Name: Aplicações da sonda Individual: Imagem Espectrometria de Massa e Análise única célula sob condições ambientais (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-06-14T14:00:00.000+00:00
Duration: 15 min
Description: Aprenda a usar a sonda Individual para espectrometria de massa de células vivas e imagem de tecidos com alta resolução espacial. Este método avança pesquisas em biologia celular e estudos farmacêuticos.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Os autores gostariam de agradecer ao Dr. Laskin (Laboratório Nacional do Noroeste do Pacífico) por compartilhar o software de controle de estágio motorizado e o programa de visualização MSI. Também agradecemos ao Dr. Mao (Universidade de Oklahoma) por fornecer amostras de órgãos de camundongos e ao Sr. Chad E. Cunningham (Universidade de Oklahoma) pela assistência no trabalho de usinagem e eletrônica. Esta pesquisa foi apoiada por doações do Conselho de Pesquisa do Campus Norman da Universidade de Oklahoma, do Prêmio de Pesquisa da Sociedade Americana de Pesquisa em Espectrometria de Massa (patrocinado pela Waters Corporation), do Centro de Oklahoma para o Avanço da Ciência e Tecnologia (Grant HR 14-152) e dos Institutos Nacionais de Saúde (R01GM116116).

uso de animais e bem-estar devem aderir ao Guia do NIH para o Cuidado e Uso de Animais de Laboratório seguindo protocolos analisados ​​e aprovados pelo Comitê de Cuidado e Uso Institucional Animal (IACUC). amostras de tecido de rato foram fornecidos pelo colaborador Dr. Chuanbin Mao. 1. Rato Tissue Seção Preparação <ol><li> Coloque um órgão inteiro do rato de interesse (cérebro, rim, fígado, etc.) no centro de um pequeno poço de plástico (por exemplo, de 12 poços da placa de cultura de células), e submergir no tecido incorporação composto até cerca de 10 mm de altura. Certifique-se de que não há bolhas formadas no composto incorporação de tecidos e de que o órgão é colocado na orientação desejada (isto é, sagital, coronal, etc). </li><li> Imediatamente coloque tecidos em nitrogênio líquido para o flash de congelamento. Para armazenamento a longo prazo, armazenar as amostras congeladas num congelador de -80 ° C. </li><li> Tome o órgão congelada mouse e descongelar a -15 ° C em uma temperature cryomicrotome controlada. </li><li> tecido seguro sobre uma base de aço com cerca de 500 ul de composto incorporação de tecido e colocar para uma cryomicrotome seccionamento montagem de modo que a orientação do corte desejada é apresentada à faca. </li><li> Secção do tecido com uma espessura de 12 um. Coloque fatias de tecido seccionados em lâminas de microscópio de policarbonato e deixa-se secar durante 30 minutos à temperatura ambiente. Para armazenamento a longo prazo, a corrediça armazenar congelada num congelador de -80 ° C. </li></ol> Cultura 2. celular Nota: A cultura de células foi realizada em cabine de segurança biológica (Nível de Biossegurança II) em condições estéreis. A linha de células HeLa foi usada como um sistema modelo, e as células foram cultivadas em meio de cultura completo com os seguintes protocolos convencionais: <ol><li> Reagentes quentes (isto é, a tripsina, a solução salina tamponada com fosfato (PBS), e meio de cultura celular) a 37 ° C. Nota: O meio de cultura de células contém SA inorgânicolts, aminoácidos, vitaminas e outros. Para uma lista completa dos componentes, referem-se a formulação a partir do fabricante. </li><li> Obter amostra celular (por exemplo, 1 ml de suspensão de células HeLa) e adicioná-lo em 9 ml de meio de cultura celular completo numa placa de cultura de células padrão de 10 cm. O número inicial de células é de cerca de 0,5 X 10 6 células / ml. Manter as células em cultura a 37 ° C com 5% de CO 2 durante 2-3 dias até que a superfície de cultura é coberto a 70-80% na placa de cultura celular. número de passagens celulares registro para cada rodada sucessiva. </li><li> Realizar Passaging celular (ou seja, divisão de células) na placa de cultura celular. <ol><li> Aspirar o meio de crescimento, e utilizar 5 ml de 1x PBS para lavar as células. Remover PBS utilizando uma ponta de aspiração estéril, e incuba-se as células com 2,5 ml de tripsina (0,25%) durante ~ 5 min a 37 ° C para separar as células da placa de cultura. Nota: precisa do tempo de tratamento de tripsina real a ser otimizado de acordo com a produ tripsina específicact comprados do fabricante. tempo de tratamento inadequado deixa as células ligadas à placa, enquanto que o tratamento excessivo conduz à morte celular. </li><li> Pare a actividade da tripsina por adição de 7,5 ml de meio de cultura celular completo, e em seguida uniformemente ressuspender as células (volume total 10 ml). Use a suspensão de células para a cultura (passo 2.2) ou preparação de amostras SCMS (passo 2.4). </li></ol></li><li> Prepare as amostras de células para experiências SCMS. <ol><li> Colocar as lâminas de cobertura de micro individuais numa placa de 12 poços, e adicionar 1,8 ml de meio de cultura de células e 0,2 ml de suspensão de células no poço. </li><li> Misturar suavemente as células com agitação suave da placa, e incuba-se num ambiente de 5% de CO2 a 37 ° C durante ~ 24 horas. Para realizar o tratamento de droga para as células em cultura, adicionar uma solução do composto de fármaco (por exemplo, no seio de DMSO (sulfóxido de dimetilo)) em 12 poços da placa de cultura de células. Nota: A concentração de fármaco final (por exemplo, 10 nM, 100 nM, 1 pM e 10 uM) e ttempo ratamento (por exemplo, 4 horas) são variados de acordo com a finalidade específica de estudos. As células são ligados às lâminas de cobertura micro e pronto para as experiências CSMS (passo 6). </li></ol></li></ol> Fabrication 3.-sonda Individual <ol><li> Coloque o tubo de quartzo dual-furo (diâmetro interno (ID) 127 mm, diâmetro externo (OD) 500 mm) em uma micropipeta extrator laser e puxar uma agulha de quartzo dual-furo. Utilize os seguintes parâmetros como pontos de partida: Calor = 400, Fil = 3, Vel = 80, Del = 150, e Pul = 250 (todas as unidades são unidades do fabricante). Certifique-se de que a agulha dual-furo de quartzo puxou tem uma ponta afilada para propriedades de sonda ideais. Cortar a ponta puxado de modo que não é aproximadamente 5 mm de comprimento da dupla-unpulled furo capilar de quartzo à esquerda na outra extremidade. Nota: Os parâmetros reais do puxador de laser deve ser optimizado de acordo com as condições específicas do instrumento. </li><li> Cortar uma secção de ~ 80 mm capilar de sílica fundida (ID 40 um, OD. 105 mm) como solvente proporcionando capilar, e inseri-lo em um furo na extremidade plana da agulha quartzo dual-furo. </li><li> Corte um pedaço ~ 40 mm capilar de sílica fundida (ID 40 mm, OD 105 mm) e usar um aparelho de barbear para raspar ~ 5 milímetros de revestimento de poliimida do ponto médio. Use uma chama de propano para aquecer rapidamente e puxe o capilar fundidos em um emissor de ionização de nano-electrospray (ESI) com uma inclinação bem. Corte um emissor de nano-ESI (~ 7-10 mm de comprimento), e inseri-lo em outro furo na extremidade plana da agulha quartzo dual-furo. Em alternativa, usar o extrator de laser para produzir uma multa de estreitamento. </li><li> Aplicar uma quantidade mínima de (~ 1-2 ul) de resina de cura por UV sobre a extremidade plana de quartzo a agulha dupla de calibre, e solidificar a resina utilizando uma lâmpada de UV de LED para ~ 20 seg para fixar o solvente proporcionando o capilar e nano- emissor ESI. Os procedimentos para montar as peças individuais em um único-sonda são apresentados na Figura 1a. </li><li> Corte um gl microscópio padrãoslides ass (1 &quot;x 3&quot;) ao meio no sentido do comprimento. Coloque a single-sonda para uma das extremidades da placa de vidro de modo a que o emissor de nano-ESI é apontada para o exterior. Aplicar o epóxi normal para o corpo do single-sonda de modo que torna-se fixada sobre a lâmina de vidro (Figura 1b). Deixe durante a noite para o endurecimento. Acoplar a-sonda única fabricado com a configuração-sonda integrado único (Figura 1C), o qual está ligado a um espectrómetro de massa, tal como ilustrado na Figura 1D. </li></ol> 4. Criar o Integrated Single-sonda Setup MS <ol><li> Modificar a flange de interface fonte de iões do espectrómetro de massa e fabricar o suporte (com posição ajustável e altura) do estereoscópio digitais (Figuras 1e e 1f). <ol><li> Perfurar um flange de interface fonte de íons com dois buracos que permitem a fixação de uma placa óptica de alumínio. Faça um dispositivo de trilho deslizante e uma haste de ajuste de altura (anexo aouma plataforma XY para ajuste fino de posição), de tal modo que o sistema estereoscópico digital pode ser ligado à placa óptica de alumínio (Figura 1E). </li></ol></li><li> Anexar o