Name: Microscopia Eletrônica de Varredura do Tecido macerado para visualizar a matriz extracelular (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-06-14T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 21 s
Description: Aprenda microscopia eletrônica de varredura para visualizar a matriz extracelular em tecidos cardíacos descelularizados. Esta técnica revela a organização da matriz e auxilia no estudo de fibrose e cardiomiopatias.

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Este estudo foi financiado por doações do National Institutes of Health (NIH), Heart, Lung, and Blood Institute (NIHLB): K01-HL-121045, K08-HL-094703, 5T32HL007411-35, P20 HL101425, U01 HL100398. 
A imagem e o processamento de tecidos (após a maceração por NaOH) foram realizados por meio do uso do Cell Imaging Shared Resource (CISR) do Vanderbilt University Medical Center (VUMC) (apoiado por bolsas do NIH CA68485, DK20593, DK58404, DK59637 e EY08126). Somos especialmente gratos aos diretores principais do VUMC CISR (Dr. Sam Wells e Dr. W. Gray (Jay) Jerome) por valiosos conselhos técnicos e também por fornecer espaço e recursos centrais para fins de filmagem da técnica destacada neste artigo. 
Gostaríamos de estender nosso mais profundo agradecimento ao Dr. Yan Ru Su e à Sra. Kelsey Tomasek do Laboratório Central de Cardiologia para Pesquisa Translacional e Clínica da Universidade de Vanderbilt por fornecer conhecimento técnico e coletar amostras de tecido humano usadas neste estudo.

