Name: Análise clínico-patológico de miRNA Expressão em cancro da mama tecidos usando miRNA In Situ Hibridização (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-06-07T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 1 s
Description: Aprenda a detectar a localização de microRNAs em tecidos de câncer de mama usando hibridização in situ. Este método permite identificar padrões de expressão e compreender o papel desses RNAs na patologia tumoral.

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Este trabalho foi apoiado pela bolsa do NIH (5R01 CA178386-03) e pela bolsa USC ASPIRE-1 para HC. Gostaríamos de agradecer a Vrushab Gowda por sua ajuda com o manuscrito.

Este estudo foi aprovado pelo Institutional Review Board do Hospital Chonnam National University Hwasun e University of South Carolina. amostras TMA compostas de câncer de mama e tecidos mamários normais adjacentes combinados foram fornecidos pelo Biobank de Chonnam National Hwasun Hospital Universitário, um membro da Coreia do Biobank rede. 1. Preparação de Soluções <ol><li> Prepare 1 litro de DNase e RNase água livre. Faça todas as soluções químicas usando dietilpirocarbonato (DEPC) água tratada. Tratar 1 L de água com 500 ul de DEPC e incubar durante 3 horas a temperatura ambiente. Autoclave a água para inactivar DEPC. Cuidado: Não inalar DEPC, uma vez que é conhecido agente cancerígeno. </li><li> Prepare 1x PBS a partir de 10x PBS usando DEPC água tratada. </li><li> Prepare 20x SSC (dissolver 175,3 g de NaCl e 88,2 g de citrato de sódio em 800 ml de água, ajustar o pH a 7,0 com algumas gota de 14 N solução de HCl e ajustar o volume a 1 litro com water), paraformaldeído a 4%, etanol a 95%, etanol a 80% usando água tratada com DEPC. </li><li> Adicionar 8 mL de trietanolamina e 1,05 mL de HCl em 590 ml de água tratada com DEPC e adicionar 1,5 ml de anidrido acético para acetilação. </li><li> Preparar 50 ug / mL de proteinase K em tampão (Tris-HCl a 50, pH 8,0 em água tratada com DEPC). </li><li> Preparar tampão de hibridação constituída por 500 mL de formamida, 250 pL de 20x SSC, 100 ul de solução 50x de Denhardt, 12,5 ul de t-RNA, 2,5 ul de ADN de esperma de arenque, 30 ul de RVC, 0,02 g de reagente de bloqueio e 50 ul de água DEPC. Prepare fresco. </li></ol> 2. Os pontos tecido mamário <ol><li> Corte de 5 mm secções embebidas em parafina fixadas em formalina com micrótomo e aplicar a secção de cobrar slide 14. Nota: O tecido da mama usada aqui foi previamente preparado a partir da Coreia do Biobank rede. </li></ol> 3. Preparação do Tecido <ol><li> Remova a parafina from o tecido por imersão em lâminas 2x frasco Coplin em xileno fresco durante 10 minutos cada e re-hidratar a secção de tecido por 5 min em incubações concentrações decrescentes de etanol (100%, 95% e 80%) em ddH 2 O. Execute esta etapa em um exaustor. </li><li> Mergulha-se o tecido em água tratada com DEPC, durante 5 min. Nesta altura, levar limites em torno secção de tecido com a pena barreira hidrofóbica. </li><li> Corrigir o tecido com PFA a 4% durante 15 min, seguido por uma lavagem com PBS. </li><li> Mergulha-se