microscópio modificado estéreo digital, um microscópio digital USB, um manual miniatura XYZ fase de tradução com um suporte de fixação flexível, o sistema de fase de tradução motorizado XYZ à placa óptica de alumínio, que é montado no flange de interface fonte de íons personalizada do espectrômetro de massa (Figuras 1C e 1F). Use o suporte do grampo flexível de fixar a lâmina de vidro anexado com uma única sonda. </li><li> Fixe o setup-sonda única para o espectrómetro de massa (Figura 1F). Ajustar o suporte de fixação flexível e a fase XYZ miniatura para colocar o emissor do single-sonda em frente da entrada do espectrómetro de massa. Use o microscópio digital USB (com ângulo de visão ajustável) na lateral do single-sonda para fornecer uma imagem zoom-in do single-pponta veste ou o emissor de nano-ESI, eo estereoscópio digitais (com altura regulável) acima do single-sonda para ver as células e a ponta da sonda. Nota: O uso da flange fonte de iões correspondente, este sistema de sonda única integrada pode ser acoplado a quaisquer outros tipos de espectrómetros de massa de ionização equipadas com fontes ambientais. </li></ol> 5. Ambient MSI <ol><li> Descongelar o ponto de amostra à temperatura ambiente e colocá-lo no sistema de fase de tradução motorizado XYZ debaixo do single-sonda. Ajuste a posição da amostra, alterando as coordenadas no software de controle. </li><li> Usando a seringa para bombear o solvente de amostragem a uma taxa adequada (por exemplo, 0,2 mL / min), e aplicar a voltagem de ionização (por exemplo, 5 kV). A selecção do solvente amostragem é flexível, e as mais comuns incluem MeOH: água (9: 1) e acetonitrilo. O volume morto do emissor nano-ESI foi estimada como sendo ~ 3 nl, e o tempo entre a sonda-surfacontato ce e observação de sinais de iões é geralmente menos de 1 seg 15. Nota: A flange de interface fonte de íons personalizado permite que a tensão de ionização para ser entregue a partir do espectrômetro de massa para uma união condutor através de um clipe de crocodilo. A voltagem de ionização é então transmitido através de uma união condutora para o solvente no interior do capilar e os canais de sonda simples, e aplicada sobre o emissor de nano-ESI para ionizar os analitos na amostra. Certifique-se de que a tensão de ionização é desligada quando ligar o clipe de crocodilo com a união condutora. </li><li> Ajustar a altura do single-sonda de modo a que ele fique ligeiramente acima da superfície da amostra e capaz de realizar à superfície de extracção de metabolitos. Levante cuidadosamente a Z-estágio, e depois usar o microscópio digital USB (no lado do single-sonda) para monitorar a mudança distância entre a ponta-sonda única e superfície de tecido. Monitorar mudanças no espectro de massa durante este ajuste de altura, e parar de elevadoring o Z-fase em que se observa uma mudança do sinal de iões de fundo solvente para metabolitos de tecido. </li><li> Repita o passo 5.3 três vezes para definir três pontos diferentes dentro do programa de controle do estágio de adaptação achatamento superfície automatizado. Colocar a ponta da sonda única em três pontos na superfície da amostra a uma distância de cerca de 10 mm uns dos outros. Execute o ajuste de altura, pressionando para cima e para baixo ícones, e bloquear os três pontos para a posição no método &quot;Plano&quot;. </li><li> Defina outros parâmetros para A varredura em toda a seção de interesse dentro da amostra utilizando este programa. Para as seções do mouse renais aqui apresentados, utilize a / s de velocidade de A varredura 10.0 mm e 20 mm distância entre as linhas. O sistema de platina motorizada tem um movimento mínimo de 0,1 um incremento. A distância entre a ponta da sonda única e do tecido é obtido a partir do passo 5.3. </li><li> Defina-se a um método para a aquisição automatizada dos espectros de MS do espectrómetro de massa. for resolução massa de alta MSI na amostra do mouse rim, use os seguintes parâmetros: resolução de massa 60.000 (m / Dm), ~ modo positivo 5 kV, 1 MicroScan, tempo de injeção 150 ms max, e AGC diante. Todos os espectros de MS adquiridos representam linhas individuais da imagem MS tinha o mesmo número de varrimentos com espaçamento uniforme entre o tempo de cada varrimento, indicando que os tamanhos de pixel para as imagens produzidas foram uniformemente distribuída. </li><li> Iniciar a aquisição de dados MSI. Iniciar a sequência de aquisição MS para o espectrômetro de massa, em seguida, iniciar a seqüência de A varredura para o programa de controle da XYZ. <ol><li> Por exemplo, no programa de aquisição de dados MS utilizada aqui, vá para &quot;setup Sequence&quot;, selecione &quot;New sequência&quot;, gerar um conjunto de arquivos para uma nova sequência numerada de 01 a X, onde X é o número de linhas utilizadas para o imagem MS desejado a ser tomada, e em seguida, pressione &quot;sequência Run&quot;. </li><li> Use um dispositivo eletrônico caseiro para permitir que o software para produzir uma Contasinal de fechamento ct para o espectrômetro de massa para coletar os dados. O diagrama de circuito é mostrado na figura complementar (Figura S1) como uma referência. </li></ol></li><li> Construir imagens MS a partir de arquivos do MS-primas que utilizam software de visualização MSI apropriado. Por exemplo, quando se utiliza o pacote de software desenvolvido pelo grupo de Laskin em PNNL 17, execute os seguintes passos. <ol><li> Clique em &quot;Brows arquivo&quot;. Selecione o primeiro arquivo obtido a partir da experiência MSI. Especifique onde o arquivo começa e termina em &quot;Número de linhas&quot;. Selecione um intervalo de valores de m / z para o intervalo de imagem MS em &quot;Enter Faixa MZ&quot;. </li><li> Pressione o botão &quot;Iniciar&quot; para iniciar o processo de criação da imagem. Depois que a imagem MS é feito, clique em &quot;Salvar imagem&quot; em &quot;barra de ferramentas&quot; para armazenar as imagens no computador. </li></ol></li></ol> 6. in situ vivo SCMS <ol><li> Configuração do sistema de sonda única como por instruiríons de MSI. Ajustar o solvente (por exemplo, MeOH / H2O ou acetonitrilo) a taxa de fluxo (por exemplo, ~ 25 nl / min). </li><li> Lave as células cultivadas, que são anexadas nos slides tampa de vidro micro, com PBS para remover a mídia cultural e componentes de drogas extracelulares. Coloque célula que contém lâmina de vidro no sistema fase de tradução motorizado XYZ para o experimento. Nota: Em alternativa, utilizar o meio de cultura celular fresco (sem contendo soro fetal de bovino) para lavar as células cultivadas. supressão ion menos tem sido observado. Além disso, células podem sobreviver durante um tempo mais longo durante a experiência, em que a temperatura ambiente (~ 20 ° C) é significativamente mais baixa do que a temperatura da cultura (37 ° C). O tipo de droga, a concentração da solução, e tempo de tratamento varia em diferentes estudos. </li><li> Concentre o microscópio estéreo digital (por cima da amostra) para a ponta da sonda única para controlar a penetração celular durante a análise. Use o microscópio digital USB (no side do single-sonda) para monitorar as condições de trabalho do emissor nano-ESI no single-sonda. </li><li> Use o programa de controle de fase XYZ motorizada e microscópio estéreo digital (acima de células) para localizar uma célula de interesse, e posicionar precisamente a ponta-sonda única acima da amostra. Iniciar a aquisição de dados MS antes da ponta de sonda única é inserido na célula. <ol><li> Utilize os seguintes parâmetros como referência para a análise de MS usando um espectrômetro de massa de alta resolução: resolução de massa 100.000 (m / Dm), ~ modo de 3 kV positivo e negativo, 1 MicroScan, 150 ms max tempo de injeção, o modo AGC diante. aquisição automatizada de MS espectros é feito clicando em &quot;Iniciar&quot; no programa de aquisição de dados MS. </li><li> Levantar o Z-platina motorizada clicando no icone para penetrar na membrana da célula e manter a gravação do sinal de MS gerado a partir da célula. Um atraso de tempo de 1-2 segundos é normalmente observado entre a inserção de sonda e o sinal de detecção de MS. Como outro confirmação dea penetração celular, uma mudança dramática dos sinais de MS pode ser observada sobre a penetração da membrana da célula. Os sinais de MS de compostos intracelulares geralmente pode durar ~ 15-20 seg antes de uma diminuir significativamente. </li><li> Mais abaixo, a célula que contém placa para puxar a ponta-sonda única para fora da célula. Toma geralmente &lt;15 seg para os sinais iónicos dos compostos celulares para aproximar o nível de ruído. Deixe o fluxo de solvente para ~ 3 min para lavar completamente a single-sonda. Enquanto isso, posicionar o sistema de estrado XYZ motorizado para localizar a célula seguinte a ser analisado. Cada experimento célula requer ~ 3 min a ser realizado. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Vickerman, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+imaging+and+depth+profiling+by+mass+spectrometry-SIMS%2C+MALDI+or+DESI%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Analyst%22%5BJournal%5D)">Molecular imaging and depth profiling by mass spectrometry-SIMS, MALDI or DESI?</a> Analyst. 136 (11), 2199-2217 (2011).</li>
