Name: Isolamento de células de camundongo Coronária endoteliais (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-07-03T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 36 s
Description: Aprenda a isolar células endoteliais coronárias de camundongo com alta pureza e rendimento usando CD31 e imunomagnetismo. Este método avança pesquisas cardiovasculares com células de qualidade superior.

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Este trabalho foi apoiado pela concessão do National Institutes of Health (HL115578 para A. Makino).

A pesquisa em ratos foi aprovado pelo Comitê Institucional de Animal Care and Use (IACUC) da Universidade do Arizona e foi realizada de acordo com o Instituto Nacional de Saúde (NIH) orientações. NOTA: Seções 1, 2 e 3 devem ser realizadas um dia antes do experimento, como a instalação. 1. Soluções Preparando <ol><li> tampão de CD31 (50 ml) <ol><li> Adicionar 50 ml de 1 x tampão fosfato salino (PBS) a um tubo de 50 ml. Pesar 0,05 g de Albumina de Soro Bovino (BSA) e 0,037 g de ácido etilenodiaminotetracético (EDTA) e adicionar ao tubo de 50 ml e colocar o tubo para rodar durante cerca de 1 hora até dissolver o pó. Ajustar o pH para 7,4, filtrar através de um filtro de 0,2 um para um novo tubo de 50 ml e armazenar a 4 ° C até à sua utilização. </li></ol></li><li> Solução Salina Equilibrada de Hank (HBSS) com HEPES (500 ml) <ol><li> Adicionar 1,1915 g de HEPES fazer HEPES 10 mM em HBSS solução e misturar bem. Medir o pH e ajustar para 7,4. Filtrar e armazenar a 4C. </li></ol></li><li> A solução de Kreb 1x (1 L) <ol><li> Adiciona-se 100 ml de solução de Krebs × 10 [Tabela 1] para se dobrar de água destilada em um balão de 1 L. Pesar 2,1 g de bicarbonato de sódio e 2 g de D-glucose e adiciona-se ao balão. Misture e ajustar o volume total de 1 L. </li><li> Solução de bolha com 95% de O2 / 5% de CO 2 gasoso durante 30 minutos e solução de filtro no interior do exaustor. Armazenar a 4 ° C e manter em gelo durante o experimento. </li></ol></li></ol> 2. Preparar as esferas magnéticas <ol><li> Adicionar 1 ml de tampão de CD31 em cada tubo de 1,5 ml (um tubo por amostra). Misture as ovelhas anti-ratos contas de IgG e adicione a quantidade adequada a cada amostra [Tabela 1]. Agite os tubos vigorosamente 30 vezes e colocá-los no prato magnético durante 1 min de agitação. Abrir os tubos, enquanto no prato e despejar as soluções dentro de um balde. </li><li> Adicionar 1 ml de tampão de CD31 em cada tubo. Adicionar 2 mL de rato anti-CD31 anticorpo a cada tubo e girar tubos O / N a 4 ºC. </li></ol> 3. A autoclavagem <ol><li> Autoclave todas as ferramentas de cirurgia e ponteiras. Corte as pontas de pontas de pipeta de modo que há dicas com 4 diâmetros diferentes, de mais vasto para mais estreito. diâmetros aproximados para as pontas são de 3 mm, 2,5 mm, 2 mm e 1,5 mm, respectivamente. Cortar as pontas e a autoclave dias antes com 30 min de esterilização a uma temperatura de 121 ºC. NOTA: As secções 4-11 deve ser levada a cabo no dia da experiência. </li></ol> 4. Soluções Preparando <ol><li> Prepare tampão de lavagem contendo 2% de ferro-fortificada Calf Serum (IFCS) em M199. Para geração de imagens, preparar 30 ml / mouse. </li><li> Preparar a solução de enzima (10 mL / amostra). Pesar 0,6 unidade / ml de Dispase e 1 mg / mL de colagenase tipo II para um tubo de 50 ml. Adicionar M199 e girar o tubo a 4 ºC durante 15 min. Filtra-se através de filtro de 0,2 um para um novo tubo de 50 ml inside o capô e manter a 4 ° C até o uso. </li><li> Prepare HBSS / HEPES com