o tecido em 0,3% de Triton X-100 / PBS durante 10 minutos seguido por uma lavagem com PBS. </li><li> Incubar amostra com uma solução de / ul de proteinase K 50 ^ g durante 15 min a 37 ° C. Em seguida, incubar as secções de tecido com trietanolamina e anidrido acético durante 5 min à temperatura ambiente, seguido por uma lavagem com PBS. Sem lavagem com PBS é necessária entre o tratamento com proteinase K e / tratamento anidrido acético trietanolamina. </li></ol> 4. Hibridização <ol><li> Lavar o tecido completamente e incuBATE a secção de tecido com tampão de hibridação durante 2 a 3 horas à temperatura ambiente. Tipicamente 120 ul de tampão de hibridação é suficiente para cobrir a secção de tecido. </li><li> Diluir 5&#39;-DIG marcado com sonda LNA a concentração final de 3:00 em 120 ul de solução de hibridação. À medida que a concentração de estoque geralmente é de 40 ng / ul, adicionar 3 ul de estoque de tampão de hibridação de 120 ul e incubar mistura a 95 ° C durante 5 min. </li><li> Incubar secção de tecido com pernoite sonda a 54 ° C (Tm) em câmara úmida. Normalmente 120 mL é suficiente para cobrir uma seção. Criar umidade usando duas toalhas de papel molhado. O tamanho ideal da câmara é de 10 polegadas por 8 polegadas. </li><li> Nota: Tm pode ser diferente para diferentes miRNA. 54 ° C é de mencionar para miR-489. </li></ol> 5. lavagem rigorosa <ol><li> Lave o tecido com 5x SSC para 7 min (após o passo de hibridação, RNase condições livres não são mais necessários). </li><li> Lave a sagacidade secção de tecidoh 1x SSC durante 7 min, duas vezes a 57 ° C. </li><li> Lava-se a secção de tecido com SSC 0,2x durante 7 minutos a 57 ° C. </li><li> Lava-se a secção de tecido com SSC 0,2x durante 7 min à temperatura ambiente. </li><li> Incubar secção de tecido em PBS durante 10 min. </li></ol> 6. Bloqueio <ol><li> Incubar a secção de tecido com tampão de bloqueio à temperatura ambiente durante 1 hora numa câmara húmida (Para fazer um tampão de bloqueio e juntar 2 ml de FBS, 10 ul de Tween-20 e 3 pi de BSA em 18 m de PBS. Loja tampão de bloqueio a 4 ° C). </li></ol> 7. Anticorpo primário Incubação e Desenvolvimento <ol><li> Diluir 1: anticorpo anti-DIG-AP 300 em tampão de bloqueio e incubar a secção de tecido com o anticorpo, a 4 ° C durante a noite. </li><li> Lavar as seções com tampão de lavagem 3 vezes, durante 5 minutos cada (tampão fornecido pelo kit de desenvolvimento). </li><li> Desenvolver a secção de tecido com um kit comercial para fosfatase alcalina que produz CY-3 luz fluorescente. </li> &lt;li&gt; Lava-se a secção com tampão de lavagem durante 5 minutos. secção mancha com 100 ul de 2,5 ng / mL de corante Hoechst, durante 5 minutos, seguido de uma lavagem de 5 min com tampão de lavagem. </li><li> Montar o tampão com secção de montagem de acordo com o protocolo do fabricante. Use 15 ul por secção de tecido e limpe solução de montagem excessiva com lenço de papel. Selar o slide com unhas polonês claro para evitar vazamentos. </li><li> Observe o microscópio fluorescente seção usando com ampliação de 10x lente de modo total é de 100X. </li></ol>