<li>Schwamborn, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+mass+spectrometry+in+biomarker+discovery+and+validation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Proteomics%22%5BJournal%5D)">Imaging mass spectrometry in biomarker discovery and validation.</a> J. Proteomics. 75 (16), 4990-4998 (2012).</li>
<li>Schwamborn, K., Caprioli, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MALDI+Imaging+Mass+Spectrometry+-+Painting+Molecular+Pictures%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Oncol%22%5BJournal%5D)">MALDI Imaging Mass Spectrometry - Painting Molecular Pictures.</a> Mol Oncol. 4 (6), 529-538 (2010).</li>
<li>Kraft, M. L., Klitzing, H. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+lipids+with+secondary+ion+mass+spectrometry%5BTitle%5D)+AND+%22Biochim.+Biophys.+Acta%22%5BJournal%5D)">Imaging lipids with secondary ion mass spectrometry.</a> Biochim. Biophys. Acta. 1841 (8), 1108-1119 (2014).</li>
<li>Wiseman, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Desorption+electrospray+ionization+mass+spectrometry%3A+Imaging+drugs+and+metabolites+in+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Desorption electrospray ionization mass spectrometry: Imaging drugs and metabolites in tissues.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 105 (47), 18120-18125 (2008).</li>
<li>Nemes, P., Woods, A. S., Vertes, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simultaneous+imaging+of+small+metabolites+and+lipids+in+rat+brain+tissues+at+atmospheric+pressure+by+laser+ablation+electrospray+ionization+mass+spectrometry%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Chem%22%5BJournal%5D)">Simultaneous imaging of small metabolites and lipids in rat brain tissues at atmospheric pressure by laser ablation electrospray ionization mass spectrometry.</a> Anal. Chem. 82 (3), 982-988 (2010).</li>
<li>Laskin, J., Heath, B. S., Roach, P. J., Cazares, L., Semmes, O. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue+Imaging+Using+Nanospray+Desorption+Electrospray+Ionization+Mass+Spectrometry%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Chem%22%5BJournal%5D)">Tissue Imaging Using Nanospray Desorption Electrospray Ionization Mass Spectrometry.</a> Anal. Chem. 84 (1), 141-148 (2012).</li>
<li>Wu, C., Dill, A. L., Eberlin, L. S., Cooks, R. G., Ifa, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mass+spectrometry+imaging+under+ambient+conditions%5BTitle%5D)+AND+%22Mass.+Spectrom.+Rev%22%5BJournal%5D)">Mass spectrometry imaging under ambient conditions.</a> Mass. Spectrom. Rev. 32 (3), 218-243 (2013).</li>
<li>Altschuler, S. J., Wu, L. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+heterogeneity%3A+do+differences+make+a+difference%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Cellular heterogeneity: do differences make a difference?</a> Cell. 141 (4), 559-563 (2010).</li>
<li>Amantonico, A., Urban, P. L., Fagerer, S. R., Balabin, R. M., Zenobi, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-Cell+MALDI-MS+as+an+Analytical+Tool+for+Studying+Intrapopulation+Metabolic+Heterogeneity+of+Unicellular+Organisms%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Chem%22%5BJournal%5D)">Single-Cell MALDI-MS as an Analytical Tool for Studying Intrapopulation Metabolic Heterogeneity of Unicellular Organisms.</a> Anal. Chem. 82 (17), 7394-7400 (2010).</li>
<li>Passarelli, M. K., Ewing, A. G., Winograd, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-cell+lipidomics%3A+characterizing+and+imaging+lipids+on+the+surface+of+individual+Aplysia+californica+neurons+with+cluster+secondary+ion+mass+spectrometry%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Chem%22%5BJournal%5D)">Single-cell lipidomics: characterizing and imaging lipids on the surface of individual Aplysia californica neurons with cluster secondary ion mass spectrometry.</a> Anal. Chem. 85 (4), 2231-2238 (2013).</li>
<li>Shrestha, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subcellular+metabolite+and+lipid+analysis+of+Xenopus+laevis+eggs+by+LAESI+mass+spectrometry%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Subcellular metabolite and lipid analysis of Xenopus laevis eggs by LAESI mass spectrometry.</a> PLoS One. 9 (12), e115173(2014).</li>
<li>Mizuno, H., Tsuyama, N., Harada, T., Masujima, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live+single-cell+video-mass+spectrometry+for+cellular+and+subcellular+molecular+detection+and+cell+classification%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mass.+Spectrom%22%5BJournal%5D)">Live single-cell video-mass spectrometry for cellular and subcellular molecular detection and cell classification.</a> J. Mass. Spectrom. 43 (12), 1692-1700 (2008).</li>
<li>Zhang, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+Situ+metabolic+analysis+of+single+plant+cells+by+capillary+microsampling+and+electrospray+ionization+mass+spectrometry+with+ion+mobility+separation%5BTitle%5D)+AND+%22Analyst%22%5BJournal%5D)">In Situ metabolic analysis of single plant cells by capillary microsampling and electrospray ionization mass spectrometry with ion mobility separation.</a> Analyst. 139 (20), 5079-5085 (2014).</li>
<li>Rao, W., Pan, N., Yang, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+Resolution+Tissue+Imaging+Using+the+Single-probe+Mass+Spectrometry+under+Ambient+Conditions%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Soc.+Mass.+Spectrom%22%5BJournal%5D)">High Resolution Tissue Imaging Using the Single-probe Mass Spectrometry under Ambient Conditions.</a> J. Am. Soc. Mass. Spectrom. 26 (6), 986-993 (2015).</li>
<li>Pan, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+single-probe%3A+a+miniaturized+multifunctional+device+for+single+cell+mass+spectrometry+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Chem%22%5BJournal%5D)">The single-probe: a miniaturized multifunctional device for single cell mass spectrometry analysis.</a> Anal. Chem. 86 (19), 9376-9380 (2014).</li>
<li>Thomas, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualization+of+High+Resolution+Spatial+Mass+Spectrometric+Data+during+Acquisition%5BTitle%5D)+AND+%222012+Annual+International+Conference+of+the+Ieee+Engineering+in+Medicine+and+Biology+Society+%28Embc%29%22%5BJournal%5D)">Visualization of High Resolution Spatial Mass Spectrometric Data during Acquisition.</a> 2012 Annual International Conference of the Ieee Engineering in Medicine and Biology Society (Embc). , 5545-5548 (2012).</li>
<li>Luxembourg, S. L., Mize, T. H., McDonnell, L. A., Heeren, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-spatial+resolution+mass+spectrometric+imaging+of+peptide+and+protein+distributions+on+a+surface%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Chem%22%5BJournal%5D)">High-spatial resolution mass spectrometric imaging of peptide and protein distributions on a surface.</a> Anal. Chem. 76 (18), 5339-5344 (2004).</li>
<li>Zhou, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((OSW-1%3A+a+natural+compound+with+potent+anticancer+activity+and+a+novel+mechanism+of+action%5BTitle%5D)+AND+%22J+Natl+Cancer+Inst%22%5BJournal%5D)">OSW-1: a natural compound with potent anticancer activity and a novel mechanism of action.</a> J Natl Cancer Inst. 97 (23), 1781-1785 (2005).</li>
<li>Rao, W., Pan, N., Tian, X., Yang, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-Resolution+Ambient+MS+Imaging+of+Negative+Ions+in+Positive+Ion+Mode%3A+Using+Dicationic+Reagents+with+the+Single-Probe%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Soc.+Mass.+Spectrom%22%5BJournal%5D)">High-Resolution Ambient MS Imaging of Negative Ions in Positive Ion Mode: Using Dicationic Reagents with the Single-Probe.</a> J. Am. Soc. Mass. Spectrom. 27 (1), 124-134 (2016).</li>
<li>Ostrowski, S. G., Kurczy, M. E., Roddy, T. P., Winograd, N., Ewing, A. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Secondary+ion+MS+imaging+to+relatively+quantify+cholesterol+in+the+membranes+of+individual+cells+from+differentially+treated+populations%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Chem%22%5BJournal%5D)">Secondary ion MS imaging to relatively quantify cholesterol in the membranes of individual cells from differentially treated populations.</a> Anal. Chem. 79 (10), 3554-3560 (2007).</li>
</ol>