Declaração de Ética: Os protocolos para lidar com os animais foram aprovados pelo Institutional Animal Care Vanderbilt e Comitê de Uso (IACUC, protocolos número M / 10/117 (suína) e M / 10/219 (ratos) e conduzida de acordo com padrões AAALAC-internacionais. o uso de tecidos cardíacos humano de banco foi aprovado pela Vanderbilt University Medical Center IRB (protocolo número 100.887). 1. Amostra Coleta e Armazenamento <ol><li> Adicione fresco de glutaraldeido a 4% em solução tampão de fosfato 0,1 M (PB). CUIDADO: O glutaraldeído é tóxico, usar luvas e trabalhar em um exaustor. <ol><li> Adicione uma solução de estoque 0,2 M de PB, pH 7,4 utilizando 21,8 g de Na 2 HPO 4 e 6,4 g de NaH 2 PO 4. Quantum satis (Qs) a 1000 ml de dH 2 O. </li><li> Adicionar 400 ul de 50% de glutaraldeído e 2,5 ml da solução de PB e 2,1 ml de dH 2 O. </li></ol></li><li> Mergulhe um pedaço (não maior que 2 cm 2) de tecido em solução de glutaraldeido a 4%. Nota: pedaços menores também podem ser usados ​​mas deve ser de tamanho suficiente (não menor do que 5 mm 2) para ser facilmente visualizada por olho, a fim de facilitar as etapas posteriores do protocolo. </li><li> Incubar à temperatura ambiente durante 1 h, em seguida, armazenar indefinidamente a 4 ° C. </li></ol> 2. Decelularização of Heart Tissue <ol><li> Adicione uma solução aquosa a 10% de NaOH fresco utilizando 10 g de pastilhas de NaOH / 100 ml de dH 2 O. CUIDADO: soluções de NaOH são corrosivos e podem causar alcalinos-queimaduras, usar luvas. </li><li> Lavar o tecido em dH 2 O. </li><li> Incubar em solução de NaOH a 10% à temperatura ambiente durante 6 - 10 dias (até que as mudanças de tecido de castanho-avermelhado para fora-branco ou branco). </li><li> Enxágüe em dH2O até que o tecido torna-se transparente. </li><li> Imergir tecido em ácido tânico 1% durante 4 horas à temperatura ambiente. Use solução de 1 ml de 5% por 4 ml de dH 2 O. CUIDADO: O ácido tânicoé um irritante forte, usar luvas. </li><li> Enxágüe em dH2O durante a noite. </li></ol> 3. Osmication e desidratação do coração Tissue (em Fume Hood Segurança) <ol><li> Adicione uma solução de estoque 0,2 M de tampão de cacodilato de sódio utilizando 21,4 g de cacodilato de sódio, 10,0 g de cloreto de cálcio e 450 ml de dH 2 O. Mistura, em seguida, adiciona-se ácido clorídrico como necessário para ajustar o pH para 7,4. Qs para 500 mL com dH2O CUIDADO: cacodilato de sódio e ácido clorídrico são tóxicos, usar luvas e trabalhar em um exaustor. </li><li> Adicione solução estoque aquoso a 2% de tetróxido de ósmio no exaustor de fumos para a segurança através da dissolução de 1 g de tetróxido de ósmio cristal em 50 ml dH2O CUIDADO: tetróxido de ósmio é um perigo por inalação grave; fixação de vapor de membranas mucosas ou olhos é possível, portanto, lidar apenas no exaustor com luvas. A proteção contra respingos é recomendado. </li><li> Lavar o tecido em tampão de cacodilato de sódio 0,1 M (solução estoque mistura 1: 1 com dH <sub&gt; 2 O) por 5 min em rotador (ou agitação suave). </li><li> Repita o passo anterior por duas vezes, para um total de três lavagens de buffer. </li><li> Imergir tecido em 1% de tetróxido de ósmio em tampão de cacodilato de sódio 0,1 M (mistura de cacodilato de sódio e da lingua de tetróxido de ósmio 1: 1) em rotador durante 1 h. </li><li> Lavar o tecido em tampão de cacodilato de sódio 0,1 M, 3 vezes durante 5 min cada em rotador. </li><li> Lavar o tecido utilizando concentrações crescentes de etanol (30%, 50%, 75%, 85%, 95%, e, finalmente, 100%) durante 15 min cada em rotador. </li></ol> 4. Preparação de Superfície Corte Transversal para SEM <ol><li> Transferir o tecido em etanol a 100% a um prato raso de Petri contendo também 100% de etanol. </li><li> Segurar duas lâminas muito afiadas de tal modo que os planos dos lados estão em contacto uma com a outra e as arestas de corte transversal de modo a formar dois lados de um triângulo equilátero de cima do espécime. Para conseguir isso, usar a mão esquerda para colocar um pino no lado mais à direita da amostra ecorte para a esquerda. Ao mesmo tempo, usar a mão direita para colocar a segunda lâmina na extrema esquerda da amostra e fatia direita. Assim, as pás irão deslizar uma contra a outra a partir de direcções opostas para fazer um único corte liso. </li><li> Deslize os lados lâmina plana umas contra as outras para fazer um corte muito limpo do espécime com a mínima distorção ou rasgar força, de preferência tão grande expondo uma área de superfície possível, sem danificar a amostra. </li><li> Repita o procedimento para cada espécime para expor as mais limpas possíveis superfícies de seção transversal para exame na SEM. </li></ol> 5. Pontos Críticos de secagem (CPD) do Coração Tissue <ol><li> Usar uma espátula ou uma