heparina. Adicionar 10 ml de HBSS com 10 mM de HEPES em 15 ml de tubo. Adicionar 100 ul de heparina para o tubo e manter a 4 ° C até à sua utilização. </li></ol> 5. lavagem das pérolas <ol><li> Retire os tubos com contas do rotator a 4 ºC e trazer para a capa. Colocar os tubos na placa magnética e agitar durante 1 min. Despejar a solução e adicionar 1 ml de tampão de CD31 em cada tubo. </li><li> Pegue os tubos fora da placa magnética e agitar vigorosamente 30 vezes. Colocar os tubos em volta da placa magnética e repetir para um total de 3 lavagens. Após a conclusão, colocar os tubos de volta à 4C e continuar girando até o uso. </li></ol> 6. Dissecção <ol><li> Injectar os ratinhos intraperitonealmente com 0,1 ml de heparina para evitar a coagulação do sangue. Esperar 10 minutos, em seguida, anestesiar os ratos usando injeção intraperitoneal de 0,01 ml de pentobarbital. Verifique se o mouse está sentindodor, apertando o pé. </li><li> Posicione o mouse em uma placa de poliestireno com a cabeça para cima e mantenha os braços com pinos. Use uma pinça e difíceis-CUT-tesoura para cortar a pele na região torácica superior até a garganta. </li><li> Fazer um corte no centro da caixa torácica logo acima do diafragma. Cortar o osso para os lados e para cima para a garganta para fazer um triângulo expor o coração e os pulmões. Cortar a aorta logo acima do diafragma. </li><li> Segure o timo com uma pinça sem puxar e usar uma tesoura para cortar qualquer tecido conjuntivo com cuidado para remover pulmões e coração juntos. tecidos lugar em um copo com 1 × Kreb de, agitar com uma pinça e transferir para 6cm de prato com 1 × Kreb de. </li><li> Retire os lobos pulmonares, utilizando tesouras e pinças. Inserir um cateter estéril de 20 G para a aorta. Lave o sangue no sistema circulatório coronária com HBSS / heparina. Fazer um pequeno corte no ventrículo, agitar o coração e transferir para um tubo de amostra de M199. Mantenha os tubos em gelo. </li></ol><p<html> class = &quot;jove_title&quot;&gt; 7. digestão do tecido <ol><li> Transferir o coração a um disco de 6 cm cheia com 10 ml de solução de enzima e mediu-lo em pequenos pedaços com uma tesoura. Coloque os pratos na incubadora a 37 ºC durante 15 min. Agitar materiais digeridos por pipetagem cima e para baixo 30 vezes através de uma ponta com uma extremidade cortada para permitir que o tecido a passar por mais fácil. </li><li> Coloque-o de volta na 37 ºC incubadora por mais 15 min. Repita agitação três vezes, cada vez com pontas de pipeta de maiores aberturas para mais estreito e 15 minutos de incubação entre cada. </li><li> Depois da última 15 min de incubação, colher amostras para fora e para dentro do capô. Pipetar solução cima e para baixo 30 vezes utilizando ponta da pipeta com a abertura mais estreita e passar através de um filtro de 40 | iM de células para um novo tubo de 50 ml. </li><li> Lava-se a placa com 10 ml de tampão de lavagem, utilizando uma pipeta de 10 ml e transferir para filtro de células. Colocar os tubos de 50 ml de centrífuga e centrifugação a 400 g durante 10 min à temperatura ambiente. </li></ol>itle &quot;&gt; 8. de lavar roupa e conjugação com grânulos <ol><li> Remover o sobrenadante sem perturbar o sedimento. Lavar as células com 5 ml de tampão de lavagem por duas vezes. </li><li> Obter um dos anteriormente preparados tubos de 1,5 ml com grânulos e trabalho em um tubo de cada vez. Coloque um tubo de 1,5 ml na placa magnética, agitar 3 vezes e abri-lo. </li><li> Após a última centrifugação, remover tanto sobrenadante quanto