16 de fevereiro de 2016
Nós estabelecemos uma técnica para o isolamento, caracterização fenotípica e análise funcional de células imunes de gengiva murino.
O objetivo geral deste método é isolar células imunes gengivais para a caracterização aprofundada das respostas imunes relacionadas à imunidade oral e periodontite. Este método pode ajudar a responder a questões-chave no campo da imunidade oral, como quais fatores celulares estão implicados na patogênese da periodontite. As principais vantagens desta técnica são que ela permite a avaliação da rede de células imunes orais e o isolamento de células viáveis suficientes para investigações in vitro a jusante.
Como primeiro passo deste protocolo, comece colocando pinos para imobilizar o corpo do camundongo e abra as cavidades torácica e abdominal para expor o coração e os órgãos internos. Em seguida, faça uma incisão na veia cava e use uma seringa de 3 mililitros, equipada com uma agulha de calibre 27, para profundir 3 mililitros de PBS através do ventrículo esquerdo. Quando todo o sangue tiver sido liberado, prenda a cabeça do camundongo em uma almofada de dissecação, com o estômago voltado para cima.
Em seguida, use uma tesoura para cortar cada comissura do lábio em direção ao pescoço, separando a pele que cobre a mandíbula e a região do pescoço e expondo os tecidos e músculos subjacentes. Corte entre os incisivos inferiores para separar os dois lados da mandíbula. Imobilize cada lado da mandíbula separada com agulhas de calibre 25 para acessar a cavidade oral.
Depois de identificar o palato, use uma lâmina cirúrgica número 10 para fazer incisões verticais logo anteriores ao primeiro molar e posteriores ao terceiro molar. Em seguida, disseque o tecido para longe da cavidade nasal e também disseque os blocos da mandíbula. Em seguida, elimine o excesso de tecido da borda da gengiva e transfira os blocos maxilar e mandibular para um tubo cônico de 50 mililitros contendo 5 mililitros de colagenase e DNase no gelo.
Digerir o tecido em uma incubadora agitadora a 37 graus Celsius por uma hora, adicionando 50 microlitros de EDTA 0,5 molar durante os últimos cinco minutos. Em seguida, adicione 5 mililitros de meio DNase frio aos tecidos e misture suavemente o conteúdo do tubo girando. Em seguida, transfira os quatro blocos de tecido para uma placa de Petri.
E cubra-os com 500 microlitros de meio DNase fresco. Use um bisturi para remover a gengiva de cada bloco de tecido. E transfira todo o conteúdo do prato para um filtro de células de 70 mícrons em cima de um tubo de 50 mililitros.
Lave a placa de Petri e a peneira com 3 a 5 mililitros de meio DNase fresco. Em seguida, use o êmbolo de uma seringa estéril de 3 mililitros para esmagar o tecido gengival contra a malha do filtro. Enxágue o filtro com 30 a 35 mililitros de meio DNase frio e centrifugue o filtrado.
Em seguida, ressuspenda o palato em 1 mililitro de meio completo e determine o número de células viáveis. O isolamento e processamento de células imunes, como acabamos de demonstrar, produz um número suficiente de células para realizar uma estimulação ex-vivo e caracterização dos padrões de secreção de citocinas de células gengivais de animais selvagens e suscetíveis à periodontite. De fato, a composição de células imunes gengivais murinas pode ser analisada conforme demonstrado nesses gráficos de densidade que avaliam os compartimentos de células t e natural killer em camundongos knockout LFA suscetíveis à periodontite.
Usando as estratégias de gating apropriadas, a produção de citocinas intracelulares de células T TCR beta CD4 positivas, TCR beta CD8 positivas e TCR gama delta positivas, bem como NK e células linfóides inatas, também pode ser determinada. Uma vez dominadas, as células podem ser isoladas em três horas para imunocoloração se a técnica for realizada corretamente. Ao tentar este procedimento, é importante lembrar de concluir todas as etapas com eficiência e rapidez, mantendo as células no gelo sempre que não estiverem sendo manipuladas.
Seguindo este procedimento, outros métodos, como a classificação de células, podem ser realizados para responder a perguntas adicionais relacionadas à função dos subconjuntos de células específicos.
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Este artigo apresenta uma técnica para isolar e caracterizar células imunes da gengiva murina. O método visa aprimorar a compreensão da imunidade oral e da periodontite.
Precise isolation and functional profiling of gingival immune cells enables mechanistic de-risking in oral immunology and supports target validation for inflammatory disease research. This workflow provides high-viability cell populations for quantitative phenotyping and ex vivo functional assays, strengthening predictive confidence in early discovery and translational studies. The approach is positioned to inform portfolio decisions in immunology and oral health R&D by enabling robust interrogation of tissue-resident immune networks.
This method integrates into the discovery-to-preclinical continuum by supplying high-quality immune cell preparations for both mechanistic studies and functional screening in oral disease models.