Name: VacuSIP, um método melhorado para Inex In Situ Medição de partículas e dissolvidos compostos Processado por alimentadores de suspensão ativa (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-08-03T11:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 57 s
Description: Aprenda o método VacuSIP para amostragem limpa de água inalada e exalada por alimentadores de suspensão bentônicos. Esta técnica permite quantificar compostos particulados e dissolvidos removidos e excretados em condições naturais.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Agradecemos Manel Bolivar por sua ajuda no trabalho de campo. Somos gratos ao &quot;Parc Natural del Montgrí, les Illes Medes i el Baix Ter&quot; por seu apoio às nossas pesquisas e amostragem permissões. O manipulador submarino foi projetado por Ayelet Dadon-Pilosof e fabricado pelo Sr. Pilosof. Este trabalho foi apoiado pelo projecto Governo espanhol CSI-Coral [número de concessão CGL2013-43106-R para RC e MR] e por uma bolsa FPU do &quot;Ministerio de Educación, Cultura y Deporte (MECD)&quot; a TM. Esta é uma contribuição do Biogeoquímica Marinha e grupo Pesquisa em Mudanças Globais financiado pelo Governo Catalão [número de concessão 2014SGR1029] e ISF concessão 1280/13 e BSF concessão 2.012.089 para G. Yahel.

