Name: Culturas placentária e Decidual órgão humano para estudar Infecções na interface materno-fetal (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-07-21T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 4 s
Description: Aprenda a estabelecer culturas de órgãos placentários e decíduos humanos para estudar infecções na interface materno-fetal. Esta técnica preserva a arquitetura tecidual tridimensional e permite investigar patógenos como Listeria monocytogenes.

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Somos gratos a Cristina Faralla e David Lowe pelas discussões úteis. Agradecemos a Mark Weinstein e ao Departamento de Patologia do Hospital Geral de São Francisco pelo aconselhamento especializado. Este trabalho foi apoiado pelo National Institute of Health concede R01AI084928 e Burroughs Wellcome Fund 41259 para AIB; O G.A.R. foi apoiado pela F32AI108195, bolsa de pesquisa para jovens investigadores da Society for Pediatric Pathology e pela bolsa de pós-doutorado do presidente da University of California Partnerships for Faculty Diversity.

Os experimentos foram conduzidos de acordo com os princípios expressos na Declaração de Helsinki. Este estudo foi aprovado pelo Conselho de Revisão Institucional da Universidade da Califórnia, San Francisco (CHR # 11-05530). Todos os pacientes fornecidos consentimento informado por escrito para a recolha de amostras e análise posterior. O tecido foi recolhido como espécimes de-identificados. NOTA: O pesquisador deve obter a aprovação do seu conselho de revisão institucional seres humanos. A exclusão de amostras com base na história da placenta ou anomalias gestacionais irá variar de acordo com as necessidades de qualquer estudo específico. NOTA: as condições de segurança adequadas (nível de biossegurança 2) deve ser utilizado para todas as etapas deste protocolo 12. 1. Preparação, antes do dia da Colecção <ol><li> coadores de autoclave / forceps para a recolha e tesoura / pinça para micro-dissecção. </li><li> Prepare volume adequado (500 ml por espécime) de tampão de lavagem (refer a Tabela 1 para a receita). </li><li> Prepare volume adequado (100 ml por espécime) de 0,22 media Coleção esterilizada por filtração (consulte a Tabela 1 para a receita). </li><li> Aliquota da Matriz Extracelular (ECM, consulte a Tabela de Reagentes para detalhes) para armazenamento a longo prazo. </li><li> ECM loja no estado sólido à temperatura de -20 ° C. Para um melhor desempenho, evite degelo congelamento de repetição. Descongelar garrafa a uma solução viscosa a 4 ° C, e preparar-se alíquotas de 300 ul na câmara fria com pontas de pipeta refrigerados. alíquotas armazenar a -20 ° C. </li></ol> 2. Coleta de tecido fresco CUIDADO: Quando se trabalha com o tecido humano fresco, os pesquisadores devem seguir as precauções universais (OSHA) para prevenir a transmissão de Bloodborne Pathogens, e deve ter recebido formação institucional adequado. equipamento de protecção individual adequado, incluindo luvas, proteção para os olhos, e jalecos são necessárias. <ol><li> Transporteautoclavados-filtros (um por espécime), autoclavados-fórceps, tampão de lavagem (garrafão), meios de cobrança (25 ml por amostra em um tubo de 50 ml), frasco de spray, 10% de água sanitária, 70% de etanol, bandeja de coleta de tecido, sharpie e balde de gelo / resfriador para o hospital / clínica. NOTA: As amostras são recebidas em um espaço designado para a investigação localizado em uma sala perto da sala de cirurgia. A capa de cultura de tecidos estéreis não é necessária, mas a recolha deverá ocorrer de forma expedita e o pesquisador deve higienizar adequadamente as superfícies, como descrito abaixo. </li><li> Lugar garrafão de tampão de lavagem ao lado da pia, torneira e spray com 10% de água sanitária e 70% de etanol. tabuleiro de recolha de tecidos lugar de vidro sobre a fonte de luz (bloco de luz ou caixa de luz), e higienizar com 10% de água sanitária e 70% de etanol. Deixar secar ao ar. </li><li> Tem o clínico espécimes transportar desde a sala de cirurgia para a sala de preparação da amostra. Na pia, despeje o espécime em cima do filtro de mão estéril, lavar o tecido várias vezes, duroutampão h, e transferir espécime inteiro em tampão para a bandeja de vidro higienizado no topo fonte de luz. NOTA: Avaliação do tecido pelo clínico é de prioridade mais elevada, assim, os seguintes passos são executados somente após o clínico tem verbalmente indicou que ele / ela terminou a avaliação. </li><li> Use uma pinça estéreis para selecionar vilosidades da placenta e decídua (Figuras 2A e 3A) para a coleta e transferir para separar tubos de 50 ml cônico. Rotular os tubos com a idade gestacional. NOTA: Preferred idades gestacionais são menos de 9 semanas e menos de 16 semanas para a placenta e decídua, respectivamente. Na instituição, apenas uma fração de cada espécime é obtido para fins de pesquisa, como o tecido adequado deve permanecer para o diagnóstico patológico clínica. </li><li> Armazene e transporte de espécimes no gelo para o laboratório de pesquisa. </li><li> Para recolher mais do que um espécime, higienizar o prato de vidro, tal como descrito acima com lixívia a 10% e etanol a 70% entre o Collecção de cada espécime. </li></ol> 3. Preparação das placas de cultura de órgãos NOTA: Os seguintes passos devem ser realizados utilizando uma técnica estéril em uma capa de cultura de tecidos. É ideal para o microscópio de dissecação para ser localizado num campo esterilizado. No entanto, isto não é absolutamente necessário, desde que micro-dissecção é executada de forma expedita, e instrumentos frequentemente são mergulhados em etanol a 70%. <ol><li> frasco Thaw ECM (s) no gelo. Diluir o ECM 1: 1 com a mídia Coleção gelada, misturar por pipetagem. Pipeta lentamente para evitar a introdução de bolhas. Cada poço de uma placa de cultura de tecidos de 6 poços requer 100 ul desta suspensão e irá acomodar 3-4 culturas de órgãos. </li><li> inserções Transwell lugar (tamanho de poro 0,4 um) em cada poço da placa de 6 poços de cultura de tecidos. </li><li> Revestimento cada Transwell inserir com uma fina camada (100 ul) da suspensão de ECM / meios. </li><li> Coloque a placa no gelo e proceder imediatamente a establishmenT de culturas de órgãos. Em alternativa, preparar a placa antes da recolha de tecidos, caso em que envolvê-la em para-filme e armazenar a 4 ° C para uso posterior. Armazenamento de mais de 6 horas não é recomendado como o ECM vai secar. </li></ol> 4. Estabelecimento de culturas de órgãos Nota: Esta etapa descreve como colocar culturas de órgãos deciduais e culturas de órgãos de vilosidades no transwells separadas. Os tecidos não estão em contato. Pesquisadores interessados ​​em uma técnica de co-cultura onde decídua e vilosidades estão em contato direto um com o outro, pode se referir a literatura prévia 9,10. <ol><li> Lavar as amostras duas vezes em media coleção, e centrifugar a 1000 xg entre cada lavagem. Transferir o tecido a uma placa de Petri estéril e coloque sobre o palco de um microscópio de dissecação. Mantenha a placa de 6 poços em gelo adjacente ao microscópio. </li><li> tecido micro-dissecar com springer dissecando tesoura e uma pinça estéril, para estabelecer 2-3 mm cultura de órgão das vilosidadess (Figura 2A). NOTA: culturas de órgãos das vilosidades são pequenos bem vascularizado &quot;árvores&quot;, com 2 ou 3 ramos, com destaque colunas celulares trophoblast extravilosas (EVT) 11. É importante utilizar apenas tecido das vilosidades a partir de amostras no primeiro trimestre &lt;9 semana, como invasão de trofoblastos extravilosas em ECM é mais pronunciado nestas idades