possível, sem perturbar o sedimento. Dissociar os aglomerados de células sacudindo vigorosamente. </li><li> Adicionar 1 ml de tampão de lavagem para o tubo de 50 mL e misturar as células com uma pipeta de 1 ml. Despejar a solução a partir do tubo de 1,5 ml e adicionar 1 ml de suspensão de células a partir do tubo de 50 mL para os grânulos. Flick os tubos de 30 vezes, em seguida, gire a 4 ºC durante 30 minutos. </li></ol> 9. Preparação para Cultura de Células / Imagem <ol><li> Prepare câmaras para as células plaqueamento. Adicionar solução de gelatina (5% w / v, 300 mL) para a câmara bem para cobrir a superfície e incuba-se durante 30 min a 37 ºC. Após a incubação, REMgelatina ove e secar a superfície. </li><li> Retire os tubos com contas / células após 30 min de rotação e colocar na placa magnética no interior do exaustor. Agita-se durante 2 min, despejo e adicionar 1 ml de tampão de lavagem. </li><li> Tome tubos para fora da placa, agitar vigorosamente 30 vezes em seguida, agite 30 vezes. Colocá-los de volta na placa magnética e agitar durante 1 min. Repetir 4 vezes, para um total de 5 lavagens, mas com 1 min de agitação sobre a placa. </li><li> Após a última lavagem, retirar um tubo e trabalhar em cada um tubo de cada vez. Agite 30 vezes em seguida, agite 30 vezes. Coloque-o sobre a placa magnética e agitar durante 1 min. Despejar e adicionar 1 ml de 20% de mídia IFCS CE (pré-aquecido a 37 ºC). </li><li> Agita-se vigorosamente 30 vezes em seguida, agite 30 vezes. Ajuste pipeta para 500 mL e pipeta cima e para baixo 10 vezes. Transferir 500 ul a cada câmara. </li><li> Coloque a 37 ºC incubadora e deixar O / N. No dia seguinte, lave as células com 10% de media FBS CE. </li></ol> 10. Preparação para Blot As amostras (BM) ocidentais <ol><li> Takum e os tubos com contas / células após 1 hora de rotação. Colocá-los na placa magnética e agitar por 2 min. Despejar o sobrenadante e adicionar 1 ml fria HBSS. Agita-se vigorosamente 30 vezes em seguida, agite 30 vezes. Repita duas vezes para 3 lavagens, mas com 1 min de agitação sobre a placa. </li><li> Depois da última lavagem, colocar tubos na placa magnética e agitar durante 1 min. Remover o tampão usando uma pipeta e lisar as células de WB utilizando um método previamente descrito 11,12. lisado foi recolhido normalmente contém cerca de 30 ug de proteína. </li></ol> 11. Imagem <ol><li> Lave as células 3 vezes com a mídia, com volume final de 250 ul de uma câmara. Adicionar 1,5 mL de AcLDL-Dil para as células. A partir deste ponto, manter as células no escuro. </li><li> Incubar por 3,5 horas a 37 ° C. Adicionar 1,5 uL de Hoechst, misturar bem e incubar durante 30 min a 37 células ˚C.Wash com PBS e fixar com 4% de paraformaldeído (PFA) durante 20 min à TA. </li><li> Lavar duas vezes com PBS e bloquear com 5% de BSA-PBS, durante 30 min à temperatura ambiente. Lavar duas vezes com 1% de BSA-PBS. Diluir BS-lectina-FITC utilizando 1% de BSA-PBS a uma concentração de 2 ug / ml e adicionar 300 ul a cada câmara. </li><li> Coloque a câmara no agitador orbital, à temperatura ambiente durante 30 min. Lavar com PBS 3 vezes. </li><li> Visualizar as células sob o microscópio de fluorescência com o tempo de exposição de 200 ms para FITC (coloração com lectina, um marcador CE, excitação / emissão a 488 nm / 519 nm), 30 ms para DAPI (Hoechst, uma coloração, de excitação / emissão nuclear a 358 nm / 461 nm), e 300 ms para TRITC (coloração AcLDL, um marcador CE, excitação / emissão a 557 nm / 576 nm). Adquirir imagens usando uma lente objetiva de 20X. </li></ol>