<ol><li>Gili, J. M., Coma, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Benthic+suspension+feeders%3A+their+paramount+role+in+littoral+marine+food+webs%5BTitle%5D)+AND+%22Trends.+Ecol.+Evol%22%5BJournal%5D)">Benthic suspension feeders: their paramount role in littoral marine food webs.</a> Trends. Ecol. Evol. 13 (8), 316-321 (1998).</li>
<li>Reiswig, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+situ+pumping+activities+of+tropical+Demospongiae%5BTitle%5D)+AND+%22Mar.+Bio%22%5BJournal%5D)">In situ pumping activities of tropical Demospongiae.</a> Mar. Bio. 9, 38-50 (1971).</li>
<li>McMurray, S., Pawlik, J., Finelli, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Trait-mediated+ecosystem+impacts%3A+how+morphology+and+size+affect+pumping+rates+of+the+Caribbean+giant+barrel+sponge%5BTitle%5D)+AND+%22Aquat.+Bio%22%5BJournal%5D)">Trait-mediated ecosystem impacts: how morphology and size affect pumping rates of the Caribbean giant barrel sponge.</a> Aquat. Bio. 23 (1), 1-13 (2014).</li>
<li>Pile, A. J., Young, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+natural+diet+of+a+hexactinellid+sponge%3A+benthic-pelagic+coupling+in+a+deep-sea+microbial+food+web%5BTitle%5D)+AND+%22Deep-Sea+Res.+Pt.+I%22%5BJournal%5D)">The natural diet of a hexactinellid sponge: benthic-pelagic coupling in a deep-sea microbial food web.</a> Deep-Sea Res. Pt. I. 53 (7), 1148-1156 (2006).</li>
<li>Nielsen, T., Maar, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+a+blue+mussel+Mytilus+edulis+bed+on+vertical+distribution+and+composition+of+the+pelagic+food+web%5BTitle%5D)+AND+%22Mar.+Ecol.+Prog.+Ser%22%5BJournal%5D)">Effects of a blue mussel Mytilus edulis bed on vertical distribution and composition of the pelagic food web.</a> Mar. Ecol. Prog. Ser. 339, 185-198 (2007).</li>
<li>De Goeij, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surviving+in+a+marine+desert%3A+the+sponge+loop+retains+resources+within+coral+reefs%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Surviving in a marine desert: the sponge loop retains resources within coral reefs.</a> Science. 342, 108-110 (2013).</li>
<li>Maldonado, M., Ribes, M., van Duyl, F. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nutrient+Fluxes+Through+Sponges.+Biology%2C+Budgets%2C+and+Ecological+Implications%5BTitle%5D)+AND+%22Advances+in+Marine+Biology%22%5BJournal%5D)">Nutrient Fluxes Through Sponges. Biology, Budgets, and Ecological Implications.</a> Advances in Marine Biology. 62, (2012).</li>
<li>Riisgård, H. U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((On+measurement+of+filtration+rates+in+bivalves+-+the+stony+road+to+reliable+data%3A+review+and+interpretation%5BTitle%5D)+AND+%22Mar.+Ecol.+Prog.+Ser%22%5BJournal%5D)">On measurement of filtration rates in bivalves - the stony road to reliable data: review and interpretation.</a> Mar. Ecol. Prog. Ser. 211, 275-291 (2001).</li>
<li>Reiswig, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Water+transport%2C+respiration+and+energetics+of+three+tropical+marine+sponges%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Mar.+Biol.+Ecol%22%5BJournal%5D)">Water transport, respiration and energetics of three tropical marine sponges.</a> J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 14, 231-249 (1974).</li>
<li>Jiménez, E., Ribes, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sponges+as+a+source+of+dissolved+inorganic+nitrogen%3A+nitrification+mediated+by+temperate+sponges%5BTitle%5D)+AND+%22Limnol.+Oceanogr%22%5BJournal%5D)">Sponges as a source of dissolved inorganic nitrogen: nitrification mediated by temperate sponges.</a> Limnol. Oceanogr. 52 (3), 948-958 (2007).</li>
<li>Diaz, M. C., Ward, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sponge-mediated+nitrification+in+tropical+benthic+communities%5BTitle%5D)+AND+%22Mar.+Ecol.+Prog.+Ser%22%5BJournal%5D)">Sponge-mediated nitrification in tropical benthic communities.</a> Mar. Ecol. Prog. Ser. 156, 97-107 (1997).</li>
<li>Ribes, M., Coma, R., Gili, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Natural+diet+and+grazing+rate+of+the+temperate+sponge+Dysidea+avara+%28Demospongiae%2C+Dendroceratida%29+throughout+an+annual+cycle%5BTitle%5D)+AND+%22Mar.+Ecol.+Prog.+Ser%22%5BJournal%5D)">Natural diet and grazing rate of the temperate sponge Dysidea avara (Demospongiae, Dendroceratida) throughout an annual cycle.</a> Mar. Ecol. Prog. Ser. 176, 179-190 (1999).</li>
<li>Jiménez, E. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Nutrient+fluxes+in+marine+sponges%3A+methodology%2C+geographical+variability+and+the+role+of+associated+microorganisms%22">Nutrient fluxes in marine sponges: methodology, geographical variability and the role of associated microorganisms</a>. , Universitat Politècnica de Catalunya. Barcelona. PhD thesis (2011).</li>
<li>Reiswig, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Particle+feeding+in+natural+populations+of+three+marine+demosponges%5BTitle%5D)+AND+%22Biol.+Bull%22%5BJournal%5D)">Particle feeding in natural populations of three marine demosponges.</a> Biol. Bull. 141 (3), 568-591 (1971).</li>
<li>Reiswig, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+situ+pumping+activities+of+tropical+Demospongiae%5BTitle%5D)+AND+%22Mar.+Biol%22%5BJournal%5D)">In situ pumping activities of tropical Demospongiae.</a> Mar. Biol. 9 (1), 38-50 (1971).</li>
<li>Yahel, G., Marie, D., Genin, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((InEx+-+a+direct+in+situ+method+to+measure+filtration+rates%2C+nutrition%2C+and+metabolism+of+active+suspension+feeders%5BTitle%5D)+AND+%22Limnol.+Oceanogr-meth%22%5BJournal%5D)">InEx - a direct in situ method to measure filtration rates, nutrition, and metabolism of active suspension feeders.</a> Limnol. Oceanogr-meth. 3, 46-58 (2005).</li>
<li>Genin, A., Monismith, S. S. G., Reidenbach, M. A., Yahel, G., Koseff, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intense+benthic+grazing+of+phytoplankton+in+a+coral+reef%5BTitle%5D)+AND+%22Limnol.+Oceanogr%22%5BJournal%5D)">Intense benthic grazing of phytoplankton in a coral reef.</a> Limnol. Oceanogr. 54 (2), 938-951 (2009).</li>
<li>Yahel, G., Whitney, F., Reiswig, H. M., Leys, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+situ+feeding+and+metabolism+of+glass+sponges+%28Hexactinellida+%2C+Porifera%29+studied+in+a+deep+temperate+fjord+with+a+remotely+operated+submersible%5BTitle%5D)+AND+%22Limnol.+Oceanogr%22%5BJournal%5D)">In situ feeding and metabolism of glass sponges (Hexactinellida , Porifera) studied in a deep temperate fjord with a remotely operated submersible.</a> Limnol. Oceanogr. 52 (1), 428-440 (2007).</li>
<li>Wright, S. H., Stephens, G. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Removal+of+amino+acid+during+a+single+passage+of+water+across+the+gill+of+marine+mussels%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Zool%22%5BJournal%5D)">Removal of amino acid during a single passage of water across the gill of marine mussels.</a> J. Exp. Zool. 205, 337-352 (1978).</li>
<li>Møhlenberg, F., Riisgård, H. U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficiency+of+particle+retention+in+13+species+of+suspension+feeding+bivalves%5BTitle%5D)+AND+%22Ophelia%22%5BJournal%5D)">Efficiency of particle retention in 13 species of suspension feeding bivalves.</a> Ophelia. 17 (2), 239-246 (1978).</li>
<li>Mueller, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Natural+diet+of+coral-excavating+sponges+consists+mainly+of+dissolved+organic+carbon+%28DOC%29%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Natural diet of coral-excavating sponges consists mainly of dissolved organic carbon (DOC).</a> PLoS ONE. 9 (2), e90152(2014).</li>