jovens 13. </li><li> Selecione vilosidades bem vascularizado com colunas de células EVT proeminentes. Colunas de células EVT são visualizados como bulbosa, &quot;difusa&quot;, as extremidades &quot;macios&quot; (referem-se a pontas de seta na Figura 2A). </li><li> Use uma pinça estéril para transferir 3 ou 4 árvores vilosidades em cada Transwell. Ajuste ramos para árvore está posicionado plana no topo de ECM e ramos aglutinados separadas. </li><li> Micro-dissecar tecido decidual com springer dissecando tesoura e uma pinça estéril, para estabelecer 3 mm 3 culturas de órgãos deciduais (Figura 3A). NOTA: As amostras contêm dois distipos tinct de tecidos deciduais, parietalis decídua e decídua capsular (fragmentos certos tecidos, respectivamente, Figura 3A esquerda e). </li><li> Aparar com uma tesoura para criar 3 mm 3 pedaços de parietalis decídua. Decídua capsular não é utilizado para estas culturas. Use uma pinça para provocar afastado qualquer sangue materno coagulado. </li><li> Use uma pinça estéril para transferir 3-4 pedaços de decídua em cada Transwell. </li><li> Adicionar 1 mL de meios de Recolha para o fundo do poço. Incubar a placa durante a noite a 37 ° C em 5% de CO 2 </li><li> Para as experiências em que é importante para imitar o normal primeiro trimestre tensão de oxigénio da placenta, manter culturas de órgãos de vilosidades em hipoxia relativa (3% de O2). NOTA: As opções laboratoriais incluem pequenas câmaras hipóxia incubadora que se encaixam dentro de incubadoras existentes, ou uma incubadora de tri-gás que introduz gás externa N 2 para diminuir a concentração de oxigênio. </li><li> Adicionar 1 ml de vilosidades ou médio Decidual (Table 1) até ao topo da transpoço após 12-16 horas de cultura. NOTA: A ausência de meios durante o primeiro dia para o outro em cultura de células permite que as colunas trofoblasto extravilosas para invadir (cultura de vilosidades), e por o tecido (tanto das vilosidades e deciduais) para ficar firmemente encaixado no ECM. Em nossa experiência, culturas de órgãos deciduais permanecer viáveis ​​por 72 horas e de órgãos das vilosidades culturas durante 96 horas. Recomendamos endpoints experimentais que caem dentro deste prazo. Ver Tabela 1 para composição do meio das vilosidades e Decidual. Médio das vilosidades tem uma elevada percentagem de FBS, enquanto que o meio é suplementado com decidual hormonas da gravidez (progesterona, 17p-estradiol) que mantêm o estado decidualizado (Tabela 1). </li></ol> 5. Preparação de L. monocytogenes culturas NOTA: Para o protocolo detalhado no armazenamento a longo prazo de L. monocytogenes, e a cultura e crescimento de this organismo em infusão de cérebro e coração (BHI) e agar, consulte Wang et al 14. <ol><li> Escolha uma única L. monocytogenes colónia da placa de ágar BHI com listras e inocular 3 ml de caldo BHI. </li><li> Incubar a L. monocytogenes cultura durante a noite (16 h), numa posição inclinada, a 30 ° C. NOTA:. Estas condições de cultura permitir o crescimento bacteriano para atingir a fase estacionária L. monocytogenes é flagelado a 30 ° C, o que aumenta a invasão da célula hospedeira 15. </li></ol> 6. A infecção de culturas de órgãos com L. monocytogenes <ol><li> Quente PBS e das vilosidades ou meio decidual (Tabela 1) a 37 ° C. </li><li> Use uma pinça estéreis para remover todos os pedaços de cultura órgão que não invadem para a ECM, e, portanto, estão flutuando no poço. </li><li> Aspirar cuidadosamente a mídia da parte inferior da Transwell. Lavar transwells superior e inferior duas vezes com cuidado pipetando 1 ml de guerram PBS em bem, e cuidadosamente aspiração no meio. Gentilmente pipeta 1 ml de vilosidades ou Decidual meio sem antibiótico para transpoço superior e inferior. Tenha cuidado para não perturbar a cultura de órgãos. </li><li> Deixe o tecido incubar em meio isento de antibiótico durante pelo menos uma hora para assegurar que os antibióticos foram removidos. NOTA: Na fase estacionária a densidade do L. cultura monocytogenes é de aproximadamente 1 x 10 9 unidades formadoras de colónias (CFU) por ml. O número de bactérias utilizadas para infectar culturas de órgãos deve ser determinada empiricamente para satisfazer as necessidades experimentais. </li><li> Para o tipo selvagem L. monocytogenes experiências de infecção mostram rotina invasão robusta com uma diluição de 1:50 dos durante a noite (4 x 10 7 L. monocytogenes em 1 ml de meio por poço). Ressuspender o número apropriado de bactérias em meio de vilosidades ou decidual isento de antibiótico. </li><li> media aspirado de topo da transwells. Delicadamente adicionar 1 ml de inóculo. Incubar as placas a 37° C em 5% de CO2 para permitir a invasão bacteriana. </li><li> Remover as bactérias extracelulares, aspirando a mídia da transwells superiores e inferiores. Lavar os poços duas vezes com PBS quente. Adicionar 1 ml de vilosidades ou mídia deciduais suplementado com 50 ug ml -1 gentamicina. Incubar as placas a 37 ° C em 5% de CO 2. NOTA: L. monocytogenes é uma bactéria intracelular facultativo que podem crescer no meio extracelular, crescem dentro de células, e se espalhar de célula-a-célula sem aceder ao espaço extracelular. A gentamicina tem um efeito bactericida sobre L. extracelular monocytogenes, e, assim, permite a medição de L. intracelular monocytogenes crescimento e espalhar através da cultura de órgão 16. NOTA: reproduzível L. infecção monocytogenes de culturas de órgãos vilosidades e decídua ocorre com tempos de incubação de 5 horas. O tempo de incubação antes da adição de gentamicina pode ser modificado com base nas necessidades experimentais ea ability do organismo para invadir o tecido. Para entender melhor os locais anatômicos mais vulneráveis ​​à infecção, períodos de incubação mais curtos podem ser usados ​​2. </li><li> Manter placas a 37 ° C em 5% de CO2 durante a duração da experiência. Mudança de mídia toda em cada poço diariamente. NOTA: Em nossa experiência, L. monocytogenes infectados por culturas de órgãos deciduais permanecer viáveis ​​por 48 horas e de órgãos das vilosidades culturas durante 72 horas. </li></ol> 7. Colheita de Órgãos culturas para Histopatologia <ol><li> Prepara-se uma solução fresca de 4% de paraformaldeído, diluindo 10 ml de uma ampola de estoque de 16% em 30 ml de PBS. Loja 4% de paraformaldeído a 4 ° C, protegida da luz, e utilizar no prazo de uma semana. Levar à temperatura ambiente antes de usar. </li><li> media aspirado de transpoço superiores e inferiores. Suavemente lavar os poços duas vezes com PBS à temperatura ambiente. Adicionar cuidadosamente 1 mL de 4% de paraformaldeído para o topo Transwell para cobrir completamente a cultura de órgãos. </li><li> Incubarem 4% de paraformaldeído à temperatura ambiente durante 20 min. Evitar tempos de incubação mais longos, pois isso pode levar a um excesso de fixação do tecido. </li><li> paraformaldeído aspirado e os poços de lavagem duas vezes com PBS à temperatura ambiente. Incorporar as culturas de órgãos fixos em meio OCT, congelamento, e seção sobre um criostato ( &quot;fixed congelado&quot;). Em geral, tecidos congelados fixo é mais fácil de secção de tecido congelado sem fixação prévia. NOTA: Para o protocolo completo em outubro de incorporação e secção congelada, acesse secções relevantes de protocolos publicados 17,18. Dependendo das necessidades experimentais e equipamentos de laboratório disponíveis e de armazenamento, o tecido pode não ser segmentado e num micrótomo 19 embebido em parafina. </li><li> Além disso preparar lâminas de tecido para Hematoxilina e Eosina coloração de rotina, imunofluorescência, ou 18,20,21 imuno-histoquímica. </li></ol>

