Name: Uma bateria de testes de motor em um Neonatal Rato Modelo de Paralisia Cerebral (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-11-03T12:30:00.000+00:00
Duration: 10 min 2 s
Description: Aprenda a realizar uma bateria padronizada de testes motores neonatais em ratos para avaliar déficits neurológicos. Este método permite quantificar comportamentos como reflexo de endireitamento e geotaxia negativa.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Gostaríamos de agradecer a todos no Centro de Pesquisa Pediátrica do Hospital Shriners, em particular ao Dr. Mickey Seltzer, de quem sem o seu apoio, este trabalho não teria sido financiado. Além disso, gostaríamos de agradecer a Isha Srivastava, que contribuiu para a coleta inicial de dados e Amy He, que ajudou com os números. Este estudo foi financiado pelo Shriners Hospitals for Children. Nenhuma fonte de financiamento desempenhou um papel no projeto experimental ou na decisão de enviar o artigo para publicação.

<ol><li>Nakamura, M., Bregman, B. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differences+in+neurotrophic+factor+gene+expression+profiles+between+neonate+and+adult+rat+spinal+cord+after+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Differences in neurotrophic factor gene expression profiles between neonate and adult rat spinal cord after injury.</a> Exp Neurol. 169 (2), 407-415 (2001).</li>
<li>Widenfalk, J., Lundströmer, K., Jubran, M., Brene, S., Olson, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neurotrophic+factors+and+receptors+in+the+immature+and+adult+spinal+cord+after+mechanical+injury+or+kainic+acid%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Neurotrophic factors and receptors in the immature and adult spinal cord after mechanical injury or kainic acid.</a> J Neurosci. 21 (10), 3457-3475 (2001).</li>
<li>Fernández-Lòpez, D., Faustino, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blood-brain+barrier+permeability+is+increased+after+acute+adult+stroke+but+not+neonatal+stroke+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Blood-brain barrier permeability is increased after acute adult stroke but not neonatal stroke in the rat.</a> J Neurosci. 32 (28), 9588-9600 (2012).</li>
<li>Cusick, C. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extensive+cortical+reorganization+following+sciatic+nerve+injury+in+adult+rats+versus+restricted+reorganization+after+neonatal+injury%3A+implications+for+spatial+and+temporal+limits+on+somatosensory+plasticity%5BTitle%5D)+AND+%22Prog+Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Extensive cortical reorganization following sciatic nerve injury in adult rats versus restricted reorganization after neonatal injury: implications for spatial and temporal limits on somatosensory plasticity.</a> Prog Brain Res. 108, 379-390 (1996).</li>
<li>Barrett, C. P., Donati, E. J., Guth, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differences+between+adult+and+neonatal+rats+in+their+astroglial+response+to+spinal+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Differences between adult and neonatal rats in their astroglial response to spinal injury.</a> Exp Neurol. 84 (2), 374-385 (1984).</li>
<li>Villapol, S., Gelot, A., Renolleau, S., Charriaut-Marlangue, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Astrocyte+Responses+after+Neonatal+Ischemia%3A+The+Yin+and+the+Yang%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscientist%22%5BJournal%5D)">Astrocyte Responses after Neonatal Ischemia: The Yin and the Yang.</a> Neuroscientist. 14 (4), 339-344 (2008).</li>
<li>Craig, A., Ling Luo, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+analysis+of+perinatal+rodent+oligodendrocyte+lineage+progression+and+its+correlation+with+human%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Quantitative analysis of perinatal rodent oligodendrocyte lineage progression and its correlation with human.</a> Exp Neurol. 181 (2), 231-240 (2003).</li>
<li>Shen, Y., Liu, X. B., Pleasure, D. E., Deng, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Axon-glia+synapses+are+highly+vulnerable+to+white+matter+injury+in+the+developing+brain%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Res%22%5BJournal%5D)">Axon-glia synapses are highly vulnerable to white matter injury in the developing brain.</a> J Neurosci Res. 90 (1), 105-121 (2012).</li>
<li>Shen, Y., Plane, J. M., Deng, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+models+of+periventricular+leukomalacia%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Mouse models of periventricular leukomalacia.</a> J Vis Exp. (39), (2010).</li>
<li>Fox, W. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reflex-ontogeny+and+behavioural+development+of+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Anim+Behav%22%5BJournal%5D)">Reflex-ontogeny and behavioural development of the mouse.</a> Anim Behav. 13 (2), 234-241 (1965).</li>
<li>Tremml, P., Lipp, H. P., Müller, U., Ricceri, L., Wolfer, D. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neurobehavioral+development%2C+adult+openfield+exploration+and+swimming+navigation+learning+in+mice+with+a+modified+beta-amyloid+precursor+protein+gene%5BTitle%5D)+AND+%22Behav+Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Neurobehavioral development, adult openfield exploration and swimming navigation learning in mice with a modified beta-amyloid precursor protein gene.</a> Behav Brain Res. 95 (1), 65-76 (1998).</li>
