Name: A ligação covalente de anticorpos para celulose discos de papel e suas aplicações em visível a olho nu colorimétricos imunoensaios (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-10-21T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 4 s
Description: Aprenda a imobilizar anticorpos em discos de celulose usando oxidação por periodato e reticulação com glutaraldeído. Este método viabiliza imunoensaios colorimétricos de baixo custo para diagnósticos no ponto de atendimento.

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Este trabalho foi apoiado financeiramente pelo Ministério da Educação de Cingapura por meio do Subsídio Translacional e de Inovação (MOE2012-TIF-2-G-009).

1. Os grupos funcionais amina sobre a celulose Alongamento discos de papel <ol><li> Preparar um pedaço de papel quadrado com uma dimensão de 1 cm x 1 cm, e de 100 discos de papel feitas a partir de uma série No. papel de celulose com um diâmetro de 6,0 mm (papel de filtro de média de fluxo) utilizando um furador. </li><li> Para derivar grupos -NH2 sobre os discos de papel, mistura de 1 ml APS e 10 ml de acetona num frasco de vidro de 50 ml, na hotte. Adicionar discos de papel para a mistura reagente APS recentemente preparada, e incuba-se durante 5 h com agitação orbital (200 rpm) a temperatura ambiente de 32. Cuidado: Pega APS e acetona na coifa. </li><li> Decantar o excesso de solução do frasco de vidro de 50 ml em um recipiente de lixo orgânico. </li><li> Adicionam-se 10 ml de acetona para o frasco de vidro, misturar bem e decanta-se completamente para remover quaisquer APS que não reagiram e de outras impurezas. Repita esta etapa duas vezes. </li><li> Espalhe os discos de papel sobre a toalha de papel e coloque em um forno a 110 ° C durante 3 h. permitir que odiscos de papel para esfriar. Armazenar os discos em um tubo de centrífuga de 50 ml à temperatura ambiente. </li><li> Use transformada de Fourier espectroscopia de infravermelho (FTIR) para verificar a enxertia de grupos amina sobre o quadrado de papel de celulose, tal como descrito abaixo (Figura 3A). <ol><li> Ligue o computador e abra o instrumento de espectroscopia FTIR. </li><li> Abra o software para a espectroscopia FTIR. </li><li> Ir para &#39;Measurement → Inicializar &quot;. Os rectângulos para &#39;BS: KBr&#39;, &#39;Lamp: Infravermelho&#39; e &#39;Laser&#39; fica verde quando a inicialização é concluída. </li><li> Escolha &#39;Dados&#39; abaixo dos retângulos, e selecione &#39;% Transmitância&#39;, &#39;Happ-Genzel&#39;, &#39;45&#39;, &#39;4.0&#39;, e &#39;Min: 400, Max: 4000 &quot;para&quot; Modo de Medição&#39;, &#39;Apodização&#39;, &#39; Não. de Scans &#39;,&#39; resolução &#39;, e&#39; Range (cm-1) &#39;. </li><li> Clique em &#39;Medida&#39;. </li><li> Selecione &quot;arquivo de dados &#39;para os dados de fundo. Escrevapara baixo os comentários. </li><li> Clique em &#39;BKG &quot;para obter a linha de base para o fundo. </li><li> Fixar o papel quadrado no suporte de amostras filme. </li><li> Selecione &quot;arquivo de dados&quot; para os dados de exemplo. Anote os comentários. </li><li> Clique &quot;amostra&quot; de obtenção dos espectros da amostra. </li><li> Feche a aplicação espectroscopia FTIR e desligue o computador. </li></ol></li><li> Repita os passos acima (passos 1.1 a 1.6) para preparar grau nº 113, de celulose de papel e discos (papel de filtro fast-fluxo) quadrado amina funcionalizada, e obter o espectro de FTIR para o papel quadrado grau No. 113 (Figura 3B). </li></ol> 2. imobilização covalente de anticorpos em discos de papel de celulose Amine-funcionalizados <img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/54111/54111fig1.jpg" /> Figura 1. imobilização covalente de anticorpos por dois métodos diferentes.Um. Os anticorpos imobilizados sobre discos de papel de celulose funcionalizada com amina por meio de oxidação com periodato. Os resíduos de açúcar foram oxidadas por periodato de sódio para produzir grupos funcionais de aldeído. Em seguida, os anticorpos oxidados foram carregadas em discos de papel de celulose funcionalizada com amina. B. Os anticorpos foram então imobilizadas em discos de papel de celulose funcionalizada com amina por meio de glutaraldeído. Os discos de papel de celulose de amina funcionalizados foram imersos em solução de glutaraldeido a 0,05%, para introduzir grupos aldeído no discos de papel. Após a lavagem, os anticorpos foram carregados nos discos de papel aldeído funcionalizado. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54111/54111fig1large.jpg" target="_blank">Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a> <ol><li> Imobilizar os anticorpos sobre discos de papel de celulose funcionalizada com amina por meio de oxidação com periodato (Figura 1A). <ol><li> Misturar 1 ul de perioda de sódio 2,5 mMte com 2 ul de 0,1 mg / ml de anticorpo de coelho anti-IgG humana-FITC e 7 ul de tampão de pH 5,5 mM de acetato de 100 em um tubo de 1,5 ml, e incubar a mistura no escuro durante 30 min. NOTA: Siga este rácio de volume para preparar anticorpos mais oxidados, se necessário. Alterar a relação de volume para optimizar a concentração de periodato de sódio e de coelho anti-IgG humana-FITC. </li><li> Dilui-se a solução de anticorpo acima com 30 ul de 50 mM de solução salina de tampão fosfato (PBS; pH 7,4) até um volume final de 40 ul. </li><li> Prepare três discos de papel de filtro de médio fluxo de amina-funcionalizados e três discos de papel de fast-fluxo funcionalizado com amina (como descrito na Seção 1). <ol><li> Carga de 5 ul de periodato de sódio oxidado coelho anti-IgG humana-FITC em cada disco de papel de filtro de média de fluxo e 8 ul em cada disco de papel de filtro rápido de fluxo. Manter estes discos de papel no escuro durante uma hora à temperatura ambiente. </li></ol></li><li> Lava-se cada do disco de papel com 0,2 ml de lavagem lustreer (tampão Tris 50 mM com NaCl 0,15 M e 0,05% de agente tensioactivo, pH 7,4). Repetir a lavagem três vezes. </li><li> Fotografar as imagens de fluorescência através de um gerador de imagens de fluorescência molecular para identificar a presença de anticorpos em cada disco de papel de celulose 32. Use discos de papel em branco (tratado com a mesma concentração de anticorpos na ausência de periodato de sódio) como um controlo (Figura S1 a Figura S3). NOTA: Para a optimização experimental, alterar a concentração de um parâmetro que deve ser optimizado e corrigir as concentrações de todos os outros parâmetros. Uma elevada intensidade de fluorescência aumenta a quantidade de anticorpos de captura que são imobilizadas sobre os discos de papel de celulose. </li></ol></li><li> Imobilizar os anticorpos sobre discos de papel de celulose por meio de amina funcionalizados glutaraldeído (Figura 1B). <ol><li> Adicione as três APS tratada médio de fluxo discos de papel de filtro e os três discos de papel de filtro de fast-fluxo (descrita no ponto 1) a 2 ml de PBS 50 mM (pH 7,4) que contém 0,05% de glutaraldeído, durante 1 h, com agitação orbital à temperatura ambiente. Cuidado: Pega glutaraldeído na coifa. </li><li> Coloque três discos cada um em dois 1,5 ml tubos de centrífuga. Adicionar 1 ml de água deionizada (DI) de água a cada tubo e agitar os tubos durante 10 segundos. Remover a água por aspiração com uma pipeta. Repita duas vezes mais para remover todo o glutaraldeído que não reagiu. </li><li> Carga de 5 ul de 25 ug / mL de IgG de coelho-FITC (anticorpo de captura) anti-humano em cada disco de papel de filtro de fluxo médio funcionalizados com aldeo, e adicionar 8 ul em cada disco de papel de filtro rápido de fluxo funcionalizada-aldeído. Incubar no escuro durante cerca de 20 min à temperatura ambiente. Em seguida, adicionar 10 ul de PBS 50 mM (pH 7,4) a cada disco de papel sem remover os anticorpos e incubar durante 40 minutos para a reacção de amina aldeído. </li><li> Lavar os discos de papel com 0,2 ml de tampão de lavagem na parte superior de uma toalha de papel. Repita olavar duas vezes. </li><li> Fotografar as imagens de fluorescência através de um gerador de imagens de fluorescência molecular para verificar a presença de anticorpos em cada disco de papel de celulose 33. Use discos de papel em branco como controlo. NOTA: Na Figura 4, &#39;0&#39; está para o disco de papel em branco, que foi tratada com a mesma concentração de FITC-anticorpo na ausência de glutaraldeído; na Figura 5A, os discos de papel em branco foram tratadas com glutaraldeído, mas não há anticorpos com FITC foram carregadas para os discos de papel. </li></ol></li><li> Secam-se os discos de papel (a partir de secções 2.1 e 2.2) a 37 ° C durante 10 min. </li><li> Bloquear os discos de papel com 15 ul de tampão de bloqueio (10% de leite desnatado em pó em tampão Tris 50 mM, pH 7,4, com NaCl a 0,15 M) durante 10 min à temperatura ambiente. </li><li> Carga de 5 uL e 8 uL de IgG anti-coelho de cabra conjugado com peroxidase em PBS (1: 10000) em meio-fluxo e discos de papel de filtro rápido de fluxo, respectivamente. incubar durante30 min no escuro à temperatura ambiente. </li><li> Lavar os discos de papel com 0,2 ml de tampão de lavagem na parte superior de uma toalha de papel. Repetir a lavagem três vezes. NOTA: Não é necessário para remover o tampão de lavagem como os resultados não são afectados pelo tampão. </li><li> Carregar uma mistura de 10 ul de 3,3 &#39;, 5,5&#39;-tetrametilbenzidina (TMB) e peróxido