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</ol>

Os autores não têm nada a divulgar.

Puras, transgênicos e rato knockout cepas podem servir em sistemas experimentais para testar robustamente mecanismos. No entanto, apesar de conservação geral do material genético do núcleo, os genomas funcionais de ratos e seres humanos demonstram diferenças significativas nos elementos reguladores 23. Não é de surpreender, portanto, que os estudos pré-clínicos promissores em modelos animais são por vezes não recapitulou em pacientes humanos. A placenta mostra muito elevada diversidade interespécies, tornando assim modelos animais menos de ideal para o estudo das doenças humanas 24. Reconhecendo tanto as diferenças notáveis ​​em imunologia humana e do rato 25, ea evolução divergente pronunciada em anatomia da placenta, é prudente considerar o uso de ex vivo culturas de órgãos de tecidos gestacional humanos para a investigação experimental. As descrições, imagens fotográficas e de vídeo instrucional neste protocolo instruir pesquisadores emcomo estabelecer vilosidades e culturas de órgãos deciduais em inserções de cultura de tecido Transwell revestido de ECM. As vantagens desta técnica incluem a simplicidade relativa do micro-dissecção e sistema Transwell suporte mecânico, particularmente quando comparado com métodos alternativos, tais como matrizes de embutidos 3D ou culturas de fatias de órgãos. A suspensão da cultura de órgãos no suporte de membrana permite a troca de nutrientes em todas as superfícies de tecido e viabilidade é mantida para a cultura de curto prazo (96 horas para as culturas vilosidades, 72 h para culturas deciduais) .Este técnica permite estudar a biologia de placenta humana no tecido nível, inegavelmente biologicamente mais relevantes do que os modelos de cultura de células monocamada. O passo mais crítico neste protocolo é o micro-dissecção de peças vilosidades e deciduais apropriadas para cultura de órgãos. Peças ideais de tecido são demonstrados fotograficamente (Figura 2A e 3A) para auxiliar pesquisadores para quemvisualização de espécimes gestacional é nova. É particularmente importante para seleccionar árvores vilosidades cujos ramos terminam em colunas EVT, uma vez que estas células vão migrar para dentro do ECM e ajudar a ancorar o vilosidades à membrana. Para ambos os tipos de culturas de órgãos é útil para minimizar perturbações no tecido durante alterações na mídia por pipetagem de uma forma cuidadosa e sem pressa. Esta técnica apresenta dificuldades única mínimos. Na ocasião, as amostras apresentaram contaminação. A contaminação bacteriana é normalmente (ocasionalmente poli-microbianos), e só se torna evidente após 1-2 dias em cultura. Uma vez que a contaminação é observada, lixívia deve ser aplicada, a cultura rejeitado e o incubador de cultura de tecido esterilizado para impedir um problema a longo prazo. Existem várias maneiras possíveis contaminações podem surgir: em infecção útero, durante a cirurgia, durante espécime colheita / processamento, ou durante a manutenção da cultura de órgãos. As etapas de colheita e processamento são o momento mais provávele lugar para a contaminação de ser introduzidas. Assim, é importante reduzir a quantidade de tempo que a amostra é manipulado durante a colheita e micro-dissecção. Isto irá reduzir a exposição da amostra à ambiente, ambiente não-estéril. Dependendo da configuração do laboratório, do microscópio de dissecação pode estar localizado dentro do capuz de cultura de tecido estéril. A análise histopatológica de culturas de órgãos após a infecção com o patógeno clinicamente relevante L. monocytogenes, é mostrado aqui como uma possível aplicação do protocolo. localização imunofluorescência de ambas as bactérias e células do sistema imunológico do hospedeiro após produz infecção novos insights sobre a resposta do hospedeiro humano para patógenos. Culturas de órgãos deciduais pode servir como um ex vivo técnica experimento complementar ao examinar os dados gerados a partir de infecções de rato in vivo, incluindo relatórios intrigantes que mostram defeitos de funções de defesa macrófagos deciduais murino 26,27. Além disso, Org humanoum culturas podem ser usados ​​em estratégias de infecção mista, tal como um inoculo competitivo composto por várias estirpes isogénicas de L. monocytogenes. infecção competitiva de culturas de órgãos é uma forma sensível para testar a relevância de fatores de virulência no hospedeiro humano. Uma limitação deste método é a viabilidade do tecido, que é limitada a cultura de curto prazo (96 horas para as culturas vilosidades, 72 horas para culturas deciduais). Isto é ideal para a infecção com micróbios de rápido crescimento, tais como L. monocytogenes, mas as culturas mais longos pode ser necessário para agentes patogénicos que levam mais tempo para estabelecer e se espalhou através do tecido. Para reduzir a carga global de complicações na gravidez, a pesquisa deve se concentrar na compreensão da fisiopatologia da interface materno-fetal humano. Bacterianas, fúngicas e virais patógenos que cruzam da mãe para o feto causa devastadoras complicações da gravidez e infecção fetal. Controlados de infecção in vivo de ani laboratóriomals é normalmente considerada o padrão ouro para abordar como patógenos colonizar e trânsito entre órgãos 28. Porque anatomia placentário varia marcadamente entre as espécies de mamíferos, é de extrema importância para incorporar tecido humano nas estratégias de pesquisa. culturas de órgãos vilosidades e deciduais humanas são sistemas modelo altamente relevantes para investigar as interações patógeno-hospedeiro. Para estudar este órgão vital ainda mal compreendida, os pesquisadores podem tirar proveito da abundância de placenta humana de outra forma descartados e amostras deciduais, utilizando estratégias de cultura de órgãos, como descrito aqui.