<ol><li>Shah, N. R., Chen, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MicroRNAs+in+pathogenesis+of+breast+cancer%3A+Implications+in+diagnosis+and+treatment%5BTitle%5D)+AND+%22World+J+Clin+Oncol%22%5BJournal%5D)">MicroRNAs in pathogenesis of breast cancer: Implications in diagnosis and treatment.</a> World J Clin Oncol. 5, 48-60 (2014).</li>
<li>Tang, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((miR-185+suppresses+tumor+proliferation+by+directly+targeting+E2F6+and+DNMT1+and+indirectly+upregulating+BRCA1+in+triple-negative+breast+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cancer+Ther%22%5BJournal%5D)">miR-185 suppresses tumor proliferation by directly targeting E2F6 and DNMT1 and indirectly upregulating BRCA1 in triple-negative breast cancer.</a> Mol Cancer Ther. 13, 3185-3197 (2014).</li>
<li>Ye, X. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epigenetic+silencing+of+miR-375+induces+trastuzumab+resistance+in+HER2-positive+breast+cancer+by+targeting+IGF1R%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Cancer%22%5BJournal%5D)">Epigenetic silencing of miR-375 induces trastuzumab resistance in HER2-positive breast cancer by targeting IGF1R.</a> BMC Cancer. 14, 134(2014).</li>
<li>Oneyama, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MicroRNA-mediated+downregulation+of+mTOR%2FFGFR3+controls+tumor+growth+induced+by+Src-related+oncogenic+pathways%5BTitle%5D)+AND+%22Oncogene%22%5BJournal%5D)">MicroRNA-mediated downregulation of mTOR/FGFR3 controls tumor growth induced by Src-related oncogenic pathways.</a> Oncogene. 30, 3489-3501 (2011).</li>
<li>McGuire, A., Brown, J. A., Kerin, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metastatic+breast+cancer%3A+the+potential+of+miRNA+for+diagnosis+and+treatment+monitoring%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Metastasis+Rev%22%5BJournal%5D)">Metastatic breast cancer: the potential of miRNA for diagnosis and treatment monitoring.</a> Cancer Metastasis Rev. 34, 145-155 (2015).</li>
<li>Quesne, J. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biological+and+prognostic+associations+of+miR-205+and+let-7b+in+breast+cancer+revealed+by+in+situ+hybridization+analysis+of+micro-RNA+expression+in+arrays+of+archival+tumour+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pathol%22%5BJournal%5D)">Biological and prognostic associations of miR-205 and let-7b in breast cancer revealed by in situ hybridization analysis of micro-RNA expression in arrays of archival tumour tissue.</a> J Pathol. 227, 306-314 (2012).</li>
<li>Fernandez, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((miR-340+inhibits+tumor+cell+proliferation+and+induces+apoptosis+by+targeting+multiple+negative+regulators+of+p27+in+non-small+cell+lung+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Oncogene%22%5BJournal%5D)">miR-340 inhibits tumor cell proliferation and induces apoptosis by targeting multiple negative regulators of p27 in non-small cell lung cancer.</a> Oncogene. 34, 3240-3250 (2015).</li>
<li>Yu, L., Zhang, J., Guo, X., Li, Z., Zhang, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MicroRNA-224+upregulation+and+AKT+activation+synergistically+predict+poor+prognosis+in+patients+with+hepatocellular+carcinoma%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Epidemiol%22%5BJournal%5D)">MicroRNA-224 upregulation and AKT activation synergistically predict poor prognosis in patients with hepatocellular carcinoma.</a> Cancer Epidemiol. 38, 408-413 (2014).</li>
<li>Li, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((microRNA-146+up-regulation+predicts+the+prognosis+of+non-small+cell+lung+cancer+by+miRNA+in+situ+hybridization%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Mol+Pathol%22%5BJournal%5D)">microRNA-146 up-regulation predicts the prognosis of non-small cell lung cancer by miRNA in situ hybridization.</a> Exp Mol Pathol. 96, 195-199 (2014).</li>
<li>Kriegel, A. J., Liang, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MicroRNA+in+situ+hybridization+for+formalin+fixed+kidney+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">MicroRNA in situ hybridization for formalin fixed kidney tissues.</a> J Vis Exp. , e50785(2013).</li>
<li>Ucar, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((miR-212+and+miR-132+are+required+for+epithelial+stromal+interactions+necessary+for+mouse+mammary+gland+development%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Genet%22%5BJournal%5D)">miR-212 and miR-132 are required for epithelial stromal interactions necessary for mouse mammary gland development.</a> Nat Genet. 42, 1101-1108 (2010).</li>
<li>Nuovo, G. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+situ+detection+of+microRNAs+in+paraffin+embedded%2C+formalin+fixed+tissues+and+the+co-localization+of+their+putative+targets%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">In situ detection of microRNAs in paraffin embedded, formalin fixed tissues and the co-localization of their putative targets.</a> Methods. 52, 307-315 (2010).</li>
<li>Kierzek, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+influence+of+locked+nucleic+acid+residues+on+the+thermodynamic+properties+of+2%27-O-methyl+RNA%2FRNA+heteroduplexes%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">The influence of locked nucleic acid residues on the thermodynamic properties of 2'-O-methyl RNA/RNA heteroduplexes.</a> Nucleic Acids Res. 33, 5082-5093 (2005).</li>
<li>Fischer, A. H., Jacobson, K. A., Rose, J., Zeller, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Paraffin+embedding+tissue+samples+for+sectioning%5BTitle%5D)+AND+%22CSH+Protoc%22%5BJournal%5D)">Paraffin embedding tissue samples for sectioning.</a> CSH Protoc. 2008, (2008).</li>
<li>Li, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sequential+expression+of+miR-182+and+miR-503+cooperatively+targets+FBXW7%2C+contributing+to+the+malignant+transformation+of+colon+adenoma+to+adenocarcinoma%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pathol%22%5BJournal%5D)">Sequential expression of miR-182 and miR-503 cooperatively targets FBXW7, contributing to the malignant transformation of colon adenoma to adenocarcinoma.</a> J Pathol. 234, 488-501 (2014).</li>
</ol>