<li>Wahlsten, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+developmental+time+scale+for+postnatal+changes+in+brain+and+behavior+of+B6D2F2+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">A developmental time scale for postnatal changes in brain and behavior of B6D2F2 mice.</a> Brain Res. 72 (2), 251-264 (1974).</li>
<li>Balasubramaniam, J., Xue, M., Del Bigio, <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+motor+deficit+following+periventricular+hemorrhage+in+neonatal+rats%3A+A+potential+model+for+human+cerebral+palsy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cerebr+Blood+F+Met%22%5BJournal%5D)">Long-term motor deficit following periventricular hemorrhage in neonatal rats: A potential model for human cerebral palsy.</a> J Cerebr Blood F Met. , (2005).</li>
<li>Williams, E., Scott, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Development+of+Social+Behavior+Patterns+in+the+Mouse%2C+in+Relation+to+Natural+Periods%5BTitle%5D)+AND+%22Behaviour%22%5BJournal%5D)">The Development of Social Behavior Patterns in the Mouse, in Relation to Natural Periods.</a> Behaviour. 6 (1), 35-65 (1954).</li>
<li>Heyser, C. J. Assessment of developmental milestones in rodents. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aHeyser%2C+CJ+%22Current+protocols+in+neuroscience%22">Current protocols in neuroscience</a>. Crawley, J. Q., et al. Chapter 8, (2004).</li>
<li>Corti, S. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aCorti%2C+S+%22Grip+strength+TREAT-NMD%3A+Experimental+protocols+for+SMA+animal+models%22">Grip strength TREAT-NMD: Experimental protocols for SMA animal models</a>. , 
 <a target="_blank" href="http://www.treat-nmd.eu/research/preclinical/sma-sops/">http://www.treat-nmd.eu/research/preclinical/sma-sops/</a> (2014).</li>
<li>Corti, S., Nizzardo, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural+stem+cell+transplantation+can+ameliorate+the+phenotype+of+a+mouse+model+of+spinal+muscular+atrophy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Invest%22%5BJournal%5D)">Neural stem cell transplantation can ameliorate the phenotype of a mouse model of spinal muscular atrophy.</a> J Clin Invest. 118 (10), 3316-3330 (2008).</li>
<li>Grondard, C., Biondi, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regular+exercise+prolongs+survival+in+a+type+2+spinal+muscular+atrophy+model+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Regular exercise prolongs survival in a type 2 spinal muscular atrophy model mouse.</a> J Neurosci. 25 (33), 7615-7622 (2005).</li>
<li>El-Khodor, B. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Behavioral+Phenotyping+for+Neonates%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Protocols+for+SMA+animal+models%22%5BJournal%5D)">Behavioral Phenotyping for Neonates.</a> Experimental Protocols for SMA animal models. , (2011).</li>
<li>El-Khodor, B. F., Edgar, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+a+battery+of+tests+for+drug+candidate+evaluation+in+the+SMNDelta7+neonate+model+of+spinal+muscular+atrophy%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Identification of a battery of tests for drug candidate evaluation in the SMNDelta7 neonate model of spinal muscular atrophy.</a> Exp Neurol. 212 (1), 
 <a target="_blank" href="http://www.treat-nmd.eu/research/preclinical/sma-sops/ ">http://www.treat-nmd.eu/research/preclinical/sma-sops/ </a> 29-43 (2008).</li>
<li>Venerosi, A., Ricceri, L., Scattoni, M. L., Calamandrei, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prenatal+chlorpyrifos+exposure+alters+motor+behavior+and+ultrasonic+vocalization+in+CD-1+mouse+pups%5BTitle%5D)+AND+%22Environ+Health%22%5BJournal%5D)">Prenatal chlorpyrifos exposure alters motor behavior and ultrasonic vocalization in CD-1 mouse pups.</a> Environ Health. 8 (12), (2009).</li>
<li>Hill, J. M., Lim, M. A., Stone, M. M. Developmental milestones in the newborn mouse. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aHill%2C+JM+%22Neuromethods+39%3A+Neuropeptide+Techniques%22">Neuromethods 39: Neuropeptide Techniques</a>. , Humana Press. New Jersey. (2008).</li>
<li>Visual dependence influences postural responses to continuous visual perturbation in adults with spastic cerebral palsy. Yu, Y., Keshner, A. E., Tucker, C. A., Thompson, E. D., Lauer, R. T. Combined Sections Meeting of American Physical Therapy Association, Anaheim, CA, USA, , (2016).</li>
<li>Carlson, G. The use of four limb hanging tests to monitor muscle strength and condition over time. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aCarlson%2C+G+%22Experimental+Protocols+for+SMA+animal+models%22">Experimental Protocols for SMA animal models</a>. , 
 <a target="_blank" href="http://www.treat-nmd.eu/downloads/file/sops/dmd/MDX/DMD_M.2.1.005.pdf">http://www.treat-nmd.eu/downloads/file/sops/dmd/MDX/DMD_M.2.1.005.pdf</a> (2011).</li>
<li>Gordon, A. M., Duff, S. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Relation+between+clinical+measures+and+fine+manipulative+control+in+children+with+hemiplegic+cerebral+palsy%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Med+Child+Neurol%22%5BJournal%5D)">Relation between clinical measures and fine manipulative control in children with hemiplegic cerebral palsy.</a> Dev Med Child Neurol. 41 (9), 586-591 (1999).</li>
<li>Futagi, Y., Toribe, Y., Suzuki, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+grasp+reflex+and+moro+reflex+in+infants%3A+hierarchy+of+primitive+reflex+responses%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Pediat%22%5BJournal%5D)">The grasp reflex and moro reflex in infants: hierarchy of primitive reflex responses.</a> Int J Pediat. , (2012).</li>
</ol>