pinça para transferir o tecido para o suporte de amostras do secador de ponto crítico (CPD), assegurando que o tecido permanece em etanol a 100% em todos os momentos. Certifique-se de que o suporte é imerso em etanol e de que a transferência é conseguido com o tecido exposto ao ar durante não mais do que alguns segundos. </li><li> Operar CPD por nósmanual do er para completar 3 purga-e-fill ciclos para substituir o etanol com dióxido de carbono líquido. </li><li> Operar CPD per manual do usuário para alcançar a secagem ponto crítico das amostras e devolvê-los à pressão atmosférica com ventilação controlada de CO 2. </li></ol> 6. Montagem de Amostras coração de tecido para SEM <ol><li> Prepara-se uma amostra de topo SEM para cada espécime, aderindo uma aba adesiva de carbono para a superfície de topo do topo de alumínio. </li><li> Com o auxílio de um microscópio estereoscópico, o espécime cuidadosamente aderir à aba adesiva com a superfície de secção transversal de interesse virado para cima (afastado do separador, visível), e tão perto quanto possível em paralelo com o plano da superfície da amostra topo. Não sondar ou toque na superfície de interesse. </li><li> Quebrar uma vara aplicador de madeira para alcançar uma escova cônico, ideal para aplicação da tinta. Aplicar prata ou tinta de carbono na base e os lados do espécime, para melhorar a adesão ao topo. </li><li> Estender uma linha muito fina de prata ou de carbono pintar-se a uma aresta da superfície de interesse, para fornecer um caminho de carga a partir da superfície de interesse para o solo. </li><li> Aplicar 2 ou 3 pequenas salpicos de tinta de prata ou de carbono em torno do perímetro da guia de carbono, para proporcionar um caminho condutor da superfície de guia de carbono para o topo de metal e, assim, para o solo. </li><li> Permite que a tinta condutora de secar durante duas horas. </li><li> Operar revestidor por crepitação per manual do usuário para aplicar um revestimento relativamente pesado (intervalo alvo de 30 - 40 nm) de liga de ouro-paládio ou ouro. Bombear câmara de amostra para aproximadamente 0,1 mbar; definido Temporizador de 40 segundos. Abrir Set válvula para a posição 08:00 (fluxo moderado de gás argônio). Press Start para iniciar revestimento por pulverização em 30 mA. descarga luminescente roxo deve ser visível na câmara de amostra. </li></ol> 7. SEM análise de amostras do tecido cardíaco <ol><li> Execute microscopia eletrônica de varredura na relativamente baixa tensão de aceleração para minimizar a imagem pROBLEMAS associados à má dissipação da carga na amostra (carga). condição de imagem inicial sugerida são: 5 kV tensão de aceleração, distância de trabalho de 10 mm. </li><li> Com a ajuda de um operador experiente, empregam aumento da distância trabalhando para estender a profundidade de campo em condições de imagens que requerem foco de fibras em vários planos focais, ou fibras que se estendem para o comprimento considerável na dimensão z. <ol><li> Para o microscópio usado aqui (ver Tabela de Materiais), no acesso à interface de usuário na guia de navegação na parte superior direita. </li><li> Acesse a aba coordenadas a partir do menu Stage. Para aumentar a distância de trabalho, digite um valor maior em milímetros para a coordenada Z, em seguida, clique no Go To Tab para mover o estágio da amostra à distância de trabalho entrou. </li></ol></li><li> Com a ajuda de um operador experiente, empregam espécime inclinação e rotação para posicionar a superfície de interesse ortogonal em relação ao feixe de electrões. inclinação adicional de 10 a 30 DEGRees a partir desta posição pode melhorar a observação e documentação da estrutura da matriz. <ol><li> Para o microscópio usado aqui (ver Tabela de Materiais), na interface do usuário, clique e segure o botão direito do mouse, em seguida, deslize para a esquerda ou para a direita para focar a amostra perto da periferia do avião superfície preparada de interesse, notando a distância de trabalho focado . </li><li> Navegar com o Manual joystick User Interface para mover perto da borda oposta do foco de superfície e de repetição. Se a distância de trabalho não é aproximadamente igual à primeira posição, espécime inclinação para alcançar um acordo aproximado em ambos os locais usando a guia Coordenadas do menu Stage (ver 7.2) e digite um valor de inclinação na T coordenadas. </li><li> Gire espécime noventa graus (inserir o valor em R campo de coordenadas) e repita o processo até que todas as posições estão focados em aproximadamente a mesma distância de trabalho. Nota: SEM de pressão variável pode ser empregue para melhorar a dissipação de cargasse disponível. Alto vácuo é o modo de operação padrão para microscopia eletrônica de varredura. </li></ol></li></ol>