Não há nada a divulgar.

O objetivo deste estudo foi determinar o nível de expressão miRNA em tecidos de câncer de mama utilizando miRNA hibridização in situ. Deve ser notado que nesta experiência, todas as condições foram optimizadas para o tecido do cancro da mama. Optimização adicional pode ser necessário para outros tipos de tecidos. Todas as soluções deve ser feita com água com DEPC e todos os recipientes a ser usado deve ser lavado com água tratada com DEPC e subsequentemente autoclavadas. Mesmo fraca contaminação RNase pode inte...

O cancro da mama é um dos tumores malignos mais comuns que afetam a população feminina em todo o mundo. Mais de 1,3 milhões de casos de câncer de mama são notificados a cada ano no mundo 1,2. Embora as células tumorais têm sido tradicionalmente considerados como biologicamente homogênea e altamente proliferativa, tornou-se evidente que o câncer de mama é geneticamente e clinicamente heterogênea. A resistência aos fármacos anticancerígenos prevalentes é uma característica de cancros da mama avançado, conduzindo à mortalidade na maioria dos pacientes através da sua promoção da progressão do cancro e metástases à distância 3. MicroRNAs (miRNAs) são uma classe de pequenas moléculas de RNA de aproximadamente 22 nucleótidos de comprimento que regulam a expressão do gene através do bloqueio da tradução do mRNA ou mediar a degradação de ARNm 4. Mais de 2.000 miRNAs diferentes foram até agora identificados em humanos, que estão ligadas a doenças humanas 5. Uma crescente variedade de estudos have demonstraram que miARN pode funcionar como oncogenes e supressores tumorais e são frequentemente desreguladas em tumores 6. miARNs impacto fortemente toda a tumorigénese principal, controlando as principais reguladores da progressão do ciclo celular, senescência, apoptose e autofagia, juntamente com os da motilidade de células tumorais, invasão e metástase 7. Expressão aberrante miRNA foi também associada a implicações clínicas, tais como estágio, diferenciação, prognóstico e resposta ao adjuvante terapia 8. Em particular, o aumento da expressão de miR-146 está correlacionada com mau prognóstico em pacientes com câncer de pulmão 9. Outro estudo demonstrou que a expressão perdida de miRNA-let7b está ligada a fenótipos malignas e, consequentemente, pior sobrevida 6. Compreender os tipos de células e estruturas que expressam miRNAs é uma parte importante de compreender os mecanismos através dos quais alterações nas células de expressão influência miRNA etecido fenótipos 10. Certos miARNs encontrado para ser segregado em células do estroma são tomadas por células epiteliais e, especificamente, agir sobre os seus objectivos. Na mesma linha, o miR-212 e miR-132 que são segregadas por estroma e regular as interacções epiteliais-estromal requeridas para crescimento ductal durante 11 desenvolvimento da glândula mamária. O objetivo geral deste trabalho é explicar um protocolo detalhado para detectar a expressão de miRNA em tecidos de cancro da mama através de miRNA hibridização in situ. Temos todas as condições optimizadas para ensaiar os níveis de expressão de miARN-489 em amostras de pacientes de cancro da mama. Para este fim, foi utilizado um DIG marcado bloqueado ácido sonda (LNA) nucleico em nosso experimento. Alguns dos seus nucleótidos tinha uma modificação LNA, que é, uma ponte metileno que liga &#39;átomo de oxigénio e 4&#39; a 2 átomos de carbono do esqueleto ribose que fixa as sequências de nucleótidos de tal modo que ele fica &quot;bloqueado no lugar&quot; após a hibridização. Como resultado, é muito mais difícilpara o complexo hibridado para desnaturar 12,13.