Os autores declaram que não têm interesses financeiros concorrentes.

Usando modelos animais para estudar doenças humanas só é relevante se há uma sobreposição entre a resposta celular e molecular entre humanos e roedores e que os testes comportamentais realizados têm relevância direta para os sintomas humanos. Um dos principais problemas com doença pediátrica estudos é que muitos investigadores utilizar roedores adultos para criar o modelo, assim como a avaliação comportamental adulto roedor, sem ter em conta as diferenças no desenvolvimento que podem ser importantes para o processo da doença. Devido a estes problemas, é importante que a investigação sobre a utilização doença pediátrica, não só o desenvolvimento pontos de tempo apropriado ajustado (por exemplo, desenvolvimento do SNC humano com 28 - 32 semanas são equivalentes a um dia pós-natal 2-7 dias roedor) 7, mas também testes comportamentais que irá analisar motor apropriado, comportamentos de desenvolvimento sensoriais ou reflexivos. Assim, à medida que cada novo modelo de doença neonatal é desenvolvido, que devem ser rigorosamente testados para assegurar que o celulare respostas comportamentais irá fornecer os dados traduzíveis mais adequadas entre roedores e humanos. A paralisia cerebral é uma desordem motora, que persistem na vida adulta. Um problema com muitos dos modelos paralisia cerebral hoje disponíveis é a falta de repetibilidade, o teste de motor padronizado, que pode correlacionar-se com os défices observados em pacientes pediátricos. Neste novo modelo, que combina hipóxia, isquemia e inflamação em um rato neonatal, comportamento motor foi avaliada utilizando uma bateria de testes específicos para os ratos recém-nascidos. A fim de diminuir a subjectividade e aumentar a informação quantitativa, vários testes foram modificados para incluir muito específico, mas fáceis de avaliar as medidas que podem ser padronizados. Além disso, as avaliações front e dos membros posteriores podem ser feitas separadamente, e as diferenças para a esquerda / para a direita pode ser determinada. Esta bateria de testes é específico para ratos neonatais até duas semanas de idade. Este modelo demonstra CPdificuldade em andar (deambulação, ângulo do pé hindlimb), bem fraqueza específica do membro (suspensão de quatro membros, suspensão dos membros posteriores), e déficits de reflexos de desenvolvimento (agarrar reflex). Embora neste estudo apenas um ponto temporal foi examinada, esses déficits podem ser monitorados ao longo do tempo. Há outras baterias de testes que podem ser usados no recém-nascido, como a bateria do Fox de testes ou avaliação de marcos de desenvolvimento 15 de Heyser. No entanto, estes testes comparar o recém-nascido para o adulto, cujas respostas não podem ser o mesmo, porque o recém-nascido está ainda em desenvolvimento. A bateria do Fox e testes Assement de Heyser confiar na informação subjetiva observacional com (sim ou não) avaliação dicotômica, ao invés de dados objetivos (ângulo, postura com base na força, etc). Devido à subjetividade destes testes, muitos cientistas têm se adaptado, adicionados ou removidos critérios, tornando assim os seus resultados incomparáveis ​​para os outros e limiteing a utilidade dos dados em termos de estabelecimento de um défice de linha de base para uma determinada doença ou distúrbio. Ao estabelecer um conjunto de testes motores padronizados que são qualitativa e especificamente concebido para testar recém-nascidos, os resultados dos grupos de pesquisa individuais podem ser precisa e confiável relatados e comparados.

Desenvolvimento de novos modelos de lesão ou doença pediátrica usando roedores é muitas vezes difícil, devido à incrível capacidade de ambos os ratos e camundongos para se recuperar rapidamente da lesão neurológica. Portanto, a fim de validar qualquer novo modelo de doença pediátrica, examinando exaustivamente as alterações celulares e moleculares deve ir de mãos dadas com os resultados comportamentais. Em muitos aspectos, a recuperação comportamental funcional pode ser mais importante do que as alterações celulares subjacentes em termos de relevância terapêutica ou de translação. Enquanto os investigadores aprendem mais sobre lesão no adulto e neonatal, é claro que as suas respostas são muito diferentes e não podem ser extrapolados entre os dois. Por exemplo, ratinhos neonatais apresentar diferentes níveis de factor de crescimento de nervo, factor neurotrófico derivado do cérebro, neurotrofina-3 e factor neurotrófico glial da linha de células obtido de acordo com lesão da medula espinal 1,2. Além disso, os neonatos têm fugas barreira hemato-encefálica significativa após acidente vascular cerebral 3, demonstrate cortical neurônio rearranjo após a lesão do nervo periférico 4, e ter um astrogliosis atrasado ou diminuiu após lesão medular e hipóxia-isquemia 5,6. Portanto, é importante que a investigação pediátrica translacional usar modelos developmentally equivalente e que esses modelos são avaliados para ambas as alterações moleculares / celulares e testes comportamentais apropriadas à idade. Paralisia Cerebral (PC) é um distúrbio motor que afeta 3: 1000 nascidos vivos por ano (NIH). Crianças com PC exibem uma variedade de sintomas e condições co-mórbidas, dependendo da gravidade da doença. Dificuldade de movimento e coordenação são os sinais mais comuns, juntamente com atrasos para alcançar metas de desenvolvimento do motor. Outros sinais incluem o tônus ​​muscular anormal (aumentada ou diminuída), reduziu as habilidades motoras finas, dificuldade para caminhar, salivação excessiva e deglutição, e atrasos de fala (NIH). A causa subjacente da CP se acredita sera falta de oxigênio e / ou fluxo sanguíneo para o cérebro durante o período pré ou periparto, ou até um ano pós-parto. Além disso, a inflamação é agora acreditava ser um componente chave no desenvolvimento de CP. A maioria dos casos de PC estão associados com lesão da substância branca em torno dos ventrículos, conhecidos como leucomalácia periventricular (PVL). Esta característica neurológica sugere que o insulto inicial levando a CP ocorre durante o período de desenvolvimento do cérebro quando os oligodendrócitos são mais vulneráveis ​​ao insulto. O período de crescimento oligodendrócitos rápida em um ser humano, também o período em oligodendrócitos são os mais suscetíveis a lesões, é entre 24 - 32 semanas de gestação. No roedor, o período é equivalente dias pós-natais 2 - 7 7, e é quando PC é induzida neste modelo. O modelo de rato neonatal da CP que foi usado para realizar os testes descritos aqui combina hipoxia e isquemia com a inflamação de criar uma injUry que imita melhor a neurodegeneração visto em CP humano. Este modelo aborda algumas das principais deficiências observadas em outros modelos animais de CP, que não possuem déficits motores distintos que se assemelha a pacientes com PC humanos, bem como danos substância branca distinta. Estudos anteriores por um colaborador usando o mesmo modelo demonstraram que a adição de inflamação aumenta a lesão da substância branca, assim, emulando melhor o PVL visto em crianças com CP 8. Com base nos dados anteriores, este trabalho apresenta uma bateria completa de testes motores neonatais, a fim de avaliar as mudanças no comportamento do motor como o animal envelhece.