A infecção e inflamação na interface materno-fetal representa a principal fonte de morbilidade e de mortalidade em mulheres e crianças. Entender como agentes patogénicos infectar estes tecidos é crítico para o desenvolvimento de novas estratégias para prevenir e tratar doenças, tais como trabalho de parto prematuro e morte fetal. No entanto, a variabilidade inter-espécies de alto da interface materno-fetal complica investigação experimental. Além disso, patógenos mais microbianas mostram especificidade do hospedeiro, assim, muitos modelos animais não pode recapitular totalmente doenças infecciosas humanas. Certos organismos (Haemophilus influenzae, Salmonella typhi, Vibrio cólera, e numerosos outros) são estritamente patogênico em humanos, enquanto outros, como a Listeria monocytogenes, mostram um nível mais intermediário de especificidade do hospedeiro 1. Especificidade do hospedeiro tem sido documentado em muitos aspectos da patogênese, incluindo a colonização 2, a divulgação 3, evasão imune 4 </sup&gt; e aquisição de nutrientes 5. Assim, é de extrema importância para selecionar melhores sistemas modelo de acolhimento. Composto de células fetais e sangue materno, a placenta é um órgão que se desenvolve rapidamente ao longo da gestação 6. Em termos mais simples, a placenta humana é construída de estruturas fetais &quot;vilosidades&quot; árvore-como banhadas em sangue materno. Gás e troca de nutrientes ocorre em camadas de células fetais especializadas chamadas trofoblastos que revestem a superfície das árvores vilosidades. O revestimento da mucosa uterina materna, denominado endométrio na fêmea não grávida, transforma estrutural e funcionalmente para o decídua para acomodar a unidade de fetoplacentária. árvores vilosidades estão ancoradas no útero por trofoblastos extravilosas (EVT), que migram de ancoragem colunas de células na decídua. A interface materno-fetal, portanto, consiste em decídua e da placenta. A técnica de cultura de órgãos descrito aquifoi usado para examinar onde e como clinicamente patógenos humanos relevantes, incluindo L. monocytogene s e Toxoplasma gondii, atravessa a barreira placentária 2,7. Estas culturas de órgãos ex vivo replicar na arquitetura do tecido vivo, e são sistemas modelo indiscutivelmente fisiologicamente altamente relevantes para placentation humano. técnicas de cultura adicionais incluem explantes inteiros de órgãos, fatias de órgãos e de tecidos ou caule Organóides celulares embarcados em 3D-matriz. Para mais detalhes sobre estas opções, consulte com uma recente revisão abrangente 8. Por favor note que este protocolo é para a cultura separada da decídua e vilosidades da placenta. Para estudar a interacção entre as células da placenta e células deciduais, uma técnica de co-cultura pode ser o preferido. Referimo-nos ao leitor interessado a técnica de co-cultura das vilosidades-decidual descrito anteriormente, utilizado por pesquisadores que estudam a remodelação vascular decidual mediada por trophoblast 9-11.