<li>Gasol, J. M., Moran, X. A. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+filtration+on+bacterial+activity+and+picoplankton+community+structure+as+assessed+by+flow+cytometry%5BTitle%5D)+AND+%22Aquat.+Microb.+Ecol%22%5BJournal%5D)">Effects of filtration on bacterial activity and picoplankton community structure as assessed by flow cytometry.</a> Aquat. Microb. Ecol. 16 (3), 251-264 (1999).</li>
<li>Koroleff, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Determination+of+reactive+silicate%5BTitle%5D)+AND+%22New+Baltic+Manual%2C+Cooperative+Research+Report+Series+A%22%5BJournal%5D)">Determination of reactive silicate.</a> New Baltic Manual, Cooperative Research Report Series A. 29, 87-90 (1972).</li>
<li>Murphy, J., Riley, J. P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modified+single+solution+method+for+the+determination+of+phosphate+in+in+natural+waters%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Chim.+Acta%22%5BJournal%5D)">Modified single solution method for the determination of phosphate in in natural waters.</a> Anal. Chim. Acta. 27, 31-36 (1962).</li>
<li>Shin, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Colorimetric+method+for+determination+of+nitrite%5BTitle%5D)+AND+%22Ind.Eng.Chem%22%5BJournal%5D)">Colorimetric method for determination of nitrite.</a> Ind.Eng.Chem. 13 (1), 33-35 (1941).</li>
<li>Wood, E. D., Armstrong, F. A. J., Richards, F. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Determination+of+nitrate+in+sea+water+by+cadmium-copper+reduction+to+nitrite%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mar.+Biol.+Assoc.+U.+K%22%5BJournal%5D)">Determination of nitrate in sea water by cadmium-copper reduction to nitrite.</a> J. Mar. Biol. Assoc. U. K. 47 (1), 23-31 (1967).</li>
<li>Sharp, J. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+preliminary+methods+comparison+for+measurement+of+dissolved+organic+nitrogen+in+seawater%5BTitle%5D)+AND+%22Mar.+Chem%22%5BJournal%5D)">A preliminary methods comparison for measurement of dissolved organic nitrogen in seawater.</a> Mar. Chem. 78 (4), 171-184 (2002).</li>
<li>Sharp, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Marine+dissolved+organic+carbon%3A+Are+the+older+values+correct%5BTitle%5D)+AND+%22Mar.+Chem%22%5BJournal%5D)">Marine dissolved organic carbon: Are the older values correct.</a> Mar. Chem. 56 (3-4), 265-277 (1997).</li>
<li>Holmes, R. M., Aminot, A., Kerouel, R., Hooker, B. A., Peterson, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+and+precise+method+for+measuring+ammonium+in+marine+and+freshwater+ecosystems%5BTitle%5D)+AND+%22Can.+J.+Fish.+Aquat.+Sci%22%5BJournal%5D)">A simple and precise method for measuring ammonium in marine and freshwater ecosystems.</a> Can. J. Fish. Aquat. Sci. 56 (10), 1801-1808 (1999).</li>
<li>Degobbis, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((On+the+storage+of+seawater+samples+for+ammonia+determination%5BTitle%5D)+AND+%22Limnol.+Oceanogr%22%5BJournal%5D)">On the storage of seawater samples for ammonia determination.</a> Limnol. Oceanogr. 18 (1), 146-150 (1973).</li>
<li>Tupas, L. M., Popp, B. N., Karl, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dissolved+organic+carbon+in+oligotrophic+waters%3A+experiments+on+sample+preservation%2C+storage+and+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Mar.+Chem%22%5BJournal%5D)">Dissolved organic carbon in oligotrophic waters: experiments on sample preservation, storage and analysis.</a> Mar. Chem. 45, 207-216 (1994).</li>
<li>Yoro, S. C., Panagiotopoulos, C., Sempéré, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dissolved+organic+carbon+contamination+induced+by+filters+and+storage+bottles%5BTitle%5D)+AND+%22Water+Res%22%5BJournal%5D)">Dissolved organic carbon contamination induced by filters and storage bottles.</a> Water Res. 33 (8), 1956-1959 (1999).</li>
<li>Zhang, J. Z., Fischer, C. J., Ortner, P. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laboratory+glassware+as+a+contaminant+in+silicate+analysis+of+natural+water+samples%5BTitle%5D)+AND+%22Water+Res%22%5BJournal%5D)">Laboratory glassware as a contaminant in silicate analysis of natural water samples.</a> Water Res. 33 (12), 2879-2883 (1999).</li>
<li>Yoshimura, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Appropriate+bottles+for+storing+seawater+samples+for+dissolved+organic+phosphorus+%28DOP%29+analysis%3A+a+step+toward+the+development+of+DOP+reference+materials%5BTitle%5D)+AND+%22Limnol.+Oceanogr-meth%22%5BJournal%5D)">Appropriate bottles for storing seawater samples for dissolved organic phosphorus (DOP) analysis: a step toward the development of DOP reference materials.</a> Limnol. Oceanogr-meth. 11 (4), 239-246 (2013).</li>
<li>Strickland, J. D. H., Parsons, T. R. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aStrickland%2C+JDH+%22A+practical+handbook+of+seawater+analysis%22">A practical handbook of seawater analysis</a>. , Fisheries Research Board of Canada. Ottawa. (1968).</li>
<li>Eaton, A. D., Grant, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Freshwater+sorption+of+ammonium+by+glass+frits+and+filters%3A+implications+for+analyses+of+brackish+and+freshwater%5BTitle%5D)+AND+%22Limnol.+Oceanogr%22%5BJournal%5D)">Freshwater sorption of ammonium by glass frits and filters: implications for analyses of brackish and freshwater.</a> Limnol. Oceanogr. 24 (2), 397-399 (1979).</li>
<li>Norrman, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Filtration+of+water+samples+for+DOC+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Mar.+Chem%22%5BJournal%5D)">Filtration of water samples for DOC studies.</a> Mar. Chem. 41 (1-3), 239-242 (1993).</li>
<li>Carlson, C. A., Ducklow, H. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Growth+of+bacterioplankton+and+consumption+of+dissolved+organic+carbon+in+the+Sargasso+Sea%5BTitle%5D)+AND+%22Aquat.+Microb.+Ecol%22%5BJournal%5D)">Growth of bacterioplankton and consumption of dissolved organic carbon in the Sargasso Sea.</a> Aquat. Microb. Ecol. 10 (1), 69-85 (1996).</li>
<li>Grasshoff, K., Ehrhardt, M., Kremling, K. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aGrasshoff%2C+K+%22Methods+of+Seawater+Analysis.+Second%2C+Revised+and+Extended+Edition%22">Methods of Seawater Analysis. Second, Revised and Extended Edition</a>. , (1999).</li>
<li>Perea-Blázquez, A., Davy, S. K., Bell, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nutrient+utilisation+by+shallow+water+temperate+sponges+in+New+Zealand%5BTitle%5D)+AND+%22Hydrobiologia%22%5BJournal%5D)">Nutrient utilisation by shallow water temperate sponges in New Zealand.</a> Hydrobiologia. 687 (1), 237-250 (2012).</li>
<li>Perea-Blázquez, A., Davy, S. K., Bell, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Estimates+of+particulate+organic+carbon+flowing+from+the+pelagic+environment+to+the+benthos+through+sponge+assemblages%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Estimates of particulate organic carbon flowing from the pelagic environment to the benthos through sponge assemblages.</a> PLoS ONE. 7 (1), e29569(2012).</li>
<li>Pile, A. J., Patterson, M. R., Witman, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+situ+grazing+on+plankton+%3C10+%C2%B5m+by+the+boreal+sponge+Mycale+lingua%5BTitle%5D)+AND+%22Mar.+Ecol.+Prog.+Ser%22%5BJournal%5D)">In situ grazing on plankton <10 µm by the boreal sponge Mycale lingua.</a> Mar. Ecol. Prog. Ser. 141, 95-102 (1996).</li>
</ol>