Os autores não têm nada a divulgar.

preparação seção superfície Cruz é o passo mais crítico durante o protocolo. Para preservar a estrutura fina, as amostras desidratadas devem permanecer em etanol 100% em todos os momentos, até introduzido para o processo de secagem de ponto crítico. Portanto, o corte dos espécimes para alcançar superfícies para exame EM deve ser feito enquanto espécimes estão submersos em etanol em um prato raso. É também fundamental que a superfície exposta não é tocado ou sondado durante o manuseamento subsequente. Sem grandes modific...

A fibrose interrompe a rede normal de colágeno miocárdico, que é crítica para as funções mecanicistas normais dos cardiomiócitos 1,2, bem como para a comunicação intercelular, sinalização intracelular e sobrevivência celular 3. O desenvolvimento de fibrose é um dos principais determinantes da função cardíaca, e o remodelamento fibrótico do interstício cardíaco decorrente de uma variedade de etiologias leva ao aumento da rigidez ventricular esquerda e disfunção diastólica 4. A fibrose miocárdica também pode levar a arritmias e, seja a progressão do remodelamento fibrótico um fenômeno geral ou local, está altamente associada a um mau prognóstico em pacientes com cardiomiopatia isquêmica e não isquêmica 5. Da mesma forma, a ausência de fibrose miocárdica é um forte preditor de recuperação funcional ventricular e sobrevida em longo prazo 6. 
A marca registrada da fibrose é a deposição de excesso de colágeno, que tem a resistência à tração do aço 7 e pode afetar adversamente a função dos cardiomiócitos em vários níveis. Forças mecânicas resultantes de uma matriz excessivamente colágena podem levar à atrofia dos cardiomiócitos 8,9, rigidez passiva do tecido 10, rigidez miocárdica induzida pela contração tônica 11-13 e redução do fornecimento de oxigênio para a população remanescente de cardiomiócitos. O acoplamento de cardiomiócitos e mioFbs também pode comprometer as características elétricas do coração, criando um risco maior para o desenvolvimento de arritmias 14-16. A fibrose perivascular altera a reatividade vasomotora das artérias coronárias intramurais e arteríolas17 e contribui para o estreitamento luminal que reduz o suprimento de oxigênio e, portanto, a sobrevida dos cardiomiócitos17-22. A remodelação elétrica e fibrótica patogênica, que emana de um local inicial de lesão isquêmica ou desequilíbrio energético, inevitavelmente progride para insuficiência cardíaca. 
A necrose cardiomiócita inicia a resposta fibrótica, e a subsequente remodelação fibrótica adversa pode ocorrer independentemente da etiologia. Encontrar uma maneira de controlar a fibrose cardíaca seria clinicamente benéfico para o tratamento de cardiomiopatias isquêmicas e idiopáticas, cardiopatias hipertensivas, cardiomiopatia hipertrófica, valvopatia e distrofinopatias 23-42. Independentemente de como o processo da doença fibrótica começa, fatores profibróticos solúveis podem atravessar o espaço intersticial e provocar a ativação de fibroblastos intersticiais e adventícios em locais remotos à cicatriz fibrótica inicial, criando um efeito cascata que acaba levando à insuficiência cardíaca. O cenário ideal seria explorar o processo fibrilogênico usando uma terapêutica direcionada que pode ser aplicada durante o estágio hipertrófico compensatório da cardiomiopatia antes de progredir para insuficiência da bomba sistólica, insuficiência cardíaca diastólica ou outros resultados em estágio terminal. O objetivo final seria reverter a fibrose para que os cardiomiócitos mortos possam ser substituídos e a função cardíaca restaurada completamente. 
A importância da matriz é amplamente compreendida, mas os métodos para estudar a matriz são limitados principalmente a medições quantitativas dos principais componentes estruturais, particularmente colágeno, e níveis relativos de diferentes matrizes e proteínas matricelulares. Este protocolo destaca uma técnica raramente utilizada e útil para avaliar diferenças qualitativas na matriz cardíaca. Essa técnica foi recentemente usada para comparar e contrastar diferenças fundamentais em matrizes cardíacas de diferentes etiologias de doenças cardíacas (em explantes humanos), examinar corações de porcos pós-infartados tratados com a isoforma do fator de crescimento glial (GGF) da neuregulina-1β, em relação a animais não tratados 43, e sondar diferenças nas matrizes de tecidos cardíacos de mdx camundongos (um modelo animal comumente usado de Distrofia Muscular de Duchenne) em diferentes idades e em comparação com controles do tipo selvagem. Essa técnica foi introduzida pela primeira vez pelos Drs. Caulfield e Borg em 1979 44, mas poucos estudos empregaram essa poderosa técnica 45-47, reintroduzida aqui com apenas uma ligeira modificação. Essa metodologia é uma ferramenta de pesquisa valiosa, pois fornece informações qualitativas sobre a ultraestrutura da matriz extracelular que, de outra forma, poderiam ser negligenciadas ao medir simplesmente o conteúdo do componente da matriz e/ou o nível de fibrose.