<table><tbody><tr><td>Bolsas de esterilização</td><td>Fisher Scientific</td><td>01-812-54</td><td>Para autoclavagem de ferramentas de dissecação individuais</td></tr><tr><td>Coador de malha fina</td><td>Cuisinart (Amazon.com)</td><td>NA</td><td>Embrulhe completamente em folha de alumínio e autoclave antes da coleta de tecidos.&nbsp; &nbsp;</td></tr><tr><td>Garrafão com torneira</td><td>Fisher Scientific</td><td>03-007-647</td><td>Para preparação de grande volume de tampão de lavagem.</td></tr><tr><td>Bolsas de gelo</td><td>Nortech labs</td><td>GB8818</td><td>Eles não precisam ser comprados, mas podem ser reciclados/reutilizados de qualquer remessa de laboratório de rotina que os inclua na embalagem.</td></tr><tr><td>Etanol 70%</td><td>VWR</td><td>V1001</td><td>Solução a 70% feita pela adição de dH20 a 190 ou 200 álcool de grau de pesquisa à prova.&nbsp; &nbsp;</td></tr><tr><td>10% de alvejante</td><td>Waxie Sanitary Supply</td><td>CLO 30966</td><td>Solução de 10% feita pela adição de dH20.</td></tr><tr><td>Caixa de Luz</td><td>Litebox Lumina (dickblick.com)</td><td>55305-2009&nbsp;</td><td>Nota lâmpadas de reposição também compradas no Blick (55305.0100)</td></tr><tr><td>Pinça de micro dissecação&nbsp;</td><td>Stoelting&nbsp;</td><td>52102-43</td><td>4 polegadas, 1 x 2 x 0.5 mm3, Ligeira</td></tr><tr><td>Curva Micro pinça de dissecação</td><td>Stoelting</td><td>52102-06</td><td>4 polegadas, Reta Fina, Afiada</td></tr><tr><td>Tesoura de mola micro dissecante vannas</td><td>Stoelting&nbsp;</td><td>52130-01P</td><td>Tesoura de Mola McPherson-Vannas, 8.5 cm, Ponta 0.33, Curva Ligeira</td></tr><tr><td>Microscópio de Dissecção</td><td>Leica Microsystems</td><td>MZ16 ou M60</td><td>Tivemos sucesso com os modelos listados.&nbsp; Fontes de luz flexíveis gooseneck externas são úteis, mas não necessárias.</td></tr><tr><td>Tubos cônicos de 50 ml</td><td>Sigma-Aldrich (Corning)</td><td>CLS4558</td><td></td></tr><tr><td>Phosphate Buffered Saline</td><td>Gibco (ThermoFisher Scientific)</td><td>10010023</td><td>Compramos de nossa instalação universitária de Núcleo de Cultura de Tecidos, opções alternativas como esta estão disponíveis.&nbsp; &nbsp;</td></tr><tr><td>10x Phosphate Buffered Saline</td><td>Teknova</td><td>P0195</td><td>Para a preparação do tampão de lavagem, usamos 10x PBS</td></tr><tr><td>DMEM/F-12 mistura de nutrientes (Ham's) com GlutaMAX</td><td>Gibco (Life Technologies)</td><td>10565-018</td><td>Compramos esta formulação de meio específica, contendo 2.438 g/L de bicarbonato de sódio, 55 mg/L de piruvato de sódio e 4.5 g/L de glicose</td></tr><tr><td>Gentamicina</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>15710072</td><td>1, 000x estoque. Recomenda-se preparar e armazenar alíquotas a -20 &graus; C para evitar congelamento/descongelamento.</td></tr><tr><td>Penicilina/Estreptomicina</td><td>Gibco (ThermoFisher Scientific)</td><td>15140-122</td><td>100x estoque.&nbsp; Recomenda-se preparar e armazenar alíquotas a -20 &graus; C para evitar congelamento/descongelamento.</td></tr><tr><td>Anfotericina B</td><td>Gibco (ThermoFisher Scientific)</td><td>15290-018</td><td>500x estoque.&nbsp; Recomenda-se preparar e armazenar alíquotas a -20 &graus; C para evitar congelamento/descongelamento.</td></tr><tr><td>progesterona</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P8783</td><td>Uma solução estoque de 1 mM é feita reconstituindo 15,7 mg de pó de progesterona em 15,7 ml de etanol e adicionando 34,3 ml de PBS. A solução é filtrada estéril, alíquota e armazenada a -20 ° C.</td></tr><tr><td>17&beta;-estradiol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E2758</td><td>A 10 &mu; A solução-mãe M é feita reconstituindo 13,5 mg de estradiol em pó em 10 ml de etanol e adicionando 40 ml de PBS. A solução é filtrada estéril, alíquota e armazenada a -20 ° C.</td></tr><tr><td>Filtro de vácuo de topo de garrafa (0,22 &mu; m)</td> <td>Sigma-Aldrich (Corning)</td><td>CLS430769</td><td>Para filtração estéril de meios de coleta após preparação</td></tr><tr><td>Placa de cultura de tecidos de 6 poços</td><td>BD Falcon</td><td>353224</td><td>Poliestireno, Cultura de tecidos tratada com</td></tr><tr><td>transpoços de 6 poços&nbsp;</td><td>Inserto PICM03050 Millipore</td><td></td><td>- 30 mm de diâmetro, 0,4 &mu; m membrana de PTFE hidrofílica de tamanho de poro</td></tr><tr><td>Matriz extracelular (por exemplo, Matriz Matrigel)</td> <td>BD Biosciences</td><td>354234</td><td>Utilizamos a Matriz Matrigel em nossos estudos. É um sólido à temperatura ambiente e a -20 ° C. Evite congelar / descongelar repetidamente. Descongele o frasco em solução viscosa a 4 &graus; C, e prepare ~ 300 &mu; L alíquotas na câmara frigorífica com pontas de pipeta refrigeradas. Armazene alíquotas a -20 &deg;C.&nbsp; &nbsp;</td></tr><tr><td>Paraformaldeído, 16% p/v solução aquosa</td><td>Alfa Aesar</td><td>30525-89-4</td><td>Para fixação tecidual, é feita uma nova preparação de paraformaldeído a 4% diluindo este stock em PBS.</td></tr><tr><td>Incubadora de cultura de tecidos, mantida a 37 °; C, 5% de CO2, 3% de oxigênio (opcional para culturas de órgãos de vilosidades)</td><td></td><td></td><td>Para alguns experimentos, a hipóxia pode ser preferida.&nbsp; Isso pode ser estabelecido de várias maneiras, incluindo a adição de nitrogênio exógeno via cilindro de gás, tubulação Tygon e um regulador. &nbsp;</td></tr><tr><td>Centrífuga</td><td></td><td></td><td></td> de bancada</tr></tbody></table>

culturas placentária e decidual órgão humano para estudar infecções na interface materno-fetal

Human Placental and Decidual Organ Cultures to Study Infections at the Maternal-fetal Interface

A placenta mostra um elevado grau de variabilidade anatômica entre espécies. Para melhor compreender a biologia e fisiopatologia da placenta humana, é imperativo para projetar experimentos usando células e tecidos humanos. Uma vantagem de cultura de órgãos é a manutenção de tridimensional (3D) e organização estrutural da matriz extracelular. O objetivo do método descrito aqui é o sucesso do estabelecimento de ex vivo culturas de órgãos de tecido gestacional humanos e sua manutenção de cultura saudável para 72-96 horas. Detalhes do protocolo a transformação imediata da pesquisa-consentida, placentária e espécimes deciduais frescos da sala de cirurgia. Estes são espécimes abundantes que seriam descartados. Instruções detalhadas sobre a coleta estéril dessas amostras, incluindo detalhes morfológicos sobre como escolher tecidos apropriados para estabelecer culturas de órgãos em 3D, é fornecido. Tecidos vilosidades e deciduais da placenta são microdissectados em 2-3 mm 3 peçase colocados separadamente em filtros Transwell alinhado-matriz e cultivadas durante vários dias. Vilosa e culturas de órgãos deciduais são bem adequados para o estudo da interacção hospedeiro-patogénio humano. Em comparação com outros organismos modelo, estas culturas humanas são particularmente vantajosos para examinar mecanismo da infecção por agentes patogénicos que demonstram padrões variáveis ​​de especificidade de hospedeiro. Como um exemplo, podemos demonstrar infecção de culturas de órgãos da placenta e deciduais com os facultativos, agentes patogénicos bacterianos intracelulares Listeria monocytogenes clinicamente relevantes.