Os autores não têm nada a divulgar.

etapas preparatórias Frascos de colector para os DOM e análise de nutrientes Uma vez que os navios de colector podem interagir com micro-constituintes dissolvidos e as paredes do amostrador pode ser um substrato para as bactérias de crescimento 30-34, diferentes frascos de DOM e recolha de nutrientes foram testados. Borosilicato não é recomendado para a quantificação de sílica 33,35, uma vez que as ...

Alimentadores de suspensão bentônicos desempenham um papel essencial no funcionamento dos ecossistemas marinhos 1. Ao filtrar grandes volumes de água 2,3, eles removem e excretar partículas (plâncton e detritos) e compostos dissolvidos 1 (e referências) e são um importante agente de acoplamento de 4,5 bentônica-pelágica e ciclagem de nutrientes 6,7. Com precisão medir a partículas e compostos dissolvidos removidos e excretados pelos alimentadores de suspensão bentônicas (como esponjas, ascídias, poliquetas, e bivalves) é fundamental para compreender a sua fisiologia, metabolismo e ecologia alimentar. Juntamente com bombeamento medições da taxa, ele também permite a quantificação dos fluxos de nutrientes mediadas por estes organismos e seu impacto ecológico na qualidade da água, bem como em processos de escala do ecossistema. Escolhendo o método adequado para medir as taxas de remoção e produção de partículas e com dissolvidalibras por filtradores de suspensão é fundamental para a obtenção de dados fiáveis ​​sobre a sua atividade alimentar 8. Como apontado por Riisgård e outros, inadequadas metodologias viés resultados, distorcer as condições experimentais, produzir estimativas incorretas de ingestão e excreção de certas substâncias, e pode levar à quantificação errônea dos fluxos de nutrientes processados ​​por esses organismos. Os dois métodos mais utilizados para medir partículas e fluxos de nutrientes dissolvidos em alimentadores do filtro envolver a incubação (técnicas indiretas) ou cobrança simultânea de ambiente e água expirado (técnicas diretas). Incubação técnicas baseiam-se na medição da taxa de alteração da concentração de partículas e nutrientes dissolvidos na água incubadas, e estimar as taxas de produção ou remoção comparação com os controlos adequados 8. No entanto, encerrando um organismo em uma câmara de incubação pode alterar a sua feeding e comportamento de bombagem devido a alterações no regime de fluxo natural, devido a uma diminuição em oxigénio e / ou na concentração de alimentos, ou devido à acumulação de compostos excreção na água de incubação 7,9 (e suas referências). Em adição aos efeitos de confinamento e de abastecimento de água modificado, uma grande tendência de técnicas de incubação decorre de efeitos de re-filtração (ver por exemplo 10). Embora alguns destes problemas metodológicos foram superadas, utilizando o volume direito e forma do recipiente de incubação 11 ou com a introdução de um sistema de redoma de recirculação 12 in situ, esta técnica muitas vezes subestima taxas de remoção e de produção. A quantificação do metabolismo de compostos dissolvidos tais como o azoto orgânico dissolvido (DON) e o carbono (DOC) ou nutrientes inorgânicos, tem provado ser especialmente propensos a erros causados ​​por técnicas de incubação 13. No final dos anos 60 e início dos anos 70, Henry Reiswig9,14,15 foi pioneira na aplicação de técnicas diretas para quantificar remoção de partículas por esponjas Caribe gigantes, por amostragem separadamente a água inspirado e expirado pelos organismos in situ. Devido à dificuldade de aplicar a técnica de Reiswig em alimentadores de suspensão menores e em condições submarinas mais desafiadoras, a maior parte da investigação neste campo foi restrito ao laboratório (in vitro) empregando principalmente técnicas de incubação indiretos 16. Yahel e colegas reaparelhado Reiswig do direta técnica in situ a trabalhar em condições de menor escala. Seu método, denominado Inex 16, é baseado em amostragem subaquática simultânea da água inalado (In) e expirado (Ex) por organismos não perturbadas. A concentração diferente de uma substância (por exemplo, bactérias) entre um par de amostras (iNEX) proporciona uma medida da retenção (ou produção) de substância que pelo animal. A técnica Inex emprega tubos abertas ebaseia-se no jacto excurrente produzido pela actividade de bombeamento do organismo estudado para substituir passivamente a água ambiente no tubo de recolha. Enquanto Yahel e colegas aplicaram com sucesso esta técnica no estudo de mais de 15 suspensão alimentadores diferentes taxa (por exemplo, 17), o método é limitado pelo alto nível de prática e experiência necessários, pelo tamanho minúsculo de alguns orifícios excurrentes, e por condições do mar. Para superar esses obstáculos, desenvolvemos uma técnica alternativa baseada na sucção controlada da água amostrada através de tubos hora (diâmetro externo &lt;1,6 mm). Nosso objetivo era criar um dispositivo simples, confiável e de baixo custo que permitiria limpo e controlado de amostragem de água situ a partir de um ponto muito específico, como o orifício excurrent de alimentadores de suspensão bentônicos. Para ser eficaz, o método tem de ser não-intrusivo, de modo a não afectar o regime de fluxo ambiente ou modificar o behavior dos organismos estudados. O dispositivo apresentado aqui é denominado VacuSIP. É uma simplificação do sistema desenvolvido pelo SIP Yahel et ai. (2007) 18 para amostragem por pontos baseado em ROV no fundo do mar. O VacuSIP é consideravelmente mais barato do que a SIP original e foi adaptado para o trabalho baseado em mergulho. O sistema foi projetado de acordo com os princípios apresentados e testados por Wright e Stephens (1978) 19 e Møhlenberg e Riisgård (1978) 20 para ambientes de laboratório. Embora o sistema VacuSIP foi concebido para estudos in situ do metabolismo dos alimentadores de suspensão bentônicos, ele também pode ser usado para os estudos de laboratório e onde é necessária, uma amostra de água de ponto fonte controlada e limpo. O sistema é especialmente útil quando a integração ao longo de períodos prolongados (mínimo de-horas) ou em filtrações in situ são obrigatórios. O VacuSIP tem sido utilizado com sucesso no laboratório Yahel desde 2011, e tem tambémsido empregado em dois estudos recentes de fluxos de nutrientes mediadas por espécies de esponjas das Caraíbas e Mediterrâneo 21 (Morganti et al. apresentado). O uso de samplers específicas, a duração de amostragem prolongada, e as condições de campo, em que VacuSIP é aplicado, implicará alguns desvios protocolos oceanográficos padrão para coletar, filtrar, analisar e armazenar amostras de analitos sensíveis. Para reduzir o risco de contaminação pelo sistema VacuSIP ou o risco de modificação da água amostrada por actividade bacteriana após a recolha, foi testada em vários procedimentos de filtração e de armazenamento in situ. Diferentes dispositivos de filtragem, recipientes de recolha, armazenamento e procedimentos foram examinados a fim de alcançar a técnica mais adequada para a análise de dissolvido inorgânico (PO 4 3-, NO x -, NH 4 +, SiO 4) e orgânico (DOC + DON) compostos e ultra-plâncton (&lt;1081; m) e partículas orgânicas (POC + PON amostragem). Para reduzir ainda mais o risco de contaminação, especialmente em condições de campo, o número de passos de manipulação foi reduzida ao mínimo. O formato visual no qual o método é apresentado é orientada para facilitar a reprodutibilidade e a reduzir o tempo necessário para aplicar a técnica de forma eficiente. Visão geral do sistema Para obter a amostra em água in situ bombeada de alimentadores de suspensão com orifícios exhalant tão pequenas quanto 2 mm, a actividade de bombagem de cada espécime é primeiramente visualizada através da libertação filtrada fluoresceína tingido água do mar junto ao orifício de inalação (s) e observando-se o seu fluxo a partir da abertura excurrente 16 (ver também a Figura 2B em 18). A água inspirado e expirado pelo espécimen do estudo (incurrent e excurrentes) são então amostrados simultaneamente com a utilização de um par de tubos instalados na hora manipulador-construído sob encomenda ou em dois dos &quot;ARMS &quot;de um tripé portátil flexível de cabeça para baixo (Figura 1 e suplementares Vídeo 1). A água inalado pelo organismo estudo é recolhido por posicionando cuidadosamente a extremidade proximal de um tubo no interior ou perto da abertura de inalação do organismo estudo. Um idêntico tubo é então posicionado no interior do orifício excurrente. Esta operação requer o cuidado de evitar o contacto ou perturbação do animal, por exemplo, por ressuspensão do sedimento. para iniciar a amostragem, um mergulhador perfura um septo no recipiente de recolha com uma agulha de seringa ligado à extremidade distal de cada tubo, permitindo que a pressão de água externa para forçar a água amostrada para dentro do recipiente através do tubo de amostragem. a sucção é iniciada pelo vácuo criado previamente nos frascos e pela diferença de pressão entre a água externa e o recipiente da amostra evacuada . Para garantir uma coleção de água limpa exalado e evitar aspiração acidental de ambiágua ent 16, a taxa de amostragem da água deve ser mantida a uma taxa significativamente mais baixa (&lt;10%) do que a taxa de fluxo excurrent. A taxa de sucção é controlada pelo comprimento do tubo e o seu diâmetro interno (ID). O diâmetro interno pequeno também garante um volume morto insignificante (&lt;200 ul por metro de tubo). Recolha de amostras durante períodos prolongados (minutos a horas) faz com que seja possível integrar o patchiness inerente da maioria das substâncias de interesse. Para garantir que as amostras sejam adequadamente preservadas em sessões de amostragem subaquáticas prolongadas, bem como para o transporte para o laboratório, uma filtração em situ é recomendado para analitos sensíveis. A seleção dos vasos de amostragem, montagem de filtração, e tubos são ditadas pelos organismos de estudo e a questão de pesquisa específica. O protocolo descrito abaixo assume que um perfil metabólico completo é de interesse (para um resumo ver Figura 2). No entanto, a natureza modular do protocolo permite Fou modificação fácil para acomodar esquemas de amostragem simples ou até mesmo muito diferentes. Para um perfil metabólico completo, o protocolo de amostragem deve incluir os seguintes passos: (1) A visualização de fluxo; (2) alimentação amostragem ultra-plâncton (plâncton &lt;10 mm); (3) A amostragem absorção de nutrientes inorgânicos e excreção (usando filtros em linha); (4) Amostra dissolvida absorção orgânica e excreção (usando filtros em linha); (5) a alimentação de partículas e excreção (usando filtros em linha); (6) Repita o passo 2 (alimentação ultra-plâncton como verificação de qualidade); (7) O fluxo de visualização. Quando logisticamente viável, recomenda-se que as medições de perfil metabólicas são combinados com a taxa de bombeamento (por exemplo, o método a velocidade da frente de corante, em 16), bem como com as medições de respiração. Estas medições são as melhores tomadas no início e no final da sessão de amostragem. Para a medição da respiração, optodes subaquáticas ou micro-eletrodos são preferíveis.