<table><tbody><tr><td>Microscopia Eletrônica</td> de <td>Cloreto de Cálcio</td> Sciences <td>12340</td><td>100 g</td></tr><tr><td>Adesivo de Carbono</td><td>Microscopia Eletrônica Sciences</td><td>12664</td><td>30 g</td></tr><tr><td>Abas Adesivas de Carbono</td><td>Microscopia Eletrônica Sciences</td><td>77825</td><td>para caber em pontas Lâminas</td></tr> de <tr><td>Barbear de Dupla Face em Aço Inoxidável</td><td>Ted Pella, Inc</td><td>121-6</td><td>250/pkg</td></tr><tr><td>Etanol</td><td>Electron Microscopy Sciences</td><td>15055</td><td>450 ml</td></tr><tr><td>de gluteraldeído, solução a 50%</td><td>Microscopia eletrônica Sciences</td><td>16310</td><td>grau EM, purificação por destilação</td></tr><tr><td>Microscopia eletrônica</td><td>de ácido clorídrico</td> Sciences <td>16760 ou 16770</td><td>100 ml</td></tr><tr><td>de fosfato monossódico NaH2PO4</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S9251-250G</td><td>250 g</td></tr><tr><td>de ósmio </td><td>Microscopia Eletrônica</td> Tetroxide Sciences <td>19100</td><td>1 g</td></tr><tr><td>Adesivo Condutivo de Prata</td><td>Microscopia Eletrônica Sciences</td><td>12686-15</td><td>15 g</td></tr><tr><td>Hidróxido de sódio (NaOH)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S8045-1KG</td><td>1 kg</td></tr><tr><td>Fosfato de Sódio Dibásico (Na2HPO4)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S3264-500G</td><td>500 g</td></tr><tr><td>Ácido Tânico, 5% Aquoso&nbsp;</td><td>Electron Microscopy Sciences</td><td>21702-5</td><td>500 ml</td></tr><tr><td>Trihydrate Sodium Cacodylate</td><td>Microscopy Sciences</td><td>12300</td><td>100 g</td></tr><tr><td>Gold-palladium Alloy or Gold</td><td>Refining Systems, Inc.&nbsp;</td><td>varia</td><td>específico para a marca e modelo do revestidor por pulverização catódica</td></tr><tr><td>Secador de Ponto Crítico</td><td>Microscopia Eletrônica Sciences</td><td>850</td><td></td></tr><tr><td>Aplicadores de Madeira Lisa</td><td>Fisher Scientific</td><td>23-400-102</td><td></td></tr><tr><td>Quanta 250 SEM Ambiental</td><td>FEI</td><td>Q250 SEM</td><td></td></tr><tr><td>Sputter Coater</td><td>Cressington Scientific Instruments Ltd.</td><td>Modelo 108</td><td></td></tr><tr><td>Alluminum SEM Amostra Stubs</td><td>Microscopia Eletrônica Ciências</td><td>75220-12</td><td>específicas para o miscroscópio</td></tr></tbody></table>

microscopia eletrônica de varredura do tecido macerado para visualizar a matriz extracelular

Scanning Electron Microscopy of Macerated Tissue to Visualize the Extracellular Matrix

A fibrose é um componente de todas as formas de doença cardíaca, independentemente da etiologia, e embora muito progresso tenha sido feito no campo da biologia da matriz cardíaca, ainda existem grandes lacunas relacionadas a como a matriz é formada, como a remodelação fisiológica e patológica diferem e, mais importante, como a dinâmica da matriz pode ser manipulada para promover a cicatrização e inibir a fibrose. Atualmente, não há opção de tratamento para controlar, prevenir ou reverter a fibrose cardíaca. Parte do motivo é provavelmente a grande complexidade da formação de cicatrizes cardíacas, como ocorre após o infarto do miocárdio para substituir imediatamente os cardiomiócitos mortos ou moribundos. A própria matriz extracelular participa da remodelação ativando as células residentes e também ajudando a guiar as células infiltrantes para a lesão extinta. A matriz também é uma espécie de armário de armazenamento para proteínas matricelulares que são cruciais para a renovação normal da matriz, bem como para a sinalização fibrótica. Além disso, foi demonstrado que a matriz desempenha um papel eletromecânico no tecido cardíaco. A maioria das técnicas para avaliar a fibrose não é de natureza qualitativa, mas fornece resultados quantitativos que são úteis para comparar dois grupos, mas que não fornecem informações relacionadas à estrutura da matriz subjacente. Destaca-se aqui uma técnica para visualização da ultraestrutura da matriz cardíaca. A microscopia eletrônica de varredura do tecido cardíaco descelularizado revela diferenças marcantes na estrutura que, de outra forma, poderiam ser perdidas usando métodos tradicionais de pesquisa quantitativa.