Figura 1 (modificado de Zeldovich &amp; Bakardjiev 22) Diagramas da placenta relevantes e anatomia do útero. A Figura 2 mostra bruto representativo e imagens histológicos de vilosidades da placenta, enquanto a Figura 3 demonstra tecido decidual. Este protocolo primeira descreve a coleção de placenta fresca e tecido decidual no hospital ou clínica. A amostra recolhida é uma mistura de placenta fetal (vilosidades) e componentes uterinas maternas (decídua). Após lavagem com tampão contendo antibióticos de amplo espectro e antifúngicos, toda a amostra é inspecionado por olho usando uma caixa de luz. Vilosidades e decídua são colocadas em tubos separados e transportados em gelo para o laboratório. No laboratório, um microscópio de dissecação é utilizada para apreciar as belas características morfológicas de tecido saudável. fotografias representativas devilosidades (Figura 2A) e tecidos deciduais (Figura 3A), que foram obtidas com um microscópio de dissecação com duas fontes de luz externas pescoço de ganso são apresentados para referência. culturas de órgãos vilosidades são gerados a partir de amostras no primeiro trimestre. Culturas consistem em pequenas árvores vilosidades terminais com 2-6 ramos. É importante para dissecar ramos vilosidades que terminam nas colunas do trofoblasto extravilosas e são bem vascularizado. Estas características são vistas como fins Branch (setas) &quot;macia&quot; ou &quot;difusa&quot;, ea tonalidade rosa-a-vermelho fraco linear que percorre os ramos da árvore à esquerda na Figura 2A. Em contraste, a vasculatura e trofoblastos extravilosas não são facilmente visualizados para a árvore do lado direito desta imagem, o que seria abaixo do ideal para a cultura. Durante o primeiro dia de cultura, os trofoblastos extravilosas migrar para dentro do ECM, thus ancoragem das árvores vilosidades no interior da matriz no Transwell. culturas de órgãos deciduais são gerados a partir de amostras trimestre primeiro e início do segundo. O revestimento uterino inteira é transformada em decídua muito pouco tempo após a implantação. Mais especificamente, decidua basalis define a mucosa uterina subjacente directamente o local da placenta / implante, decídua capsular define mucosa que cobre o feto, e decídua parietal refere-se à parte restante do revestimento uterino. A visualização sob um microscópio de dissecação mostra que a amostra consiste em grande parte gestacional precoce de parietal decídua e decídua capsular (esquerda e fragmentos de tecido a direita, respectivamente, na Figura 3A). A decídua capsular é facilmente distinguidos pela sua natureza fina, membranoso. Para culturas de órgãos, decídua parietal é aparada a 3 mm3 fragmentos com uma tesoura micro-dissecção e Adhealuguel sangue coagulado é removido com uma pinça. Após incubação durante a noite, os tecidos são infectados com L. monocytogenes. O protocolo de infecção acima descrito baseia-se no ensaio de protecção de gentamicina utilizado para estudar o crescimento intracelular e propagação de bactérias intracelulares facultativas 16. Culturas de órgãos em meio isento de antibiótico são incubadas com L. monocytogenes, durante 5 h. As culturas são lavadas com PBS estéril para remover bactérias a partir do meio. Em seguida, gentamicina é adicionado para eliminar organismos extracelulares. Antes da literatura nosso laboratório usado imunofluorescência e microscopia confocal para determinar a localização do tecido bacteriana em vários pontos de tempo após a infecção 2. culturas de órgãos são lavadas em PBS, fixadas em paraformaldeído a 4%, e ou congelados-incorporado em meio de outubro e armazenado a -80 ° C, ou e armazenado à temperatura ambiente embebidos em parafina. As secções de tecido podem ser STAined para imunofluorescência (IF) ou análise imuno-histoquimica (IHC) de bactérias e localização de células eucarióticas. A Figura 2B é um representante se a imagem de uma secção congelada preparada a partir de uma cultura de órgãos viloso 8,3 semanas a 72 h após a infecção. Note-se a pesada carga bacteriana (fluorescência verde) nas TEVs nas extremidades dos ramos vilosidades, ea relativa falta de bactérias dentro da camada (fluorescência vermelha) Árvore-alinhadas sinciciotrofoblasto. Em trabalhos anteriores, foram utilizados semelhante, se a coloração para localizar L. monocytogenes em culturas de órgãos de vilosidades em momentos diferentes depois da infecção. Mais de 72 horas, a infecção se espalhou da EVT em citotrofoblastos sub-sincicial e estroma das vilosidades subjacente. Notavelmente, a camada synyctiotrophoblast era resistente à infecção 2. imagens microscópicas de luz representativas de cortes de tecido deciduais embebidos em parafina H &amp; E-manchadas preparado a partir de 14,3 semanas specimeNS são mostradas nas Figuras 3B e 3C. Esta membrana Transwell revestidas com MEC foi incorporado para mostrar a cultura de órgãos in situ (Figura 3B). A imagem mostra glândulas forrado de epiteliais (asterisco) e vasculatura-alinhado endotelial (diamante) posicionado de forma heterogênea dentro do compartimento de células do estroma da decidual. Além disso, existem células imunitárias maternas espalhados por todo o estroma decidual a uma densidade variável. IHC e se a fluorescência pode ser utilizado para determinar a localização microanatômico bacteriana, relativamente a células imunes específicas residentes. Como um exemplo, macrófagos CD14 + (fluorescência verde) localizam o revestimento da vasculatura e são dispersos dentro do estroma (figura 3D), enquanto que grandes agregados de L. monocytogenes (fluorescência vermelha) são observados, predominantemente no estroma decidual em 48 horas após a infecção (Figura 3D). <table border="1" fo:keep-together.within-page="1"fo: manter-com-next.within-page = &quot;always&quot;&gt; <tbody><tr><td> tampão de lavagem </td><td> meio de recolha </td><td> meio das vilosidades </td><td> médio decidual </td></tr><tr><td> PBS </td><td> DMEM / F-12 com GlutaMAX </td><td> DMEM / F-12 com GlutaMAX </td><td> DMEM / F-12 com GlutaMAX </td></tr><tr><td> Penicilina 100 UI / ml </td><td> Soro Fetal Bovino a 2,5% </td><td> Soro Fetal de Bovino 20% </td><td> Soro Fetal Bovino a 2,5% </td></tr><tr><td> Estreptomicina 100 ug / ml </td><td> Penicilina 100 UI / ml </td><td> Penicilina 100 UI / ml </td><td> 17β-estradiol de 300 pg / mL </td></tr><tr><td> A gentamicina 50 ug / ml </td><td> Estreptomicina 100 ug / ml </td><td> Estreptomicina 100 ug / ml </td><td> A progesterona a 20 ng / mL </td></tr><tr><td> A anfotericina B de 1,25 ug / ml </td><td> A gentamicina 50 ug / ml </td><td></td><td></td></tr><tr><td> &lt;<html> / Td&gt; <td> A anfotericina B de 1,25 ug / ml </td><td></td><td></td></tr></tbody></table> Tabela 1:. Receitas Media Components e concentrações para a preparação de solução de lavagem, médio coleção, médio das vilosidades, e médio Decidual. <img alt="figura 1" src="/files/ftp_upload/54237/54237fig1.jpg" /> Figura 1. Placentário estrutura. (A) Estrutura da unidade feto-placentária em útero materno, (B) Alargamento da caixa em (A) ressalta que trofoblasto fetal (T) alinhado vilosidades da placenta são banhadas em sangue materno e ancorado na decídua por trofoblastos extravilosas (EVT). Contido dentro de vilosidades são vasos fetais (FV), fibroblastos e macrófagos fetais. Modificado de Zeldovich &amp; Bakardjiev 22.<html> &quot;&gt; Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura. <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/54237/54237fig2.jpg" /> Figura 2: culturas de órgãos das vilosidades - gross Representante e imagens microscópicas (A) Duas árvores vilosidades terminais com uma idade gestacional de 6 semanas, como vistos sob um microscópio de dissecação.. Observe os fins &quot;macias&quot; (setas) e vascularização fetal proeminente percorrendo os ramos da árvore à esquerda que tornam esta peça adequado para cultura de órgãos. (B) Microscopia de imunofluorescência de cultura de órgãos (idade gestacional 8,3 semanas) infecção pós 72 h com Listeria monocytogenes, destacando carga bacteriana pesada [green] em trofoblastos extravilosas. DAPI é mostrado em azul, e βHCG + sinciciotrofoblastos em vermelho. Barras de escala = 1 mm (A), 250 um (B).7 / 54237fig2large.jpg &quot;target =&quot; _ blank &quot;&gt; Clique aqui para ver uma versão maior desta figura. <img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/54237/54237fig3.jpg" /> Figura 3:. Cultura de órgão Decidual - gross Representante e imagens microscópicas (A) decídua parietal [esquerda] e decídua capsular [direita] na idade gestacional 6 semanas, como visto sob um microscópio de dissecação. Seção (B) H &amp; E manchada de cultura de órgãos 14,3 semanas de idade gestacional decídua parietal mostra glândulas e vasos organizados de forma heterogênea em todo estroma decidual. O (diamante, ◆) eo (asterisco, *) destacam navio representativo e glândula, respectivamente. linha marrom na borda inferior é transpoço membrana, na borda. (C) H &amp; E-manchado seção de 14,3 semanas decídua idade gestacional parietalis cultura de órgão em maior ampliação demonstrates arteríolas espiral muscular de parede embutidos em estroma decidual. células imunes maternas são pequenas com núcleos redondos escuros, e são distribuídas irregularmente ao longo do estroma. (D) Microscopia de imunofluorescência de cultura de órgãos de 48 horas após a infecção com L. monocytogenes, destacando grandes zonas de bactérias [vermelho] no estroma decidual, e CD14 + materna macrófagos [green] alinhando um espaço vascular tortuoso e espalhadas no estroma. Barras de escala = 1 mm (A), 250 mm (B), 50 mm (C e D). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54237/54237fig3large.jpg" target="_blank">Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>