Não temos conflito de interesses a declarar com o trabalho aqui apresentado.

O single-sonda é um dispositivo multifuncional que pode ser usado para ambos os experimentos MSI e SCMS. A configuração-sonda única (incluindo sistemas de fase de tradução, microscópios, flange interface de fonte de íons, etc.) é concebido como um componente add-on que podem ser flexivelmente adaptado para o espectrómetro de massa existente. A troca rápida entre o setup-sonda única e a fonte de iões convencional ESI pode ser realizado dentro de um minuto. Em princípio, usando a flange de interface fonte de iões apropriado, a configuração-sonda única pode ser adaptado para as outras espectrómetros de massa. Além disso, o solvente de amostragem contendo uma variedade de reagentes pode ser usado com a configuração-sonda única para experiências MSI e SCMS reactivos, o que aumenta a detecção de intervalos mais amplos de biomoléculas. Em adição aos tecidos de animais e linhas de células, a única sonda é também capaz de analisar outros sistemas biológicos, tais como plantas. Portanto, com a mesma configuração experimental eformação de utilizador semelhante, uma variedade de estudos podem ser realizados usando um único aparelho e pelos mesmos utilizadores, permitindo experiências eficiente e versátil para ser realizada com o mínimo de tempo de formação e custo da instrumentação. O componente chave da técnica MS-sonda única é a própria sonda. A qualidade do single-sonda tem uma influência significativa sobre o seu desempenho, que determina em grande parte a qualidade de ambos os experimentos MSI e SCMS. Para a confecção de sondas individuais, certifique-se que os capilares dentro do tubo dual-furo estão firmemente coladas para eliminar a possibilidade de vazamento de solvente durante os experimentos. É crítico para usar uma quantidade mínima de UV epoxi curável, de tal modo que os orifícios e os capilares não são obstruídas durante a fabricação sonda. A única sonda foi utilizada para realizar a resolução espacial e de massa de alta ambiente MSI em 15 amostras biológicas. A principal vantagem da MSI ambiente durantemétodos não ambiente é que a preparação da amostra é mantida a um mínimo, sem necessidade de um meio de amostragem de vácuo, que permite que a amostra a ser analisada num próximo estado nativo 8. Um dos principais obstáculos para a técnica MSI maioria outro ambiente tem sido uma falta de resolução espacial 1. Em comparação com a dessorção com base MSI técnicas (tais como DESI e LAESI), o pequeno tamanho da ponta do single-sonda permite que um líquido superfície micro-extracção mais robusto e eficiente para ser realizada sobre uma área pequena, levando a uma elevada resolução espacial de 8,5 mm, que está entre os mais altos obtidos utilizando técnicas MSI ambiente 15. Além disso, o ajuste dos componentes do solvente de amostragem proporciona flexibilidade adicional para realizar as experiências. Por exemplo, a amostragem de solventes contendo reagentes (por exemplo, compostos dicationic) têm sido utilizados para realizar experiências MSI reactivos, permitindo um aumento significativo no número de metabolitos identificados peexperimento r 20. A outra vantagem da única sonda é a concepção integrada, que proporciona a facilidade de operação durante todo o processo de aquisição de dados. Uma vez que a distância entre a ponta e a superfície do tecido é muito sensível para a intensidade de sinal e a estabilidade de iões, obtendo-se uma secção de tecido plano e condução de superfície achatamento ajustamento para minimizar a variância distância é uma chave para experiências MSI alta qualidade. Daqui resulta que as técnicas de MSI-sonda única não são adequados para obter altas imagens espaciais MS de superfícies irregulares. Além disso para o fabrico de uma sonda de alta qualidade, ajustando cuidadosamente o instrumento é essencial para um experimento MSI bem sucedida. Entre todos os passos de ajuste, o ajuste da altura da ponta da sonda única acima da superfície da secção de tecido é o mais crítico. Ao ajustar a altura da sonda, bombear o solvente de amostragem e ligue a tensão de ionização, de modo que somente os sinais de íon de fundo solvente pode ser observEd. Em seguida, monitorar a alteração do espectro de massa, reduzindo cuidadosamente a distância sonda-superfície, levantando o Z-platina motorizada até que podem ser observados os sinais iónicos fortes e estáveis ​​da secção de tecido; esta altura da sonda será utilizada para a coleta de dados MSI durante o experimento. Além disso, uma taxa de fluxo de solvente optimizada é essencial para experiências MSI. Ajustar o caudal com a altura da sonda optimizado. Certifique-se de que não há nenhuma propagação solvente sobre a superfície do tecido (isto é, taxa de fluxo é muito alta) ou formação de bolhas no interior do emissor de nano-ESI (isto é, taxa de fluxo é muito baixa). O single-sonda é um dispositivo multifuncional para bioanalysis. Além das experiências MSI, é capaz de realizar quase em tempo real in situ SCMS para elucidar informação química detalhada a partir de células eucarióticas vivas 16, que é uma grande vantagem em comparação com outros vácuo técnicas SCMS base (tais como MALDI 10 e SIMS 21 </sup&gt;). O tamanho pequeno da ponta da sonda proporciona a capacidade de ser inserido numa célula eucariótica viva e para extrair e ionizar os compostos intracelulares para análise MS imediato. Do mesmo modo, os solventes de amostragem contendo reagentes (por exemplo, compostos dicationic) pode ser usado nas experiências SCMS, e uma gama mais ampla de constituintes celulares pode ser detectado numa célula única ao vivo do que nunca antes (investigação em curso, os dados não são apresentados). Embora a análise em tempo real irá fornecer os perfis químicos de células únicas vivas, devido à penetração de células de membrana e de extracção dos conteúdos celulares, a célula sob investigação serão mortos após a experiência, o que implica que a técnica de SCMS-sonda único ainda é um método destrutivo. Além disso, a ponta da sonda e nano-ESI emissor no single-sonda pode ser facilmente obstruídos para usuários inexperientes. Para reduzir a possibilidade de entupimento do dispositivo, certifique-se para evitar tocar o núcleo ao inserir a ponta-sonda única em um celeu. Se ocorre o entupimento, o dispositivo pode ser regenerado por aquecimento até a ponta da sonda entupido ou nano-ESI emissor utilizando um homebuilt bobina de aquecimento 16. Outra limitação da técnica SCMS-sonda única é que apenas as células adesivas (isto é, as células estão associadas a superfícies) podem ser analisados ​​usando o programa de configuração corrente. No entanto, através da incorporação do sistema de manipulação de células para dentro do aparelho MS-sonda única, os tipos mais amplas de células podem ser estudados no futuro. Semelhante à experiência MSI, obtendo-se uma sonda de elevada qualidade e uma taxa de fluxo de solvente optimizado é crítica para estudos SCMS. Ao ajustar a taxa de fluxo de solvente, a ponta da sonda único é colocado por cima da amostra (isto é, sem contacto com o meio de células ou cultura), e garantir que não existe qualquer gotejamento do solvente a partir da ponta da sonda ou a formação de bolhas no interior do nano-ESI emissor.