de hidrogénio para cada disco. </li><li> Tomar imagens dos discos de papel com uma câmera digital ou telefone inteligente após 5 min de incubação. NOTA: Na Figura 5B, &#39;0&#39; significa os discos de papel que foram tratados com glutaraldeído, seguido por conjugado de carregamento na ausência de anticorpo FITC-anticorpo-HRP (peroxidase de rábano). </li></ol> ELISA 3. Papel à base de Detecção de IgG <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/54111/54111fig2.jpg" /> Figura 2. Representação esquemática do ELISA baseado em papel foOs anticorpos de detecção. captura de R IgG foram covalentemente imobilizada sobre os discos de papel de celulose funcionalizada-aldeído através de glutaraldeído. Os discos de papel de celulose foram bloqueadas com tampão de bloqueio. Alvo de IgG foi então adicionada aos discos, seguido do carregamento de sinal de anticorpos conjugados com HRP. Finalmente, a solução TMB e mistura de peróxido de hidrogênio foi carregado em cada disco de papel para a leitura de cor. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54111/54111fig2large.jpg" target="_blank">Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a> <ol><li> Adicionar 5 ml de solução de glutaraldeído a 0,05% (preparado em tampão PBS 50 mM, pH 7,4) para um frasco de vidro de 20 ml. Imergir 15 discos de papel de filtro de média de fluxo funcionalizado com amina nesta solução e manter durante 1 hora com agitação à temperatura ambiente. <ol><li> Ao mesmo tempo, repita o Passo 3.1 para preparar mais 15 aldeído discos de papel de filtro de fast-fluxo funcionalizados. Cuidado: Pega glutaraldeído no fumecapuz. </li></ol></li><li> Para remover o glutaraldeído que não reagiu a partir de discos de papel, colocar os discos de papel de filtro 15 meio de fluxo em um tubo de centrífuga de 15 ml, e os discos de papel de filtro 15 de escoamento rápido em mais 15 ml de tubo de centrifugação. Adicionar 5 ml de água DI a cada tubo e agitar os tubos durante 10 segundos. Remover a água por aspiração com uma pipeta. Repita duas vezes para remover todo o glutaraldeído que não reagiu. </li><li> Secam-se os discos de papel num forno de 37 ° C. </li><li> Adicionar 5 uL e 8 uL de anticorpos de fragmentos ml 0,025 mg / murganho de IgG-Fc a cada um dos discos de média de fluxo e de papel de filtro rápido de fluxo, respectivamente, e incubar durante 20 min. </li><li> Adicionar 10 ul de PBS 50 mM (pH 7,4) a cada disco de papel sem remover os anticorpos e incubar durante 40 minutos para a reacção de amina aldeído. </li><li> Lavar os discos de papel com 0,2 ml de tampão de lavagem na parte superior de uma toalha de papel. Repetir a lavagem três vezes. </li><li> Secam-se os discos de papel numa estufa a 37 ° C. </li><li> Bloquear os discos de papel wom 15 ul de tampão de bloqueio durante 10 minutos à temperatura ambiente. </li><li> Lava-se cada disco de papel com 0,2 ml de tampão de lavagem na parte superior de uma toalha de papel. Repetir a lavagem três vezes. </li><li> Executar padrões de IgG. <ol><li> Carga de 10 ul de várias concentrações de IgG (por exemplo, 0, 10, 125, 250, e 500 ng / ml em PBS) em cada disco, em triplicado. Incubar durante 1 h à temperatura ambiente. </li></ol></li><li> Lavar os discos de papel com 0,2 ml de tampão de lavagem na parte superior de uma toalha de papel. Repetir a lavagem três vezes. </li><li> Carga de 10 ul de anticorpos IgG de ratinho conjugado com HRP-Fc (fragmento 1: 10.000, de PBS 10 mM, pH 7,4), e incubar durante 1 hora à temperatura ambiente. </li><li> Lavar os discos de papel com 0,2 ml de tampão de lavagem na parte superior de uma toalha de papel. Repetir a lavagem três vezes. NOTA: Não é necessário para remover o tampão de lavagem como os resultados não são afectados pela presença de tampão. </li><li> Carregar uma mistura de 10 ul de TMB e peróxido de hidrogénio para cada disco. </li><li> Timagens ake de todos os discos de papel com uma câmera digital ou telefone inteligente após 5 min de incubação. Nota: Na figura 6A, &#39;0&#39; meios discos de papel tratados com imobilização do anticorpo de captura, e a solução de anticorpo-HRP / TMB sem soro IgG. </li><li> Analisar a intensidade de cada disco de papel na imagem por imagem J. <ol><li> Converter as imagens tiradas na etapa 3.15 para o formato &quot;tif&quot;. </li><li> software Open &#39;Imagem J&#39;. </li><li> Ir para &#39;arquivo → Open&#39;, escolher a imagem a ser analisada. </li><li> Escolha o botão de forma &quot;Oval&quot;. </li><li> Ir para &#39;Imagem → Tipo → 32 bit&#39;. </li><li> Ir para &quot;Editar → Inverter &#39;. </li><li> Ir para &quot;Analisar → Medida &#39;. </li><li> Copiar e analisar os dados em uma planilha. </li></ol></li></ol>