<table><tbody><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Camundongos C57BL/6</td><td>Charles River Laboratories</td><td>CÓDIGO DA CEPA: 027&nbsp;</td><td>C57BL/6NCrl é a cepa exata que usamos</td></tr><tr><td>Prato de Anestesia, PYREX&trade; Prato de Cristalização</td><td>Corning Life Sciences Glass&nbsp;</td><td>3140125</td><td>Capacidade: 25,03 onças (740 ml); Diâmetro x A: 4,92 x 2,55 pol. (125 x 65 mm). No entanto, qualquer pequeno recipiente de vidro redondo funcionará. Uma tigela de armazenamento de alimentos pyrex com capacidade para 2 xícaras com fundo plano também funcionará e é muito mais barata (número do modelo Pyrex: 6017399).</td></tr><tr><td>Anel de chumbo coberto</td><td>Fisher Scientific</td><td>S90139C</td><td>Anel de chumbo para estabilizar frascos em banho-maria. É usado dentro do prato de anestesia.</td></tr><tr><td>Lâmina de bisturi #11</td><td>World Precision Instrucments, Inc.</td><td>500240</td><td></td></tr><tr><td>Cauterizador de Vaso Pequeno</td><td>Fine Science Tools</td><td>18000-00</td><td></td></tr><tr><td>Micro Gancho</td><td>Fine Science Tools</td><td>10064-14</td><td></td></tr><tr><td>Vetbond Suture Glue</td><td>3M</td><td>1469SB</td><td>n-butil cianoacrilato adesivo</td></tr><tr><td>Lipopolissacarídeo</td><td>Sigma Life Science</td><td>L4391</td><td>Lipopolissacarídeo de E.coli 0111: B4, irradiado com gama</td></tr><tr><td>12 x 12 polegadas caixa opaca</td><td>Fabricação de Display Acrílico: Uma divisão da Piasa Plastics</td><td>C4022</td><td>Cubo de Acrílico Colorido de 5 Lados, Acrílico Colorido de 3/16", 12"W x 12"D x 12"H; &nbsp; http://www.acrylicdisplaymfg.com/html/cubes_19.html</td></tr><tr><td>Câmara/câmara de vídeo</td><td>JVC</td><td>GC-PX100BUS</td><td>Qualquer câmara de vídeo que funcione bem em condições de pouca luz e que possa ser importada e editada. Usamos a filmadora JVC GC-PX100 Full HD Everio.</td></tr><tr><td>Covidien Tendersorb&trade; Underpads</td><td>Kendall Healthcare Products Co</td><td>7174</td><td></td></tr><tr><td>WypAll L40</td><td>Kimberly-Clark Professional</td><td>5600</td><td>Qualquer superfície com aderência moderada servirá</td></tr><tr><td>Superfície com inclinação</td><td></td><td></td> de 45 graus <td>Usamos uma caixa de papelão.</td></tr><tr><td>Fio fino de um limpador de cachimbo</td><td>Creatology</td><td>M10314420</td><td>Qualquer limpador de cachimbo de qualquer loja de artesanato funcionará.</td></tr><tr><td>Tubo cônico de 50mL</td><td>Falcon</td><td>352070</td><td></td></tr><tr><td>Fio de tela de fibra de vidro</td><td>New York Wire&nbsp; www.lowes.com</td><td>14436</td><td>Qualquer fornecedor pode ser usado desde que sua tela seja de 16 x 16 ou 18 x 16</td></tr><tr><td>Lâmina de barbear</td><td>Fisherbrand</td><td>12-640</td><td>Um aplicador de bastão de madeira ou parte de madeira de um cotonete com ponta de algodão também funcionará.</td></tr><tr><td>OPTIX 24-in x 4-ft x 0.22-in Folha de Acrílico Transparente para fazer Passarela de Acrílico Transparente</td><td>PLASKOLITE INC</td><td>1AG2196A</td><td>Acrílico transparente (1/8" de espessura) com laterais e um topo para limitar a exploração. Compramos uma folha de acrílico em uma loja de ferragens local e cortamos no tamanho certo. (2) 2" x 2"; (3) 2" x 18"; (1) 2" x 15,5"; (1) 2" x 3". Usando fita adesiva transparente, cole todos os lados juntos, com a peça de 15,5" no topo. Cole a peça de 3" no final da peça de 15.5" para criar uma aba/entrada para os ratos. Alternativamente, parte ou toda a passarela pode ser colada e apenas colada nas peças superiores. Este design permitirá que a passarela seja aberta para facilitar a limpeza.</td></tr><tr><td>Transferidor</td><td>Westscott</td><td>ACM14371</td><td></td></tr></tbody></table>

uma bateria de testes de motor em um neonatal rato modelo de paralisia cerebral

A Battery of Motor Tests in a Neonatal Mouse Model of Cerebral Palsy

À medida que o grande número de cepas de camundongos transgênicos cresce e os modelos de roedores de doenças pediátricas aumentam, há uma necessidade crescente de uma bateria abrangente e padronizada de testes motores de camundongos neonatais. Esses testes podem validar modelos de lesões ou doenças, determinar a eficácia do tratamento e/ou avaliar comportamentos motores em novas cepas transgênicas. Este artigo apresenta uma série de testes motores neonatais para avaliar a função motora geral, incluindo deambulação, ângulo do pé dos membros posteriores, endireitamento da superfície, geotaxia negativa, suspensão dos membros anteriores e posteriores, reflexo de preensão, força de preensão dos quatro membros e aversão ao penhasco. Camundongos com idades entre o 2º e o 14º dia pós-natal podem ser usados. Além disso, esses testes podem ser usados para uma ampla gama de patologias neurológicas e neuromusculares, incluindo paralisia cerebral, encefalopatia hipóxico-isquêmica, lesão cerebral traumática, lesão medular, doenças neurodegenerativas e distúrbios neuromusculares. Esses testes também podem ser usados para determinar os efeitos de agentes farmacológicos, bem como outros tipos de intervenções terapêuticas. Neste artigo, os déficits motores foram avaliados em um novo modelo de camundongo neonatal de paralisia cerebral que combina hipóxia, isquemia e inflamação. Quarenta e oito horas após a lesão, cinco dos nove testes mostraram déficits motores significativos: deambulação, ângulo dos membros posteriores, suspensão dos membros posteriores, força de preensão de quatro membros e reflexo de preensão. Esses testes revelaram fraqueza nos membros posteriores, bem como habilidades motoras finas, como agarrar, que são semelhantes aos déficits motores observados em pacientes com paralisia cerebral humana.