<ol><li>Michiels, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endothelial+cell+functions%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Physiol%22%5BJournal%5D)">Endothelial cell functions.</a> J Cell Physiol. 196, 430-443 (2003).</li>
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<li>Sasaki, K., Donthamsetty, R., Heldak, M., Cho, Y., Scott, B. T., Makino, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((VDAC%3A+old+protein+with+new+roles+in+diabetes%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Cell+Physiol%22%5BJournal%5D)">VDAC: old protein with new roles in diabetes.</a> Am J Physiol Cell Physiol. 303, C1055-C1060 (2012).</li>
</ol>

Os autores não têm nada a divulgar.

As células endoteliais mais utilizados na pesquisa são células humanas endoteliais da veia umbilical (HUVECs) por causa de sua conveniência e facilidade de cultivo. No entanto, uma grande quantidade de pesquisa requer a disponibilidade de um modelo fisiológico atingido pelo isolamento de células endoteliais específicas de outros órgãos 10. As células endoteliais formam uma população muito reduzida das células no tecido do coração; seu isolamento e cultura pode revelar-se muito difícil. <p class="jove_cont...

modelos de ratinho de várias doenças cardiovasculares e desordens metabólicas suportar mudanças fisiológicas e moleculares que são semelhantes aos encontrados em pacientes. Além disso, a alteração genética de ratinhos é uma ferramenta poderosa que nos permite investigar o papel patogénico de genes específicos no desenvolvimento e progressão de doenças. Hoje em dia, o gene-knock-in específico de células-tipo ou ratinhos -out podem ser facilmente gerados em muitos laboratórios e a medição de ARNm e os níveis de proteína em tipos específicos de células é o primeiro passo para determinar se os ratos foram verdadeiramente geneticamente modificado. O endotélio é uma camada única fina de células endoteliais (ECs) que reveste a parede vascular interior. As células endoteliais desempenham um papel crítico na regulação da tensão vascular, da permeabilidade vascular, e nova formação vascular 1,2. A disfunção endotelial é uma característica de muitas condições patológicas e alterações na função endotelial pode conduzir a vários carrosdoenças cardiovasculares 3,4. É, assim, importante para estudar a função das células endoteliais em condições fisiológicas e fisiopatológicas. Existem várias maneiras de isolar ECs 5-8 e o método de isolamento tem que ser optimizado dependendo de qual tecidos e espécies serão utilizados. Isto é porque CEs a partir de diferentes tecidos apresentam um elevado nível de heterogeneidade no que diz respeito aos seus marcadores de superfície e expressão da proteína 9. isolamento de células endoteliais pode muitas vezes ser um desafio e requer algum grau de treinamento e prática. Uma vez alcançada, o método de isolamento proposto neste protocolo revela-se estável e eficiente. O objetivo geral deste método é a obtenção de rato ECs coronariana (MCECs) de alta qualidade e quantidade. Embora a quantidade de células recolhidas a partir de um coração é menos do que as células recolhidas a partir de outros tecidos, utilizando outras técnicas, esta técnica ainda proporciona apostaqualidade ter. A pureza das células endoteliais na população resultante é maior do que 90%. Assim, essa técnica seria o ideal para aplicações que dependem de células endoteliais puramente isolados, como imagens de células.

<table><tbody><tr><td>BSA</td><td>Sigma</td><td>A3311-10G</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Fisher</td><td>BP120-500</td><td></td></tr><tr><td>HBSS</td><td>Fisher</td><td>SH3026801</td><td></td></tr><tr><td>Hepes</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H4034-500G</td><td></td></tr><tr><td>Bicarbonato de Sódio&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>S5761</td><td></td></tr><tr><td>D-(+)-Glicose&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>G7021-1KG</td><td></td></tr><tr><td>DynaBeads pan mouse IgG beads&nbsp;</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>11035</td><td></td></tr><tr><td>Anticorpo anti-rato CD31 para ratos</td><td>BD Biosciences</td><td>550274</td><td></td></tr><tr><td>IFCS&nbsp;</td><td>Fisher</td><td>SH30072.04</td><td></td></tr><tr><td>M199</td><td>Fisher</td><td>MT10060-CV</td><td></td></tr><tr><td>Dispase (Protease Neutra)</td><td>Worthington Biochemical Corp./Fisher</td><td>LS02109</td><td></td></tr><tr><td>Colagenase Tipo II&nbsp;</td><td>Worthington Biochemical Corp./Fisher</td><td>LS004176</td><td></td></tr><tr><td>Glicerol&nbsp;</td><td>Fisher</td><td>BP381-1</td><td></td></tr><tr><td>Igepal</td><td>Sigma</td><td>I3021-50 ml</td><td></td></tr><tr><td>Inibidor de fosfatase coquetel</td><td>Sigma</td><td>P0044-1ml</td><td></td></tr><tr><td>Coquetel inibidor de protease</td><td>Sigma</td><td>P8340-1 ml</td><td></td></tr><tr><td>Heparina&nbsp;</td><td>Sigma</td><td>H3149-100KU</td><td></td></tr><tr><td>FBS&nbsp;</td><td>Fisher/Mediatech</td><td>MT35010CV</td><td></td></tr><tr><td>D-Valina</td><td>Sigma</td><td>V1255-5G</td><td></td></tr><tr><td>EGS</td><td>Corning</td><td>356006</td><td></td></tr><tr><td>Penicilina/Estreptomicina</td><td>Fisher/Mediatech</td><td>MT-30-002-CI</td><td></td></tr></tbody></table>