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</ol>

Os autores não têm nada a divulgar.

revestimento directo de captura de anticorpo purificado por afinidade de cabra anti-IgG de rato-Fc em discos de papel de celulose não modificado foi realizado para detectar concentrações de IgG. Os resultados indicaram que, adicionalmente a fixação dos anticorpos de captura é necessário para reprodutibilidade. A técnica de silano foi utilizado com sucesso para introduzir grupos funcionais de amina para os discos de papel de celulose 34. A concentração de EPA afecta a imobilização dos anticorpos. Portanto, a q...

O estudo de diagnóstico testes point-of-care (POCT) é importante para o desenvolvimento de novas estratégias para a terapêutica, medicina personalizada e atendimento domiciliar 1. Papéis de celulose são amplamente utilizados como plataformas em imunoensaios, porque são baratos, acessível, e familiar para os utilizadores 2. Além disso, a estrutura porosa de papel de celulose possui a capacidade de dirigir o fluxo de líquido sem impacto de energia adicional. Registros de bioanalysis baseado em papel pode ser encontrada já no século 20, quando a cromatografia em papel foi inventado pela primeira vez em 1952. O exemplo mais comum é os testes imunocromatográficos 3, tais como a gravidez e testes de diabetes tiras. Estes testes fornecem tempos de ensaio relativamente rápidos e análises barato 4. Devido à sua simplicidade, estes testes em tiras de papel convencionais têm sido amplamente utilizados em diagnósticos POCT 5. Métodos de detecção, incluindo colorimétrico 6, electroquímicas 7, 8 e de electroquimioluminescência têm sido relatados métodos para medir alvos em amostras biológicas. Em adição a estes métodos quantitativos, um método fiável para a imobilização de anticorpos sobre papel de celulose também é importante para o desenvolvimento de dispositivos de diagnóstico. Adsorção não específica é a principal estratégia para modificar anticorpos na superfície dos dispositivos à base de papel 9, 10 para garantir uma capacidade de ligação máxima aos seus alvos após imobilização. No entanto, um estudo anterior mostraram que os anticorpos que são adsorvidos sobre papel de celulose pode dessorver a partir das fibras 11 em 40%. Assim, a adsorção direta de anticorpos sobre a celulose podem não fornecer resultados reproduzíveis 12. Imobilização covalente de anticorpos que são enxertadas sobre as superfícies de papel é um método alternativo para o desenvolvimento de bioensaios baseados em papel eficazes 13. Vários métodos têm sido relatados para a modificação de celulose 14, 15 </sup&gt;. Idealmente, os anticorpos devem manter a sua funcionalidade original após imobilização 12. Carbonildiimidazole combinado com tetrafluoroborato de 1-ciano-4-dimetilaminopiridínio 16; 1-fluoro-2-nitro-4-azidobenzene através de uma estratégia de activação à base de UV 17, 18; quimioenzimáticas uma estratégia baseada em 19 de modificação xiloglucano; um agente de ligação 1,4-phenylenediisothiocyanate 20; heteropolysaccharide oxidação 21 click chemistry 22; e porfirinas catiónicos 23 têm sido utilizados para imobilizar biomoléculas covalentemente em papel de celulose. Papel modificado quitosano tem sido usado para desenvolver immunodevices base de papel 24-26, uma vez que é abundante e biocompatível 27. O quitosano é catiónico e adere fortemente à celulose aniónico 27. Os anticorpos de captura são imobilizadas no papel por meio de revestimento de quitosano e reticulação com glutaraldeído. oxidação por periodato é outro método para enxerto do captanticorpos Ure no papel de celulose 28. Neste método, periodato de sódio é manchada no papel para converter os grupos 1,2-di-hidroxilo (glicol) em celulose directamente para grupos aldeído. Os grupos aldeído são então utilizadas para formar ligações covalentes entre polissacarídeos e anticorpos 28. Embora o fabrico é simples, que é difícil de lavar completamente fora de periodato de sódio. O periodato de sódio não lavado pode causar oxidação adicional dos anticorpos que são imobilizadas no papel de celulose, que afectam a actividade e a estabilidade dos anticorpos N -. (3-dimetilaminopropil) - N-etilcarbodiimida e N-hidroxissuccinimida reticuladores são também utilizados para covalentemente imobilizar anticorpos em nanofibras de celulose e acetato de ácido poli-L-láctico electrospun para o desenvolvimento de ensaios baseados em nanofibras 29. Neste estudo, uma técnica de acoplamento de silano foi usada para enxertar grupos funcionais amina sobre cellulosDiscos de papel e. Esta técnica ajuda a reter o tamanho original dos poros, em torcida, e taxa de filtração dos filtros de papel de celulose, permitindo imunoensaios verticais máximos de fluxo de passagem em. A técnica de acoplamento de silano tem sido amplamente utilizada em biossensores para funcionalizar superfícies do substrato com grupos amina secundária, seguida de modificação adicional utilizando biomoléculas. A enxertia de grupos amina sobre a superfície da matriz compreende uma reacção de condensação entre os grupos -OH de os agentes de silano organofuncional e substrato de matriz 30. Os discos de papel de celulose foram funcionalizada com grupos de amina por meio de acoplamento de silano de 3-aminopropiltrimetoxissilano (APS) 31. Isto foi seguido de anticorpos de captura covalentemente imobilizantes usando dois métodos diferentes. O primeiro método envolveu a ligação de anticorpos de captura oxidados de periodato para os discos de papel de celulose amina funcionalizada. O segundo método utilizado o glutaraldeído como agente de reticulação para ligar o antibodi capturaES para os discos de papel de celulose funcionalizada com grupos de amina. A presença de anticorpos de captura foi confirmada por coelho isotiocianato de fluoresceína IgG anti-humano (FITC), utilizando um gerador de imagens de fluorescência molecular. A actividade de ligação de anticorpo de coelho anti-IgG humana-FITC de cabra anti-IgG de coelho foi também avaliado pelo substrato da peroxidase. Foram investigados os efeitos de várias concentrações de periodato de sódio, o glutaraldeído, e anticorpos de captura. O teste de aplicação do anticorpo de captura imobilizado foi realizada com sucesso, através da detecção de IgG do soro.