A imagem por espectrometria de massa (MSI) é uma técnica de imagem molecular relativamente nova para fornecer a distribuição espacial dos compostos de interesse nas superfícies. Durante a análise MSI, as medições de espectrometria de massa (MS) são registradas em toda a superfície em uma base de pixel individual para criar uma imagem 2D das espécies de interesse 1. As técnicas de MSI têm a capacidade de fornecer uma distribuição de recursos espacialmente resolvida para uma grande variedade de metabólitos, permitindo que uma quantidade muito maior de informações seja obtida de uma amostra do que do uso de técnicas tradicionais de imagem molecular, e têm o potencial de melhorar muito a análise de amostras biológicas para estudos biológicos e farmacológicos 2. O MSI pode ser amplamente separado em abordagens não ambientais e ambientais. As técnicas de análise MSI não ambiente, como ionização por dessorção a laser assistida por matriz (MALDI) MS 3 e íon secundário de tempo de voo MS (ToF SIMS) 4, são capazes de alta resolução espacial (cerca de 5 μm e 100 nm, respectivamente) e alta sensibilidade. No entanto, esses métodos requerem uma extensa preparação de amostras, como a aplicação de moléculas de matriz na superfície da amostra e um ambiente de amostragem a vácuo, o que poderia introduzir artefatos nos dados obtidos. Técnicas ambientais, como ionização por eletrospray de dessorção (DESI) MS 5, ionização por eletrospray por ablação a laser (LAESI) MS 6 e nano-DESI MS 7, são capazes de MSI de amostras com pouca ou nenhuma preparação prévia no ambiente ambiente, que é capaz de produzir imagens de MS que potencialmente refletem a amostra em seu estado mais nativo. No entanto, a maioria dessas técnicas geralmente carece de alta resolução espacial e sensibilidade de detecção em comparação com as técnicas não ambientais, com experimentos normalmente conduzidos em torno de 150 μm por pixel 8.
A análise de célula única (SCA) é um campo em crescimento que tem a capacidade de caracterizar a composição química de amostras biológicas no nível celular. A SCA permite a análise de sistemas biológicos em um nível mais fundamental do que as técnicas tradicionais de análise celular, que produzem um resultado médio de uma população de células, potencialmente fornecendo insights que antes eram intratáveis 9. As técnicas de MS foram recentemente aplicadas à SCA (denominada espectrometria de massa de célula única ou SCMS) usando técnicas não ambientais, como MALDI MS 10 e ToF SIMS 11, nas quais as células são pré-tratadas antes da análise, e com técnicas ambientais, como LAESI MS 12 e métodos de extração direta, como vídeo de célula única ao vivo-MS 13, 14, para analisar uma ampla variedade de tipos de células, como ovo, planta e câncer. As técnicas ambientais têm a vantagem de serem aplicadas a células vivas, o que novamente minimiza os artefatos, levando a uma melhor representação dos metabólitos nas células vivas. Os métodos baseados em extração direta descritos acima, no entanto, realizam o processo de extração e análise da amostra em duas etapas diferentes, o que resulta em um intervalo de tempo durante a análise que pode alterar os metabólitos presentes na amostra. 
A sonda única, um dispositivo multifuncional miniaturizado que é capaz de realizar MSI ambiente de alta resolução espacial em seções de tecido biológico 15 e SCMS in-situ quase em tempo real em células únicas vivas 16. A sonda única tem uma construção integrada que é composta por um capilar de quartzo de furo duplo puxado acoplado a uma entrada de fornecimento de solvente e um emissor nano-ESI feito de capilares de sílica fundida, permitindo que a entrega de solvente e a extração do analito sejam realizadas a partir de um único dispositivo. No modo MSI ambiente, a sonda única é colocada sobre o tecido da amostra e ocorre a microextração da superfície, permitindo que uma imagem MS rasterizada seja feita em alta resolução espacial. Particularmente, a ponta cônica da sonda única é pequena o suficiente para ser inserida em células eucarióticas vivas para análise SCMS in-situ, onde a detecção do metabólito leva menos de dois segundos entre a inserção da sonda e a detecção de MS, permitindo que as informações químicas sejam obtidas quase em tempo real. Aqui estão os protocolos para fabricar o dispositivo de sonda única e conduzir os modos MSI e SCMS ambiente usando as técnicas MS de sonda única.

<table><tbody><tr><td colspan="4">fabricação de sonda única</td></tr>tubulação <tr><td>de quartzo de furo duplo, 1.120' &rsquo; &vezes; 0,005" &vezes; 12"</td><td>Friedrich & Dimmock, Inc, Millville, NJ&nbsp;</td><td>MBT-005-020-2Q</td><td></td></tr><tr><td>Micropipeta extrator de laser&nbsp;</td><td>Sutter Instrument Co., Novato, CA&nbsp;</td><td>Modelo P-2000</td><td></td></tr><tr><td>Capilar de sílica fundida, ID: 40&nbsp; &micro; m, OD: 110&nbsp; &micro; m</td><td>Molex, Lisle, IL</td><td>TSP040105</td><td></td></tr><tr><td>resina de cura UV&nbsp;</td><td>Prime Dental, Prime-Dent, Chicago, IL, EUA</td><td>Item No. 006.030</td><td></td></tr><tr><td>Lâmpada UV LED</td><td>Foshan Liang Ya Dental Equipment, Guangdong, China</td><td>LY-C240</td><td></td></tr><tr><td>Resina epóxi</td><td>Devcon, Danvers, MA&nbsp;</td><td>Parte No. 20945</td><td></td></tr><tr><td>Microfiltro Inline&nbsp;</td><td>IDEX Saúde & Science LLC, Lake Forest, IL</td><td>M-520</td><td></td></tr><tr><td>Microunion&nbsp;</td><td>IDEX Saúde & Science LLC, Lake Forest, IL</td><td>M-539</td><td></td></tr><tr><td>Lâmina de microscópio (vidro)</td> <td>C & Um Científico - Premiere, Manassas, VA&nbsp;</td><td>Seringa 9105</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp;</td><td>Hamilton, Reno, NV</td><td>1725LTN 250UL</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Mass spectrometer</td></tr><tr><td>LTQ Orbitrap Mass sprectrometer</td><td>Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA&nbsp;</td><td>LTQ Orbitrap XL</td><td></td></tr><tr><td>Xcalibur 2.1 Software</td><td>Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA&nbsp;</td><td></td><td></td>XCALIBUR21</tr><tr><td>Fance Stage Control</td><td>Pacific Northwest National Laboratory, Richland, WA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>MSI QuickView</td><td>Pacific Northwest National Laboratory, Richland, WA</td><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Dispositivo de fechamento de contato</td></tr><tr><td>USB-6009 DAQ multifuncional</td><td>National Instruments, Austin, TX</td><td>779026-01</td><td></td></tr><tr><td>DR-5V SDS Relé</td><td>Panasonic, Kadoma, Japão&nbsp;</td><td>DR-SDS-5</td><td></td></tr><tr><td>Logic Gates 50 Ohm Line Driver</td><td>Texas Instruments, Dallas, TX&nbsp;</td><td>SN74128N</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Configuração de sonda única</td></tr><tr><td>Palco linear motorizado e controlador (3 conjuntos)</td><td>Newport, Irvine, CA</td><td>Conex-MFACC</td><td></td></tr><tr><td>Estágio XYZ miniatura</td><td>Newport, Irvine, CA</td><td>MT-XYZ&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Estágio XY de tradução</td><td>ThorLab, Newton, NJ</td><td>PT1 e PT102</td><td></td></tr><tr><td>Flange de interface de fonte de íons Thermo LTQ XL</td><td>Novo objetivo, Woburn, MA&nbsp;</td>Microscópio estereofónico de <td>PV5500</td><td></td></tr><tr><td>Digitas, 250X - 2,000X</td><td>Shenzhen D& F Co., Shenzhen, China</td><td>Supereyes T004</td><td></td></tr><tr><td>Microscópio de Fotografia Digital USB&nbsp;</td><td>DX.com, Hong Kong, China</td><td>S02 25~500X&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Bomba de seringa</td><td>Chemyx Inc., Stafford, TX&nbsp;</td><td>Nexus 3000</td><td></td></tr><tr><td>Placa de Ensaio Óptica de Alumínio Sólido, 8" x 8" x 1/2"</td><td>Thorlabs, Newton, NJ</td><td>MB810</td><td></td></tr><tr><td>Suporte de braçadeira flexível</td><td>Siskiyou, Grants Pass, OR&nbsp; &nbsp;</td><td>MXB-3h</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Solventes</td></tr><tr><td>Methol&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich, St. Louis, MO</td><td>34860 Chromasolv</td><td></td></tr><tr><td>Water</td><td>Sigma-Aldrich, St. Louis, MO</td><td>W4502</td><td></td></tr><tr><td>Acetonitrila</td><td>Sigma-Aldrich, St. Louis, MO</td><td>34967 Chromasolv</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Cultura de células</td></tr><tr><td>Dulbecco' s Águia Modificada' s Medium (DMEM)&nbsp;</td><td>Cellgro, Manasas, VA</td><td>10-013-CV</td><td></td></tr><tr><td>10% de soro fetal bovino inativado por calor (FBS)</td><td>Gibco/Life Technologies, Long Island, NY</td><td>10100-139</td><td></td></tr><tr><td>Penicilina/Streptomicina&nbsp;</td><td>Cellgro, Manasas, VA</td><td>30-002-CI</td><td></td></tr><tr><td>10 mM HEPES (pH 7,4)&nbsp;</td><td>Cellgro, Manasas, VA</td><td>25-060-CI</td><td></td></tr><tr><td>Solução salina tamponada com fosfato (PBS)&nbsp;</td><td>Cellgro, Manasas, VA</td><td>46-013-CM</td><td></td></tr><tr><td>TrypLE Express&nbsp;</td><td>Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA&nbsp;</td><td>12604-013</td><td></td></tr><tr><td>Placas de 12 poços&nbsp;</td><td>Corning Inc., Corning, NY&nbsp;</td><td>Falcon 351143</td><td></td></tr><tr><td>Cantil T25</td><td>Corning Inc., Corning, NY&nbsp;</td>Óculos de Cobertura Micro <td>Falcon 3055</td><td></td></tr><tr><td>, Redondos, No. 1</td><td>VWR International, Radnor, PA&nbsp;</td><td>48380-046</td><td></td></tr><tr><td>DMSO (Dimetil Sulfóxido)</td> <td>VWR International, Radnor, PA&nbsp;</td><td>BDH1115-1LP</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Imagem de tecido</td></tr><tr><td>Cyro-Cut Microtomo</td><td>American Optical Coporation</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tissue-Tek, Temperatura de corte ótima (OCT)&nbsp;</td><td>Sakura Finetek Inc., Torrance, CA</td><td>4583</td><td></td></tr><tr><td>Lâmina de microscópio (policarbonato)</td><td>Science Supply Solutions, Elk Grove Village, IL</td><td>P11011P</td><td></td></tr></tbody></table>

aplicações da sonda individual: imagem espectrometria de massa e análise única célula sob condições ambientais