A técnica realçada foi aplicada aos tecidos cardíacos de um doador de transplante de coração humano não utilizado (Figura 1), tecidos explantados de pacientes receptores de transplante, corações de tipo selvagem e ratinhos distróficos (Figura 3), e em amostras de coração pós-enfarte do miocárdio de um suíno modelo de lesão cardíaca (Figura 2). Como mostrado na Figura 1, a matriz cardíaco humano é um complexo de proteínas...

Mostrado aqui é um método para visualizar a ultraestrutura da matriz extracelular em tecidos cardíacos descelularizados.

Microscopia Eletrônica de Varredura do Tecido macerado para visualizar a matriz extracelular

Fibrosis is a component of all forms of heart disease regardless of etiology, and while much progress has been made in the field of cardiac matrix ...

O objetivo geral deste método é visualizar a estrutura da matriz cardíaca na ausência de células ou outros materiais não matriciais. Este método pode responder perguntas fundamentais na área da fibrose, especialmente como as diferenças na composição da matriz podem afetar sua organização e como essas alterações podem influenciar diferentes cardiomiopatias ou outras doenças fibroticas. A principal vantagem desta técnica é que ela fornece uma visão qualitativa da matriz que pode ser usada para complementar medidas quantitativas.Os Doutores Galindo e Sawyer tiveram pela primeira vez a ideia de usar esta técnica após descobrirem que o tratamento regular de suínos pós-infarcto provocava alterações na expressão gênica semelhantes às alterações no conteúdo da matriz após o tratamento. Indivíduos novos neste método podem ter dificuldades se não tiverem experiência prévia em preparação de amostras para MEV, devido às habilidades motoras finas necessárias. A amostra de tecido deve ser grande o suficiente para ser facilmente visível e armazenada em solução de glutaraldeído a quatro por cento a quatro graus Celsius.Retire o tecido do armazenamento em geladeira e enxágue-o com água destilada. Em seguida, imerja o tecido em uma solução de hidróxido de sódio a 10 por cento, preparada recentemente a partir de pastilhas em água. Certifique-se de tomar as precauções adequadas.Mantenha o tecido na solução de hidróxido de sódio por seis a 10 dias à temperatura ambiente. Prossiga quando a cor do tecido ficar esbranquiçada ou branca. Em seguida, lave o tecido com água destilada até que fique transparente.Em seguida, coloque luvas e imerja o tecido em ácido tânico a um por cento por quatro horas à temperatura ambiente. Após o banho em ácido tânico, enxágue o tecido em água destilada durante a noite. Como preparação, em uma câmara de exaustão usando luvas, prepare uma solução estoque 0,2 molar de tampão cacodilato de sódio e uma solução estoque aquosa a dois por cento de tetróxido de ósmio.Use uma proteção contra respingos, pois o tetróxido de ósmio é um sério risco de inalação. Em seguida, prepare uma diluição 0,1 molar do tampão cacodilato de sódio e incube o tecido nele por cinco minutos com agitação suave. Troque o tampão duas vezes para lavar o tecido um total de três vezes com cacodilato de sódio.Em seguida, prepare uma mistura na proporção um para um do estoque de cacodilato de sódio e do estoque de tetróxido de ósmio. Incube o tecido na nova mistura em um agitador rotativo durante uma hora. Posteriormente, retorne o tecido para o cacodilato de sódio 0,1 molar e incube com agitação suave durante cinco minutos.Troque esta solução duas vezes ao longo de 15 minutos. Em seguida, desidrate o tecido usando uma série de banhos de etanol com concentrações crescentes. Deixe o tecido em imersão por 15 minutos em cada banho, com agitação suave.Em seguida, transfira o tecido e a solução para uma placa de Petri rasa contendo etanol a 100 por cento. Depois, com cuidado, segure duas lâminas de barbear muito afiadas de modo que as faces laterais planas estejam em contato uma com a outra, e as bordas cortantes se cruzem formando dois lados de um triângulo equilátero acima do espécime. Agora, use a mão dominante para posicionar a segunda lâmina no extremo esquerdo da amostra e corte em direção à direita.Assim, deslize as lâminas uma contra a outra a partir de direções opostas para fazer um único corte suave com força mínima de distorção ou rasgo. O objetivo é expor uma área de superfície tão grande quanto possível sem danificar o espécime. Repita o processo até que sejam preparadas seções transversais satisfatórias em quantidade suficiente para exame por MEV.Usando uma espátula ou pinça, transfira o tecido para o suporte de amostras do SPD, mantendo o tecido imerso em etanol a 100 por cento. O tecido não pode ser exposto ao ar por mais de alguns segundos. Utilize o SPD para