<table><tbody><tr><td>Papel de filtro de celulose, Grau 1 (papel de filtro de fluxo médio)</td><td>GE Healthcare Pte Ltd Singapore&nbsp;</td><td>1001 110</td><td></td></tr><tr><td>Papel de filtro de celulose, Grau 113 (Papel de filtro de fluxo rápido)</td> <td>Sigma-Aldrich, Singapura</td><td>1113-320</td><td></td></tr><tr><td>Glutaraldeído</td><td>Sigma-Aldrich, Singapura</td><td>G6257</td><td>Grau II, 25% em H2O</td></tr><tr><td>Surfactante</td><td>Tween-20, Sigma-Aldrich, Singapura</td><td>P2287</td><td></td></tr><tr><td>Álbum de soro bovino</td><td>Sigma-Aldrich, Singapura</td><td>A2153</td><td></td></tr><tr><td>Leite em pó desnatado</td><td>Louis Fran&ccedil; OIS&nbsp;</td><td></td><td>Embalado por alcaparras de cozinha, Cingapura</td></tr><tr><td>Tris base</td><td>Promega</td><td>H5135</td><td></td></tr><tr><td>Periodato de sódio</td><td>Merck</td><td>106597</td><td></td></tr><tr><td>Na2HPO4</td><td>Merck</td><td>106585</td><td></td></tr><tr><td>KH2PO4</td><td>Merck</td><td>104873</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>CALBIOCHEM</td><td></td><td></td>567441</tr><tr><td>NaOH</td><td>Merck</td><td>106462</td><td></td></tr><tr><td>HCl</td><td>Merck</td><td>tampão</td> fosfato salino 100317 <td></td></tr><tr><td>(PBS)</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>PBS, contendo 137&nbsp; mmol/L NaCl, 2,7&nbsp; mmol/L KCl, 8.0&nbsp; mmol&#8288;/&#8288; L Na2HPO4 e 1,5&nbsp; mmol/L KH2PO4, é preparado com água e ajustado para pH 7,4 com 0,1&nbsp; mol/L NaOH ou 0,1&nbsp; mol/L HCl</td></tr><tr><td>Acetona</td><td>Tee Hai Chem Pte Ltd Singapura</td><td>9005-68</td><td></td></tr><tr><td>Mistura de TMB e solução de peróxido de hidrogênio&nbsp;</td><td>Solução ultra TMB-ELISA de 1 etapa, Thermo Scientific Pierce</td><td>34029</td><td>1 L</td></tr><tr><td>Coelho anti-humano IgG-FITC</td><td>TWC/Bio Pte Ltd Cingapura</td><td>sc-2278</td><td></td></tr><tr><td>Peroxidase conjugada cabra anti-coelho IgG</td><td>TWC/Bio Pte Ltd Cingapura</td><td>sc-2030</td><td></td></tr><tr><td>Anticorpo de revestimento anti-IgG-Fc de cabra purificado por afinidade</td><td>Bethyl Laboratories, Inc</td><td>A90-131A</td><td></td></tr><tr><td>Referência de camundongo soro</td><td>Bethyl Laboratories, Inc</td><td>RS10-101-5</td><td>9,5 mg/ml</td></tr><tr><td>HRP conjugado cabra anti-camundongo anti-camundongo anticorpo de detecção IgG-Fc</td><td>Bethyl Laboratories, Inc</td><td>A90-131P</td><td></td></tr><tr><td>Equipment</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fourier transform infrared spectrophotometer</td><td>Shimadzu IR Prestige-21&nbsp;</td><td>N / A</td><td></td></tr><tr><td>Gerador de imagens moleculares de fluorescência</td><td>Pharos FXTM plus gerador de imagens moleculares, Bio-Rad, Cingapura</td><td>Forno N / A</td><td></td></tr><tr><td>NUVE</td><td>FN500</td><td>N / A</td><td></td></tr><tr><td>Turbo mixer VM-2000</td><td>MYC LTD</td><td>N / A</td><td></td></tr><tr><td>ImageJ</td><td>RGB, download gratuito</td><td>N / A</td><td></td></tr></tbody></table>

a ligação covalente de anticorpos para celulose discos de papel e suas aplicações em visível a olho nu colorimétricos imunoensaios