Applications of the Single-probe: Mass Spectrometry Imaging and Single Cell Analysis under Ambient Conditions

A imagem por espectrometria de massa (MSI) e a análise de espectrometria de massa de célula única (SCMS) in-situ em condições ambientais são dois campos emergentes com grande potencial para a análise detalhada de espectrometria de massa (MS) de biomoléculas de amostras biológicas. A sonda única, um dispositivo miniaturizado com recursos integrados de amostragem e ionização, é capaz de realizar análises MSI ambiente e SCMS in-situ. Para MSI ambiente, a sonda única usa microextração de superfície para conduzir continuamente a análise de MS da amostra, e essa técnica permite a criação de imagens de MS com alta resolução espacial (8,5 μm) a partir de amostras biológicas, como cérebro de camundongo e seções renais. O MSI ambiente tem a vantagem de que pouca ou nenhuma preparação de amostra é necessária antes da análise, o que reduz a quantidade de artefatos potenciais presentes na aquisição de dados e permite uma análise mais representativa da amostra a ser adquirida. Para SCMS in-situ, a ponta de sonda única pode ser inserida diretamente em células eucarióticas vivas, como células HeLa, devido ao pequeno tamanho da ponta de amostragem (< 10 μm), e esta técnica é capaz de detectar uma ampla gama de metabólitos dentro de células individuais quase em tempo real. O SCMS permite que uma maior sensibilidade e precisão das informações químicas sejam adquiridas no nível de uma única célula, o que pode melhorar nossa compreensão dos processos biológicos em um nível mais fundamental do que era possível anteriormente. O dispositivo de sonda única pode ser potencialmente acoplado a uma variedade de espectrômetros de massa para uma ampla gama de estudos MSI e SCMS.

O single-sonda foi usada com sucesso para a análise MSI ambiente de rato seccionado tecido renal 15. O dispositivo utiliza o mecanismo de líquido da superfície das micro-extracção (Figura 1a), o qual proporciona extracção de analito altamente eficiente a partir de uma pequena área, levando a abundantes sinais iónicos intensidades nos resultados MSI. Por exemplo, as intensidades de sinal de mais do que 10 7 foram alcançados para alguns metabolitos abundantes (Figura 2A). Um grande número de metabolitos foram detectados desta maneira, incluindo uma série de esf ingomielina (SM) e a fosfatidilcolina (PC) espécies, tais como [Sm (34: 1) + Na] + (725,5575 m / z), [PC (32: 0) + H] + (734,5700 m / z), [PC (34: 1) + Na] + (782,5696 m / z), e [PC (38: 5 + Na)] + (814,5726 m / z). Estes compostos foram identificados com massa de alta resolução e precisão em massa quando acoplado tespectrômetro de massa de alta resolução OA. Por exemplo, a identificação foi conseguida com menos do que 4 ppm m / z precisão de massa (isto é, a diferença entre os valores observados e teóricos) para cada metabolito (Figura 2b) nos resultados aqui apresentados. Além disso, em tandem MS análises (isto é, MS / MS) foram também conduzidos para a identificação de espécies mais confiante de interesse 15. Devido à capacidade de realizar eficiente de micro-extração líquido sobre uma área pequena, o dispositivo de sonda única pode ser usado para executar as experiências de alta resolução espacial MSI sob condições ambiente de 15. Por exemplo, imagens detalhadas MS de secções de rim de rato foram obtidos ilustrando a distribuição espacial dos metabolitos seleccionados (Figura 2C). A resolução espacial da imagem de MS foram determinados para ser 8,5 fiM, seguindo a métrica amplamente utilizado de ter a transiti. no ponto de uma característica dentro de um determinado afiado 20-80% de alteração de intensidade do sinal de MS 18 No caso de fosfolípido [PC (38: 5 + Na)] + na secção de rim de rato, o recurso de transição entre a medula interna ea medula externa tem lugar através de um ciclo de scan no cronograma, mostrando uma mudança de intensidade superior a 20-80 gama%. Com base na velocidade de amostra em movimento (10,0? M / seg) e MS taxa de aquisição de dados (0,85 seg / espectro), a amostra em movimento distância em uma MS digitalizar ciclo (8,5 ^ M), isto é, a resolução espacial MSI, pode ser calculado (Figura 2d). Esta resolução espacial é das mais elevadas ainda alcançado por técnicas MSI ambientais realizados em amostras biológicas. Para SCMS o single-sonda foi capaz de alcançar a análise de células HeLa vivas individuais 16. O tamanho da ponta da sonda única é normalmente inferior a 10 uM (Figure 3a), que é suficientemente pequeno para ser directamente inserida em vários tipos de células eucarióticas, dos quais o diâmetro é de aproximadamente 10 uM, para a extracção e análise por MS. O processo de inserção da ponta de sonda única para uma célula pode ser visualmente monitorizado utilizando um microscópio estéreo digital (Figura 3b), e a penetração da membrana celular pode ser confirmada através da mudança rápida e significativa dos espectros de massa de PBS (ou de cultura de células fresco médio) para compostos intracelulares (Figuras 3C e 3D). As experiências pode ser realizado em ambos os modos de iões positivos e negativos para detectar tipos de espécies moleculares mais amplas. Por exemplo, 18 espécies de lípidos diferentes foram identificados no modo positivo, incluindo esf ingomielinas (SM) e fosfatidilcolinas (PC), ao passo que os fosfatos de adenosina (AMP, ADP e ATP) foram detectados no modo de ião negativo (Figuras 3C e d). O retardo de tempo entre a sonda única inserção into uma célula e o sinal de detecção era tipicamente menos de dois segundos, permitindo uma detecção quase em tempo real dos metabolitos celulares. SCMS também foi aplicada a experiências onde as células foram tratadas com fármacos anti-cancro (por exemplo, OSW-1, paclitaxel, doxorrubicina) e 19]. Os medicamentos correspondentes podem ser detectados dentro de células HeLa após tratamento de 4 horas a uma série de concentrações (isto é, 10 nM, 100 nM, 1 pM e 10 pM) em DMSO (dimetil sulfóxido), utilizando as células não tratadas (adicionar apenas DMSO ), como os controlos. Os sinais de MS de drogas não estavam presentes dentro do PBS extracelular ou o controlo (Figura 3e), mas foi detectada dentro das células individuais utilizando a técnica MS-sonda única (apenas a 100 nM resultados do tratamento são mostrados na Figura 3F). Como as células foram enxaguadas com PBS (ou meio de cultura celular fresco) para remover compostos extracelulares e contaminações, a detecção de metabolitos endógenos (por exemplo, lípidos celulares and fosfatos de adenosina) e de compostos exógenos (por exemplo, fármacos anti-cancerígenos) indica que a técnica de MS-sonda standard pode ser utilizado para analisar compostos intracelulares. <img alt="figura 1" src="/files/ftp_upload/53911/53911fig1.jpg" /> Figura 1. Fabricação e configuração da sonda única para análise MSI e SCMS ambiente. A) procedimentos de fabricação do single-sonda. B) Fotografia de uma única sonda fabricada ligado a uma lâmina de vidro. C) Fotografia da única configuração de sonda ligada a uma massa espectrômetro. d) Diagrama do setup-sonda única acoplado com um espectrômetro de massa. Durante uma experiência, o solvente de amostragem é fornecida continuamente a partir da seringa, a voltagem de ionização é aplicada para a união condutora do espectrómetro de massa, dois microscópios digitais são utilizados para monitorizar a colocação da amostra, a fase XYZ motorizadosistema é utilizado para controlar o movimento da amostra, e um espectrômetro de massa é usada para análise. e) fotografia do sistema de estereoscópio digitais personalizados. f) Fotografia que mostra o estereoscópio digital anexada à flange interface de fonte de íons através de uma placa óptica. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53911/53911fig1large.jpg" target="_blank">Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a> <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/53911/53911fig2.jpg" /> Figura 2. Resultados de um estudo MSI ambiente de uma seção do mouse rim com alta resolução espacial e de massa. A) Um espectro de massa representante do single-sonda MSI. A intensidade máxima de metabólitos detectados pode chegar a 3,39 x 10 7 (unidades arbitrárias). B) A seleção dos metabólitos detectados apresentados com sua precisão em massa. C)MS imagens de [PC (32: 0) + H] + e [PC (34: 1) + Na] + tomadas a partir de uma secção de rim de rato em 8,5 uM resolução espacial. PC: fosfatidilcolina. Barra de escala: 2 mm; 0,20 mm (no detalhe) d) Determinação da resolução espacial da imagem MS para. [PC (38: 5) + Na] + (adaptado com permissão de referência 15). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53911/53911fig2large.jpg" target="_blank">Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a> <img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/53911/53911fig3.jpg" /> Figura 3. Resultados de uma análise SCMS ambiente de drogas células HeLa tratadas com alta resolução de massa. A) zoom de fotografia da ponta da sonda única que mostra um tamanho típico de &lt;10 um de diâmetro. B) A fotografia feita no ponto de inserção-sonda única para uma célula HeLa. Barra de escala: 50 ^ m.C) Um espectro de massa típico positiva modo de iões com as identificações de um número de PC (fosfatidilcolina) espécies. d) Uma lista representativa dos metabolitos detectados a partir da análise de SCMS de células HeLa, tanto no modo de iões positivos e negativos. EF) Os espectros de massa para o controle e tratada (100 nM OSW-1) células (adaptado com permissão de referência 16). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53911/53911fig3large.jpg" target="_blank">por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a> Figura S1. Diagrama do circuito do dispositivo eletrônico usado para produzir o sinal de fechamento de contato para espectrômetro de massa para coletar dados. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53911/53911figS1.jpg" target="_blank">Por favor clique aqui para visualizar ou baixar este valor.</a>