Os ratos foram testados a partir P7 (24 h após a cirurgia) para P13 (1 semana após a cirurgia), utilizando camundongos diferente para cada ponto de tempo para que a aprendizagem de uma paradigma de teste não foi uma variável de confusão. P8 foi seleccionado como resultados representativos, como os ratos apresentaram as maiores défices neste ponto de tempo. Transição de rastejar para caminhar está atrasado em CP Mice Neonatal pacientes com PC humanos têm anormalidades da marcha, que vão desde toe-pé para uma marcha scissored. Como este CP modelo exibe marcha déficits semelhantes aos seres humanos, deambulação foi avaliada. Os ratos foram marcados na simetria da marcha e os movimentos dos membros-pata durante uma caminhada em linha reta. Em 48 horas após a cirurgia (PND 8), os ratos CP tinha menos movimento do membro simétrica e um &quot;rastreamento&quot; marcha em comparação com os seus homólogos sham (pontuação média deambulação: CP 1.083 ±0,6337, n = 12 vs sham 1.639 ± 0,4859, n = 9; p &lt;0,05, Figura 10). Por uma semana, ambos CP e ratos sham fez a transição para uma curta (dados não mostrados). <img alt="Figura 10" src="/files/ftp_upload/53569/53569fig10.jpg" /> Figura 10. CP mouse filhotes de cachorro não deambular, bem como Shams. Ratos Sham (barra preta) têm uma pontuação média de 1.639 ± 0,4859 (n = 9), ou seja, seu desenvolvimento ambulatorial cai entre os movimentos dos membros assimétrica e rastreamento lento. camundongos CP (barra cinza) recebem uma pontuação média de 1.083 ± 0,6337 (n = 12), ou seja, a sua deambulação é menos desenvolvida e tendem a ter os movimentos dos membros assimétrica. Os dados são expressos como média ± SEM; * É p &lt;0,05. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53569/53569fig10large.jpg" target="_blank">Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a> Hindlimb Pé Ângulo é aumentada em CP Além de deambulação, hindlimb pé-angular foi avaliada. Oito dias de idade filhotes de rato sham caminhar com suas patas traseiras virada para a frente, em comparação com camundongos LIS, que têm espalhados patas traseiras ao andar em uma linha reta (Figura 2; ângulo médio: CP 77,48 ± 9,848, n = 9, vs sham 54,54 ± 8,043, n = 11; p &lt;0,0001, Figura 11). Este aumento correlaciona-se com ângulo instabilidade da marcha, em que os filhotes necessidade de aumentar o ângulo de suas patas traseiras, a fim de estabilizar a sua marcha e auxiliar com o equilíbrio e coordenação. <img alt="Figura 11" src="/files/ftp_upload/53569/53569fig11.jpg" /> Figura 11. CP mouse filhotes de cachorro Splay sua patas traseiras ao andar. Camundongos CP (barras pretas) têm um ângulo médio entre os seus membros posteriores de 77,48 ± 8,043 (n = 11), enquanto que os ratos sham (cinza b<html> ars) têm um ângulo médio de 54,54 ± 9,848 (n = 9). Os dados são expressos como média ± SEM; **** É p &lt;0,0001. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53569/53569fig11large.jpg" target="_blank">Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a> Ratos CP não apresentar déficits quando Righting Superfície O teste de endireitamento superfície foi incluído como alguns pacientes com PC têm prejudicado controle de tronco (Heyrman et al., 2013). Além disso, o sistema vestibular é necessário para detectar a necessidade de corrigir e há déficits vestibulares em alguns pacientes com PC 23. ratinhos CP não apresentam défices significativos quando endireitamento, em comparação com controlos falsos (dados não mostrados). Ratos CP executam a mesma que Sham em geotaxis Testing Negative t &quot;fo: manter-together.within-page =&quot; 1 &quot;&gt; geotaxis negativo é usado para testar a coordenação motora em jovens filhotes dos ratos são desafiados por ser lugar de frente para baixo em uma superfície inclinada atraso ou falha na subida oriente poderia indicar déficits.. em coordenação, equilíbrio, ou entrada vestibular. camundongos CP não apresentam déficits quando desafiado com geotaxis negativos em comparação com os ratos sham (dados não mostrados). Além disso, os ratos CP não mostram uma preferência para virar para um lado contra o outro, quando re-orientação . Front-Membro teste de suspensão é apropriado para ratos mais velhos do que 10 dias pacientes com PC têm diminuição do tônus ​​muscular e déficits de habilidades motoras finas, como agarrar. Para testar a fraqueza neste modelo de ratinho, foi utilizado um teste de suspensão front-membro. Além disso, este modelo usa lesão isquêmica unilateral e lados-ness poderia ser determinada usando este teste suspensão. Esse testeé melhor para camundongos com idade superior a 10 dias 15. Aos 8 dias de idade, dois dias após a lesão, não existiram diferenças significativas entre CP e ratos sham (dados não mostrados). Força hindlimb é diminuída em camundongos CP pacientes com PC humanos muitas vezes precisam de chaves ou dispositivos de assistência de passeio devido à falta de controle motor e força. A fim de comparar o modelo CP roedor para os seres humanos, a força dos membros posteriores foi avaliada utilizando o teste da suspensão dos membros