Covalent Binding of Antibodies to Cellulose Paper Discs and Their Applications in Naked-eye Colorimetric Immunoassays

Este relatório apresenta dois métodos para a imobilização covalente de anticorpos de captura na filtro de celulose tipo de papel No. 1 (papel de filtro de médio fluxo) discos e grau No. 113 (papel de filtro fast-fluxo) discos. Estes discos de papel de celulose foram enxertado com grupos funcionais de amina através de uma técnica de acoplamento de silano antes de os anticorpos foram imobilizados sobre eles. métodos de ligação cruzada de oxidação e glutaraldeído periodato foram usadas para enxertar anticorpos de captura sobre os discos de papel de celulose. A fim de garantir a capacidade máxima de ligação dos anticorpos de captura para os seus alvos após imobilização, foram investigados os efeitos de várias concentrações de periodato de sódio, o glutaraldeído, e anticorpos de captura na superfície dos discos de papel. Os anticorpos que foram revestidas sobre os discos de papel de celulose funcionalizada com amina por meio de um agente de reticulação com glutaraldeído observado aumento na actividade de ligação ao alvo, quando comparado com o método de oxidação com periodato. IgG (no soro do rato de referência) foi usado como um alvo de referência neste estudo para testar a aplicação de anticorpos imobilizados covalentemente através de glutaraldeído. Um novo à base de papel, ensaio imunoabsorvente ligado a enzima (ELISA) foi desenvolvido e validado para a detecção de anticorpos IgG com sucesso. Este método não necessita de equipamento, e pode detectar de 100 ng / ml de IgG. O papel de filtro rápido de fluxo foi mais sensível do que o papel de filtro de média de fluxo. O período de incubação do presente ensaio foi de curta e necessário pequenos volumes de amostra. Este visível a olho nu, imunoensaio colorimétrica pode ser estendido para detectar outros alvos que estão identificados com ELISA convencional.

<img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/54111/54111fig3.jpg" /> Figura 3. transformada de Fourier espectro de infravermelho (FTIR) de papel de filtro de média de fluxo não tratado e APS-tratado quadrado (A) e filtro de fluxo rápido-quadrado de papel (B). Uma. Os espectros de papel quadrado não tratada do filtro de média de fluxo foi semelhante ao do APS papel quadrado tratada filtro de média de fluxo. O aumento das intensidades d...

Neste manuscrito, são apresentados métodos de oxidação periodato e reticulação de glutaraldeído para imobilização covalente de anticorpos em discos de papel. A atividade de ligação dos anticorpos imobilizados foi avaliada. Com base nesses resultados, um método de reticulação de glutaraldeído foi usado para desenvolver um novo imunoensaio baseado em papel para detecção de imunoglobulina G (IgG).

A ligação covalente de anticorpos para celulose discos de papel e suas aplicações em visível a olho nu colorimétricos imunoensaios

This report presents two methods for the covalent immobilization of capture antibodies on cellulose filter paper grade No. 1 (medium-flow filter paper) ...