isolamento de células de camundongo coronária endoteliais

Isolation of Mouse Coronary Endothelial Cells

As células endoteliais estão alinhados na parede interna dos vasos sanguíneos e desempenham um papel importante na regulação do tónus vascular, da permeabilidade vascular, e nova formação vascular. disfunção das células endoteliais está implicada no desenvolvimento e progressão de muitas doenças cardiovasculares, incluindo doença cardíaca isquémica. Para examinar a função e caracterização de células endoteliais coronárias, o isolamento de células é o primeiro passo e exige elevado grau de pureza e a quantidade para conduzir experiências subsequentes. Este protocolo descreve um método eficiente para isolar ratinho adulto células endoteliais coronárias. O coração do rato é dissecado e picada em pedaços pequenos. Após a digestão do coração utilizando colagenase e dispase II, as células são lavadas e incubadas com esferas magnéticas que são conjugados com o anticorpo anti-CD31. As contas com células endoteliais são lavadas várias vezes e está pronto para usar em várias aplicações, incluindo imagens e experime biológica molecularNTS. Isolamento eficiente rende aproximadamente 10 4 células por um coração com mais de 90% de pureza.

O isolamento de células endoteliais coronárias de um coração de rato normalmente produz cerca de 10 4 células com mais de 90% de pureza com uma forma de paralelepípedos. Para uma população pura de células endoteliais, o cuidado deve ser tomado ao longo do protocolo para garantir um ambiente estéril livre de qualquer contaminação. O aparecimento de células alongadas ou células alargada dentro da população indica contaminação com outros tipos de células, as células do músculo li...

Este protocolo está preparado para compartilhar nosso método de isolamento de células endoteliais coronárias de camundongos para fins de imagem ou para conduzir experimentos biológicos moleculares.

Isolamento de células de camundongo Coronária endoteliais

Endothelial cells line the inner wall of blood vessels and play an important role in the regulation of vascular tone, vascular permeability, and new ...