Aqui, apresentamos protocolos para realizar imagens de espectrometria de massa ambiente (MSI) de tecidos e análise de MS de célula única viva (SCMS) in-situ usando a sonda única, que é um dispositivo multifuncional miniaturizado para análise de MS.

Aplicações da sonda Individual: Imagem Espectrometria de Massa e Análise única célula sob condições ambientais

Mass spectrometry imaging (MSI) and in-situ single cell mass spectrometry (SCMS) analysis under ambient conditions are two emerging fields with great ...

O objetivo geral deste método é criar um dispositivo de amostragem em microescala, o Single-probe, para analisar células únicas vivas utilizando espectrometria de massas em condições ambientes. E para realizar imagens de espectrometria de massas ambientes de tecidos biológicos com alta resolução espacial. Este método pode ajudar a responder perguntas fundamentais em estudos biológicos e farmacêuticos.Por exemplo, quais são as moléculas presentes em células únicas vivas e como elas estão distribuídas nos tecidos. A principal vantagem desta técnica é que a sonda única é um dispositivo multifuncional que pode ser usado tanto para análise de células únicas vivas quanto para experimentos de imagem por espectrometria de massa ambiental de alta resolução. Embora este método possa analisar células únicas e tecidos, ele também pode ser aplicado a outros sistemas onde a amostragem em microescala é desejável, como a análise pontual de produtos químicos e microcolônias vivas e biofilmes.Realizando o procedimento comigo estará Wei Rao, um pós-doutorando do meu laboratório. Coloque um órgão inteiro de camundongo de interesse no centro de um poço plástico pequeno. Mergulhe o órgão em composto de inclusão tecidual até uma altura de cerca de 10 mm.Coloque imediatamente os tecidos em nitrogênio líquido para congelamento rápido. Para preparar o corte de tecido de camundongo, pegue o órgão congelado do camundongo e descongele até 15 graus Celsius em um criostato com temperatura controlada. Fixe o tecido em uma base de aço com aproximadamente 500 microlitros de composto de inclusão de tecidos e coloque-o no suporte de corte do criostato, de modo que a orientação desejada do corte fique voltada para a lâmina.Corte o tecido com espessura de 12 mícrons. Em seguida, coloque as fatias de tecido cortadas sobre lâminas de microscopia de policarbonato e deixe secar por 30 minutos à temperatura ambiente. Obtenha uma amostra celular, como 1 mililitro de Suspensão de Células HeLa, e adicione-a a 9 mL de meio de cultura celular completo em uma placa de cultura celular padrão de 10 cm.Mantenha as células em cultura a 37 graus Celsius, com 5% de CO₂ por dois a três dias, até que a superfície de crescimento esteja coberta em 70-80% na placa de cultura celular. Realize o repicagem celular na placa de cultura celular. Para isso, aspire o meio de crescimento e lave as células com 5 mL de solução salina tamponada com fosfato 1x.Remova o PBS usando uma ponteira de aspiração estéril e incube as células com 2,5 mL de tripsina por aproximadamente 5 minutos a 37 graus Celsius para destacar as células da placa de cultura. Interrompa a atividade da tripsina adicionando 7,5 mL de meio completo de cultura celular e, em seguida, ressuspenda uniformemente as células. Para preparar as amostras celulares para um experimento de espectrometria de massa em única célula, ou SCMS, coloque primeiro lâminas de micro-cobertura individuais nos poços de uma placa de 12 poços.Em seguida, adicione 1,8 mL de meio de cultura celular e 0,2 mL de suspensão celular no poço. Misture suavemente as células com uma leve agitação da placa antes de incubar em um ambiente com 5% de CO2 a 37 graus Celsius, por aproximadamente 24 horas. Para realizar o tratamento farmacológico das células cultivadas, adicione uma solução do composto farmacológico na placa de cultura celular de 12 poços.Coloque o tubo de quartzo com duplo orifício em um puxador de micropipetas a laser e puxe uma agulha de quartzo com duplo orifício. Como pontos iniciais, ajuste o calor para 400, o filamento para três, a velocidade para 80, o atraso para 150 e a tração para 250. Corte a ponta puxada de modo que reste aproximadamente 5 mm de capilar de quartzo com duplo orifício não puxado na outra extremidade.Corte uma seção de 80 mm de capilar de sílica fundida para servir como capilar fornecedor de solvente. Em seguida, insira o capilar em um dos orifícios na extremidade plana da agulha de quartzo com dois orifícios. Usando uma chama para puxar um capilar de sílica fundida e formar um emissor nanoESI, corte-o com comprimento de 7-10 mm e insira-o no outro orifício na extremidade plana da agulha de quartzo com dois orifícios.Aplicar uma quantidade mínima de resina curável por UV na extremidade plana da agulha de quartzo com duplo orifício. Solidificar a resina utilizando uma lâmpada de luz UV de LED por aproximadamente 20 segundos, para fixar o capilar fornecedor de solvente e o emissor nanoESI. Em seguida, cortar ao meio longitudinalmente uma lâmina de microscópio comum de vidro.Em seguida, posicione o capilar único em uma extremidade da lâmina de vidro, de modo que o emissor nanoESI esteja voltado para fora. Aplique o epóxi comum ao corpo do capilar único, de forma que ele fique fixado à lâmina de vidro antes de deixar repousar durante a noite para endurecer. Este sistema inclui um flange de interface de fonte de íons personalizado do espectrômetro de massas e uma placa óptica de alumínio acoplada a um microscópio digital USB, um estágio de translação manual XYZ em miniatura e um sistema de estágio de translação XYZ motorizado.Modifique o flange da interface da fonte de íons do espectrômetro de massas e fabrique o suporte do estereomicroscópio digital conforme descrito no protocolo textual. Fixe o estereomicroscópio digital modificado, um microscópio digital USB, uma plataforma manual miniatura de translação XYZ com suporte de braçadeira flexível e o sistema motorizado de estágio de translação XYZ na placa óptica de alumínio. Utilize o suporte de braçadeira flexível para fixar a lâmina de vidro acoplada a uma única sonda.Em seguida, conecte o conjunto com uma única sonda ao espectrômetro de massas. Ajuste o suporte com braçadeira flexível e o estágio miniatura XYZ para posicionar o emissor da sonda única em frente à entrada do espectrômetro de massas. Deixe a seção da amostra descongelar à temperatura ambiente e coloque-a sobre o sistema motorizado de estágio de translação XYZ localizado abaixo da sonda única.Ajuste a posição da amostra alterando as coordenadas no software de controle. Use uma seringa para bombear o solvente de amostragem em uma taxa apropriada. Em seguida, aplique a tensão de ionização.Ajuste a altura da sonda única para que ela fique logo acima da superfície da amostra, podendo realizar a extração de metabólitos da superfície. Levante cuidadosamente o estágio Z e, em seguida, use o microscópio digital USB para monitorar a variação da distância entre a ponta da sonda única e a superfície do tecido. Defina os parâmetros para varrer a seção de interesse dentro da amostra.Para as seções de rim de camundongo apresentadas aqui, utilize uma velocidade de rasterização de 10 micrômetros por segundo e uma distância de 20 micrômetros entre linhas. Defina os parâmetros para a varredura na seção de interesse dentro da amostra. Para as seções de rim de camundongo apresentadas aqui, utilize uma velocidade de rasterização de 10,0 micrômetro por segundo e uma distância de 20 micrômetros entre linhas.Configure um método para a aquisição automatizada de espectros de MS a partir do espectrômetro de massas. Para a IMS com alta resolução de massa em uma amostra de rim de camundongo, utilize uma resolução de massa de 60.000, modo positivo de 5 kV, 1 microvarredura, tempo máximo de injeção de 150 milissegundos e controle automático de ganho ativado. Inicie a aquisição de dados de IMS e, em seguida, construa imagens de MS a partir dos arquivos brutos de MS conforme descrito no protocolo textual.Configure o sistema de sonda única conforme as instruções para MSI e ajuste a taxa de fluxo do solvente. Lave as células cultivadas aderidas às lâminas de microcobertura com PBS para remover o meio de cultura e componentes extracelulares do fármaco. Em seguida, coloque a lâmina de vidro contendo as células sobre o sistema motorizado de estágio de translação XYZ para o experimento.Foque o estereomicroscópio digital acima da amostra, na ponta da sonda única, para monitorar a penetração celular durante a análise. Use o microscópio digital USB ao lado da sonda única para monitorar as condições de funcionamento do emissor nanoESI na sonda única. Use o programa de controle motorizado do estágio XYZ e o estereomicroscópio digital para localizar uma célula de interesse e posicionar com precisão a ponta da sonda única acima da amostra.Inicie a aquisição de dados de EM antes de inserir a ponta do único sonda na célula. Abaixe a placa contendo a célula para puxar a ponta da única sonda para fora da célula. Por fim, deixe o solvente fluir por aproximadamente três minutos, para lavar completamente a única sonda.A espectrometria de massa ambiental em imagens de cortes de rim de camundongo foi realizada, e um grande número de moléculas presentes na superfície do tecido pode ser detectado. A distribuição espacial e a abundância relativa de múltiplas moléculas na superfície do tecido foram representadas graficamente. Uma resolução espacial de 8,5 mícrons foi alcançada por meio da observação de transições nítidas de características presentes nos dados de espectrometria de massa.A fabricação da sonda única com uma ponta afiada e canais abertos é essencial para a análise de célula única. Microscópios são necessários para localizar as células-alvo e monitorar o processo de penetração celular. A alteração do sinal proveniente dos espectros de massa também fornece informações adicionais para confirmar a penetração celular.Um grande número de moléculas foi detectado em células únicas vivas. Quando utilizado em estudos de fármacos anticancerígenos, experimentos com células controle são empregados para demonstrar a diferença provocada pelo tratamento com o fármaco anticancerígeno. Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como a sonda única é fabricada e de como este dispositivo é usado para análise por espectrometria de massas de célula única e para imageamento por espectrometria de massas ambiente em tecidos biológicos.Em geral, indivíduos novos neste método podem ter dificuldades, pois são necessárias instruções detalhadas para fabricar o dispositivo de sonda única, montar todo o sistema e operar os instrumentos. Uma vez dominado, a análise de célula única pode ser realizada continuamente em muitas células. E cada análise leva menos de três minutos.Finalizar um experimento de imagem por espectrometria de massas em ambiente ambiente pode levar algumas horas, dependendo do tamanho da amostra, da resolução espacial e do espectrômetro de massas utilizado. Ao realizar este procedimento, é importante lembrar que a fabricação de uma sonda única de alta qualidade é a etapa fundamental. Além disso, o ajuste e a operação do instrumento são essenciais para conduzir com sucesso um experimento.Outros métodos podem ser desenvolvidos seguindo procedimentos semelhantes aos apresentados aqui. Por exemplo, reagentes podem ser adicionados ao solvente da amostra e pode-se realizar análise reativa de célula única e IMS em condições ambientes para melhorar a detecção de moléculas das amostras. Após seu desenvolvimento, esta técnica abriu caminho para pesquisadores nas áreas de análise de célula única e de estudos de imagem por espectrometria de massas em condições ambientes.Essa técnica pode ser potencialmente utilizada em pesquisas de biologia celular, estudos de farmacologia e testes clínicos. Não se esqueça de que trabalhar com capilares de quartzo afiados e epóxi curável por UV pode ser perigoso, e precauções, como o uso de luvas e óculos de proteção contra UV, devem sempre ser tomadas ao realizar este procedimento.

