros de paraformaldeído a 3,7% ou PFA para ressuspender o pellet celular. Incube à temperatura ambiente por 10 minutos antes de centrifugar e usar PBS para lavar as células duas vezes após a fixação. Armazene a quatro graus Celsius até que todas as amostras tenham sido processadas.Para tratar as amostras do tempo zero mais STV, centrifugue os tubos, remova o sobrenadante e use 15 microlitros de STV com 2% de BSA e 0,1% de azida sódica em PBS para ressuspender o pellet celular. Incube em gelo por 30 minutos. Em seguida, centrifugue e lave as células duas vezes com PBS após a fixação com PFA, conforme demonstrado anteriormente. Armazene as amostras a quatro graus Celsius para as amostras de 30 minutos. Após centrifugação e remoção do sobrenadante, use PBS com 2% de BSA para dissolver as amostras.Incubar a 37 graus Celsius por 30 minutos antes de lavar com PBS e fixar com PFA. Em seguida, armazenar as amostras a quatro graus Celsius por 30 minutos mais as amostras STV. Após a centrifugação, suspendemos as amostras em 200 microlitros de PBS 2%BSA, seguindo uma incubação a 37 graus Celsius por 30 minutos.Centrifugue e ressuspenda as células em 50 microlitros de STV com 2% de BSA e 0,1% de azida sódica em PBS, incube no gelo por 30 minutos antes de lavar e fixar. Em seguida, após a permeabilização e coloração de todas as amostras com STV SI três, seguindo os detalhes no protocolo descrito no texto, armazene as amostras a quatro graus Celsius. Por fim, analise as amostras por citometria de fluxo.Determine a porcentagem de células positivas para CY três em cada amostra. Calcule a porcentagem de vírus aderido e a quantidade relativa de vírus internalizado. De acordo com o protocolo descrito no texto, conforme mostrado aqui na amostra de zero minutos, o vírus aderido está ligado a frio às células-alvo, como visualizado pela coloração com St.V.SI três.Quando o STV é aplicado como etapa de bloqueio, o vírus na superfície celular não pode mais ser detectado pela coloração com S St.V.SI, reduzindo fortemente o sinal. Quando a temperatura é elevada a 37 graus Celsius, o vírus aderido é internalizado pelas células. O vírus internalizado não é sensível ao bloqueio com STV não marcado, resultando em uma queda menos acentuada na intensidade do sinal nas amostras de 30 minutos com adição de STV mostradas.Aqui estão as porcentagens de células positivas para SI três em todas as condições experimentais descritas neste vídeo. As células mock infectadas fornecem a intensidade do sinal de fundo para o experimento e atuam como controle negativo para a ligação do vírus. Outro controle, a neuraminidase, ab-rogou fortemente a ligação do IAV em 90% em comparação com as células não tratadas.O azida sódica, que esgota ATP, inibindo assim a endocitose, inibiu a internalização de partículas virais tanto durante quanto após a infecção, como mostrado aqui após o tratamento com azida sódica; células incubadas por 30 minutos a 37 graus Celsius exibiram uma queda acentuada na internalização em comparação com células não tratadas incubadas nas mesmas condições. Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como medir a fixação e a internalização do vírus da influenza em células MDCK. Este protocolo permite uma leitura conveniente por citometria de fluxo e pode ser facilmente adaptado a outros contextos experimentais.

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Imunologia e Infecção

Método para Medição da Cinética de Fusão Viral no Nível única partícula

Este método descreve o uso de sistema de imagem de Infravermelhos corante baseada em para a detecção de A H1N1 no bronchioalveolar o lavado de fluido (BAL) de camundongos infectados em uma alta sensibilidade. Esta metodologia pode ser realizado em um 96 - ou 384-bem prato, requer &lt;volume de 10 uL de material de teste e tem o potencial para a triagem concomitante de agentes patogénicos múltiplos.