O objetivo geral desta metodologia é estabilizar anticorpos e proteínas em uma matriz de celulose para facilitar o desenvolvimento de um ensaio imunológico colorimétrico visível a olho nu, que pode ser útil para diagnósticos na assistência médica imediata. Este método pode ajudar a responder perguntas fundamentais na área de diagnóstico na assistência médica imediata. A principal vantagem desta técnica é que ela auxilia na estabilização de proteínas na celulose, permitindo o desenvolvimento de ensaios diagnósticos baseados em papel de baixo custo.Demonstrará o procedimento Gloria Chang, uma estudante do meu laboratório. Para começar, prepare um pedaço de papel quadrado com dimensão de um centímetro por um centímetro. Prepare também 100 discos de papel feitos de papel celulósico Whatman grau número um com diâmetro de 6,0 milímetros utilizando um furador.Para obter grupos amino nos discos de papel, misture um mililitro de APS e 10 mililitros de acetona em um frasco de vidro de 50 mililitros na capela. Adicione os discos de papel à mistura recém-preparada do reagente APS. Em seguida, incube os discos na mistura por cinco horas com agitação orbital à temperatura ambiente.Decante a solução excedente do frasco de vidro de 50 mililitros para um recipiente de resíduo orgânico. Adicione 10 mililitros de acetona ao frasco de vidro, misture bem e decante completamente para remover qualquer APS não reagido e outras impurezas. Repita este passo duas vezes.Disperse os discos de papel sobre a toalha de papel e coloque-os em uma estufa a 110 °C por três horas. Após permitir que os discos de papel esfriem, armazene-os em um tubo de centrífuga de 50 mL à temperatura ambiente. Utilize espectroscopia de infravermelho com transformada de Fourier ou FTIR para verificar a fixação de grupos amina no papel quadrado de celulose.Abra o software para espectroscopia FTIR. Acesse a inicialização da medição. Escolha os dados abaixo dos retângulos e selecione porcentagem de transmitância como modo de medição.Em seguida, escolha Happ-Genzel para a apodização, defina 45 para o número de varreduras, 4,0 para a resolução e defina a faixa de mínimo 400 a máximo 4.000. Clique em medir, depois selecione o arquivo de dados para os dados do fundo. Clique em BKG para obter a linha de base do fundo.Em seguida, fixe o papel quadrado no suporte da amostra de filme. Depois, selecione o arquivo de dados para os dados da amostra e clique em amostra para obter o espectro da amostra. Feche o aplicativo de espectroscopia FTIR e desligue o computador.Adicione cinco mililitros de solução de glutaraldeído 0,05% a um frasco de vidro de 20 mililitros. Mergulhe 15 discos de papel de filtro com fluxo médio funcionalizados com amina nesta solução e mantenha por uma hora sob agitação à temperatura ambiente. Concomitantemente, repita este passo para preparar outros 15 discos de papel de filtro com fluxo rápido funcionalizados com aldeído.Para remover o glutaraldeído não reagido dos discos de papel, coloque primeiro os discos de papel filtro de fluxo médio e os discos de papel filtro de fluxo rápido em tubos cónicos separados de 15 mililitros. Em seguida, adicione cinco mililitros de água desionizada a cada tubo e agite os tubos durante 10 segundos. Remova a água por aspiração com uma pipeta.Repita duas vezes para remover qualquer glutaraldeído não reagido. Em seguida, seque os discos de papel-filtro em uma estufa a 37 graus Celsius. Após a secagem, adicione cinco microlitros de fragmentos de anticorpos Fc de IgG de camundongo a 0,025 miligramas por mililitro aos discos de papel-filtro de fluxo médio e oito microlitros aos discos de papel-filtro de fluxo rápido.Após a incubação por 20 minutos, adicione 10 microlitros de PBS 50 milimolar, pH 7,4, a cada disco de papel sem remover os anticorpos. Incube por 40 minutos para a reação entre amina e aldeído. Lave os discos de papel com 0,2 mililitros de tampão de lavagem sobre uma toalha de papel.Repita a lavagem três vezes. Após secar os discos de papel em uma estufa a 37 graus Celsius, bloqueie os discos de papel com 15 microlitros de tampão de bloqueio durante 10 minutos à temperatura ambiente. Em seguida, lave cada disco de papel com 0,2 mililitros de tampão de lavagem sobre uma toalha de papel.Repita a lavagem três vezes. Em seguida, execute os padrões de IgG. Aplique 10 microlitros de várias concentrações de IgG em discos individuais em triplicata.Incube por uma hora à temperatura ambiente. Lave os discos de papel com 0,2 mililitros de tampão de lavagem sobre uma toalha de papel. Repita a lavagem três vezes.Após as lavagens, adicione 10 microlitros de anticorpos do fragmento Fc de IgG de camunduco conjugados à HRP e incube por uma hora à temperatura ambiente. Lave os discos de papel com 0,2 mililitros de tampão de lavagem sobre uma toalha de papel. Repita a lavagem três vezes.Por fim, aplique uma mistura de 10 microlitros de TMB e peróxido de hidrogênio em cada disco. Tire imagens de todos os discos de papel com uma câmera digital ou smartphone após cinco minutos de incubação e analise conforme discutido no protocolo textual. É mostrado aqui o espectro de FTIR de papel filtro de fluxo médio não tratado e tratado com APS e papel filtro de fluxo rápido.O aumento nas intensidades das bandas em 902 e 1.170 centímetros inversos e de 1.210 a 1.500 centímetros inversos para o papel filtro de fluxo médio, bem como os picos característicos na faixa de 972 a 1.180 centímetros inversos para o papel filtro de fluxo rápido, indicaram que o APS foi com sucesso enxertado no papel de celulose. Os efeitos de diferentes concentrações de glutaraldeído na imobilização de IgG FITC nos discos de papel são mostrados aqui. A concentração ideal de glutaraldeído é de 0,05%. Da mesma forma, os efeitos de diferentes concentrações de IgG FITC na imobilização de IgG FITC nos discos de papel são apresentados.O aumento da carga e da concentração de IgG FITC aumenta a quantidade de IgG FITC imobilizada nos discos de papel. No entanto, o aumento da concentração de IgG FITC imobilizada não melhora a capacidade de ligação com o antígeno. São apresentadas aqui as curvas de calibração para a determinação de IgG por ELISA baseado em papel.Os anticorpos foram detectados em uma concentração de um nanograma por mililitro de IgG a olho nu utilizando este ensaio baseado em papel. A concentração de soro de IgG apresentou uma relação linear com a intensidade colorimétrica de zero a 500 nanogramas por mililitro quando cada etapa foi incubada por uma hora. Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como imobilizar anticorpos na matriz celular para o desenvolvimento de imunoenzaimoensaios.Tivemos a ideia pela primeira vez ao desenvolver ensaios diagnósticos de baixo custo que possuíam sensibilidade limitada. Após seu desenvolvimento, a técnica abriu caminho para pesquisadores na área de diagnósticos na ponta da cadeia assistencial explorarem o desenvolvimento de testes diagnósticos de baixo custo para diversos patógenos.

covalent-binding-antibodies-to-cellulose-paper-discs-their

Research

JoVE Journal

Biochemistry

Bioquímica

Este vídeo demonstra a detecção de complexos anticorpo-antígeno quimicamente conjugados por meio da técnica de ensaio imunoenzimático em sanduíche, ou ELISA. O anticorpo capturado se liga ao epítopo específico do antígeno do conjugado anticorpo-antígeno, que pode ser visualizado posteriormente usando um anticorpo secundário ligado a enzimas.