<table><tbody><tr><td>ELF-97</td><td>Tecnologia de vida&nbsp;</td><td>E6604</td><td></td></tr><tr><td>50x Denhard't&nbsp;</td><td>Tecnologia da vida</td><td></td><td></td>750018</tr><tr><td>t-RNA</td><td>Roche</td><td>109541</td><td>Reconstituir em água DEPC</td></tr><tr><td>Esperma de Arenque DNA</td><td>Promega</td><td>D1815</td><td></td></tr><tr><td>Roche Bloqueio&nbsp;</td><td>Roche</td><td>11096176001</td><td></td></tr><tr><td>RVC</td><td>Fisher</td><td>50-812-650</td><td>Antes de usar, desacelere-o em 16.1 RCF e pegue o sobrenadante</td></tr><tr><td>sonda miR-489</td><td>Exiqon</td><td>38599-01</td><td></td></tr><tr><td>Nuclease livre BSA</td><td>Roche&nbsp;</td><td></td><td></td>711454</tr><tr><td>Anticorpo primário-anti DIG</td><td>Roche&nbsp;</td><td></td><td></td>11093274910</tr><tr><td>Dietil Pirocarbonato&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>1609478</td><td></td></tr></tbody></table>

análise clínico-patológico de mirna expressão em cancro da mama tecidos usando mirna<em&gt; in situ</em&gt; hibridização

Clinicopathological Analysis of miRNA Expression in Breast Cancer Tissues by Using miRNA In Situ Hybridization

Neste artigo, descrevemos um protocolo detalhado para detecção de miRNA em tecido de câncer de mama usando hibridização in situ com uma sonda LNA (Ácido Nucleico Bloqueado) marcada com digoxigenina. A sonda foi reconhecida por anticorpos anti-fosfatase alcalina DIG e posteriormente desenvolvida usando substrato de fosfatase alcalina produzindo sinais de fluorescência. Aqui, utilizamos a técnica de hibridização in situ de miRNA (MISH) para analisar a expressão de miR-489 em tecidos de pacientes com câncer de mama. Esta técnica pode detectar a localização de miRNA de interesse em amostras de tecido individuais. Essa técnica pode ser usada para comparar a expressão do miRNA desejado no tecido tumoral com o do tecido normal adjacente e para identificar as estruturas específicas responsáveis pela expressão desse miRNA. Essa técnica pode ser muito útil para responder a certas questões clínicas, como o papel do miRNA específico no desenvolvimento do câncer. Nossos resultados indicam que as células epiteliais mamárias expressam níveis significativamente mais altos de miR-489 do que as células tumorais adjacentes.

tecido do cancro da mama humano foi utilizado para determinar a expressão de miARN-489. Ducto da glândula mamaria e células epiteliais foram encontrados para expressar significativamente mais elevados de miARN-489 níveis que o tecido adjacente do tumor em dois pacientes (Figura 1A e 1B). Isto demonstra claramente que a expressão de miARN-489 foi perdido no tecido tumoral, sugerindo que a actividade supressora do tumor de miARN-489. Para confirmar ainda m...

Aqui apresentamos um protocolo para detectar a expressão de miRNAs em amostras de pacientes com câncer de mama usando hibridização in situ de miRNA.

Análise clínico-patológico de miRNA Expressão em cancro da mama tecidos usando miRNA<em&gt; In Situ</em&gt; Hibridização

In this article, we describe a detailed protocol for miRNA detection in breast cancer tissue using in situ hybridization with a digoxigenin-labelled LNA ...