<table><tbody><tr><td>GorillaPod, Original</td><td>Joby</td><td>GP000001</td><td>tripé portátil flexível&nbsp;</td></tr><tr><td>Virola sem flange</td><td>IDEX Health & Ciência&nbsp;</td><td>P-200X</td><td>1/16" em Azul/pk</td></tr><tr><td>Porca Macho</td><td>IDEX Saúde & Ciência</td><td>P-205X&nbsp;</td><td>1/16" em Verde/10&nbsp; pk</td></tr><tr><td>Fêmea para Fêmea Luer</td><td>IDEX Saúde & Ciência&nbsp;</td><td>P-658</td><td></td></tr><tr><td>Luer</td><td>IDEX Feminino-Masculino Saúde e Ciência&nbsp;</td><td>Tubo P-655</td><td></td></tr><tr><td>Peek (254&nbsp; &micro; m ID)</td><td>IDEX Saúde & Ciência&nbsp;</td><td>1531</td><td>1/16" OD x 0.01&nbsp; em ID x 5&nbsp; pés de comprimento. O ID alternativo pode ser usado.</td></tr><tr><td>Resina epóxi de dois componentes</td><td>IVEGOR</td><td>9257</td><td>Misture bem a resina de dois componentes antes de usar</td></tr> <tr><td>(TOC) Frascos EPA</td><td>Cole -Parmer</td><td>03756-20</td><td>Frascos de vidro de 40 ml. Fabricado também pela Thomas Scientific (número de referência 9711F09).</td></tr><tr><td>Frascos de HDPE</td><td>Wheaton</td><td>986701 (E78620)</td><td>Frascos de polietileno de alta densidade de 20 ml</td></tr><tr><td>Vacuette Z sem aditivo</td><td>Greiner bio-one</td><td></td><td>455001 pré-vácuo pelo fabricante&nbsp;</td></tr><tr><td>Frascos de Amostra de Septo</td><td>Thomas Scientific</td><td>1755C01</td><td>Garrafas de vidro de 250 ml&nbsp;</td></tr><tr><td>Tampa de Septo 1</td><td>Wheaton</td><td>W240844SP (E7865R)</td><td>22-400 para frascos de HDPE&nbsp;</td></tr><tr><td>Tampa de septo 2</td><td>Wheaton</td><td>W240846 (1078-5553)</td><td>24-400 para frascos e frascos de vidro. Também fabricado pela Thermo Scientific National (ref. 03-377-42).</td></tr><tr><td>Porta-Filtros Swinney em linha em aço inoxidável</td><td>Pall</td><td>516-9067</td><td>13 mm de diâmetro</td></tr><tr><td>PTFE Arruela de Vedação</td><td>Pall&nbsp;</td><td>516-8064</td><td>anel para suportes de filtro de aço inoxidável</td></tr><tr><td>TCLP Filtros</td><td>de Vidro Pall&nbsp;</td><td>516-9126</td><td>Filtros de Fibra de Vidro Sem Aglutinantes, 13&nbsp; mm de diâmetro, tamanho do poro 0,7&nbsp; &micro; m</td></tr><tr><td>Suportes de Filtro de Policarbonato</td><td>Cole -Parmer</td><td>17295</td><td>13 mm de diâmetro</td></tr><tr><td>Filtros de Membrana Isopore Millipore</td><td></td><td>GTTP01300</td><td>13&nbsp; mm de diâmetro, tamanho do poro 0,2&nbsp; &micro; m</td></tr><tr><td>Contrad 70 Solution&nbsp;</td><td>Decon Labs</td><td>1002</td><td>mistura básica altamente solúvel de solução de surfactante aniônico e não iônico&nbsp;</td></tr><tr><td>Filtros de seringa estéreis</td><td>VWR International Eurolab S.L.</td><td>514-0061P</td><td>25&nbsp; mm de diâmetro, tamanho do poro 0.2&nbsp; &micro; m</td></tr><tr><td>Fluoresceína</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>(antiga ref.28802) 46955-100G</td><td>100&nbsp; g</td></tr><tr><td>Holdex, descartável, estéril</td><td>Greiner bio-one</td><td>450263</td><td>suporte de tubo estéril, de uso único com luer descentralizado para</td></tr><tr><td>Agulhas Estéreis</td> Vacuette <td>IcoGammaPlus</td><td>5160</td><td>0.7&nbsp; mm x 30&nbsp; mm</td></tr><tr><td>Cryovials Nalgene</td><td>Nalgene</td><td>V5007(Cat. No.5000-0020)</td><td>2&nbsp; ml</td></tr><tr><td>Cryobox carton&nbsp;</td><td>Rubilabor</td><td>M-600</td><td>145x145x55&nbsp; mm p/microtubo 1.5&nbsp; ml</td></tr><tr><td>de ácido ortofosfórico</td><td>Sigma</td><td>79617 ou alternativamente use ácido clorídrico ultra-puro, concertação final 0,1%</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldeído</td><td>Sigma</td><td>P6148</td><td>500&nbsp; g</td></tr><tr><td>Glutaraldeído</td><td>Merck</td><td>8,206,031,000</td><td>25%, Bomba de Vácuo Manual de 1 L</td></tr><tr><td>&nbsp;</td><td>B&uuml; rkle&nbsp;</td><td>5620-2181 ou alternativamente use bomba</td><td></td> de vácuo de laboratório padrão</tr></tbody></table>