Um método simples para estabelecer placentária primária humana (vilosidades) e culturas de órgãos deciduais é descrito. culturas de órgãos vilosidades e deciduais são ferramentas inestimáveis ​​para estudar patogenia na interface materno-fetal humano. A infecção com a bactéria intracelular Listeria monocytogenes facultativos é demonstrada.

Culturas placentária e Decidual órgão humano para estudar Infecções na interface materno-fetal

The placenta shows a large degree of interspecies anatomic variability. To best understand biology and pathophysiology of the human placenta, it is ...

O objetivo geral deste procedimento é estabelecer culturas primárias de órgãos humanos da placenta e do decíduo para o estudo da infecção na interface materno-fetal. Este método pode ajudar a responder perguntas-chave nas áreas de biologia placentária e doenças infecciosas, como, por exemplo, onde os patógenos atravessam a interface materno-fetal durante a gravidez? As principais vantagens desta técnica simples e eficiente são o uso de espécimes humanos frescos e a manutenção da estrutura tridimensional do tecido na cultura de órgão.Este método pode ser utilizado para estudar infecções na interface materno-fetal. Também pode ser aplicado a outras áreas de pesquisa, como o desenvolvimento placentário. A demonstração visual deste método é fundamental, pois a seleção do tecido apropriado para o cultivo é difícil sem o conhecimento prévio da microanatomia, e a demonstração deste método será realizada pela Dra. Gabrielle Rizzuto.Usando técnica estéril em uma cabine de cultura de tecidos, preencha os frascos de matriz extracelular com gelo e, em seguida, dilua a matriz extracelular aquecida na proporção de um para um com meio de coleta gelado. Misture a suspensão com pipetagem, tomando cuidado para não induzir bolhas. Em seguida, coloque inserts transwell com poros de 0,4 mícron em poços individuais de uma placa de cultura de tecidos de seis poços e recubra cada insert com 100 microlitros da suspensão de matriz extracelular.Coloque a placa sobre gelo e lave os espécimes duas vezes em meio de coleta, transferindo o tecido para uma placa de Petri estéril sob um microscópio estereoscópico após a segunda lavagem. Os espécimes contêm dois tipos distintos de tecidos deciduais: a decidua parietal e a decidua capsular. Usando tesoura estéril para dissecação e pinça, microdisseque a decidua parietal em pedaços de 3 milímetros cúbicos, utilizando os pinos para separar qualquer sangue materno coagulado, e use a pinça para transferir três ou quatro pedaços de decidua para cada compartimento do transwell.Identifique as vilosidades bem vascularizadas, com colunas proeminentes de células trofoblásticas extravilosas, e use pinça para transferir três ou quatro árvores vilosas para cada inserto. Ajuste os ramos para que as árvores fiquem posicionadas planas sobre a matriz extracelular, separando quaisquer ramos agrupados. Em seguida, adicione um mililitro de meio de coleta ao fundo de cada poço e incube as culturas durante a noite a 37 graus Celsius em 5% de dióxido de carbono.12 a 16 horas depois, adicione um mililitro do meio de cultura apropriado na parte superior de cada transwell. Antes de iniciar a infecção, inocular uma única colônia de L.monocytogenes a partir de uma placa de ágar infusão cérebro-coragem estriada em três mililitros de caldo infusão cérebro-coragem. Incubar a cultura durante a noite em posição inclinada a 30 graus Celsius para permitir que o crescimento bacteriano atinja a fase estacionária.Na manhã seguinte, utilize pin&ccedil;as est&eacute;reis para remover quaisquer fragmentos de cultura de &oacute;rg&atilde;os que n&atilde;o tenham invadido a matriz extracelular e aspire cuidadosamente o meio do fundo de cada transwell. Em seguida, pipete suavemente um mililitro de PBS morno nos compartimentos superior e inferior dos transwells por duas vezes, removendo cada lavagem com aspira&ccedil;&atilde;o cuidadosa. Ap&oacute;s a segunda lavagem, pipete suavemente um mililitro do meio apropriado nos compartimentos superior e inferior dos transwells, tomando cuidado para n&atilde;o perturbar as culturas de &oacute;rg&atilde;os, e devolva as culturas ao incubador por uma hora.No final da incubação, substitua o meio na parte superior dos transpoços por um mililitro de inóculo e devolva as placas ao incubador de cultura celular para facilitar a invasão bacteriana, substituindo diariamente todo o meio em cada poço. Para culturas de órgãos vilosos, é essencial dissecar apenas os ramos vilosos placentários que terminam em colunas de trofoblasto extravilosas bem vascularizadas, com aspecto felpudo ou difuso. Em contraste, árvores vilosas com vasculatura não facilmente visualizável e trofoblastos extravilosos são subótimas para cultura.A análise de uma cultura de órgãos vilosos 72 horas após infecção com Listeria monocytogenes demonstra uma alta carga bacteriana nos trofoblastos extravilosos e uma relativa escassez de bactérias dentro da camada de sinciciotrofoblasto que reveste as vilosidades. Para culturas de órgãos deciduais, é importante saber que espécimes do início da gestação consistem principalmente em decídua capsular, facilmente identificada por sua natureza fina e membranácea, e decídua parietal, que é aparada conforme demonstrado e utilizada para as culturas. A coloração com hematoxilina e eosina (H e E) de cultura de órgãos deciduais emblocados em parafina revela glândulas revestidas por epitélio e vasos revestidos por endotélio posicionados de forma heterogênea dentro do compartimento de células estromais deciduais.48 horas após a infecção, macrófagos positivos para CD-14 localizam-se próximos à vasculatura e se espalham por todo o estroma decidular, enquanto grandes agregados de Listeria monocytogenes se agrupam predominantemente no estroma. Uma vez dominada, a técnica permite estabelecer culturas de órgãos em menos de 60 minutos por espécime, se preparadas adequadamente. Ao realizar este procedimento, é importante lembrar-se de manter a esterilidade na cabine de cultura de tecidos e durante o trabalho no microscópio estereoscópico.Após sua preparação, essas culturas de órgãos podem ser infectadas com os patógenos bacterianos, fúngicos ou virais relevantes de interesse, para responder perguntas adicionais sobre quais tipos celulares são mais vulneráveis à infecção. Após seu desenvolvimento, esta técnica abriu caminho para que microbiologistas explorassem a patogênese de infecções placentárias com patógenos clinicamente relevantes, como a *Listeria monocytogenes*. Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como estabelecer culturas orgânicas de decídua e vilosidades em inserts de cultura tecidual tipo transwell revestidos com matriz extracelular.

