18 de maio de 2016
Aqui, um protocolo para a colheita, manter, e tratar rato pequenas Organóides intestinais com padrões de agentes patogénicos associados moleculares (PAMPs) e Listeria monocytogenes é descrito, bem como a ênfase na expressão de genes e técnicas de normalização adequada para a proteína.
O objetivo geral deste procedimento é medir os efeitos do desafio patogênico em organoides do intestino delgado, com ênfase em técnicas de normalização em relação ao número total de células. Este método pode ajudar a responder perguntas fundamentais nas áreas de imunologia inata e mucosal, fornecendo um meio para investigar in vitro as interações entre patógenos e células epiteliais intestinais. Essencial para este procedimento é o método de normalização em relação ao número total de células, uma necessidade ao medir proteínas secretadas por organoides por meio de técnicas como ELISA. Para colher criptas intestinais de camundongos para cultura de organoides, comece usando uma lâmina de vidro estéril para remover suavemente as vilosidades da superfície luminal do intestino delgado. Em seguida, use tesoura de dissecação para cortar o tecido em tiras de 1-2 centímetros de comprimento. Coloque as tiras em um tubo cônico de 50 mililitros contendo 10 mililitros de PBS gelado. Misture o conteúdo por inversão suave e deixe o material tecidual sedimentar no fundo do tubo. Em seguida, aspire o PBS e lave as tiras mais três vezes com 10 mililitros de PBS fresco, cada vez da mesma maneira. Ao final da última lavagem, coloque o tubo no gelo por dez minutos. Substitua então o PBS por 25 mililitros de PBS suplementado com 2 milimolares de EDTA, mantendo o tubo em um balde de gelo sobre uma plataforma oscilante por 45 minutos. Ao final da incubação, deixe as tiras de tecido sedimentarem no fundo do tubo e substitua o PBS-EDTA por 10 mililitros de PBS suplementado com 10% de FBS. Agite vigorosamente o tubo manualmente dez vezes. Deixe então o tecido sedimentar no fundo do tubo e transfira o sobrenadante para um tubo cônico de 15 mililitros rotulado como Fração 1. Agite o tecido em PBS com FBS mais cinco vezes, transferindo o sobrenadante para um novo tubo de fração a cada vez. Após a última agitação, centrifugue todas as amostras e ressuspenda os pellets em cinco mililitros de DMEM/F12 pré-aquecido sem fatores de crescimento adicionados. Em seguida, centrifugue novamente as amostras e aspire quatro mililitros do sobrenadante de cada tubo. Ressuspenda os pellets no último mililitro do meio remanescente e use alíquotas de 20 microlitros de cada fração para visualizar as criptas e os detritos em lâminas de vidro. Após reunir as frações apropriadas para obter a maior proporção possível de criptas em relação aos detritos, centrifugue as frações reunidas e aspire todo o sobrenadante, exceto os últimos 50-100 microlitros. Mantendo os tubos no gelo, adicione 1 mililitro de matriz proteica às frações reunidas, pipetando suavemente para cima e para baixo para evitar a introdução de bolhas de ar. Em seguida, adicione 50 microlitros da suspensão de matriz proteica/criptas ao centro de cada poço de 37
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Este artigo descreve um protocolo para colher, manter e tratar organoides do intestino delgado de camundongo com padrões moleculares associados a patógenos (PAMPs) e Listeria monocytogenes. Destaca a expressão gênica e as técnicas adequadas de normalização para análise proteica.
Organoides intestinais de camundongo ex vivo fornecem um sistema fisiologicamente relevante para investigar interações entre hospedeiro e patógeno e sinalização imune inata em tecidos mucosos. A ênfase do protocolo na normalização em relação ao número total de células aborda um desafio crítico na geração de dados quantitativos e reprodutíveis a partir de culturas heterogêneas de organoides. Essa capacidade sustenta a confiança preditiva no descobrimento inicial e na validação de alvos para programas terapêuticos voltados à imunologia e ao microbioma.
Este protocolo integra-se ao continuum de descoberta, desde a testagem inicial de hipóteses até a identificação de compostos líderes e a validação pré-clínica em programas de imunologia mucosal e interação hospedeiro-microbio.