vacusip, um método melhorado para inex<em&gt; in situ</em&gt; medição de partículas e dissolvidos compostos processado por alimentadores de suspensão ativa

VacuSIP, an Improved InEx Method for In Situ Measurement of Particulate and Dissolved Compounds Processed by Active Suspension Feeders

Os alimentadores de suspensão bentônica desempenham papéis essenciais no funcionamento dos ecossistemas marinhos. Ao filtrar grandes volumes de água, remover plâncton e detritos e excretar partículas e compostos dissolvidos, eles servem como agentes importantes para o acoplamento bentônico-pelágico. A medição precisa dos compostos removidos e excretados por alimentadores em suspensão (como esponjas, ascídias, poliquetas, bivalves) é crucial para o estudo de sua fisiologia, metabolismo e ecologia alimentar, e é fundamental para determinar a relevância ecológica dos fluxos de nutrientes mediados por esses organismos. No entanto, a avaliação da taxa pela qual os alimentadores de suspensão processam compostos particulados e dissolvidos na natureza é restrita pelas limitações das metodologias atualmente disponíveis. Nosso objetivo era desenvolver um método simples, confiável e não intrusivo que permitisse a amostragem de água limpa e controlada a partir de um ponto específico, como a abertura atual de alimentadores de suspensão bentônica, in situ. Nosso método permite a amostragem simultânea da água inalada e exalada do organismo estudado usando tubos minúsculos instalados em um dispositivo manipulador personalizado e cuidadosamente posicionados dentro do orifício exalante do organismo amostrado. Perfurar um septo no recipiente coletor com uma agulha de seringa presa à extremidade distal de cada tubo permite que a pressão externa force lentamente a água amostrada para dentro do recipiente através do tubo de amostragem. A taxa de amostragem lenta e controlada permite integrar a fragmentação inerente à água, garantindo uma amostragem livre de contaminação. Fornecemos recomendações para os dispositivos de filtragem, recipiente de coleta e procedimentos de armazenamento mais adequados para as análises de diferentes compostos particulados e dissolvidos. O sistema VacuSIP oferece um método confiável para a quantificação do metabolismo do alimentador em suspensão não perturbado em condições naturais, que é barato e fácil de aprender e aplicar para avaliar a fisiologia e o papel funcional dos alimentadores de filtro em diferentes ecossistemas.