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Imunologia e Infecção

Este vídeo demonstra o estabelecimento de culturas primárias de órgãos humanos, vilosidades placentárias e deciduais em condições ex vivo. Esses modelos são adequados para estudar a patogênese na interface materno-fetal humana.

Estabelecendo culturas de órgãos vilosos e deciduais como modelos ex vivo de interface materno-fetal humana

Este vídeo demonstra um método para estabelecer um modelo de infecção em tecidos placentários para estudar a propagação da infecção. Uma cultura de órgãos placentários ex vivo é infectada com Listeria monocytogenes, um parasita intracelular facultativo. As bactérias invadem trofoblastos extravilosos (EVTs) para entrar no tecido placentário e depois se propagam para outras células por meio da disseminação célula a célula.

Uma técnica para estabelecer um modelo de infecção bacteriana em uma cultura de órgãos ex vivo

Descrito aqui é um protocolo para isolar e estudar mais detalhadamente os leucócitos infiltrantes da decídua basal e decídua parietalis - a interface materno-fetal humana. Este protocolo mantém a integridade dos marcadores de superfície celular e produz células viáveis suficientes para aplicações a jusante, conforme comprovado pela análise de citometria de fluxo.

Isolamento de Leucócitos do Human Interface materno-fetal

Descrito aqui é um protocolo para isolar e analisar os leucócitos infiltrantes de tecidos na interface materno-fetal (útero, decídua e placenta) de camundongos. Este protocolo mantém a integridade da maioria dos marcadores de superfície celular e produz células viáveis suficientes para aplicações a jusante, incluindo análise de citometria de fluxo.

Isolamento de Leucócitos a partir de tecidos de murino na interface materno-fetal

Este protocolo demonstra um método para o isolamento de células de decidual humanas primários coletados de membranas fetais de placentas de termo que podem ser usadas para uma variedade de aplicações (ou seja, imunocitoquímica, citometria de fluxo, etc.) com o objetivo para estudar o papel das populações de células diferentes em complicações na gravidez.

Isolamento de células humanas primárias do Decidual de membranas fetais de termo placentas

Aqui está um protocolo para cultivo de explantes placentários em condições de fluxo constante. Essa abordagem aprimora os sistemas tradicionais de cultura de vilosidades estáticas, permitindo a replicação de ambientes fisiológicos dinâmicos.

Ex Vivo Cultura do Fluxo de Explantes Placentários - Mimetizando as Condições Dinâmicas no Útero

Este protocolo descreve a preparação de explantações de tecido placentário humano cultivadas em uma interface ar-líquido para o estudo de infecções virais.

Ex vivo Cultura de explantações placentárias humanas para o estudo da transmissão viral através da interface materno-fetal

Tuberculose e malária são duas das infecções mais prevalentes em seres humanos e as principais causas de morbidade e mortalidade em populações empobrecidas nos trópicos. Nós estabelecemos um sistema de modelo experimental para estudar resultado de malária tuberculose co-infecção em camundongos após o desafio com ambos os patógenos através de sua rota natural de infecção.

Um modelo experimental para estudar a Tuberculose-Malária Coinfection sobre Transmissão Natural de Mycobacterium tuberculosis E Plasmodium berghei</i

Neisseria meningitidis é um patógeno específico humano que infecta os vasos sanguíneos. Neste protocolo microvasos humanos são introduzidos em um rato por enxertia de pele humana em ratos imunocomprometidos. As bactérias aderem extensivamente para os vasos humanos, levando a danos vasculares e desenvolvimento da erupção purpúrica normalmente observada em casos em humanos.

Humanizado mouse modelo para estudar Infecções Bacterianas Segmentação microvasculatura

Apresenta-se um protocolo simples e eficiente para a geração de macrófagos humanos. Casacos de Buffy são processados ​​por dupla centrifugação em gradiente de densidade e monócitos isolados são então diferenciado para macrófagos em revestidos de teflon de cultura de células de sacas. Isso maximiza o rendimento de macrófagos e facilita a colheita de células para experiências posteriores.

Isolamento de monócitos humanos por duas vezes centrifugação em gradiente e sua diferenciação de macrófagos em revestidos de teflon Cultura de Células Bags

Aprenda a estabelecer culturas de órgãos placentários e decíduos humanos para estudar infecções na interface materno-fetal. Esta técnica preserva a arquitetura tecidual tridimensional e permite investigar patógenos como Listeria monocytogenes.

Culturas placentária e Decidual órgão humano para estudar Infecções na interface materno-fetal

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