Alta capacidade método de detecção de vírus Influenza

Nós descrevemos o isolamento rápido de murinos primários células tipo II alveolares epiteliais (AECII) por meio de seleção por citometria de fluxo negativo. Estes AECII mostram viabilidade e pureza elevados e são adequadas para uma ampla gama de estudos funcionais e moleculares relativas ao seu papel em condições respiratórias, tais como doenças auto-imunes ou infecciosas.

Isolamento de citometria de fluxo de células primárias Murino Tipo II epiteliais alveolares de Estudos funcionais e Molecular

Source: Klaus, J. P., et al Highly Sensitive Assay for Measurement of Arenavirus-cell Attachment. J. Vis. Exp. (2016).This video demonstrates how to measure arenavirus attachment to monkey kidney cells. The assay uses low temperatures to block endocytosis and isolate the virus binding step. The approach enables precise quantification of surface-bound virus particles under conditions that restrict internalization.

An In Vitro Assay to Study Arenavirus Attachment to the Host Cell

Neste vídeo, discutimos a correlação entre o CIT50 e a multiplicidade de infecções virais. As células infectadas pelo vírus apresentam efeitos citopáticos, causando sua morte e desprendimento do microeletrodo de ouro, o que, por sua vez, reduz a impedância.

Ensaio celular baseado em impedância para medir a multiplicidade de infecção do vírus influenza

Este vídeo demonstra o ensaio de aderência bacteriana para avaliar a adesão bacteriana marcada com GFP à cultura de células epiteliais para estudar a dinâmica das interações patógeno-hospedeiro usando imagens baseadas em microscopia de fluorescência.

Detecção de aderência bacteriana às células hospedeiras usando imagens de fluorescência

Este vídeo demonstra um ensaio que mede a ativação mediada por anticorpos das funções efetoras das células T. A adição de um anticorpo monoclonal específico para hemaglutinina (HA) do vírus influenza a células de mamíferos transfectadas que expressam HA resulta na formação de complexos imunes com HA. Ao introduzir células T modificadas que expressam receptores Fc e um repórter de luciferase, as células T são ativadas pelos complexos anticorpo-HA, e essa ativação é detectada adicionando um...

Medindo a ativação de funções efetoras mediadas por Fc por anticorpos HA

O primeiro passo no ciclo de vida do arenavírus é a ligação de partículas virais às células hospedeiras. Relatamos um ensaio quantitativo baseado em (q)RT-PCR para detecção ultrassensível e quantificação de eventos de ligação ao arenavírus.

Ensaio altamente sensível para a medição do Anexo de células Arenavirus

Descrevemos o ensaio de lectina enzimática (ELLA) para medir os títulos de anticorpos de inibição da neuraminidase (NA) da influenza em soros. O ensaio usa aglutinina de amendoim para quantificar os resíduos de galactose que se tornam acessíveis quando a NA remove o ácido siálico de placas de 96 poços revestidas com fetuína.

Medição de Inibição da Neuraminidase Influenza títulos de anticorpos por Enzyme-linked Lectina Ensaio

Nós descrevemos um método para medir a ativação das funções efetoras Fc-mediada por anticorpos que visam a hemaglutinina do vírus da gripe. Este ensaio também pode ser adaptado para avaliar a capacidade dos anticorpos monoclonais ou policlonais soros visando outras glicoproteínas de superfície virais para induzir imunidade mediada por Fc.

Um método para avaliar funções efetoras mediada por Fc induzidas por anticorpos específicos de hemaglutinina de gripe

Relatado aqui é um protocolo para a quantificação de partículas virais infecciosas usando monitoramento em tempo real da impedância elétrica de células infectadas. Uma aplicação prática deste método é apresentada quantificando a decadência do vírus influenza A sob diferentes parâmetros físico-químicos imitando condições ambientais.

Monitorando a sobrevivência do vírus da influenza fora do hospedeiro usando análise celular em tempo real

Aprenda a medir anexo e internalização do vírus da influenza A em células A549 por citometria de fluxo. Este protocolo utiliza ligação a frio e mudança de temperatura para quantificar interações virais.

Medindo Anexo e Internalização do Vírus da Influenza A em células A549 por citometria de fluxo

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