applications-single-probe-mass-spectrometry-imaging-single-cell

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Análise única célula é realizada por espectrometria de massa de células vegetais e animais à pressão atmosférica usando uma fibra óptica afiada para provar as células para o laser de ionização electrospray ablação (LAESI) espectrometria de massa.

Análise direta de células individuais por Espectrometria de Massa à pressão atmosférica

Linhas celulares de cancro imortalizadas pode ser cultivada como culturas de células em 3D, um modelo valioso para a pesquisa biológica. Este protocolo descreve imaging espectrometria de massa de culturas de células em 3D, incluindo melhorias na plataforma de preparação de amostras. O objetivo deste protocolo é para instruir os usuários a preparar culturas de células em 3D para análise de imagem espectrometria de massa.

Amostra Estratégias Preparação para Mass Spectrometry imagem da cultura celular 3D Models

Descrevemos as etapas que permitem rápida situ em amostragem de uma pequena porção de uma célula individual com alta precisão e mínima invasão usando microamostragem baseada em capilar, para facilitar a caracterização química de um instantâneo da atividade metabólica em viver de embriões utilizando uma plataforma de espectrometria de massa e eletroforese capilar Custom-Built única célula.

Microsonda eletroforese capilar espectrometria de massa para célula única Metabolomics em embriões de viver rã (Xenopus laevis)

Um novo método de preparação da amostra foi desenvolvido para acomodar coculture célula e tecido para detectar a troca de pequena molécula usando espectrometria de massa de imagens.

Capturando a molécula pequena comunicação entre os tecidos e células usando a imagem latente de espectrometria de massa

Uma plataforma integrada da manipulação da pilha é desenvolvida para o uso conjuntamente com uma instalação de espectrometria maciça da único-ponta de prova para a análise em linha de pilhas individuais da suspensão circunstâncias ambientais.

Plataforma integrada da manipulação da pilha acoplada com a único-ponta de prova para a análise da espectrometria maciça das drogas e dos metabolitos em únicas pilhas da suspensão

Este artigo introduz métodos de preparação de amostras para um método analítico único em tempo real baseado na espectrometria de massa ambiente. Este método nos permite realizar a análise em tempo real das moléculas biológicas in vivo sem nenhum pré-tratamento especial.

Preparação de amostras para espectrometria de ionização de eletrospray de sonda

Este protocolo apresenta uma plataforma integrada de espectroscopia-massa raman (EM) que é capaz de alcançar a resolução unicelular. A espectroscopia raman pode ser usada para estudar a resposta celular aos medicamentos, enquanto a EM pode ser usada para análise direcionada e quantitativa da captação e metabolismo de medicamentos.

Uma plataforma integrada de espectroscopia e espectrometria de massa para estudar a absorção, metabolismo e efeitos de drogas unicelulares

Neste protocolo, descrevemos como preparar células de mamíferos para análise proteômica unicelular via espectrometria de massa usando reagentes e equipamentos comercialmente disponíveis, com opções para pipetagem manual e automática.

Preparação de Proteômica de Célula Única para Análise de Espectrometria de Massa usando Lise de Calor Congelante e um Transportador Isobárico

Este protocolo descreve o uso de microMS para espectrometria de massa MALDI-2 de célula única guiada por fluorescência, permitindo um perfil molecular aprimorado de células neuronais primárias de ratos.

Dessorção/ionização a laser assistida por matriz guiada por fluorescência com espectrometria de massa de postionização induzida por laser de células neurais de ratos individuais

Este protocolo visa preservar metabólitos celulares para espectrometria de massa de célula única (SCMS), combinando lavagem de solução salina volátil, têmpera rápida de nitrogênio líquido, liofilização e armazenamento de -8 °C. Isso demonstra que a extinção do nitrogênio líquido é essencial para manter os perfis de metabólitos, enquanto o armazenamento refrigerado prolongado deve ser minimizado para evitar alterações metabólicas.

Preparação de amostras para estudos metabolômicos de espectrometria de massa de célula única: lavagem, têmpera, secagem e armazenamento de células combinadas

Este protocolo descreve a imagem por espectrometria de massa de célula única de células OVCAR-8 usando ionização por eletrospray por dessorção acoplada a espectrômetros de massa Orbitrap para análise metabolômica de alta resolução espacial.

Imagem por Espectrometria de Massa de Célula Única usando Ionização por Eletrospray por Dessorção Acoplada a Espectrômetros de Massa Orbitrap

Aprenda a usar a sonda Individual para espectrometria de massa de células vivas e imagem de tecidos com alta resolução espacial. Este método avança pesquisas em biologia celular e estudos farmacêuticos.

Aplicações da sonda Individual: Imagem Espectrometria de Massa e Análise única célula sob condições ambientais

Explorar mais vídeos