O objetivo geral desta hibridização in situ de microRNA é detectar a localização do microRNA de interesse em tecido de câncer de mama, de modo que a análise possa responder perguntas fundamentais na área do câncer de mama, como se o microRNA de interesse atua como oncogene ou supressor tumoral.A principal vantagem dessa técnica é que ela pode detectar a nucleolarização celular de interesse em tecido de câncer de mama. Inicie a preparação do tecido removendo a parafina de cortes de tecido mamário previamente preparados. Mergulhe as lâminas em um frasco de Coplin com xilol fresco duas vezes, por dez minutos cada.Reidrate a seção do tecido com incubações em concentrações decrescentes de etanol em água duplamente destilada por cinco minutos cada. Em seguida, imerja o tecido em água tratada com pirocarbonato de dietila ou DEPC por cinco minutos. Enquanto o tecido estiver imerso, faça contornos ao redor da seção do tecido com uma caneta de barreira hidrofóbica.Após a imersão em DEPC, fixe o tecido com PFA 4% por 15 minutos. Lave com PBS após a fixação. Em seguida, imerja o tecido em Triton X-100 0,3% em PBS por dez minutos.Incube a amostra com solução de Proteinase K a 50 microgramas por microlitro durante 15 minutos a 37 graus Celsius. Em seguida, incube as seções de tecido com trietanolamina e anidrido acético por cinco minutos à temperatura ambiente. E prossiga com uma lavagem com PBS.Lave o tecido completamente. E incube a seção do tecido com 120 microlitros de tampão de hibridização por duas horas à temperatura ambiente. Em seguida, dilua a sonda NLA marcada com DIG na extremidade 5' até uma concentração final de 3 picomolares em 120 microlitros de solução de hibridização.Em seguida, adicione três microlitros do estoque de 40 nanogramas por microlitro ao tampão de hibridização de 120 microlitros. Incube a mistura a 95 graus Celsius por cinco minutos. Insira a seção de tecido em um recipiente de dez por oito polegadas e cubra o tecido com 120 microlitros da sonda, de modo que fique completamente coberto.Umedeça dois papéis-toalha e cubra o recipiente para criar uma câmara de umidade. Incube a seção de tecido durante a noite a 54 graus Celsius. Após a hibridização, lave o tecido com tampão de citrato de sódio e salina 5 X ou SSC por sete minutos a 57 graus Celsius.Em seguida, lave a seção de tecido com SSC 1X duas vezes. E lave a seção de tecido com SSC 0,2X. Então, lave a seção de tecido com SSC 0,2X por sete minutos à temperatura ambiente.Incube a seção do tecido em PBS por dez minutos. Incube a seção do tecido com o tampão bloqueador à temperatura ambiente por uma hora em uma câmara úmida. Dilua o anticorpo anti-DIG AP na proporção de um para 300 no tampão bloqueador.E incubar a seção do tecido com o anticorpo a 4 graus Celsius durante a noite. No dia seguinte, lavar as seções com o tampão de lavagem três vezes, por cinco minutos cada. Seguir as instruções do kit comercial ELF 97 para desenvolver a seção do tecido com fosfatase alcalina, que produz luz fluorescente de tamanho três.Em seguida, lave a seção com o tampão de lavagem por cinco minutos. Incube a seção com 100 microlitros de corante Hoechst a 2,5 nanogramas por microlitro por cinco minutos. E, após a coloração, realize uma lavagem de cinco minutos com o tampão de lavagem.Utilize 15 microlitros de tampão de montagem por seção de tecido. E remova o excesso de solução de montagem com um lenço descartável. Em seguida, selar a lâmina com esmalte incolor para evitar vazamentos.Por fim, observe a seção com um microscópio fluorescente em uma ampliação total de 100 X. Tecido de câncer de mama humano de dois pacientes foi utilizado para determinar a expressão do Micro RNA 489. Células epiteliais e ductais das glândulas mamárias apresentaram níveis significativamente mais altos de Micro RNA 489 em comparação com o tecido tumoral adjacente. Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como realizar a hibridização in situ de Micro RNA utilizando amostras de pacientes com câncer de mama.

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