Ensaio de imunoabsorção enzimática para verificar conjugados anticorpo-antígeno quimicamente acoplados

O vídeo demonstra um imunoensaio em papel, envolvendo discos de celulose funcionalizados com amina reticulados com glutaraldeído. A imobilização covalente de anticorpos de captura específicos para IgG-Fc, seguida pela introdução de anticorpos de detecção conjugados com imunoglobulina G e peroxidase de rábano, resulta em uma mudança de cor confirmando a presença de imunoglobulina G.

Um imunoensaio em papel para a detecção de imunoglobulina G

Este protocolo descreve o desenvolvimento de dois anticorpos monoclonais (mAbs) da classe IgG fortemente reativos à mioglobina de cetáceos. Esses mAbs são aplicados em uma tira de teste imunocromatográfica de ouro coloidal baseada no formato sanduíche para diferenciar o Mb de cetáceos de focas e outros animais.

Desenvolvimento de uma tira de teste imunocromatográfico baseada em ouro coloidal para a detecção de Cetáceos Myoglobin

As sondas ópticas baseadas em nanopartículas foram projetadas como um veículo para detectar antígenos usando espectroscopia Raman e UV-Vis. Aqui descrevemos um protocolo para preparar tais sondas para um imunoensaio de espectroscopia UV-Vis / Raman de forma a incorporar futuros recursos de multiplexação.

A fabricação de um UV-Vis e espectroscopia Raman de plataforma Imuno

Vamos demonstrar uma tecnologia de chip de snap para a realização de imunoensaios sanduíche multiplexado cross-reactivity-livre simplesmente estalar dois slides. Um aparelho de pressão é usado para transferência fiável de reagentes de microarray-para-microarray. O chip de pressão pode ser usado para qualquer reações bioquímicas que exigem colocalization de diferentes reagentes sem contaminação.

Snap o Chip para imunoensaios livre de Cross-reactivity e Spotter sanduíche multiplexado

Este trabalho mostra o potencial da tecnologia de matriz (PGA) glicano impressa para a análise de anticorpos anti-hidrato de carbono em pequenos animais em circulação.

Matriz de glicano impressa: Uma técnica sensível para a análise do repertório de anticorpos anti-hidrato de carbono em pequenos animais em circulação

Membrane-based lateral flow immunochromatographic strips (ICSs) are useful tools for low-cost self-diagnosis and have been efficiently applied to toxin, ...

Desenvolvimento de uma tira imunocromatográfica de fluxo lateral para detecção rápida e quantitativa de compostos de pequenas moléculas

Este protocolo descreve uma metodologia para a preparação de esferas de látex para ensaios utilizando anticorpos IgY para detecção de antígenos.

Padronização de um ensaio citométrico de esferas baseado em anticorpos contra gema de ovo

Atendendo às necessidades urgentes de diagnóstico da dengue, apresentamos aqui um dispositivo analítico baseado em papel para dengue NS1 integrado ao aplicativo para smartphone (DEN-NS1-PAD) para quantificar a concentração do antígeno NS1 da dengue em amostras clínicas de soro/sangue. Essa inovação aprimora o manejo da dengue, auxiliando a tomada de decisões clínicas em vários ambientes de saúde, mesmo aqueles com recursos limitados.

Imunoensaio Portátil Baseado em Papel Combinado com Aplicativo para Smartphone para Detecção Colorimétrica e Quantitativa do Antígeno NS1 da Dengue

Aqui, descrevemos um protocolo para a preparação de nanoesferas de pontos quânticos (QDNB) e a detecção de biomarcadores de doenças usando tiras de imunoensaio de fluxo lateral baseadas em QDNB. Os resultados do teste podem ser avaliados qualitativamente sob iluminação de luz UV e medidos quantitativamente usando um leitor de tiras fluorescentes em 15 minutos.

Imunoensaio de fluxo lateral fluorescente baseado em nanoesferas de pontos quânticos

Descrevemos uma plataforma de imunoensaio recentemente desenvolvida com base nos princípios da biologia sintética livre de células e na técnica de dot-blot para detecção personalizável da resposta de anticorpos em soros humanos e animais.

Cell-free Dot Blot como uma plataforma de imunoensaio prática e adaptável para a detecção da resposta de anticorpos em soros humanos e animais

Aprenda a imobilizar anticorpos em discos de celulose usando oxidação por periodato e reticulação com glutaraldeído. Este método viabiliza imunoensaios colorimétricos de baixo custo para diagnósticos no ponto de atendimento.

A ligação covalente de anticorpos para celulose discos de papel e suas aplicações em visível a olho nu colorimétricos imunoensaios (Vídeo) | JoVE Journal

A ligação covalente de anticorpos para celulose discos de papel e suas aplicações em visível a olho nu colorimétricos imunoensaios

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