substituir o etanol por dióxido de carbono líquido e realize o ciclo de secagem conforme indicado pelo fabricante.Em seguida, prepare um suporte para amostra de MEV para cada espécime. Fixe uma fita adesiva de carbono na superfície superior do suporte de alumínio. Sob um estereoscópio, adira cuidadosamente o espécime à fita adesiva, com a superfície de interesse em corte transversal voltada para cima, afastada da fita, e o mais plana possível em relação à superfície do suporte.Não probe nem toque a superfície de interesse. Para os espécimes menores e mais difíceis, quebre o palito de madeira para usá-lo como uma espátula. Além disso, trabalhe sobre uma folha grande de papel filtro para evitar perder um espécime que cair.Para melhor aderência, use um bastão aplicador quebrado para fazer um pincel cônico e aplique tinta de prata ou carbono na base e nos lados do espécime. Estenda uma linha muito fina de tinta até uma borda da superfície de interesse. Isso criará um caminho de condução de carga da superfície de interesse até o solo.Em seguida, aplique duas ou três pequenas gotas de tinta ao redor do perímetro da aba de carbono para criar um caminho condutivo da superfície da aba até o suporte metálico. Isso funciona como aterramento. Reserve o espécime e deixe a tinta condutiva secar por duas horas.Uma vez seco, opere um sputter coater para aplicar uma camada relativamente espessa de liga de ouro-paládio ou ouro sobre o espécime. Deseja-se um revestimento com espessura de 30 a 40 nanômetros. Realize a microscopia eletrônica de varredura com uma tensão de aceleração relativamente baixa para minimizar problemas associados à má dissipação de carga na amostra.Utilize o modo de pressão variável, se disponível. Primeiro, aumente a distância de trabalho para fornecer profundidade de campo suficiente para focar as fibras na dimensão Z. Para isso, abra a guia Navegação no canto superior direito.Em seguida, acesse a guia Coordenadas no menu do estágio. Nela, insira um valor maior para a coordenada Z, como 20 milímetros. Por fim, pressione a guia Ir Para para executar a alteração.Em seguida, posicione a superfície de interesse ortogonalmente ao feixe de elétrons. Clique e mantenha pressionado o botão direito do mouse, depois deslize-o para a esquerda ou para a direita para focalizar o espécime próximo à periferia do plano de superfície preparado de interesse. Anote a distância de trabalho focalizada.Em seguida, utilizando o joystick da interface manual do usuário, mova a visualização até a borda oposta e repita o método de foco. Se a distância de trabalho tiver mudado, incline o espécime para obter uma concordância aproximada em ambos os locais. Utilize a guia Coordenadas do menu Estágio e insira um valor de inclinação na coordenada T.Agora, rotacione o espécime 90 graus inserindo esse valor no campo de coordenada R. Em seguida, repita o processo de inclinação até que todas as posições estejam focadas a uma distância de trabalho aproximadamente igual. A técnica descrita foi aplicada a tecidos cardíacos de um doador humano para transplante de coração não utilizado.A matriz cardíaca humana é uma trama intrincada de proteínas reticuladas que apresenta um padrão semelhante a um favo de mel em uma seção transversal. Cada estrutura em favo de mel tem aproximadamente 40 mícrons de largura, normalmente circundando um único miócito. Quando conectados por discos intercalares, vários miócitos cardíacos podem ser visualizados como uma haste que se estende longitudinalmente através de uma forma semelhante a um túnel.Além de fornecer informações estruturais, um MEV de tecidos descelularizados pode permitir uma avaliação qualitativa significativa em resposta a lesões ou formas não lesivas de cardiomiopatia, como tecidos cardíacos infartados de um suíno. Em um estudo separado, demonstrou-se que o isoforma GGF2 da NRG-1 beta é um possível tratamento terapêutico para insuficiência cardíaca. Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como processar tecido, tecido cardíaco, para o microscópio eletrônico de varredura, incluindo a técnica para expor a superfície de interesse e para montar o espécime.Após este procedimento, outras técnicas, como espectrometria de massa, sequenciamento de RNA e vários outros ensaios, podem ser utilizadas para medir proteínas da matriz extracelular e outras responsáveis por sinalização e outros fenômenos observacionais organizacionais. Além disso, não se esqueça de que o tetróxido de ósmio é um produto químico perigoso, devido ao potencial de fixação por vapores nas membranas mucosas. Lembre-se sempre de trabalhar em uma capela com luvas de nitrila, utilizando um protetor contra respingos ou o anteparo da capela.