Otimização dos métodos de coleta de água do mar Seleção de frascos de coletor e procedimento de limpeza vasos de coleta VacuSIP compatíveis devem ter um septo que permite amostragem a ser iniciada por perfuração com uma agulha de seringa. Eles devem suportar a pressão debaixo d&#39;água elevada (2-3 bares no scuba típicos p...

Apresentamos o VacuSIP, um método simples, não intrusivo e confiável para amostragem pontual limpa e precisa de água. O sistema foi desenvolvido e avaliado para a coleta simultânea da água inalada e exalada por alimentadores de suspensão bentônica in situ, para medir de forma limpa a remoção e excreção de compostos particulados e dissolvidos.

VacuSIP, um método melhorado para Inex<em&gt; In Situ</em&gt; Medição de partículas e dissolvidos compostos Processado por alimentadores de suspensão ativa

Benthic suspension feeders play essential roles in the functioning of marine ecosystems. By filtering large volumes of water, removing plankton and ...

O objetivo geral deste método é limpar o coletor de água inalada e exalada por filtradores bentônicos em condições naturais, de modo que os compostos particulados e dissolvidos removidos e excretados por eles possam ser quantificados. Ao preparar recipientes para coleta de compostos orgânicos dissolvidos e análise de amônia, utilize frascos EPA novos e pré-limpos. Para a coleta de outros nutrientes, utilize frascos de vidro EPA.Utilize frascos de PEAD para silicato. Enxágue os frascos e tampas com água bidestilada de alta qualidade. Em seguida, substitua as séptulas de silicone perfuradas por novas e deixe os frascos e tampas de molho em ácido clorídrico 10% por pelo menos três dias, seguido por três enxágues com água bidestilada de alta qualidade.Para preparar ainda mais os frascos de vidro para os nutrientes, queime-os a 450 graus Celsius por quatro horas e deixe-os esfriar no forno. Em seguida, fixe as tampas e envolva os frascos com papel alumínio. Depois, misture água destilada duplamente (DDW) com surfactante filtrado em 0,2 mícron para preparar a solução a cinco por cento.Agora, coloque um filtro de fibra de vidro livre de ligantes previamente calcinado dentro do suporte de filtro swinnex de aço inoxidável limpo. Em seguida, utilize uma seringa previamente limpa com ácido para passar 100 mililitros da solução de surfactante filtrada por toda a montagem. Enxágue bem a montagem utilizando 100 mililitros de água destilada duplamente de alta qualidade.Se o conjunto do filtro for para amostragem de sílica, então prepare-o com um filtro de policarbonato e passe 30 mililitros de ácido clorídrico a cinco por cento através dele, seguido por 30 mililitros de água destilada duplamente de alta qualidade. Monte o sistema para trabalho subaquático utilizando tubo de PEEK. Use uma faca afiada ou cortador de PEEK para preparar os comprimentos necessários.Adapte em cada tubo um conector macho luer ligado a uma agulha de seringa. Certifique-se de que o lado plano da braçadeira azul sem flange esteja alinhado com a extremidade do tubo, em seguida aperte a porca verde com a mão. Depois, utilizando fita isolante, fixe o tubo de PEEK aos braços do tripé para um manipulador montado sob medida.Em seguida, acople agulhas descartáveis com tampa às conexões luer macho. Rotule claramente o equipamento de coleta e use códigos de cores para os componentes de coleta de inalação e exalação, por exemplo, fita azul para entrada e amarela para saída. Da mesma forma, utilize códigos de cores nos frascos de coleta para facilitar a identificação dos pares de frascos numerados sequencialmente.Agora, evacue os frascos de coleta antes do mergulho, idealmente com uma boa bomba de vácuo. Um liofilizador padrão fornece um vácuo elevado e também é eficaz. Por fim, organize todos os frascos de coleta conforme necessário para o mergulho.Planeje todos os passos da coleta com antecedência e organize o equipamento de acordo. Primeiro, confirme se o espécime está bombeando liberando um corante fluorescente filtrado próximo à abertura inalante e verifique se o corante está saindo pela abertura exalante. Em seguida, instale o dispositivo VacuSIP e certifique-se de que ele está estável.Em seguida, coloque o tubo de amostragem do inalante dentro da abertura inalante ou bem próxima a ela, certificando-se de que o tubo de inalante não esteja próximo a qualquer outra abertura exalante. A seguir, direcione cuidadosamente o tubo de amostragem do exalante em direção ao sifão exalante e insira-o suavemente de um a cinco milímetros dentro do sifão. Tenha muito cuidado para não tocar nem perturbar de forma alguma o organismo amostrado.Em seguida, fixe o conjunto de amostragem em proximidade próxima ao local de trabalho. Se utilizar o manipulador personalizado, tenha o mesmo cuidado ao posicionar os tubos de inalação e exalação. A amostragem de ultra-plâncton não requer filtro.Para coletar ultraplâncton, use a agulha para perfurar o septo do tubo evacuado de inalação e exalação. Verifique se a água está gotejando e colete de dois a seis mililitros de água de cada tubo. Para silicatos, instale os suportes inline de filtro de policarbonato inoxidável com as membranas de policarbonato entre a agulha e o conector luer macho na extremidade distal do tubo.Em seguida, perfure a tampa de septo dos frascos de PEAD preparados para iniciar a coleta de amostras. Para coletar compostos orgânicos e inorgânicos dissolvidos, tenha três pares de frascos prontos: um para nitratos e fosfatos, um para amônia e um terceiro par para compostos orgânicos dissolvidos.Para coletar compostos orgânicos dissolvidos ou nutrientes, substitua o conjunto de filtro de policarbonato por um suporte de filtro de aço inoxidável pré-limpo em linha que contenha um filtro de vidro pré-calcinado. Em seguida, perfure a tampa com septo de um frasco de vidro EPA para iniciar a coleta. Os inorgânicos dissolvidos foram coletados em frascos de vidro EPA novos, limpos pelo fabricante, ou em frascos EPA reutilizados e limpos de acordo com o protocolo descrito.Os frascos reciclados apresentaram concentrações mais altas de amônia, mas os outros valores foram semelhantes. Suportes de filtro de aço inoxidável e suportes de filtro Swinnex em linha de policarbonato foram comparados por meio da filtração de água pura e testados quanto a nutrientes orgânicos e inorgânicos dissolvidos. Uma membrana de policarbonato e um filtro de fibra de vidro pré-combustionado foram testados com cada suporte.A combinação de suporte de filtro de aço inoxidável e filtro de fibra de vidro calcinado apresentou o melhor desempenho. As contagens celulares foram realizadas com o citômetro de fluxo para testar a qualidade da amostra. Quando pares de amostras in-ex são coletados corretamente, a maioria das células é removida da água expirada.Em contraste, a coleta inadequada não obteve o mesmo resultado. Quando o VacuSIP é empregado corretamente, padrões de remoção ou excreção foram evidentes para a maioria dos compostos analisados. As medições apresentadas aqui foram obtidas a partir de uma esponja mediterrânea.