posteriores. Quando suspenso a partir do lado de um tubo cônico, ratos CP mostrou fraqueza dos membros posteriores, como demonstrado por uma diminuição na suspensão pontuação (hindlimb pendurado pontuação: CP 3,468 ± 0,5561, n = 13, vs sham 3,891 ± 0,1329, n = 13; p &lt; 0,05, Figura 12). Não foi observada diferença no tempo de suspensão dos membros posteriores (dados não mostrados). Assim, semelhante a pacientes com PC humanos, ratos CP demonstrar hindlIMB (perna) fraqueza. <img alt="Figura 12" src="/files/ftp_upload/53569/53569fig12.jpg" /> Figura 12. Os ratos Sham são ligeiramente mas significativamente mais forte em seus membros posteriores do que os ratos CP. Em uma pontuação média de suspensão de 3,891 ± 0,1329 (n = 13), os ratos sham (barra preta) mostram separação mais hindlimb, e, portanto, uma postura hindlimb mais forte, quando pendurado na borda de um tubo do que os ratos CP (barra cinza) com uma pontuação média de suspensão de 3,468 ± 0,5561 (n = 13). Os dados são expressos como média ± SEM; * É p &lt;0,05. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53569/53569fig12large.jpg" target="_blank">Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a> Força de preensão é diminuída após lesão CP Agarrando com todas as quatro patas é importante para um roedortermos de escalada e corrida em superfícies irregulares. Aderência exige força sustentada significativa, ao invés de destreza ou força linear, principalmente nos dígitos e as patas 24. Os ratos foram obrigados a manter seu peso corporal em uma tela de malha de arame invertido. Camundongos CP não puderam manter a sua aderência e estes ratinhos caiu em ângulos significativamente mais baixos (quatro membros ângulo média: CP 75,627 ± 24,48, n = 11, vs sham 96,57 ± 10.836, n = 9; p &lt;0,05, Figura 13). Estes dados mostram que há um défice significativo na força de preensão em ratinhos CP. <img alt="Figura 13" src="/files/ftp_upload/53569/53569fig13.jpg" /> Figura 13. Ratos CP têm aperto mais fraco do que Shams. Ratos Sham (barra preta) pode agarrar a um ângulo invertido média de 96,57 ± 10.836 (n = 9). camundongos CP (barra cinza) só pode chegar a um ângulo invertido de 75,627 ± 24,48 (n = 11). Os dados são expressos como média ± SEM; * P é0; 0.05. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53569/53569fig13large.jpg" target="_blank">Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a> Déficits apreensão Reflex são aparentes em Ratos CP Junto com deficiências motoras graves, movimentos motoras finas também são prejudicadas em pacientes com PC 25,26. O reflexo de agarrar em seres humanos está presente ao nascimento e desaparece em torno de 5-6 meses. No entanto, as mudanças no reflexo agarrar, como a velocidade exagerada ou a força de agarramento, incapacidade de compreender, ou o ressurgimento do reflexo de agarrar depois de 6 meses de idade, todos indicam danos ao sistema nervoso. Para comparar agarrar no modelo CP, foram determinados déficits agarramento reflexivos. Em 48 horas após a lesão, os ratos CP demonstrar uma diminuição na agarrando reflex (patas média apreendidoàs 48 horas: CP 2,429 ± 0,9376, n = 14, vs sham 3.214 ± 0,8018, n = 14; p &lt;0,05, Figura 14A). Houve um aumento ligeiro, mas não significativo, de preferência pata direita nas patas dianteiras (dados não mostrados). Houve uma preferência pata direita significativa nas patas traseiras (CP 75,0 ± 42,74, n = 14, vs sham 17,86 ± 54,09, n = 14; p &lt;0,005, Figura 14B). Uma semana após a lesão, os ratos CP apresentar déficits agarrando (patas média apreendido em 1 semana: CP 2,75 ± 1,035, n = 8, vs sham 3,80 ± 0,6325, n = 10; p &lt;0,05, Figura 14C), com nenhuma preferência pata notável . <img alt="Figura 14" src="/files/ftp_upload/53569/53569fig14.jpg" /> Figura 14. Ratos CP têm déficits agarrar, no patas traseiras, contralateral à região do cérebro ferido. (A) 48 horas após a lesão (PND 8), os ratos CP (barra cinza) compreender uma vara com, em média, menos patas do que anima shamls (barra preta). ratinhos (B) CP (barra cinza) exibem uma preferência para agarrar com a pata traseira direita (contralateral à lesão) em vez de usar a pata traseira esquerda (ipsilateral à lesão). ratos Sham (barra preta) não apresentam essa preferência pata direita. Preferência pata direita é calculado como ([pata direita - esquerda pata] / [pata direita + pata esquerda + ambas as patas] * 100) (C) Uma semana após a lesão, os ratos CP (barra cinza) mostram ainda agarrando déficits em comparação com. shams (barra preta). Os dados são expressos como média ± SEM; * É p &lt;0,05, ** é p &lt;0,005. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53569/53569fig14large.jpg" target="_blank">Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a> Ratos CP se afastar da borda Durante Aversão Cliff O teste baseia-se na aversão rochedo o medo inerente dos ratinhos para ligar AWAy de um penhasco íngreme e cabeça para a segurança. Embora alguns pacientes com PC têm dificuldades vestibulares, bem como o controle motor prejudicada, os ratos CP não apresentaram déficits neste teste.