O objetivo geral deste experimento é obter grandes quantidades de células endoteliais coronarianas de camundongo altamente purificadas e de alta qualidade. Este método pode ajudar a responder perguntas-chave na área da pesquisa cardiovascular. A principal vantagem desta técnica é que ela facilita a obtenção de um alto rendimento de células endoteliais de boa qualidade.Demonstrará este procedimento Shizhen Luo, especialista em pesquisa, e a Dra. Ayako Makino, nossa pesquisadora principal. Até uma semana antes do procedimento, adicione um mililitro de tampão CD31 a um tubo microcêntrifugo de 1,5 mililitro por amostra. Em seguida, misture as microesferas de anticorpo IgG de ovelha com pipetagem suave e adicione o volume apropriado de microesferas a cada tubo.Após a adição de todas as microesferas, agite os tubos vigorosamente 30 vezes e coloque-os em uma placa magnética durante um minuto com agitação. Em seguida, com os tubos ainda presos à placa, descarte o tampão e adicione um mililitro de tampão CD31 fresco a cada tubo. Adicione dois microlitros de anticorpo rad anti-CD31 de camundongo e coloque os tubos em um rotador a quatro graus Celsius durante a noite.No dia seguinte, transfira os tubos para uma cabine de fluxo laminar e coloque-os novamente sobre a placa magnética com agitação por um minuto. Em seguida, substitua o sobrenadante por um mililitro de tampão CD31 fresco e agite os tubos vigorosamente à mão 30 vezes. Após a terceira lavagem, devolva os tubos ao rotador a quatro graus Celsius.No dia do procedimento, comece injetando o animal experimental intraperitonealmente com 0,1 mililitros de heparina para prevenir a coagulação sanguínea. Após dez minutos, anestesie o camundongo com uma injeção de 0,01 mililitros de pentobarbital. Em seguida, confirme a ausência de resposta ao aperto no dedo do pé.Após remover o tecido cardíaco e pulmonar juntos, coloque-os em um béquer contendo tampão de Krebs e lave os tecidos com agitação suave. Em seguida, transfira os tecidos para uma placa de seis centímetros contendo Krebs fresco e utilize tesoura e pinça para remover os lobos pulmonares. Agora, insira um cateter de 20 gauge na aorta e lave o sistema circulatório coronariano com HBSS suplementado com heparina.Quando todo o sangue tiver sido removido, faça um pequeno corte no ventrículo, lave o coração com agitação suave e coloque o tecido cardíaco em um tubo de amostra sobre gelo. Após digerir o tecido para liberar as células endoteliais coronarianas, centrifugue e lave as células duas vezes com cinco mililitros de tampão de lavagem. Em seguida, coloque um tubo das microesferas previamente preparadas sobre a placa magnética e agite o tubo três vezes para distribuir uniformemente as microesferas.Após a segunda lavagem, remova o máximo de sobrenadante possível sem perturbar o pellet e associe as células com batidas vigorosas. Em seguida, re-suspenda as células em um mililitro de tampão de lavagem com mistura suave e descarte o tampão CD31 das microesferas. Combine as células com as microesferas e bata no tubo 30 vezes.Em seguida, coloque a solução de células e microesferas no rotador a quatro graus Celsius por 30 minutos. Enquanto as células incubam, recubra a superfície de uma câmara de plaqueamento por amostra com solução de gelatina e coloque as câmaras a 37 graus Celsius por 30 minutos. Quando a gelatina tiver solidificado, remova qualquer excesso de solução de gel e seque a superfície da câmara.Em seguida, transfira as células conjugadas com as microesferas para a placa magnética sob a capela para dois minutos de agitação e descarte o tampão de lavagem. Adicione um mililitro de tampão de lavagem fresco às células e retire o tubo da placa para 30 agitações vigorosas, seguidas por 30 batidas rápidas. Retorne o tubo à placa para mais um minuto de agitação.Após a última agitação, retorne o tubo para a placa magnética por um minuto final de agitação e substitua o tampão de lavagem por um mililitro de meio para células endoteliais a 37 graus Celsius, suplementado com 20 por cento de soro de bezerro enriquecido com ferro. Agite e estalou os tubos 30 vezes no final. Em seguida, use uma pipeta de um mililitro ajustada para 500 microlitros para agitar as células conjugadas dez vezes e transfira alíquotas de 500 microlitros de células endoteliais coronarianas para cada poço da câmara de placação para incubação durante a noite a 37 graus Celsius.No dia seguinte, lave as células em meio para células endoteliais, suplementado com dez por cento de FBS. A pureza das células endoteliais coronarianas isoladas por este método pode ser confirmada por coloração imuno-histoquímica contra os marcadores de superfície celular endotelial, BS lectina e AC-LDL, com mais de 90 por cento das células demonstrando expressão dupla positiva para ambos os marcadores em um cultivo típico de células endoteliais coronarianas de camundongo. Após este procedimento, como um método, diversas análises de sangue, imunodetecção e imagens fluorescentes podem ser realizadas para responder perguntas adicionais, como qual proteína pode ser modificada durante diferentes estados de doença.Após seu desenvolvimento, esta técnica fornece as ferramentas necessárias para que os pesquisadores ampliem suas investigações no campo das células endoteliais coronarianas. Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como isolar células endoteliais coronarianas de camundongos com alta quantidade e qualidade. Existem vários pontos principais durante este procedimento.A coisa mais importante é manter um ambiente estéril durante todo o isolamento. Em segundo lugar, é necessário remover completamente o sangue o mais rápido possível, para evitar a coagulação no interior da rede capilar. Em terceiro lugar, é essencial medir o pH de todos os tampones, especialmente o tampon CD31.