vacusip-an-improved-inex-method-for-situ-measurement-particulate

Research

JoVE Journal

Environment

Ambiente

Este protocolo fornece instruções sobre como usar um equipamento autônomo de velocimetria subaquática (SCUVA), que é projetado para a quantificação in situ de animais gerados fluxos. Além disso, este protocolo aborda os desafios colocados pelas condições de campo, e inclui o movimento do operador, prevendo posição de animais, e orientação de SCUVA.

Medir quantitativamente In situ Fluxos usando um Aparelho Autônomo de Velocimetria Underwater (SCUVA)

Neste trabalho é fornecido um guia prático, descrevendo as diferentes etapas para estabelecer o acoplamento de sistemas SMPS e ICPMS e como usá-los. Três exemplos descritivos são apresentados.

Um guia prático sobre o acoplamento de um analisador de mobilidade de varredura e um espectrômetro de massa plasmática acoplado de forma indutível (SMPS-ICPMS)

Apresentamos um procedimento para geração de imagens em tempo real e análise de composição elementar das partículas boemita em água desionizada por em situ líquido microscopia eletrônica de varredura.

In Situ Caracterização de partículas boemita na água usando o líquido SEM

Um dispositivo de passagem para usando o biodeposition método para quantificar o comportamento de filtragem e alimentação dos moluscos bivalves foi modificado para uso de bordo. Uma tabela bidimensional gimbal construída em torno do dispositivo isola o aparelho do movimento do barco, permitindo a quantificação precisa das variáveis de filtração bivalves em sites de aquicultura offshore marisco.

Concepção e utilização de aparelhagem para quantificar a suspensão bivalves alimentação no mar

Aqui, apresentamos um protocolo para realizar exposições de aerossol de celular portátil e medir a resposta celular. O método utiliza células, crescidas na interface ar-líquido, imitando a fisiologia na vivo . Observou-se resposta celular de aerossóis de nanopartículas de cobre como estresse oxidativo através da geração de espécies reativas de oxigênio e citotoxicidade como liberação de lactato desidrogenase.

Um novo portátil em Vitro Cassette exposição para amostragem de aerossol

Este protocolo descreve a extração de compostos orgânicos voláteis de uma amostra biológica com o método de extração sorbent assistido a vácuo, cromatografia gasosa juntamente com espectrometria de massa usando o Entech Sample Preparation Rail e análise de dados. Também descreve a cultura de amostras biológicas e sondagem de isótopos estáveis.

Capturando compostos orgânicos voláteis microbianos produzidos ativamente a partir de amostras associadas ao homem com extração sorbent assistida a vácuo

Um balanço de filme de superfície de gota pendente implementado com uma troca multi-subfase, apelidada de OCTOPUS, permite imitar condições digestivas pela troca subfásica sequencial da solução a granel original com fluidos gastrointestinais simulados. A digestão in vitro simulada é monitorada registrando in situ a tensão interfacial da camada interfacial digerida.

In vitro Digestão de emulsões em uma única gotícula via troca multifásica de fluidos gastrointestinais simulados

Como técnica analítica, a eletroquímica de nanoimpacto, uma abordagem cada vez mais importante para a contagem e caracterização de partículas eletro-inativas em escala nanométrica, sofre de baixa precisão devido às distribuições de corrente heterogêneas que surgem do uso de ultramicroeletrodos. Delinea-se aqui uma abordagem generalizada, denominada "interrupção eletrocatalítica", que aumenta a precisão em tais medições.

Dimensionamento eletroquímico preciso de partículas eletro-inativas individuais

As vesículas extracelulares são imensamente promissoras para aplicações biomédicas, mas os métodos de isolamento atuais são demorados e impraticáveis para uso clínico. Neste estudo, apresentamos um dispositivo microfluídico que permite o isolamento direto de vesículas extracelulares de grandes volumes de biofluidos de forma contínua com passos mínimos.

Isolamento em Etapa Única de Vesículas Extracelulares de Amostras de Grande Volume com Dispositivo Microfluídico A4F Bifurcado

Mudanças induzidas pela pesca para a pesca de crustáceos explorados, tais como a pesca de lagosta americano, poderia influenciar a sua dinâmica reprodutiva, levando a uma redução no sucesso de acasalamento. O objetivo deste estudo foi desenvolver um método não invasivo para determinar o sucesso de acasalamento de lagostas fêmeas que podem ser fisiologicamente ou funcionalmente maduro.

Um método não invasivo para<em&gt; Em situ</em&gt; Determinação do sucesso de acasalamento em fêmeas lagostas americanas (<em&gt; Homarus americanus</em&gt;)

Aprenda o método VacuSIP para amostragem limpa de água inalada e exalada por alimentadores de suspensão bentônicos. Esta técnica permite quantificar compostos particulados e dissolvidos removidos e excretados em condições naturais.

VacuSIP, um método melhorado para Inex In Situ Medição de partículas e dissolvidos compostos Processado por alimentadores de suspensão ativa (Vídeo) | JoVE Journal

VacuSIP, um método melhorado para Inex

Explorar mais vídeos