Apresentada é uma bateria concisa de testes motores neonatais em camundongos. Usando esses testes, os déficits motores neonatais podem ser demonstrados em uma variedade de distúrbios motores neonatais. Por ter um conjunto padronizado de testes, os resultados de diferentes estudos podem ser comparados, permitindo relatórios melhores e precisos entre os grupos.

Uma bateria de testes de motor em um Neonatal Rato Modelo de Paralisia Cerebral

As the sheer number of transgenic mice strains grow and rodent models of pediatric disease increase, there is an expanding need for a comprehensive, ...

O objetivo geral deste vídeo de metodologia é demonstrar a maneira correta de realizar uma bateria de testes motores neonatais, de modo que sejam facilmente reproduzíveis e quantificáveis. Este vídeo mostrará uma série de testes motores neonatais, bem como a forma de executar e pontuar cada teste individualmente. Um dos problemas em outros artigos comportamentais publicados é que os detalhes desses testes não são bem transmitidos apenas por palavras, o que tem levado a resultados obtidos por diferentes pesquisadores que não podem ser comparados.A principal vantagem desta série de testes é que ela utiliza um sistema padronizado e quantificável de pontuação que permitirá uma melhor e mais precisa divulgação dos resultados. Os testes que demonstramos aqui podem ser usados para determinar déficits motores, validar um modelo de lesão ou doença, ou determinar se o tratamento está surtindo efeito. O rastejar se desenvolve na cria de camundongo durante os primeiros cinco dias pós-natais.No décimo dia, os filhotes passam a andar. Por isso, o teste de deambulação é realizado no oitavo dia. Comece colocando o camundongo em uma caixa transparente onde ele possa ser visto de todos os lados.Observe o camundongo por três minutos e classifique sua locomoção. Se o filhote não andar por conta própria, estimule suavemente a cauda do filhote para incentivá-lo a andar. Se não houver movimento, atribua uma pontuação de zero.Atribua uma pontuação de um ao rastejamento com movimento assimétrico dos membros. O movimento assimétrico dos membros ocorre quando a colocação das patas da ninhada não é consistente e seu padrão de passos é irregular. Atribua uma pontuação de dois ao rastejamento lento com movimento simétrico dos membros.Neste caso, as patas traseiras devem alcançar as patas dianteiras durante cada passo, e cada passo deve transicionar suavemente para o próximo. Se o camundongo estiver rastejando rapidamente e de forma simétrica ou andando, atribua a este comportamento uma pontuação de três. Durante este período de desenvolvimento, ocorre uma mudança mensurável na postura das patas traseiras, na qual o ângulo entre as patas traseiras diminui durante a transição de rastejar para andar.Para medir o ângulo do pé, grave em vídeo o filhote por cima ou por baixo durante três minutos. No vídeo, identifique segmentos em que o camundongo dê uma passada completa em linha reta, com ambos os pés apoiados planamente no chão. Meça o ângulo do pé do filhote traçando uma linha do fim do calcanhar até a ponta do dedo mais longo.Não realize medições enquanto o filhote estiver parado ou girando. O reflexo de endireitamento é demonstrado quando um filhote de camundongo se vira sobre os pés a partir de uma posição supina. Esse reflexo se desenvolve em camundongos entre um e dez dias de idade.Para testar este reflexo, coloque um filhote de bruços sobre uma almofada de bancada e segure-o na posição supina por cinco segundos; em seguida, solte o filhote e registre o tempo necessário para ele retornar à posição prona. Registre também a direção do endireitamento. Dê a cada filhote um tempo máximo de um minuto para se virar.A geotaxia negativa é um comportamento inato observável quando um filhote é colocado voltado para baixo e naturalmente gira ao redor. Esse reflexo se desenvolve em roedores entre três e 15 dias de idade. Coloque o filhote com a cabeça apontando para baixo em uma inclinação de 45 graus e segure por cinco segundos, depois solte o filhote.Registre quando e para qual direção o filhote vira, permitindo dois minutos para demonstrar o comportamento. Camundongos que caem pela inclinação ou que não viram podem ser retestados, eliminados ou receber uma pontuação de zero; basta ser consistente. Para camundongos com mais de 10 dias de idade, utilize o Teste de Suspensão das Pernas Dianteiras para detectar diferenças de força entre as pernas dianteiras.Segure o filhote firmemente pelo corpo e permita que ele segure um fio rígido com as duas patas dianteiras; em seguida, solte o filhote e meça quanto tempo ele leva para cair. Registre se o filhote soltou uma pata antes da outra ou ambas as patas ao mesmo tempo. Para filhotes entre dois e 14 dias de idade, utilize o Teste de Suspensão das Patas Traseiras para detectar diferenças na força das patas traseiras e na função neuromuscular.Segurando o filhote pela cauda, abaixe-o suavemente em um tubo cônico de 50 mililitros, com as patas traseiras posicionadas sobre a borda. Em seguida, solte o filhote e registre o tempo que leva para ele cair. Além disso, avalie a postura das patas traseiras.Conceda uma pontuação de quatro se as patas traseiras estiverem separadas normalmente e a cauda estiver levantada. Se as patas traseiras estiverem mais próximas, mas raramente se tocarem, atribua ao filhote uma pontuação de três. Atribua uma pontuação de dois se as patas traseiras estiverem próximas uma da outra e frequentemente se tocando.Atribua uma pontuação de um se as patas traseiras estiverem quase sempre em posição de aperto com a cauda erguida. Atribua zero se houver aperto constante das patas traseiras com a cauda abaixada, ou se o filhote não conseguir se segurar no tubo por qualquer período de tempo. Quando um filhote tenta levantar o corpo usando as patas traseiras, isso é considerado um puxão.Estes também podem ser contados e registrados. O Teste de Força de Preensão examina a força dos quatro membros ao mesmo tempo. A força de preensão pode ser determinada tão cedo quanto cinco dias e tão tarde quanto 15 dias de idade.Coloque o filhote sobre um pedaço de tela de fibra de vidro. Deixe o filhote se ajustar a este ambiente por cerca de cinco segundos, depois inverta lentamente a tela em 180 graus. Quando o filhote cair, registre o ângulo da tela.Se o filhote for capaz de se segurar na tela quando estiver completamente invertida, registre a latência para a queda. Utilize o Reflexo de Preensão para determinar déficits específicos na preensão das patas. Esse reflexo geralmente aparece entre três e 15 dias.Para começar, segure o filhote pela nuca, momento em que ele deve ficar instintivamente imóvel e relaxado. Em seguida, acaricie a superfície inferior de cada pata com o lado rombo e arredondado de uma lâmina de barbear e registre a presença ou ausência do reflexo de preensão. Depois, utilizando a equação fornecida no texto, calcule a preferência de pata do filhote.O Teste de Aversão ao Penhasco mede os reflexos labirínticos da cria, bem como sua força e coordenação. O teste pode ser utilizado em crias do primeiro ao 14º dia pós-natal. Para este teste, utilize uma caixa com uma borda elevada e plana.Coloque previamente na caixa pelo menos cinco camundongos. Em seguida, posicione um filhote na borda da caixa, com as patas dianteiras, dedos e focinho suspensos sobre a borda. Solte então o filhote e inicie o cronômetro.Registre o tempo que o camundongo leva para se afastar da borda. Permita pelo menos 30 segundos para completar o teste. Se um filhote cair, ele poderá ser retestado.Veja o texto para mais detalhes. A paralisia cerebral foi induzida em filhotes de camundongo de seis dias de idade conforme descrito anteriormente. Filhotes submetidos a cirurgia simulada foram utilizados como controles.Resultados representativos em 48 horas após a lesão são apresentados. No Teste de Marcha, os filhotes com paralisia cerebral apresentam marcha menos simétrica em 48 horas após a lesão, quando comparados aos animais controle. Em 48 horas após a lesão, o ângulo da pata traseira foi mais aberto nos camundongos com PC em comparação com os animais controle.Camundongos CP são ligeiramente, mas significativamente, mais fracos na força dos membros posteriores quando comparados aos falsos-operados. Filhotes falsos-operados apresentam força de preensão significativamente maior do que filhotes CP. Camundongos CP agarram com menos patas em comparação aos falsos-operados.Quarenta e oito horas após a lesão, os camundongos CP mostram preferência pela pata traseira direita. Ao utilizar este conjunto de testes motores neonatais, os resultados de diferentes grupos de pesquisa podem ser relatados e comparados de forma confiável. Ao realizar esses testes, certifique-se de ser consistente.Os camundongos são jovens e precisam de repouso entre os ensaios. Além disso, precisam ser mantidos aquecidos e devolvidos ocasionalmente à mãe para alimentação. Certifique-se de realizar esses testes no mesmo horário do dia para maior consistência e precisão dos resultados; consulte também o texto escrito para obter detalhes mais específicos, incluindo a distinção entre não participação e a incapacidade de realizar uma tarefa, bem como outras dicas úteis.