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Biology

Biologia

Aqui, nós descrevemos um protocolo para isolamento e cultura de células endoteliais pulmonares de camundongos. Este método compreende mecânico e dissociação enzimática do tecido pulmonar, bem como um processo de purificação passo 2, utilizando anti-PECAM-1 e anti-ICAM-2 anticorpos conjugados com esferas magnéticas, que produz uma população de células endoteliais pura de origem principalmente microvascular.

Isolamento e cultura de células endoteliais pulmonares de camundongos Neonatal

A capacidade de isolar células endoteliais da válvula cardíaca (VECs) é fundamental para a compreensão dos mecanismos de desenvolvimento, manutenção e doença da válvula.  Aqui descrevemos o isolamento de VECs de camundongos Tie2-GFP embrionários e adultos usando FACS que permitirá estudos determinando a contribuição de VECs em processos de desenvolvimento e doença.

O isolamento de células endoteliais de Murino Válvula

As células endoteliais vasculares desempenham um papel significativo em muitos distúrbios cardiovasculares importantes. Este artigo descreve um método simples para isolar e expandir as células endoteliais da aorta do camundongo sem o uso de nenhum equipamento especial. Nosso protocolo fornece um meio eficaz de identificar mecanismos na fisiopatologia das células endoteliais.

Isolamento e cultura primária de células de camundongo aórtica endoteliais

O objectivo deste protocolo é demonstrar as técnicas de isolamento e cultivo de células musculares murino primários liso vascular (VSMC) da circulação coronária. Uma vez que as VSMCs foram isolados, eles podem ser usados ​​para várias técnicas de cultura convencionais.

Isolamento de Murino vasculares coronários células musculares lisas

Células endoteliais microvasculares dos músculos esqueléticos (MMEC) forma a parede interna dos capilares musculares e regular a ambos, troca de fluidos/moléculas e migração de células (imunes) entre o tecido muscular e sangue. Isolamento de MMEC murino primário, conforme descrito aqui, permite investigações in vitro abrangentes da unidade"myovascular".

Isolamento de células endoteliais Microvascular do principal músculo esquelético murino

Apresentamos um protocolo para o isolamento de células endocárdicas e coronárias de corações de ratos através da digestão sequencial de tecidos em um tampão de digestão, coleta celular de ciclos de centrífuga recorrentes e purificação celular usando microesferas CD31 anti-ratos.

Isolamento das Células Endocárdicas e Coronárias da Parede Livre Ventricular do Coração de Rato

Aqui descrevemos e demonstramos um protocolo para o isolamento da célula endotelial do fígado do camundongo primário (LSEC). O protocolo é baseado na perfusão da colagem hepática, purificação celular não parenquimal por centrifugação de baixa velocidade e seleção de contas magnéticas CD146. Também fenótipo e caracterizamos esses LSECs isolados usando citometria de fluxo e microscopia eletrônica de varredura.

Isolamento e Caracterização de Células Endoteliais Hemorlicais do Fígado Primário do Rato

Apresentamos um método para isolar células e núcleos endoteliais do lúmen de artérias carótidas de camundongos expostas a condições de fluxo estáveis ou perturbadas para a realização de experimentos ômicos unicelulares.

Isolamento de células endoteliais do lúmen de artérias carótidas de camundongos para experimentos multi-ômicos unicelulares

Neste artigo, células endoteliais primárias do pulmão foram isoladas e cultivadas de camundongos neonatais.

Isolamento de Células Endoteliais Primárias de Pulmão de Camundongo

Este protocolo descreve o isolamento de células endoteliais de camundongos de todo o pâncreas.

Isolamento de células endoteliais pancreáticas de camundongo

Aprenda a isolar células endoteliais coronárias de camundongo com alta pureza e rendimento usando CD31 e imunomagnetismo. Este método avança pesquisas cardiovasculares com células de qualidade superior.

Isolamento de células de camundongo Coronária endoteliais

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