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Biologia

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Apresenta-se um protocolo para obter matrizes derivadas de células ricas em proteínas da matriz extracelular, utilizando Crowders macromoleculares (MMC). Além disso, apresentamos um protocolo que incorpora MMC na geração de co-cultura de pele organotï¿½ica 3D, o que reduz o tempo de cultura, mantendo a maturidade da construção.

Melhorar 2D e 3D Pele<em&gt; In Vitro</em&gt; Models Usando Macromolecular Crowding

A matriz extracelular desempenha um papel importante na definição do microambiente das células e na modulação do comportamento e fenótipo celular. Descrevemos um método rápido para o isolamento de matriz extracelular derivada de células, que pode ser adaptado a diferentes escalas para estudos microscópicos, bioquímicos, proteômicos ou funcionais.

A rápida, Método Scalable para o isolamento, estudo funcional, e Análise de matriz extracelular derivado de celular

Macrófago extracelulares armadilhas são uma entidade recentemente descrita. Este artigo se concentrará em métodos de microscopia confocal e como eles são visualizadas in vitro e em vivo de amostras do pulmão.

Visualizando o macrófago armadilhas extracelular usando microscopia Confocal

O objetivo do presente protocolo é a produção de fibras da matriz extracelular toda alvejado para reparação da ferida que são apropriados para avaliação pré-clínicos como parte de um implante de andaime regenerativa. Estas fibras são produzidas pela cultura de fibroblastos nas membranas de fibra oca e extraídas por dissolução das membranas.

Produção de fibras da matriz extracelular através de cultura de células de membrana de fibra oca Sacrificial

Este protocolo apresenta um método para a decelularização e a formação subseqüente do hidrogel de almofadas gordas mamária murino que seguem a irradiação ex vivo.

Estudando efeitos de radiação tecidual normais usando Hydrogels de matriz extracelular

Descrevemos a preparação de fitas de seções seriais e sua coleção em grande suporte de transferência para uso como amostras de tomografia de array, juntamente com procedimentos automatizados de imagem em um microscópio eletrônico de varredura. O protocolo permite a triagem, recuperação e imagens direcionadas de eventos locais, raros e a aquisição de grandes volumes de dados.

Fluxo de trabalho de tomografia de array para a aquisição direcionada de informações de volume usando microscopia eletrônica de varredura

O presente protocolo otimiza os métodos de perfusão/decelularização hepática in situ e microscopia de dois fótons para estabelecer uma plataforma confiável para visualizar a dinâmica do remodelamento da matriz extracelular (MEC) durante a esteato-hepatite não alcoólica (EHNA).

Imagem 3D da Matriz Extracelular Hepática em Modelo de Esteatohepatite Não Alcoólica em Camundongos

Propomos um protocolo para avaliar a regeneração óssea em vários níveis hierárquicos. Essa abordagem multimodal permite a análise estrutural em diferentes escalas de comprimento, enfrentando efetivamente os desafios na preparação da amostra. Também oferece um fluxo de trabalho confiável para avaliar a eficácia dos biomateriais na promoção da regeneração óssea.

Abordagem Multimodal para Avaliar a Regeneração Óssea e o Desempenho em Andaimes

Aprenda microscopia eletrônica de varredura para visualizar a matriz extracelular em tecidos cardíacos descelularizados. Esta técnica revela a organização da matriz e auxilia no estudo de fibrose e cardiomiopatias.

Microscopia Eletrônica de Varredura do Tecido macerado para visualizar a matriz extracelular

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