a-battery-of-motor-tests-in-a-neonatal-mouse-model-of-cerebral-palsy

Research

JoVE Journal

Medicine

Medicina

Protocolos são apresentados para duas tarefas estabelecidas coordenação motora, o bar rotarod e horizontal, acelerando também dois testes desenvolvidos em Oxford recentemente, as hastes estáticos e barras paralelas. Estes testes podem detectar deficiências motoras potencialmente de interesse em seu próprio direito, bem como possíveis variáveis ​​em testes de outras áreas do comportamento.

Medindo Coordenação Motora em Ratos

Um modelo do rato para a esclerose lateral amiotrófica (ELA) é examinado clinicamente e comportamentalmente. Como um pré-requisito para uma análise imuno acompanha a preparação da medula espinal é descrito em detalhe.

Testes clínicos e Remoção da Medula Espinhal em um modelo do rato para a Esclerose Lateral Amiotrófica (ELA)

Nos distúrbios da doença de Parkinson e de movimento, em geral, os ensaios comportamentais sensíveis e fiáveis ​​são essenciais para testar novas terapêuticas potenciais. Aqui, descrevemos uma bateria gerenciável de testes sensório-motores para os ratos que são sensíveis a diferentes graus de lesão no sistema nigroestriatal e útil para estudos pré-clínicos.

Avaliação da função sensório-motora em rato modelos de doença de Parkinson

Este artigo descreve um método para gerar uma lesão por compressão da medula espinhal (LM) reprodutível no camundongo neonatal. O modelo fornece uma plataforma vantajosa para estudar os mecanismos de plasticidade adaptativa subjacentes à recuperação funcional espontânea.

A Neonatal do rato Spinal Cord Injury Compression Modelo

A estimulação cerebral profunda (DBS) é uma opção de tratamento eficaz para a doença de Parkinson. Estabelecemos um desenho de estudo para rastrear novos paradigmas de estimulação em ratos. O protocolo descreve o uso do teste da escada e do teste do cilindro para avaliação do resultado motor em ratos hemiparkinsonianos tratados com DBS.

Uma nova abordagem para avaliar o resultado Motor de profunda do cérebro dos efeitos de estimulação no Rato Hemiparkinsonian: Escadaria e cilindro de ensaio

testes de comportamento é o padrão ouro para determinar os resultados após lesão cerebral, e pode identificar a presença de deficiências de desenvolvimento em lactentes e crianças. reflexos do desenvolvimento neurológico são um indicador precoce destas anormalidades. Uma série de testes de reflexo de desenvolvimento facilmente realizados em roedores neonatais foram desenvolvidos e descritos aqui.

Desenvolvimento neurológico Reflex Teste em Neonatais rato filhotes de cachorro

Testes comportamentais é utilizado em ensaios pré-clínicos para avaliar os efeitos fenotípicos de uma doença ou tratamento no bem-estar do animal. Para globalmente avaliar o funcionamento do motor, nós selecionamos testes para locomoção geral, força muscular e coordenação: teste do campo aberto, a malha e o teste de rotarod, respectivamente.

Bateria de comportamental testes de avaliação geral de locomoção, coordenação e força Muscular em camundongos

Realizamos a oclusão da artéria carótida unilateral no pós-Natal dia 7-10 CD-1 mouse filhotes para criar um modelo de (HI) hipóxico-isquêmica neonatal e investigaram os efeitos da lesão cerebral de HI. Nós estudamos funções Neurocomportamentais nestes ratos em comparação com camundongos normais não operado.

Neurocomportamentais avaliações em um modelo do rato de lesão cerebral hipóxica-isquêmica Neonatal

Mostramos que uma implantação de microeletrodos no córtex motor de ratos provoca déficits motor imediatos e duradouros. Os métodos propuseram neste documento contorno uma cirurgia de implante de microeletrodos e três roedores tarefas comportamentais para elucidar possíveis alterações na função motor fina ou bruta devido aos danos causados a implantação para o córtex motor.

Comportamentais de testes para avaliar déficits funcionais causados pela implantação de microeletrodos no córtex Motor rato roedor

Uma bateria de testes comportamentais abrangente das habilidades motoras, humor — incluindo a interação social, depressão e ansiedade — e cognição destina-se a avaliação repetida das alterações comportamentais relacionadas à neurodegeneração em camundongos.

Uma bateria de testes comportamentais para a avaliação repetida das habilidades motoras, humor e cognição em ratos

Este estudo ilustra o efeito da manipulação seletiva da coluna vertebral no crescimento e desenvolvimento de ratos infantis com paralisia cerebral, enfatizando o procedimento específico e o protocolo padronizado. Para avaliar o protocolo, foram realizadas medidas de peso corporal, teste Rotarod, escore de falha no pé, outros testes comportamentais e detecção de hormônio do crescimento.

Melhorando o desenvolvimento e o crescimento de ratos infantis com paralisia cerebral usando manipulações seletivas da coluna vertebral

Aprenda a realizar uma bateria padronizada de testes motores neonatais em ratos para avaliar déficits neurológicos. Este método permite quantificar comportamentos como reflexo de endireitamento e geotaxia negativa.

Uma bateria de testes de motor em um Neonatal Rato Modelo de Paralisia Cerebral

Explorar mais vídeos